Summary
Intracavernosal druk opname (ICP) is een belangrijke methode om te evalueren van de erectiele functie van proefdieren. Hier, een gedetailleerd protocol blijkt procedure voor de opname van ICP door catheterizing de crura penis en dan elektrisch stimuleren de cavernous zenuwen bij ratten.
Abstract
Erectiele dysfunctie (ED) is gedefinieerd als de onmogelijkheid te bereiken of behouden van een erectie van de penis, en dit is uitgegroeid tot een overwegend mannelijke seksuele stoornis. Knaagdieren worden gebruikt door vele studies de Fysiologie/pathologie van erectiele functie onderzoek. Erectiele functie bij knaagdieren kan worden geëvalueerd door het meten van de druk van de intracavernosal (ICP). In de praktijk, kan ICP worden gecontroleerd na elektrische stimulatie van de cavernous zenuwen (CNs). De arteriële druk van de halsslagader (de gemiddelde arteriële druk) wordt gebruikt als referentie voor ICP. ICP opname protocollen gebruikt, kunnen veel sleutelparameters van erectiele functie wordt gemeten vanaf de ijkkromme ICP. De ICP-meting vindt u meer informatie dan de apomorphine-geïnduceerde penile erectie-test, en is goedkoper dan telemetrische monitoring van de corpus spongiosum penis, waardoor deze methode de populairste een erectiele functie moet worden geëvalueerd. Vergeleken met de erectiele APO-geïnduceerde gemakkelijk uitgevoerd functietest, moeten succesvolle ICP opnamen echter aandacht voor detail, praktijk, en aanhankelijkheid aan de operatie methode. Hierbij vindt u een inleiding tot de ICP opname bij ratten efficiënt als aanvulling op de procedure.
Introduction
ED is gedefinieerd als de onmogelijkheid te bereiken of te houden een penile erectie, en een gemeenschappelijk mannelijke seksuele stoornis1is geworden. Proefdieren worden gebruikt en reproduceerbare modellen om te onderzoeken erectiele functie2voorzien. Voor een lange tijd, hebben verschillende grotere dierlijke modellen gewerkt voor het onderzoeken van erectiele functie3,4,5. Hoewel knaagdieren relatief klein in vergelijking met andere dieren zijn, worden ze ook gebruikt voor de studie van mannelijke erectiestoornissen te wijten aan verscheidene voordelen6tentoonstellen. Ten eerste, de morfologische en functionele geslachtskenmerken van de mens zijn gerecapituleerd in knaagdieren. Ten tweede, in vergelijking met grotere dieren gebruikt in ED studies, knaagdieren zijn zuiniger om te kopen, huis, en te handhaven. Derde, genetisch gemodificeerde knaagdier modellen bieden voordelen in reproduceerbaar en latere gedrags evenals neurofysiologische studies. Knaagdieren hebben daarom snel uitgegroeid tot de primaire dieren die worden gebruikt in de studie van mannelijke erectiestoornissen.
Profiteren van een zuivere genetische achtergrond en consistente kweekomstandigheden, hebben knaagdier modellen verstrekt consequent reproduceerbare gegevens5,,6,,7,8. Onder de talrijke beschikbare studies met betrekking tot de vele aspecten van erectiele functies, de apomorphine (APO)-geïnduceerde Erectiele reactie en de elektrische stimulatie-geïnduceerde ICP reactie test zijn de meest gebruikte methoden die erectiele een getrouw beeld geven functie9,10,11,12. De APO-geïnduceerde erectiele functietest, ontwikkeld door Heaton et al. 13, is een biotoetsen dat gebruik maakt van het fenomeen dat toediening van apomorphine aan ratten erecties en gegaap lokt. Als een eenvoudig, noninvasive en stabiele biotoetsen erectiele functie moet worden geëvalueerd, wordt de APO-geïnduceerde erectiele functietest veel gebruikt in tal van studies. Echter overeen deze test niet voldoende met de kwaliteit van erecties of de dynamische veranderingen in de bloedstroom een erectiele reactie14is gekoppeld. ICP-metingen werden aanvankelijk ontwikkeld door Quinlan et al. 15. bij deze methode wordt een katheter wordt geplaatst in de halsslagader aan de systemische bloeddruk meten en een andere katheter de crus corpus cavernosum om vast te leggen van het ICP wordt ingevoegd. Vóór of tijdens de opname, een vasoactieve agent en/of elektrische veld stimulatie van het grote bekken ganglion (MPG) ICP of CN werden vaak gegeven aan de ratten14. Deze test is een betrouwbaar hulpmiddel voor de evaluatie van de therapieën en geneesmiddelen voor ED, en zal waarschijnlijk worden gebruikt als een vitale evaluatiemethode in de toekomstige6.
