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Immunology and Infection

酶联免疫吸附法表征小鼠胸腺依赖性和胸腺独立免疫球蛋白同种反应

Published: September 7, 2018 doi: 10.3791/57843

Summary

本文描述了一种用 ELISA 方法表征小鼠 t 依赖性和 t 无关免疫球蛋白 (同种) 反应的协议。这种方法单独使用或结合流式细胞术将允许研究人员确定在 B 细胞介导的小鼠同种反应在 t 依赖性和 t 独立抗原免疫的差异。

Abstract

抗体, 也称为免疫球蛋白 (Ig), 分泌的分化 B 淋巴细胞, plasmablasts/血浆细胞, 在体液免疫提供了强大的防御入侵病原体通过不同的机制。疫苗接种的一个主要目标是诱导保护性抗原特异抗体, 以防止危及生命的感染。胸腺依赖 (TD) 和胸腺独立 (TI) 抗原可以引起强健的抗原特异性 IgM 反应, 也可以诱导生产同种交换抗体 (IgG, IgA 和 IgE), 以及产生的记忆 B 细胞的帮助由抗原呈现细胞 (apc) 提供。在这里, 我们描述了一个协议, 以表征 TD 和 TI 同种反应的小鼠使用酶联免疫吸附试验 (ELISA)。在本议定书中, 抗原-共轭模型抗原 TNP-KLH (明矾) 和 TNP 多糖 (PBS) 对小鼠进行了腹腔 (ip) 免疫, 从而诱发了 TD 和 TI 的反应。为诱发 TD 记忆反应, TNP-KLH 在明矾中的助推免疫接种是在第一次免疫后3周使用相同的抗原/佐剂。小鼠血清在免疫前后的不同时间点收获。血清总免疫球蛋白水平和 TNP 特异抗体随后分别使用同种特异性三明治和间接 ELISA 进行量化。为了正确量化每个同种的血清浓度, 样品需要适当稀释, 以适应标准曲线的线性范围。使用该协议, 我们一直得到可靠的结果, 具有较高的特异性和灵敏度。当与其他补充方法, 如流式细胞术,在体外培养脾脏 B 细胞和免疫组化染色 (IHC), 这项协议将允许研究人员获得全面了解抗体给定实验设置中的响应。

Introduction

B 淋巴细胞是体液免疫的主要参与者, 是哺乳动物中唯一能够产生抗体的细胞类型, 也称为免疫球蛋白 (Ig)1,2。B 细胞分泌的抗体通过多种机制, 包括中和、opsonization 和补充活化, 为入侵病原体提供了强大的防御, 导致保护性免疫3。b 细胞分泌抗体仅在特定 B 细胞完全活化后才能实现, 通常需要两个不同的信号3。信号1由抗原 (Ag) 的直接捆绑中继到 b 细胞受体 (BCR) 在特定天真 b 细胞的表面表达3。根据信号来源 2, B 细胞活化可分为胸腺依赖性 (TD) 或胸腺独立 (TI)3,4。在 TD 抗原反应中, 信号2由活化同源 CD4 t (tH) 细胞提供, 表达 CD154, 在 B 细胞1,2,3表达的共刺激受体 CD40 的配体。在 TI 抗原反应中, 信号2来自于与收费类似的受体的接触 (TLRs 在1型 ti ag 的情况下) 或 BCRs 的广泛交联 (在2钛 ag 的情况下) 在 B 细胞3,4。1型钛 (TI-1) 抗原是 TLRs 的微生物配体, 包括细菌脂多糖 (LPS)、病毒 rna 和微生物 CpG DNA45。2型钛 (TI-2) 抗原具有高度重复性的结构, 并且能够通过 BCRs4,6的多重交联, 向 B 细胞传递长期持久的信号。TI-2 抗原的典型例子包括肺炎球菌多糖和抗原共轭多糖6,7。TD 和 TI 抗原均可诱发强健的抗原特异性 IgM 反应, 也可诱发同种交换抗体 (IgG、IgA 和 IgE) 的产生, 并借助抗原呈现细胞 (apc) 提供的帮助, 如树突状细胞 (DCs)1 ,2,3。此外, td 和 TI 抗原都能在 apc 的帮助下诱发记忆反应, 但 td 抗原在诱导记忆 B 细胞生成38时更有效。

在本议定书中, 通过腹腔 (ip) 免疫与抗原共轭模型抗原 24, 6-trinitrophenyl 锁孔帽贝血蓝蛋白 (TNP KLH) 和 TNP 多糖 (中性, 高度分枝) 诱发小鼠的 TD 和 TI 的反应。和高质量), 分别为9,10,11。TD 抗原通常与佐剂一起使用, 以提高抗体的产生12。在我们的协议中, TNP KLH 注射了明矾, 这是免疫研究中常用的佐剂12。其他可以使用的佐剂的例子包括完整或不完整的弗氏的辅助 (CFA 或 IFA), 单磷酰脂 A/海藻糖 dicorynomycolate ("Ribi" 佐剂), 和中央核苷酸13, 14. 免疫后, 小鼠血清在不同的时间点收获, 血清中的 TNP 特异抗体使用同种特异的酶联免疫吸附试验 (ELISA)910进行量化,11

ELISA 是一种以板材为基础的检测方法, 广泛应用于医学诊断工具, 也是生物医学研究1516的分析工具。它用于检测和量化包括抗体、激素、细胞因子、趋化因子和各种抗原的物质。elisa 可以用几种不同的格式进行, 包括直接、间接、三明治和竞争性 elisa1516。一般而言, 它涉及将抗原固定在固体表面, 通常是一个96井微量滴定板, 它是用一个主要抗体孵化的。孵化后, 未绑定抗体被冲走。在直接 ELISA 中, 主要抗体直接与一种酶 (典型的辣根过氧化物酶或碱性磷酸酶) 结合, 它可以将显色基底切割成一个由信号检测仪器检测到的可见颜色变化, 如分光光度计15,16。相比之下, 如果用酶链二次抗体来结合原抗体, 那么这被认为是间接 ELISA15,16。直接 elisa 更快, 而间接 elisa 更敏感15,16。在三明治 ELISA 中, 这些盘子上涂有一种 "捕获" 抗体, 用来固定样本中感兴趣的抗原, 然后用另一种 "检测" 抗体直接或间接地检测到捕获的抗原15,16. 三明治 ELISA 具有很高的特异性, 因为抗原是由两种不同的抗原抗体检测出来的。在竞争性 ELISA 中, 在样本抗原和板块绑定抗原之间建立了与原抗体结合的竞争, 然后通过测量基片中信号的减少来量化样本中的抗原浓度。15,16. 竞争性 ELISA 可使用上述直接或间接格式进行, 对仅有一个表位1516的小抗原的检测非常有用。

