هنا نقدم الحقن داخل القحف ناقلات AAV لوصفها الفلورسنت من الخلايا العصبية والدبقية في القشرة البصرية.
يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية
مقالة منهجية
داخل القحف حقن الغدة المرتبطة ناقلات فيروسية
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
الحقن داخل القحف ناقلات فيروسية هندسيا للتعبير عن بروتين فلوري هو أسلوب متعدد الأغراض لوسم التصور من مجموعات فرعية معينة من الخلايا في مناطق الدماغ المختلفة سواء في الجسم الحي وأقسام الدماغ. خلافا لحقن الأصباغ الفلورية ، ووضع العلامات الفيروسية عروض استهداف أنواع الخلايا الفردية وأقل تكلفة وتستغرق وقتا طويلا من إنشاء خطوط الفأر المعدل وراثيا. في هذه التقنية ، يتم حقن الغدة المرتبطة الفيروسي (AAV) المتجه باستخدام إحداثيات intracranially التجسيمي ، micropipette ألف ومضخة آلية لتسليم الدقيق للAAV إلى المنطقة المرجوة بأقل ضرر في الأنسجة المحيطة. ويمكن تكييف المعلمات حقن للتجارب الفردية من خلال تعديل سن الحيوانية بمعدل الحقن ، موقع الحقن ، وحجم الحقن ، الحقن ، والمصلي AAV المروج القيادة التعبير الجيني. تبعا للظروف المختار ، يمكن فيروسي بفعل التحوير التعبير التصور تسمح لمجموعات من الخلايا ، والخلايا الفردية أو العمليات الخلوية الجميلة ، وصولا الى مستوى العمود الفقري شجيري. أظهرت التجربة هنا يصور حقنة من المزدوج تقطعت بهم السبل AAV معربا عن بروتين الفلورية الخضراء لوضع العلامات على الخلايا العصبية والدبقية في القشرة البصرية الأولية الماوس.
البروتوكول
1. التعامل مع الفيروس والتخزين
- وينبغي اختيار الحماية المناسبة وتقنيات معالجة استنادا إلى مستوى السلامة البيولوجية للفيروس لاستخدامها. يمكن العثور على هذه الممارسات في مجال السلامة في المختبرات الميكروبيولوجية والحيوية الطبعة 5 ، متوفرة على موقع مركز السيطرة على الأمراض
( http://www.cdc.gov/od/OHS/biosfty/bmbl5/bmbl5toc.htm ). تمت الموافقة على استخدام ناقلات AAV لمستوى السلامة الأحيائية 1 (BSL - 1). للتجربة هو موضح هنا ، سيتم ارتداء معطف المختبر والقفازات عند التعامل مع الفيروس ، وفقا للإجراءات للتعامل مع BSL - 1 الوكلاء. - للحفاظ على نشاط الفيروس فمن الأفضل لتقسيمه إلى aliquots صغيرة لتجنب تكرار تجميد والذوبان.
- يعد مجلس الوزراء السلامة الأحيائية (BSC) من الدرجة الثانية لaliquoting الفيروس بمسح ش أي كائنات لا لزوم لها وتعقيم السطح مع EtOH 70 ٪. دورق مكان تحتوي على 10 ٪ من محلول التبييض في غطاء محرك السيارة لجمع النفايات الملوثة AAV. كما وضعت في BSC 0.5mL هي أنابيب معقمة وعاء من الثلج الجاف.
- ذوبان الجليد على الأسهم الفيروسية خارج ش.
- دوامة الفيروسات وفتح أنبوب داخل ش.
- ماصة حجم قسامة المطلوب (مثلا 5 ميكرولتر) في أنبوب 0.5mL ، أغلق أنبوب ووضعه في الجليد الجاف لفلاش تجميد الفيروس.
- عندما تم aliquoted عن الفيروس ، والتخلص من الفيروس وأنبوب نصائح ماصة في حاوية النفايات المحتوية على مواد التبييض 10 ٪.
- إزالة النفايات من الحاويات غطاء المحرك وإضافة إضافية التبييض 10 ٪ ، ثم صب التبييض اسفل الحوض. التخلص من النفايات في حاوية بلاستيكية واقية وفقا للتعليمات التي كتبها ضابط السلامة الأحيائية المعهد الخاص بك.
- تنظيف أي معدات أو الأسطح التي جاءت في اتصال مع الفيروس مع التبييض 10 ٪. تجاهل قفازات.
- aliquots تخزينها في الفريزر -80 درجة مئوية.
2. جراحة
- تغطية المنطقة الجراحية مع معمل ورق ماص مقاعد البدلاء. ويجب تعقيم الأدوات الجراحية وفعل الجراحة تحت ظروف معقمة وفقا للسلامة الأحيائية مؤسستكم والمبادئ التوجيهية استخدام الحيوانات.
- اختيار المنطقة المتاخمة لمنطقة العمليات الجراحية التي ستكون مخصصة لتحميل micropipettes مع الفيروس ، والغطاء مع ورقة ماصة المختبر مقاعد البدلاء. وضع علامة قسامة من الفيروس في وعاء يحتوي على الجليد في هذا المجال ، ويسمح للفيروس ذوبان الجليد على ما يجري عملية جراحية.