Vergeleken met de erectiele APO-geïnduceerde gemakkelijk uitgevoerd functietest, vereist succesvolle ICP opnames aandacht voor detail, praktijk, en aanhankelijkheid aan de operatie methode. Daarom hier, bieden wij een gedetailleerde beschrijving van het uitvoeren van ICP opname.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Drie-maand-oude en 18-maand-oude Sprague-Dawley ratten werden gebruikt in de huidige studie. Alle dieren waren behandeld volgens de NIH-richtsnoeren voor de zorg en het gebruik van proefdieren. Procedures met betrekking tot dierlijke onderwerpen werden goedgekeurd door de lokale institutionele Animal Care en ethisch comité, met een poging om te minimaliseren van dierenleed. De protocollen werden goedgekeurd door de institutionele Animal Care en gebruik Comité (IACUC) aan de Universiteit van de Tech Nanking (Nanjing, China).
De ratten werden verdeeld over twee groepen volgens hun leeftijd en voorafgaande prestaties in de APO-geïnduceerde erectiele functietest vóór ICP opname: de jonge normale groep (YN) en leeftijd erectiestoornissen groep (AE groep)10.
1. voorbereiding voor de ingreep
- Handmatig maken een paar bipolaire elektroden voor de ICP-opname (Figuur 1). Iets buigen de uiteinden van elektroden, en pas de afstand tussen twee elektroden tot 1-2 mm breed, zoals weergegeven in figuur 1A.
- De elektroden aansluit op de stimulator met behulp van twee krokodil klemmen (figuur 1AB).
- Monteren van het systeem van de katheter: Eerst een hypodermic 23G naald verbinden met een 3-weg-afsluiter met tubing, waarna de afsluiter verbinden met de drukopnemer. Vervolgens een 10 mL spuit te hechten aan het derde einde van afsluiter te verstrekken heparine zoutoplossing.
- Controleer zorgvuldig voor lekkage na het vullen van het hele systeem met heparine saline (200 U/mL). Sla de afsluiter van de 3-weg om te sluiten van de spuit-kanaal of de druk transducer kanaal (Figuur 1 c).
- De naald 20 cm verheffen op het niveau van de houten pad. Dan kalibreren het druk opname-systeem naar 20 cm H2O. Verplaats daarna de hoogte van de naald de juistheid van het registratiesysteem. Herhaal de kalibratie totdat de nauwkeurigheid werd bevestigd.
- De ratten van het dier faciliteit overboeken naar de operatie kamer, en laten wennen aan de operatie kamer voor minstens 30 min.
- De gesteriliseerde met autoclaaf instrumenten zijn gespoten met 70% ethanol net voor de ingreep
2. operatie Procedure
- Anesthetize van de rat met een intraperitoneale injectie van natrium pentobarbital bij een dosis van 45 mg/kg lichaamsgewicht, en wacht voor 5-10 min. knijpen de tenen te bevestigen van een juiste afstomping.
- De vacht van de buik en de nek scheren met een scheerapparaat, en plaats de rat op zijn rug op een verwarming pad.
- Veeg het operatie gebied met 10% Povidon-jodium oplossing gedrenkt katoen ballen gevolgd door 70% ethanol gedrenkt katoen ballen. Verder toepassen ophthalmic zalf om te voorkomen dat de ogen uitdrogen.
- Catheterize de linker halsslagader.
- De huid van de nek te vatten met een tang en maak een horizontale snede in het midden van de nek. Incise van de spieren, zorgvuldig bloot de linker halsslagader en isoleren van een 5-mm-sectie van het schip.
- Zorgvuldig de halsslagader scheiden van de nervus vagus met pincet, tekenen een zijde hechtdraad onder de halsslagader, en zet een losse stropdas aan de caudal kant van het schip, dan maken een andere strakke knoop aan de craniale kant van het schip.