抗体测量的替代技术包括无线电免疫分析 (RIA), 电化学发光 (ECL) 检测和表面等离子共振 (SPR) 检测17。RIA 是第一个利用核素试剂18,19测量抗原 (或抗体) 具有高度特异性和灵敏度的免疫分析法。然而, 由于对放射性毒性、处置成本、保质期以及使用放射性材料的特殊许可证等问题的关注, ELISA 是一种比较方便的常用2021技术。ECL 是一种高度敏感的检测方法, 其中化学发光反应是利用电产生高活性物种从电极表面的稳定前体, 并可用于测量的数量的分析 (如抗原或抗体)22。但是, ECL 需要一种特殊的仪器, 因此不像 ELISA23那样广泛使用。SPR 是一种直接的检测方法, 可用于测量传感器芯片表面上固定化分子 (e.、抗原) 的配体 (e.、抗体) 的结合情况24。SPR 非常明确地检测了交互作用, 不需要使用标记试剂作为 ELISA。然而, SPR 还需要一个特殊的设备, 灵敏度低于 ELISA17。鉴于替代方法的局限性, ELISA 是本协议中最适合我们使用的技术。在这里, 我们描述了使用三明治 elisa 分析总的同种水平和间接 ELISA 的程序, 以分析抗原特异性的 isotypes。

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Protocol

本议定书遵循罗格斯大学机构动物研究伦理学委员会的指导方针。所有的老鼠都是按照 NIH 的指导方针和动物保育和使用委员会批准的一项牲畜协议使用的。

1. 小鼠的制备和单纯小鼠血清的收集

  1. 保持所有老鼠在一个特定的无病原动物设施的免疫实验。
  2. 使用与性别匹配的, 年轻的成人 (8–12周老) 淘汰赛和 littermate 控制小鼠, 共享相同的父母和笼子进行免疫研究。
  3. 规划免疫和血清收集时间表, 如图 1所示。
  4. 在免疫前7天 (-7 天) 收获每只老鼠的天真血清。遵循步骤4中详述的眶出血和血清准备程序。

2. TNP 多糖 (TI 抗原) 和 TNP-KLH (TD 抗原) 的制备

  1. 彻底溶解无菌 PBS 中的抗原粉末 (pH 7.4), 使0.5 毫克/毫升的 TNP 多糖和1毫克/毫升的 TNP KLH 库存溶液。整除每一个抗原储存溶液成0.5 毫升/管的无菌离心管, 并保持整除数在-80 摄氏度长期贮存。避免多次冰冻和解冻的抗原整除数。
  2. 在注射日, 根据要注射的小鼠数量计算 TNP 多糖 (50 µg/100 µL/小鼠) 或 TNP KLH (100 µg/100 µL/小鼠) 的体积。在室温下解冻适当数量的 TNP 多糖或 TNP KLH 整除数。
  3. 对于 TNP-KLH 注射液, 首先稀释明矾佐剂 (40 毫克/毫升), 3 卷无菌 PBS, 最终浓度为10毫克/毫升。在稀释前要确保明矾佐剂的混合物悬浮良好。
  4. 将10毫克/毫升明矾佐料浆的等量量从步骤2.3 和解冻后的 TNP-KLH 溶液 (1 毫克/毫升) 结合到5毫升聚丙烯管中, 混合良好, 并在37摄氏度孵育30分钟. 在注射前准备这 TNP-KLH/明矾混合。

3. 小鼠免疫

  1. 采用腹腔 (ip) 注射 TNP 多糖或 TNP-KLH/明矾, 在生物安全柜中用1毫升胰岛素注射器对小鼠进行免疫。在每只老鼠的右下象限, 最好插入针在近似的30°角度, 以防止注射入内脏。
  2. 0 天为 TI Ag 免疫注射100µL TNP 多糖每只老鼠 (图 1A)。
  3. 0 天为 TD Ag 免疫注射200µL TNP-KLH/明矾混合 (新鲜地在步骤2.4 中准备) 每只老鼠。在21天重复同样的注射, 作为记忆研究的助推剂免疫 (图 1B)。
  4. 注射后, 把每只老鼠都送到笼子里, 把所有注射的老鼠都留在没有病原体的情况下。

4. 眶内出血及血清制剂

  1. 收获小鼠血清在不同的时间点: 为 TNP 多糖免疫, 收集小鼠血清在-7 和7天 (图 1A);对于 TNP-KLH/明矾免疫, 收集鼠血清在天-7, 7, 14 和 28 (图 1B)。
  2. 对于眶内出血, 在生物安全柜25中麻醉每只小鼠与5% 异氟醚进行最小。执行踏板反射, 以确保每只老鼠足够的麻醉。
  3. 一只手按住麻醉鼠的食指和拇指拉动眼球周围的皮肤, 使眼球凸出的插座25。将非血气的巴斯德吸管或毛细管在45°的角度插入眼球25下方的眼窝内角。
  4. 应用温和的下行压力, 轻轻旋转吸管或管子, 进入静脉, 收集150–200µL 在吸管或管中的血液。立即将血液转移到无菌的1.5 毫升离心管, 并将鼠标返回其笼中恢复。
  5. 让血液样本坐在 RT 上, 以凝聚。
  6. 离心凝固的血液样品在 1.3万 x g 10 分钟在4°c。将透明血清转移到血液凝块上的新的无菌1.5 毫升离心管。
  7. 重复步骤 4.6, 再一次清除残余血块, 收集清血清。
  8. 将血清整除为50µL/管的无菌1.5 毫升离心管, 并将血清贮存在-80 摄氏度。
  9. 在不同的时间点交替眼部出血, 使每只眼睛在整个实验中最多流血两次。在末端出血, 收集多达1毫升的血液从每只老鼠安乐死前。弄死老鼠与 5% CO2跟随了颈椎脱位。
    注: 脾脏 B 细胞可用于流细胞分析和体外培养研究。我们还从脾中制备基因组 DNA, 以验证每只老鼠的基因型。

5. 小鼠同种特异 ELISA 法

  1. 在 ELISA 前准备缓冲区和解决方案。
    1. 准备500毫升的耦合缓冲器 (PBS, pH 值 7.4)。
    2. 准备500毫升的洗涤液 (PBS t (0.05% 吐温 20), pH 值 7.4)。
    3. 准备100毫升的阻断缓冲器 (PBS 1% BSA, pH 值 7.4, 存储在4摄氏度)。
    4. 准备1升的基板缓冲 (1 米二乙醇胺, ph 9.8 (97 毫升的二乙醇胺在 1 L 的 H2O, ph 调整使用 10 M HCl) 和0.5 毫米氯化镁2)。用铝箔包装瓶子, 保护基板缓冲器免受光线的侵害。存储在4摄氏度。
    5. 准备100毫升的停止溶液 (3 米氢氧化钠)。
  2. 涂上 ELISA 板:
    1. 对于全血清同种 ELISA, 96 井免疫板, 10 µg/毫升的同种特异性捕获多克隆山羊抗小鼠 (M, G1, G2a, G2b, G3, A, 或 E) Abs 在耦合缓冲 (PBS) 100 µL/井。
    2. 对于 TNP 特异性的同种 ELISA, 96 井免疫板与10µg/毫升 TNP(38)-BSA 在 PBS 在100µL/好。
    3. 为高亲和性 TNP 特异性同种 ELISA, 96 井免疫板与10µg/毫升 TNP(3)-BSA 在 PBS 在100µL/井26。一夜之间将盘子孵化4摄氏度。
  3. 涂层孵化后, 用 PBS T 的200µL 清洗板材2次。在每次洗完后, 丢弃洗涤缓冲器和污点晾干盘子 (在一摞纸巾上翻一遍)。
  4. 块板: 添加200µL/井阻塞缓冲 (PBS 中的 1% BSA) 到涂层板, 并孵化1小时在 RT 板。
  5. 当板块阻塞时, 准备稀释同种标准和血清样本, 在一个单独的, 未经处理的96井板在150µL/井的阻断缓冲。
    1. 准备250同种标准作为起始标准浓度 (St01), 并使7至 10 1:2 串行稀释的标准 (St02 St07 或 St10,图 2A)。
    2. 以1:100 或1:500 稀释因子为起始稀释剂制备小鼠血清样品, 并制作3或 4 1:10 系列稀释, 用于总的同种或1:5 系列稀释, 用于检测每种血清样品的 TNP 特异性免疫球蛋白同种 (图 2a)。对于 IgE ELISA, 以1:2 稀释因子为起始稀释剂制备小鼠血清样品, 并使每种血清样品的3为1:5 系列稀释。
  6. 封堵后, 从步骤5.4 三次洗盘子, 200 µL/井的 PBS T 和污点干燥后, 每洗盘子。
  7. 转移100µL/井稀释的同种标准 (适用于捕获和检测 Abs) 和稀释血清样品从步骤5.5 到在步骤5.6 中准备的板材。用标准和样品在一夜之间孵化出4摄氏度的板材。
  8. 洗盘子3次与200µL/井的 PBS 和污点干燥后, 每洗盘子。
  9. 在每个板块, 添加100µL/µg 适当的碱性磷酸酶 (AP) 共轭同种特定山羊抗小鼠的免疫球蛋白 (M, G1, G2a, G2b, G3, A, 或 E) Abs 稀释在堵塞缓冲。
  10. 用 AP 共轭 Abs 在 RT 上孵化出 1-2 小时的钢板。对于 IgE 检测, 在37摄氏度的温度下孵化板材。
  11. 通过将两片5毫克磷酸酶基体溶解在10毫升的基片缓冲器上, 制备1毫克/毫升的基质溶液。
  12. 每次清洗后, 每盘5次, 用200µL/井和印迹干燥盘子。
  13. 添加100µL/井的基板溶液到每个板块。允许反应发展在 RT, 通常只需要几分钟。
  14. 使用微板块阅读器与它的相关软件阅读每版 405 nm。
    1. 单击 "设置" 将波长 "Lm1" 设置为 "405 nm", 然后单击 "确定"。
    2. 点击 "模板", 分配 "空白" 井, "标准" 井和 "未知" 井根据96井板设置。
    3. 对于 "标准" 井, 请单击 "系列", 将 "第一个样本" 设置为 "St01", 选择 "从" 开始"顶部", 并将 "复制" 设置为 "2"。检查 "示例 Descriptor" 并输入 "标准值": 选择 "单位" 作为 "ng/mL", 将 "起始值" 设置为 "250", 将 "步骤" 设置为 "2"。单击 "确定"。
    4. 当最集中的标准达到1的光密度 (OD) 时, 点击 "阅读" 阅读该板块。
    5. 单击 "文件" 菜单, 然后单击 "保存" 以保存文件。
    6. 当最集中的标准方法分别 OD405 1.5、2和2.5 时, 单击 "读取" 以再次读取该盘。
  15. 通过添加25µL/井的3M 氢氧化钠来停止反应。一次完成一个盘子的步骤5.12 到5.15。
  16. 使用与微板块阅读器关联的软件分析 ELISA 数据:
    1. 检查同种标准的 OD405 值, 并选择适当的读数, 并为详细数据分析提供良好的线性范围的标准。
    2. 选择4参数拟合程序以绘制标准曲线。检查标准曲线 (R2) 的协同效率, 它需要 > 0.98 才能确保良好的数据质量。
    3. 检查每个样品的 OD405 值是否随着稀释因子的增加而降低。通过点击 "未知" 来检索所有稀释样品井的浓度。
    4. 在同种标准曲线的线性范围内, 选取每个样品的适当井 OD405 浓度计算。
    5. 用该公式计算每种样品的血清同种浓度: 血清蛋白浓度 = 选择的井浓度 x 稀释因子。
  17. 绘制图表并使用适当的软件91011进行统计分析。在同一时间点进行血清同种水平的垂直散射图进行比较。对于 TD 记忆响应的研究, 制定时间-路线反应曲线, 以检查在增压免疫前后的同种反应。使用误差线显示每个样本组的标准偏差 (SD)。为了比较两种基因型小鼠的同种反应, 对两尾数据进行配对t检验, 确定统计学意义。设置p值 < 0.05 显着不同。