- Caudally klem het vaartuig met een bulldog klem boven de hechtdraad om te stoppen met de bloedstroom.
- Zorgvuldig een incisie over het schip met een microchirurgische schaar en invoegen van de arteriële katheter naar het hart met de hulp van de micro-ontrafeling haak en pincet.
- Zet de losse caudal ligatuur rond de katheter om het veilig vast. Verwijder de bulldog klem om te herstellen van de bloedstroom.
-
Isoleren van de GN en plaats van de elektrode
- Til de huid en de spieren van de buik met een paar pincet. Met het ontleden schaar, doorsnijden de onderbuik aan de penis te maken van een incisie middellijn.
- Duw voorzichtig de darm met doekje in het bovenste deel van de buikholte.
- Begrijpen van de blaas met een paar pincet en trek de blaas van de buikholte. Bloot de ventrale lobben van de prostaat, dat zich op het ventrale gedeelte van de urinebuis bevindt.
- Trek de ventrale lobben van de prostaat, zaadblaasje en zaadleiders de dorsale kwab van de prostaat bloot te stellen. Het punt van de hechting van de zaadleiders en prostaat vinden.
- De ruimte tussen de prostaat en de zaadleiders te scheiden. Zorgvuldig bloot de vezelige capsule, die zich op het koppelingspunt van de prostaat en de zaadleiders posterieure bevindt. Dan vinden de grote bekken ganglion (Figuur 2).
Opmerking: De grote bekken ganglion en cavernous zenuwen kunnen worden gezien op het oppervlak van de prostaat. - Zorgvuldig droog GN-gebied met een steriel doekje. Zorgvuldig isoleren en haak de rechts cavernous zenuw met de bipolaire elektroden.
-
Catheterize de linker Crura
- Snijd een kleine incisie in de huid van de penis met een ontleden schaar, en vervolgens zorgvuldig denude de huid van de penisschacht.
- Ontleden de gegroefde penile spierstelsel. Vind de bovenste tak van schaambeen bot.
- Bloot de bulbospongiosus spier, die betrekking heeft op de spongious-lamp.
- Verdeel de musculus bulbospongiosus uit de ischiocavernosus spier met behulp van gebogen pincet.
- De ischiocavernosus spier zorgvuldig te isoleren met een gebogen Tang, en knip de ischiocavernosus spier om de witte tunica albuginea van de crus corpus cavernosum bloot te stellen.
- Na de anatomische richting van de crus corpus cavernosum, zorgvuldig plaats de naald in de crus corpus cavernosum door de witte tunica albuginea.
Opmerking: Dit is een cruciale stap voor succesvolle catheterisatie. Een kleine hoeveelheid EDTA zoutoplossing kan worden ingespoten, en een lichte penile tumescentie moet worden nageleefd, als de naald is correct ingevoegd. - Zorgvuldig vrij van de naald en Vermijd eventuele glijden van de naald of verstoring van de aansluitende buis. Inspecteren op eventuele lekkage.
3. stimuleren van de GN
- Open het softwareprogramma voor druk signaal opname en druk signaal opnemen.
- Instellen van de parameters van de stimulatie: 15 Hertz, pulsbreedte van 5 milliseconden, 5 volt, en een 60 s duur. Stimuleren van CN met een frequentie van 15 Hz met een pulsbreedte van 5 ms.
Opmerking: Een scherpe stijging van het ICP kan worden waargenomen tijdens het toepassen van de elektrische stimulatie. - Een interval van 30 minuten rust tussen stimulaties toestaan. Het maximum van opeenvolgende stimulatie in elk dier is drie keer.
4. Beëindig de Procedure
- Na de opname wordt euthanasie te beheren door het injecteren van een overdosis van pentobarbital natrium bij een dosis van 150 mg/kg lichaamsgewicht. Bevestig de dood van ratten door het controleren van de arteriële druk. Verwijder van de ratten, en reinig de operatie-instrumenten.
5. de gegevensanalyse
- Opslaan en exporteren van de gegevens van de software. De reactie wordt gewoonlijk uitgedrukt als de verhouding van het ICP aan de systemische gemiddelde arteriële druk (kaart). De verhouding van de piek ICP/kaart werd berekend de erectiele functie moet worden geëvalueerd.