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Representative Results

我们使用这个协议来调查免疫系统的一个关键调节器, TRAF3, 在 TI 和 TD 同种反应9,10,11的作用。TRAF3 直接或间接地调节了一些先天和适应性免疫受体的信号传导, 包括 TNF 受体超家族、类似收费受体和 T 细胞 receptor/CD28, 其中27,28。我们推测 TRAF3 在不同的免疫细胞子集中扮演不同的角色来调节抗体应答。为了检验这一假说, 我们用条件 TRAF3 击倒小鼠, 分别在 B 细胞、T 细胞或髓细胞中明确删除了Traf3基因, 确定了 TI 和 TD 同种的反应, 即910 11图 1描述了 TI 和 TD 研究的代表性免疫和血清收集时间表。代表 IgG1 和 IgG2b elisa 结果如图 2图 3所示, 以说明 elisa 是如何工作的。这些包括稀释的标准和样品的板材设置 (图 2A), 一个图象在加法 AP 基体以后 (图 2B), OD405 的读的结果 (图 2C, 2D),标准稀释的值 (图 2E, 2F), 标准曲线 (图 3A, 3B), 稀释样品的值 (图 3C, 3D) 和血清 IgG1 和 IgG2b 的计算样品中的浓度 (图 3E, 3F)。图 4显示了天真小鼠血清中总的 isotypes 的代表性结果。与性别和年龄相匹配的 B-TRAF3 TRAF3-sufficient 控制小鼠相比, 我们在 B 细胞特异 TRAF3/- (littermate/) 小鼠的血清 IgM、IgG2a、IgG2b、IgG3 和 IgA 等方面表现出了统计学上的增高水平。B-TRAF3 小鼠的 hyperglobulinemia 是由于成熟的 TRAF3 细胞长期存活而导致的外周淋巴器官扩张的 B 细胞室9.图 5显示了 TNP 多糖和 TNP KLH 对小鼠进行免疫接种的 TI 和 TD 同种反应的代表性结果。这些结果显示了明显较高的 TI, TNP 特异性 IgG3 水平, 也提高 TD, TNP 特异性 IgG2b 水平在髓细胞特定 TRAF3/ (M-TRAF3/) 小鼠比在落马洲。这种增加的 TI IgG3 和 TD IgG2b 反应观察 M-TRAF3/小鼠可能是由于增加了促炎性细胞因子 IL-6 和 IL-12 的 TRAF3-/-巨噬细胞和 DCs 后免疫11图 6显示了 TNP-KLH 免疫的小鼠主要和记忆反应的典型结果。这些结果表明, 在 T 细胞特异性 TRAF3 (T-TRAF3) 小鼠中, TD IgM 的主要反应和缺陷的 IgG1 主要和记忆反应均有所降低。TRAF3-/- CD4 t 细胞在 t细胞受体和 CD28 共同参与10中的活化, 导致 T-TRAF3 小鼠的不良反应。结合, 本文所描述的协议, 使我们能够描绘的具体作用, TRAF3 在不同的免疫细胞亚群调节 TI 和 TD 同种反应的小鼠。

Figure 1
图 1: 典型的 TI 和 TD Ag 免疫和血清收集时间表.(A) TNP 多糖实验。(B) TNP-KLH 实验。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 2
图 2: 代表 IgG1 和 IgG2b ELISA.(A) 96 井板的安装包括空白井、7系列稀释 (1:2) 小鼠 IgG1 和 IgG2b 标准 (St01 到 St07), 1:10 只小鼠血清样本4系列稀释 (8) (S1 至 S8)。标准的浓度在每个标准井的底部给出。样品的稀释系数在样品的底部给出。(B) 增加 AP 衬底后5分钟的板材图像。板读结果 IgG1 (C) 和 IgG2b (D) 在405毫微米。小鼠 IgG1 (E) 和小鼠 IgG2b (F) 标准中不同稀释的 OD405 和浓度的值。轻质, 集中;BackCalcConc, 后计算浓度;OD, 光学密度;AvgOD, 复制的平均 OD;标准偏差;CV, 变异系数。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 3
图 3: 代表性 IgG1 和 IgG2b ELISA 数据分析.IgG1 (A) 和 IgG2b (B) 的标准曲线。合作效率 R2是 > 0.98 在两个标准曲线。箭头指示标准曲线的线性范围。OD405 和 IgG1 (C) 和 IgG2b (D) 在未知 (稀释血清样品) 中的浓度值。R, 范围;轻质集中对8例 IgG1 (E) 和小鼠 IgG2b (F) 的小鼠血清浓度的计算。不能被这种 ELISA 检测到请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 4
图 4: 单纯性小鼠血清总 isotypes 的代表性结果.血清是从性别匹配, 10-12 周大的天真的落马洲和 B-TRAF3/小鼠 (n = 10 为每个基因型; 遗传背景: 129xC57BL/6)。采用 ELISA 法测定血清总 IgM、IgG1、IgG2a、IgG2b、IgG3、IgA 和 IgE 的基底水平。对两尾数据进行了非配对t检验, 确定了统计意义。* 与 B-TRAF3 小鼠有显著差异 (p < 0.05);** 与 B-TRAF3 小鼠 (p < 0.01)有很大区别。这一数字已经从谢和al修改。9.请点击这里查看这个数字的更大版本.