- Gegevens uit ten minste vijf ratten te bundelen en te analyseren met statistische software. Verschillen zijn statistisch significant geacht wanneer p < 0,05, met behulp van de Student t-test.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Talrijke studies hebben aangetoond dat erectiele dysfunctie in leeftijd mannetjes is steeds een veelvoorkomend probleem. Medische behandeling is echter beperkt in het beheer van veroudering-gerelateerde ED16. In knaagdier modellen van veroudering-gerelateerde ED, worden veel therapieën getest op de erectiele functie van leeftijd ratten. Zoals we hierboven hebben geïntroduceerde, kan detest opname ICP worden gebruikt om te onderscheiden van de dieren ED van de totale bevolking van proefdieren, die is ook waardevol voor het kwantificeren van het effect van potentiële behandeling of drugs op de erectiele functie.
Zoals geïllustreerd in figuur 3A, was de typische ICP ijkkromme van de ED-Fractie (leeftijd ED ratten, AE, 18-maand-oude) veel lager dan de controlegroep kromme (jonge normale ratten, YN, 3 maanden oud). Meestal is de hoogste ICP werd gekozen voor statistische analyse. Na de berekening van de verhouding van ICP/kaart, de gegroepeerde gegevens uit 5 ratten is gebleken dat de verhouding tussen de ICP/kaart in AE groep ook verminderde aanzienlijk in vergelijking met die in de controlegroepen (figuur 3B). Naast deze twee sleutelparameters, de piek ICP, het plateau ICP, het detumescence tijd, de duur van de reactie en het oppervlak onder de kromme allemaal sterk gedaald in leeftijd ED ratten (tabel 1). Deze ICP opnamegegevens bieden een methode voor kwantitatieve meting om te reflecteren erectiele functie.
Figuur 1: handmatig gemaakt katheter, bipolaire elektroden, en de stimulator en opname-systeem voor opname van het ICP signaal. Zowel de katheter en elektroden zijn aangesloten op de stimulator en signaal systeem controleapparaat. De uiteinden van de katheter worden ingevoegd in de linker slagader of crus corpus cavernosum om vast te leggen van de druk. De elektroden worden geplaatst onder de cavernous zenuwen (CNs). (A) de uiteinden van de elektroden zijn licht gebogen. ()B) de stimulator en signaal systeem controleapparaat. (C) handmatig geassembleerde katheter. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.
Figuur 2: de anatomische positie van het grote bekken ganglion en cavernous zenuwen. Zoals in de afbeelding, is het grote bekken ganglion gelegen aan de laterale rand van de prostaat. De holle zenuw in een rat is een aparte zenuw die zich van het grote bekken ganglion uitstrekt. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.
Figuur 3: vertegenwoordiger ICP opname van anders leeftijd ratten. (A) vertegenwoordiging van ICP wijzigingen tijdens cavernous zenuwstimulatie. Controlegroep (de jonge normale ratten, YN, 3-maand-oude ratten); ED-Fractie (de leeftijd ED ratten, AE, 18-maand-oude). De staaf onder ICP responscurve vertegenwoordigt de timing van de elektrische stimulatie. ()B) de erectiele functie index (intracavernous druk/gemiddelde arteriële druk) van verschillende experiment groep wordt weergegeven. Gegevens uit ten minste vijf ratten worden gepresenteerd als gemiddelde ±standard afwijking; verschillen zijn statistisch significant geacht wanneer *p < 0,05, met behulp van de Student t-test. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.
| Jonge normale (YN) | Leeftijd erectiestoornissen (AE) | |
| (Mean±SD) | (Mean±SD) | |
| basale ICP | 22.3±3.7 (mmHg) | 21.9±5.2 (mmHg) |
| piek ICP | 172.8±7.6 (mmHg) | 105.4±4.9 (mmHg) * |
| plateau ICP | 165.4±2.5 (mmHg) | 86.5±4.1 (mmHg) ** |
| latency tot erectie | 10.3±1.6 (s) | 15.1±2.3 (s) |
| detumescence tijd | 46.7±2.6 (s) | 11.8±3.3 (s) * |
| duur van respons | 107.2±3.7 (s) | 71.7±4.2 (s) * |
| oppervlak onder de kromme | 17436.9±736.4 | 6426±428.3 ** |
| aantal erecties | 3±0.0 | 3±0.0 |
Tabel 1: Parameters van erectiele functie bij erectiestoornissen jonge en oude ratten. De basale intracavernous druk (ICP), piek ICP, plateau ICP, latency erectie, detumescence tijd, duur van respons, gebied onder de ICP curve voor de reactie van de tijd, en het aantal erecties waargenomen in 30 min worden berekend en uitgedrukt als gemiddelde ±standard afwijking (n = 5). Verschillen zijn statistisch significant geacht wanneer *p < 0,05 of **p < 0,01, met behulp van de Student t-test.
| Symptomen oplossen | Mogelijke oorzaken en suggesties |
| Geen druk van ICP of kaart | Apparatuur probleem: de status van de apparatuur controleren |
| Lekkage probleem: controleren van de buis, zorg ervoor dat de verbinding intact is, controleer dan de afsluiter, en of het in de juiste positie | |
| Lagedruk verhoogd na elektrische stimulatie | Onaangepaste of geen stimulatie: Controleer de aansluiting van de elektroden van de stimulator aan CN, probeer herpositionering van de elektroden |
| Schade aan de CN: Probeer stimuleren contralaterale CN | |
| Lekkage: Kijk op de site van de invoeging van ICP katheter, zoals lekkage van invoeging site de ICP dalen zal | |
| Bloeden | Kijk op de site van bloeden; Als de slagader is geperforeerd, eindigt het experiment. Als het fokken in de ICP invoeging site gebeurt, is opnieuw aanprikken erg lastig, misschien onmogelijk |
Tabel 2: oplossen van problemen voor de procedure van de opname ICP. Drie gemeenschappelijke symptomen bij ICP chirurgie, mogelijke oorzaken en suggesties.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Als een directe maat voor erectiele functie is ICP een betrouwbare methode14. Het maakt het mogelijk voor de overname van gegevens over basale ICP, piek ICP, plateau ICP, tijd tot erectie en detumescence tijd, duur van respons, enz. Naast deze gemeten parameters direct, zijn er sommige andere index-parameters: (1) "T80", de tijd tot 80% van de piek ICP; (2) "D20", de tijd te dalen tot 20% van de piek ICP; (3) "ΔT80", het tempo van de toename van de druk (per seconde) in T80; en (4) "ΔD20", het tempo van de daling in druk (per seconde) bij D20. Deze parameters kunnen voor de kwantificering van elke fase en de kwaliteit van de ICP-reactie, die kunnen denken van de gevolgen van ziekte en onderzoeken van de werkzaamheid van de geneesmiddelen14,17. Deze opnamemethode ICP wordt veel gebruikt in ED diermodellen. In dit protocol vergeleken we de ICP-reactie in jonge en oude ratten van ED. Als toediening van geneesmiddelen via intracavernous katheter nodig is, kan het worden gedaan door plaatsing van een andere intracavernous katheter in de contralaterale crus corpus cavernosum17. Het totale volume van de injectie moet minder dan 0,1 mL. Systematische drug administration kan worden uitgevoerd via intraperitoneaal of subcutane injectie. Intraveneuze toediening is nodig, kunnen de juiste halsslagader worden overwogen.
Hoewel ICP chirurgie enigszins technisch uitdagende is en een diepgaand inzicht in lagere organen van de buik- en bekkenholte anatomie is vereist, kan een het protocol meester met tijd en moeite. Aangezien de katheters en elektroden handmatig door de experimentator gemaakt worden, moet de drukopnemer worden gecontroleerd en elke keer voordat het experiment gekalibreerd. De elektroden dient dun en de afstand tussen de twee elektroden moet klein genoeg om het stimuleren van de zenuw efficiënt. Het is belangrijk om te voorkomen dat uitrekken of andere schade aan de zenuwen terwijl het plaatsen van de elektroden. Het is cruciaal voor de juist plaats de naald in de linker crura, zonder schuiven of afhaken. Drie veel voorkomende symptomen zijn vermeld in tabel 2, die kunnen worden geacht wanneer sommige symptomen optreden.
Deze opnamemethode ICP is ook overdraagbaar aan muizen. De organen van muizen zijn echter kleiner dan ratten, ICP-opname in muizen moeilijker maken. Als ICP opnames werden uitgevoerd bij muizen, kunnen kleinere formaat injectienaalden worden gebruikt.