Figure 5
图 5: 钛和 TD 同种对 TNP 多糖和 TNP KLH 免疫反应的代表性结果.性别匹配, 8-12 周大落马洲和 M-TRAF3 小鼠 (遗传背景: C57BL/6) 接种了50µg 的 TI ag TNP 多糖 (顶板, n = 9 为每个基因型) 或100µg 的 TD ag TNP-KLH 混合与明矾 (底部板, n = 12 为每个基因型)。免疫后7天收集了血清。酶联免疫吸附法分析了抗 TNP IgM、IgG1、IgG2b、IgG3、IgA 和 IgE 的血清滴度。对两尾数据进行了非配对t检验, 分析了统计意义。* 与 M-TRAF3 小鼠有显著差异 (p < 0.05)。这个数字已经从 Lalani. 11.请点击这里查看这个数字的更大版本.

Figure 6
图 6: TNP-KLH 免疫的主要和记忆性反应的典型结果.性别匹配, 8-10 周大的落马洲和 T-TRAF3/小鼠 (n = 10 为每个基因型; 遗传背景: 129xC57BL/6) 接种了100µg 的 TD Ag TNP-KLH 与明矾混合在0天。在第一次免疫接种后的21天, 每只老鼠也接受了同一个 Ag 和佐剂的助推免疫。从7、7、14和28天的小鼠身上采集血清标本。用 ELISA 法测定血清样品中 TNP 特异性 IgM 和 IgG1 水平。图中描述了10对落马洲和 T-TRAF3 鼠的结果 (平均数)。对两尾数据进行了非配对t检验, 分析了统计意义。* 与 T-TRAF3 小鼠有显著差异 (p < 0.05);** 与 T-TRAF3 小鼠有显著差异 (p < 0.01);, 与 T-TRAF3 (p < 0.001)的小鼠有显著差异。这一数字已经从谢和al修改。10.请点击这里查看这个数字的更大版本.

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Discussion

在这里, 我们描述的协议, 以表征的 TD 和 TI 同种反应的小鼠使用 ELISA。成功实施本议定书需要使用表 1中规定的材料, 包括 ELISA 化验板、免疫 Ags、小鼠同种特异抗体和标准。应注意避免使用组织培养治疗板的 ELISA。稀释的标准和血清样品应在单独未经处理的板 (圆底), 然后添加到 ELISA 板。使用该协议, 我们一直得到可靠的结果, 具有较高的特异性和灵敏度。

此协议中的关键步骤包括 Ag 免疫、复古眶出血和同种特异 ELISA。对于 TD ag 免疫, 应彻底悬浮 TNP-KLH/明矾混合物, 以确保注射适量的银/佐剂。如果在吸管或毛细血管管中的血液凝块在复古眼眶出血, 立即改变为新的吸管或毛细血管管。在 ELISA 中使用的缓冲器和试剂应是明确的解决方案, 不应含有沉淀, 这可能给出假阳性结果与异常 OD405值。此外, 在井中应避免气泡在所有 ELISA 步骤, 这也可能给假阳性或假阴性结果与异常 OD405值。这些偶然的错误可以通过分析重复的样本来最小化。洗涤步骤在 ELISA 去除未绑定的试剂和抗体从井。洗涤不足会导致背景噪音高, 但过度洗涤可能会导致灵敏度下降, 去除涂层抗原或绑定抗体29。该 ELISA 协议中描述的洗涤时间的数量是根据我们的经验进行优化的。

应该指出, ELISA 具有检测极限, 通常由标准曲线的线性范围来定义。为了正确量化每个同种的血清浓度, 样品需要适当稀释, 以适应标准曲线的线性范围。我们建议测试样品的系列稀释, 以选择适当的稀释因子, 以计算在该协议中所描述的玻璃的浓度。但是, 如果实验结果表明, 在标准曲线的线性范围内测试的稀释因子没有给出结果, 则需要使用稀释因子根据初始 elisa 结果进行调整来进行额外的 elisa。如果所有的稀释测试低于检测限制, 原始血清样本和较小的稀释因子需要使用。如果 OD405值不显示比例下降与增加稀释因子的所有系列稀释测试, 这表明, 捕获 Ab 或涂层 Ag 是饱和的所有稀释样品和进一步更高的稀释因素需要使用。根据这项议定书, 将在2回合的 ELISA 中获得结论性的结果。

已知影响小鼠抗体应答的因素包括菌株 (遗传背景)、性别、年龄、饮食和动物设施环境3031323334.例如, 虽然许多小鼠菌株产生 IgG2a, 但某些菌株, 如 C57BL/6 小鼠不会产生 IgG2a, 而是产生 IgG2c, 而不是35,36。最近的证据还确认共生微生物群是影响抗体应答37383940的一个因素。考虑到这些因素, 我们建议使用与性别匹配的, 年轻的成人窝的不同基因型, 共享相同的父母和笼子的 TD 和 TI Ag 免疫实验。此外, 对于同一基因型的小鼠, 经常观察老鼠对老鼠的变异 (图 4-6), 每个基因型或组需要足够的复制数 (通常, n > 8), 以获得统计有意义的结果。

同种特异 ELISA 法用于测定不同 isotypes 的滴度。然而, 单靠这种方法还不足以揭示同种滴度中观察到的差异的根本原因, 因此经常与多种互补方法结合使用。为了区分同种的差异是否是由不同数量的 b 细胞或 b 细胞的不同效率导致的, 流式细胞术41,42,43和酶链ImmunoSpot (ELISPOT)43,44,45可以使用。为分析 B 细胞生存、增殖和生发中心的形成, 可供选择的方法包括流式细胞术、脾 B 细胞体外培养和免疫组化染色, 其次为显微926 ,41,46,47。为阐明 B 细胞中同种交换反应的变化, 脾 B 细胞体外培养和生殖基因片段的定量 rt-pcr 研究是常用的4143 ,48,49。为探讨亲和性成熟的原因, SHM 重链基因的体细胞超变异, 由 VDJ 区505152的测序确定。为了了解记忆 b 细胞反应的差异, 通过流式细胞术对银免疫后不同记忆 b 细胞亚群的频率和数量进行分析, 利用最近确定的小鼠记忆 b 细胞标记, 包括 CD38、CD80、CD73、PD-L2、CD62L 和 CCR68,53,54,55。结合目前的协议, 这些互补方法将使研究人员能够在给定的实验环境中获得对抗体应答的全面理解。