ICP opname heeft ook haar beperkingen en andere methoden kunnen worden beschouwd. Meestal, de ICP opname chirurgie wordt uitgevoerd op de narcose dieren, en de dieren na korte ICP meting, die niet geschikt zijn voor langdurige bewaking van ICP worden opgeofferd. Een aanzienlijke verbetering van directe ICP opnamemethode presteert ICP opnames op bewuste, vrij bewegende ratten, die is goed beschreven in de protocollen die zijn geschreven door Hedlund et al. 17 deze methode biedt de mogelijkheid tot het opnemen van de intracavernosal druk voor langere tijd. Onlangs, vooruitgang hebben geboekt op te nemen een telemetrische benadering toegepast in bewuste, vrij bewegende dieren18,19,20. Hoewel de telemetrische aanpak vele voordelen ten opzichte van traditionele ICP opnemen heeft, vereist het dure apparatuur om te zetten en de geconverteerde druk-signalen ontvangen. Voor het overwinnen van de methode catheterisatie, beschrijven Adachi et al. een manier om de onderzoeken van erectiele reacties door het continue meten van de diameter van de penissen in ratten21. Bij deze methode wordt een paar piëzo-elektrische kristallen de schacht van de penis corpus cavernosum geplaatst. Twee parameters worden gedefinieerd om te evalueren van de erectiele respons: (1) "D-max": de maximale diameter van de penile ontwikkeld tijdens meting; en (2) "T50%": de tijd van de maximale reactie tot herstel van de 50% van de maximale respons bij narcose ratten. Met dit protocol, is de wijzigingen van de diameter van de penis een ook getrouw beeld geven van de kwaliteit van erectiele reactie; Bovendien is het weefsel niet gewond tijdens de gehele meting. Echter, zoals de telemetrische benadering, deze sonomicrometry-methode vereist ook specifieke en relatief dure apparatuur te converteren en te ontvangen van de wijzigingen van de diameter van de penis.
Kortom is ICP opname een nauwkeurige, relatief gemakkelijke en goedkope methode. Wij zijn van mening dat deze introductie kan helpen uitbreiden van het gebruik van ICP methode, en verder de voorkennis van de pathologie en de Fysiologie van erectiestoornissen.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
De auteurs hebben niets te onthullen
Acknowledgments
Dit werk werd gesteund door de fundamentele middelen voor onderzoek voor de centrale universiteiten (020814380018, 020814380077), de China Scholarship Raad (CSC, nr. 201606195024), Natural Science Foundation van de oostelijke provincie Jiangsu (BK20160138) en Key Project ondersteund door wetenschap en technologie Development Foundation, Nanjing Medizinische Universität (2014NJMUZD053).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Animal | |||
| Rats | Strain: Sprague-Dawley Age: 2-3 month | ||
| Rats | Strain: Sprague-Dawley Age: 15-18 month | ||
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Reagents | |||
| Saline | Sigma-Aldrich, S7653 | dissolve 8.5 gram sodium chloride in distilled water | |
| Pentobarbital sodium solution | Sigma-Aldrich, P3761 | dissolve 1 gram in 100 ml saline | |
| Povidone-iodine | BTP Pharmaceutical Co. Limited | 10% (V/V) | |
| Ethanol | China National Pharmaceutical Group Corporation (SINOPHARM) | 70% (V/V) | |
| Heparin | Sigma-Aldrich, H3149 | dissolve 20000U heparin in 100 ml saline | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Materials | |||
| Hypodermic needle | Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd. | 23G | |
| Syringe | Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd | 10 ml | |
| Three-way stopcock | Chengdu Instrument factory | TSK 01 | |
| Electrode | Chengdu Instrument factory | JST-1 | |
| Catheter tube | Chengdu Instrument factory | PE-10, PE-50 | |
| Operating scissors | Shanghai operation equipment factory | J22010, J22020 | |
| Ophthalmic operating scissors | Shanghai operation equipment factory | Y00010, Y00020 | |
| Ophthalmic forceps | Shanghai operation equipment factory | JD1010, JD1020 | |
| MicroScissors | World Precision Instruments | WAA260 | |
| silk suture | Shandong Weigao Group Medical Polymer Co., Ltd. | 5-0 | |
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Equipment | |||
| Stimulator | Nanjing medease science and technology co. ltd (model 4C501H) | 15 Hz, 5 ms pulse, 5 V, 60 s duration and 5 minutes interval | |
| Multichannel signal collection processing system | Nanjing medease science and technology co. ltd (model 4C501H) | Blood pressure model | |
| Pressure transducer | Beijing Xin Hang Xing Ye Technology Trading Company Limited (model YP100) | 40KPa |
References
- NIH Consensus Conference. Impotence. NIH Consensus Development Panel on Impotence. JAMA. 270 (1), 83-90 (1993).
- Chung, E., De Young, L., Brock, G. B. Investigative models in erectile dysfunction: a state-of-the-art review of current animal models. J Sex Med. 8 (12), 3291-3305 (2011).
- Lue, T. F., Takamura, T., Schmidt, R. A.
- Carati, C. J., Creed, K. E., Keogh, E. J. Autonomic control of penile erection in the dog. J Physiol. 384, 525-538 (1987).
- Steers, W. D., Mallory, B., de Groat, W. C. Electrophysiological study of neural activity in penile nerve of the rat. Am J Physiol. 254 (6 Pt 2), R989-R1000 (1988).
- Kapoor, M. S., Khan, S. A., Gupta, S. K.
- Burnett, A. L., Lowenstein, C. J., Bredt, D. S. Nitric oxide: A physiologic mediator of penile erection. Science. 257 (5068), 401-403 (1992).
- Oh, T. Y., Kang, K. K., Ahn, B. O. Erectogenic effect of the selective phosphodiesterase type 5 inhibitor, DA-8159. Arch Pharm Res. 23 (5), 471-476 (2000).
- Ouyang, B., Sun, X., Han, D. Human urine-derived stem cells alone or genetically-modified with FGF2 Improve type 2 diabetic erectile dysfunction in a rat model. PLoS One. 9 (3), e92825 (2014).
- Pan, F., Xu, J., Zhang, Q. Identification and characterization of the MicroRNA profile in aging rats with erectile dysfunction. J Sex Med. 11 (7), 1646-1656 (2014).
- Cho, M. C., Park, K., Kim, S. W. Restoration of erectile function by suppression of corporal apoptosis, fibrosis and corporal veno-occlusive dysfunction with rho-kinase inhibitors in a rat model of cavernous nerve injury. J Urol. 193 (5), 1716-1723 (2015).
- Hannan, J. L., Matsui, H., Sopko, N. A. Caspase-3 dependent nitrergic neuronal apoptosis following cavernous nerve injury is mediated via RhoA and ROCK activation in major pelvic ganglion. Sci Rep. 6, 29416 (2016).
- Heaton, J. P., Varrin, S. J., Morales, A. The characterization of a bio-assay of erectile function in a rat model. J Urol. 145 (5), 1099-1102 (1991).
- Mehta, N., Sikka, S., Rajasekaran, M. Rat as an animal model for male erectile function evaluation in sexual medicine research. J Sex Med. 5 (6), 1278-1283 (2008).
- Quinlan, D. M., Nelson, R. J., Partin, A. W. The rat as a model for the study of penile erection. J Urol. 141 (3), 656-661 (1989).
- Albersen, M., Orabi, H., Lue, T. F. Evaluation and treatment of erectile dysfunction in the aging male: A mini-review. Gerontology. 58 (1), 3-14 (2012).
- Hedlund, P., Matsumoto, K., Andersson, K. -E.
- Giuliano, F., Bernabe, J., Rampin, O. Telemetric monitoring of intracavernous pressure in freely moving rats during copulation. J Urol. 152 (4), 1271-1274 (1994).
- Bernabe, J., Rampin, O., Giuliano, F. Intracavernous pressure changes during reflexive penile erections in the rat. Physiol Behav. 57 (5), 837-841 (1995).
- Bernabe, J., Rampin, O., Sachs, B. D. Intracavernous pressure during erection in rats: an integrative approach based on telemetric recording. Am J Physiol. 276 (2 Pt 2), R441-R449 (1999).
- Adachi, H., Kodama, K., Ishihara, H. Evaluation of erectile response by continuous measurement of penile diameter in rats. J Pharmacol Toxicol Methods. 41 (4), 147-152 (1999).