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Disclosures

作者没有竞争的金融利益。

Acknowledgments

这项研究得到了美国国立卫生研究院资助的 R01 CA158402 (p 谢) 和 R21 AI128264 (p 谢), 国防部赠款 W81XWH-13-1-0242 (p 谢), 一个试点奖从新泽西州癌症研究所通过批准号码 P30CA072720来自国家癌症研究所 (p 谢), 一个布希生物医学补助金 (p 谢), 一个胜利者 Stollar 奖学金 (a Lalani), 和安妮 b. 和詹姆斯 b. Leathem 奖学金 (朱)。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
VersaMax Tunable Microplate Reader MDS Analytical Technologies VERSAMAX Equipment to read the plates
SOFTmax PRO 5.3 MDS Analytical Technologies SOFTmax PRO 5.3 Software for the plate reader
GraphPad Prism GraphPad Prism Software for graphing and statistics
TNP-AECM-polysaccharide (FICOLL) Biosearch Technologies F-1300-10 A TI Ag for immunization
TNP-KLH Biosearch Technologies T-5060-5 A TD Ag for immunization
TNP(38)-BSA Biosearch Technologies T-5050-10 (conjugation ratio: 38) Coating Ag for TNP-specific ELISA
TNP(3)-BSA Biosearch Technologies T-5050-10 (conjugation ratio: 3) Coating Ag for high affinity TNP-specific Ig
Imject Alum Fisher Scientific  PI-77161 Alum adjuvant for immunization
Falcon Polypropylene tubes Fisher Scientific  14-959-11A For incubation of TNP-KLH/alum
BD Insulin Syringe Fisher Scientific  14-829-1B For i.p. injection of mice
Immuno 96-Well Plates, Flat-Bottom Fisher Scientific  14-245-61 For ELISA
Untreated 96-Well Microplates, Round-Bottom VWR 82050-622 For serial dilutions of standards and samples
Phosphatase substrate, 5 mg Tablets Sigma S0942-200TAB AP substrate
Diethanolamine VWR IC15251690 A component of AP substrate buffer
Goat anti-mouse IgM SouthernBiotech 1020-01 Capture Ab for mouse IgM
Goat anti-mouse IgG1 SouthernBiotech 1070-01 Capture Ab for mouse IgG1
Goat anti-mouse IgG2a SouthernBiotech 1080-01 Capture Ab for mouse IgG2a
Goat anti-mouse IgG2b SouthernBiotech 1090-01 Capture Ab for mouse IgG2b
Goat anti-mouse IgG3 SouthernBiotech 1100-01 Capture Ab for mouse IgG3
Goat anti-mouse IgA SouthernBiotech 1040-01 Capture Ab for mouse IgA
Goat anti-mouse IgE SouthernBiotech 1110-01 Capture Ab for mouse IgE
AP-Goat anti-mouse IgM SouthernBiotech 1020-04 Detection Ab for mouse IgM
AP-Goat anti-mouse IgG1 SouthernBiotech 1070-04 Detection Ab for mouse IgG1
AP-Goat anti-mouse IgG2a SouthernBiotech 1080-04 Detection Ab for mouse IgG2a
AP-Goat anti-mouse IgG2b SouthernBiotech 1090-04 Detection Ab for mouse IgG2b
AP-Goat anti-mouse IgG3 SouthernBiotech 1100-04 Detection Ab for mouse IgG3
AP-Goat anti-mouse IgA SouthernBiotech 1040-04 Detection Ab for mouse IgA
AP-Goat anti-mouse IgE SouthernBiotech 1110-04 Detection Ab for mouse IgE
Mouse IgM standard BD Biosciences 553472 TNP-specific IgM, Clone  G155-228
Mouse IgG1 standard BD Biosciences 554054 TNP-specific IgG1, Clone  107.3
Mouse IgG2a standard BD Biosciences 556651 TNP-specific IgG2a, Clone  G155-178
Mouse IgG2b standard BD Biosciences 554055 TNP-specific IgG2b, Clone  49.2
Mouse IgG3 standard BD Biosciences 553486 KLH-specific IgG3, Clone  A112-3
Mouse IgA standard BD Biosciences 550924 Mineral oil-induced IgA, Clone  MOPC-320
Mouse IgE standard BD Biosciences 557079 TNP-specific IgE, Clone  C38-2

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References

  1. Moise, A., Nedelcu, F. D., Toader, M. A., Sora, S. M., Tica, A., Ferastraoaru, D. E., Constantinescu, I. Primary immunodeficiencies of the B lymphocyte. Journal of Medicine and Life. 3, 60-63 (2010).
  2. Bishop, G. A., Haxhinasto, S. A., Stunz, L. L., Hostager, B. S. Antigen-specific B-lymphocyte activation. Critical Reviews in Immunology. 23, 149-197 (2003).
  3. Murphy, K. Janeway's Immunobiology. 8th Edition. 1, (2012).
  4. Vinuesa, C. G., Chang, P. P. Innate B cell helpers reveal novel types of antibody responses. Nature Immunology. 14, 119-126 (2013).
  5. Bekeredjian-Ding, I., Jego, G. Toll-like receptors--sentries in the B-cell response. Immunology. 128, 311-323 (2009).
  6. Mond, J. J., Lees, A., Snapper, C. M. T cell-independent antigens type 2. Annual Review of Immunology. 13, 655-692 (1995).
  7. Garcia de Vinuesa, C., O'Leary, P., Sze, D. M., Toellner, K. M., MacLennan, I. C. T-independent type 2 antigens induce B cell proliferation in multiple splenic sites, but exponential growth is confined to extrafollicular foci. European Journal of Immunology. 29, 1314-1323 (1999).
  8. Kurosaki, T., Kometani, K., Ise, W. Memory B cells. Nature Reviews Immunology. 15, 149-159 (2015).
  9. Xie, P., Stunz, L. L., Larison, K. D., Yang, B., Bishop, G. A. Tumor necrosis factor receptor-associated factor 3 is a critical regulator of B cell homeostasis in secondary lymphoid organs. Immunity. 27, 253-267 (2007).
  10. Xie, P., Kraus, Z. J., Stunz, L. L., Liu, Y., Bishop, G. A. TNF Receptor-Associated Factor 3 Is Required for T Cell-Mediated Immunity and TCR/CD28 Signaling. The Journal of Immunology. 186, 143-155 (2011).
  11. Lalani, A. I., Moore, C. R., Luo, C., Kreider, B. Z., Liu, Y., Morse, H. C., Xie, P. Myeloid Cell TRAF3 Regulates Immune Responses and Inhibits Inflammation and Tumor Development in Mice. The Journal of Immunology. 194, 334-348 (2015).
  12. Lee, S., Nguyen, M. T. Recent advances of vaccine adjuvants for infectious diseases. Immune Network. 15, 51-57 (2015).
  13. Gavin, A. L., Hoebe, K., Duong, B., Ota, T., Martin, C., Beutler, B., Nemazee, D. Adjuvant-enhanced antibody responses in the absence of toll-like receptor signaling. Science. 314, 1936-1938 (2006).
  14. Klinman, D. M., Currie, D., Gursel, I., Verthelyi, D. Use of CpG oligodeoxynucleotides as immune adjuvants. Immunological Reviews. 199, 201-216 (2004).
  15. Gan, S. D., Patel, K. R. Enzyme immunoassay and enzyme-linked immunosorbent assay. Journal of Investigative Dermatology. 133, 12 (2013).
  16. Shah, K., Maghsoudlou, P. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA): the basics. British Journal of Hospital Medicine. 77, 98-101 (2016).
  17. Nencini, F., Pratesi, S., Petroni, G., Matucci, A., Maggi, E., Vultaggio, A. Assays and strategies for immunogenicity assessment of biological agents. Drug Development Research. 75, Suppl 1 4-6 (2014).
  18. Haber, E., Page, L. B., Richards, F. F. Radio immunoassay employing gel filtration. Analytical Biochemistry. 12, 163-172 (1965).
  19. Yalow, R. S., Berson, S. A. Immunoassay of endogenous plasma insulin in man. 1960. Obesity Research. 4, 583-600 (1996).
  20. Lequin, R. M. Enzyme immunoassay (EIA)/enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Clinical Chemistry. 51, 2415-2418 (2005).
  21. Wreghitt, T. G., Tedder, R. S., Nagington, J., Ferns, R. B. Antibody assays for varicella-zoster virus: comparison of competitive enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), competitive radioimmunoassay (RIA), complement fixation, and indirect immunofluorescence assays. Journal of Medical Virology. 13, 361-370 (1984).
  22. Mathew, B. C., Biju, R. S., Thapalia, N. An overview of electrochemiluminescent (ECL) technology in laboratory investigations. Kathmandu University Medical Journal. 3, 91-93 (2005).
  23. Mikulskis, A., Yeung, D., Subramanyam, M., Amaravadi, L. Solution ELISA as a platform of choice for development of robust, drug tolerant immunogenicity assays in support of drug development. The Journal of Immunological Methods. 365, 38-49 (2011).
  24. Wadhwa, M., Bird, C., Dilger, P., Gaines-Das, R., Thorpe, R. Strategies for detection, measurement and characterization of unwanted antibodies induced by therapeutic biologicals. The Journal of Immunological Methods. 278, 1-17 (2003).
  25. Wolforth, J. B. Methods of Blood Collection in the Mouse. Laboratory Animals. 29, 47-53 (2000).
  26. Stunz, L. L., Busch, L. K., Munroe, M. E., Sigmund, C. D., Tygrett, L. T., Waldschmidt, T. J., Bishop, G. A. Expression of the Cytoplasmic Tail of LMP1 in Mice Induces Hyperactivation of B Lymphocytes and Disordered Lymphoid Architecture. Immunity. 21, 255-266 (2004).
  27. Xie, P. TRAF molecules in cell signaling and in human diseases. Journal of Molecular Signaling. 8, 7 (2013).
  28. Lalani, A. I., Zhu, S., Gokhale, S., Jin, J., Xie, P. TRAF molecules in inflammation and inflammatory diseases. Current Pharmacology Reports. 4, 64-90 (2018).
  29. Tate, J., Ward, G. Interferences in immunoassay. The Clinical Biochemist Reviews. 25, 105-120 (2004).
  30. Specter, S., Friedman, H. Age- and sex-related differences in antibody formation and blastogenic responsiveness of splenocytes from RIII mice developing virus-induced mammary adenocarcinoma. The Journal of the National Cancer Institute. 67, 1347-1351 (1981).
  31. Giefing-Kroll, C., Berger, P., Lepperdinger, G., Grubeck-Loebenstein, B. How sex and age affect immune responses, susceptibility to infections, and response to vaccination. Aging Cell. 14, 309-321 (2015).
  32. Kaminski, D. A., Stavnezer, J. Antibody class switching differs among SJL, C57BL/6 and 129 mice. International Immunology. 19, 545-556 (2007).
  33. Sellers, R. S., Clifford, C. B., Treuting, P. M., Brayton, C. Immunological variation between inbred laboratory mouse strains: points to consider in phenotyping genetically immunomodified mice. Veterinary Pathology. 49, 32-43 (2012).
  34. Conour, L. A., Murray, K. A., Brown, M. J. Preparation of animals for research--issues to consider for rodents and rabbits. Institute of Laboratory Animal Resources Journal. 47, 283-293 (2006).
  35. Vlkova, M., Rohousova, I., Hostomska, J., Pohankova, L., Zidkova, L., Drahota, J., Valenzuela, J. G., Volf, P. Kinetics of antibody response in BALB/c and C57BL/6 mice bitten by Phlebotomus papatasi. PLOS Neglected Tropical Diseases. 6, 1719 (2012).
  36. Mestas, J., Hughes, C. C. Of mice and not men: differences between mouse and human immunology. The Journal of Immunology. 172, 2731-2738 (2004).
  37. Ruane, D., Chorny, A., Lee, H., Faith, J., Pandey, G., Shan, M., Simchoni, N., Rahman, A., Garg, A., Weinstein, E. G., et al. Microbiota regulate the ability of lung dendritic cells to induce IgA class-switch recombination and generate protective gastrointestinal immune responses. The Journal of Experimental Medicine. 213, 53-73 (2016).
  38. Chorny, A., Puga, I., Cerutti, A. Innate signaling networks in mucosal IgA class switching. Advances in Immunology. 107, 31-69 (2010).
  39. Van Praet, J. T., Donovan, E., Vanassche, I., Drennan, M. B., Windels, F., Dendooven, A., Allais, L., Cuvelier, C. A., van de Loo, F., Norris, P. S., et al. Commensal microbiota influence systemic autoimmune responses. The EMBO Journal. 34, 466-474 (2015).
  40. Nguyen, Q. N., Himes, J. E., Martinez, D. R., Permar, S. R. The Impact of the Gut Microbiota on Humoral Immunity to Pathogens and Vaccination in Early Infancy. PLOS Pathogens. 12, 1005997 (2016).
  41. Jeevan-Raj, B. P., Robert, I., Heyer, V., Page, A., Wang, J. H., Cammas, F., Alt, F. W., Losson, R., Reina-San-Martin, B. Epigenetic tethering of AID to the donor switch region during immunoglobulin class switch recombination. The Journal of Experimental Medicine. 208, 1649-1660 (2011).
  42. Chen, Z., Getahun, A., Chen, X., Dollin, Y., Cambier, J. C., Wang, J. H. Imbalanced PTEN and PI3K Signaling Impairs Class Switch Recombination. The Journal of Immunology. 195, 5461-5471 (2015).
  43. Boboila, C., Yan, C., Wesemann, D. R., Jankovic, M., Wang, J. H., Manis, J., Nussenzweig, A., Nussenzweig, M., Alt, F. W. Alternative end-joining catalyzes class switch recombination in the absence of both Ku70 and DNA ligase 4. The Journal of Experimental Medicine. 207, 417-427 (2010).
  44. Shah, H. B., Koelsch, K. A. B-Cell ELISPOT: For the Identification of Antigen-Specific Antibody-Secreting Cells. Methods in Molecular Biology. 1312, 419-426 (2015).
  45. Bonsignori, M., Moody, M. A. Simultaneous Detection of Antigen-Specific IgG- and IgM-Secreting Cells with a B Cell Fluorospot Assay. Cells. 1, 15-26 (2012).
  46. Sasaki, Y., Derudder, E., Hobeika, E., Pelanda, R., Reth, M., Rajewsky, K., Schmidt-Supprian, M. Canonical NF-kappaB activity, dispensable for B cell development, replaces BAFF-receptor signals and promotes B cell proliferation upon activation. Immunity. 24, 729-739 (2006).
  47. Goodlad, J. R., Macartney, J. C. Germinal-center cell proliferation in response to T-independent antigens: a stathmokinetic, morphometric and immunohistochemical study in vivo. European Journal of Immunology. 25, 1918-1926 (1995).
  48. Xie, P., Poovassery, J., Stunz, L. L., Smith, S. M., Schultz, M. L., Carlin, L. E., Bishop, G. A. Enhanced Toll-like receptor (TLR) responses of TNFR-associated factor 3 (TRAF3)-deficient B lymphocytes. Journal of Leukocyte Biology. 90, 1149-1157 (2011).
  49. Kaku, H., Horikawa, K., Obata, Y., Kato, I., Okamoto, H., Sakaguchi, N., Gerondakis, S., Takatsu, K. NF-kappaB is required for CD38-mediated induction of C(gamma)1 germline transcripts in murine B lymphocytes. International Immunology. 14, 1055-1064 (2002).
  50. Dudley, D. D., Chaudhuri, J., Bassing, C. H., Alt, F. W. Mechanism and control of V(D)J recombination versus class switch recombination: similarities and differences. Advances in Immunology. 86, 43-112 (2005).
  51. Lange, H., Hecht, O., Zemlin, M., Trad, A., Tanasa, R. I., Schroeder, H. W., Lemke, H. Immunoglobulin class switching appears to be regulated by B-cell antigen receptor-specific T-cell action. European Journal of Immunology. 42, 1016-1029 (2012).
  52. Moore, C. R., Liu, Y., Shao, C. S., Covey, L. R., Morse, H. C., Xie, P. Specific deletion of TRAF3 in B lymphocytes leads to B lymphoma development in mice. Leukemia. 26, 1122-1127 (2012).
  53. Bergmann, B., Grimsholm, O., Thorarinsdottir, K., Ren, W., Jirholt, P., Gjertsson, I., Martensson, I. L. Memory B cells in mouse models. Scandinavian Journal of Immunology. 78, 149-156 (2013).
  54. McHeyzer-Williams, L. J., Milpied, P. J., Okitsu, S. L., McHeyzer-Williams, M. G. Class-switched memory B cells remodel BCRs within secondary germinal centers. Nature Immunology. 16, 296-305 (2015).
  55. Elgueta, R., Marks, E., Nowak, E., Menezes, S., Benson, M., Raman, V. S., Ortiz, C., O'Connell, S., Hess, H., Lord, G. M., et al. CCR6-dependent positioning of memory B cells is essential for their ability to mount a recall response to antigen. The Journal of Immunology. 194, 505-513 (2015).

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免疫学和感染 问题 139 胸腺依赖性 (TD) 抗原 胸腺独立 (TI) 抗原 免疫球蛋白 (ig) 同种 记忆反应 免疫 佐剂 酶联免疫吸附试验 (ELISA)
酶联免疫吸附法表征小鼠胸腺依赖性和胸腺独立免疫球蛋白同种反应
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Lalani, A. I., Zhu, S., Xie, P.More

Lalani, A. I., Zhu, S., Xie, P. Characterization of Thymus-dependent and Thymus-independent Immunoglobulin Isotype Responses in Mice Using Enzyme-linked Immunosorbent Assay. J. Vis. Exp. (139), e57843, doi:10.3791/57843 (2018).

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