- إعداد حاوية النفايات من المبيض بنسبة 10 ٪ في مجال التعامل مع فيروس مخصص للتخلص من نصائح ماصة الخ ، والتي تأتي في اتصال مع الفيروس.
- سحب micropipette Wiretrol الزجاج ليبلغ قطرها حوالي غيض من 20 ميكرون. وضع قطرة صغيرة من الزيوت المعدنية في نهاية حادة لmicropipette وإدراج المكبس السلك المتوفرة مع micropipettes.
- تأمين micropipette في المشبك الذراع micropump.
- حقن تحت الجلد مع ماوس البوبرينورفين بجرعة 0.5 ملغ / كلغ. الفأر مع تخدير عن طريق الحقن داخل الصفاق آفيرتين مع جرعة من 200 ملغ / كغ وإزالة الشعر من أعلى الرأس مع مقص جراحي ، مع التأكد من ترك هوامش واسعة بما يكفي لمنع الشعر من دخول شق.
- نعلق بطانية التدفئة الى قاعدة لstereotax للحفاظ على درجة حرارة الجسم من 37 درجة مئوية طوال الجراحة وتأمين الماوس في stereotax.
- الاستحمام في الرأس مع ثلاثة الدعك بالتناوب من الإيثانول وbetadine لتعقيم المنطقة.
- وضع قطرة العين مرهم Tobradex على كل عين لإبقاء العينين رطبة أثناء الجراحة.
- إجراء شق أسفل خط الوسط من الرأس وسحب الجلد مرة أخرى لفضح الجمجمة.
- إزالة بعناية لفافة من الجمجمة باستخدام غرامة ذات الرؤوس ملقط.
- تحديد المنطقة المراد حقنها باستخدام الإحداثيات التجسيمي وعلامة الجمجمة بالقلم الجراحية.
- باستخدام حفر الأسنان مع 1.4mm لدغ ، رقيقة من المنطقة عن والجمجمة حوالي 2mm وقطرها حتى الشقوق في الجمجمة ، وتقسيم المنطقة إلى قطاعات عدة ضعيفة.
- طوال هذا الإجراء ، والحفاظ على الجمجمة رطبة مع تطبيقات المالحة عقيمة.
- أداء حج القحف عن طريق إزالة بلطف شرائح رقيقة باستخدام جمجمة خارج غرامة يميل ملقط.
3. تحضير الحقن
- مع KimWipe توضع فوق الغطاء ، وفتح أنبوب 1.5uL الفيروس وماصة (لحقن 1uL) من الفيروس على قطعة صغيرة من parafilm.
- مكان غيض من micropipette في الأسهم الفيروسية وسحب الغواص يدويا. إذا واجهت صعوبة الرسم الأسهم الفيروسية في micropipette ، يمكن توسيع غيض قليلا تكون خارقة a KimWipe مع micropipette لكسر جزء صغير من الزجاج.
- وبدد انخفاض ذراع micropump على المكبس حتى كمية صغيرة من الفيروس من غيض من micropipette. إزالة هذه قطرة صغيرة من القطن مع قضيب طرف قضيب وتجاهل في جملته الحاويات.
- تطبيق قطرة من الزيوت المعدنية لغيض من micropipette لمنع انسداد كما خفضت micropipette في الدماغ.
4. حقن الفيروس
- باستخدام إحداثيات X و Y التجسيمي ، موقف micropipette على المنطقة المراد حقنها. في هذه التجربة ، وينسق استخدام التجسيمي لتحديد القشرة البصرية الأولية الخلفي ل2.7mm 2.5mm bregma والوحشي على خط الوسط. انخفاض ببطء جدا micropipette (بمعدل تقريبي من 1mm/1minute) لمنصب Z المناسبة.
- أدخل المعلمات الحقن المطلوب في مربع Micro4 SYS تحكم micropump والشروع في عملية الحقن. عن هذه التجربة ، سيتم استخدام 1 ميكروليتر أكثر من 10 دقيقة كنسبة من الحقن.
- عند الانتهاء من الحقن ، وترك الباقي للماصة ل1-2 دقائق لمنع هروب رأس المال من خلال إزالة الفيروس. بعد هذه الفترة ، وإزالة جدا ببطء micropipette من الدماغ (بنفس المعدل على النحو الوارد أعلاه).
- الدرز فروة الرأس وختم ذلك مع الغراء الأنسجة. حقن تحت الجلد مع الحيوان البوبرينورفين بجرعة 0.1 ملغ / كغ كل 8-12 ساعة على مدى ال 72 ساعة القادمة ، أو طالما أن الحيوان هو اظهار علامات الألم. السماح للحيوان لاسترداد تحت مصباح الحرارة حتى يتم التجول وعلى استعداد ليكون عاد الى قفصه. ويمكن البدء في تجارب التصوير بعد فترة حضانة المطلوب (أيام إلى أسابيع بعد الحقن الفيروسية).
5. تنظيف
- شطف micropipette مع التبييض 10 ٪ وتخلص منه في حاوية الحادة.
- التخلص من النفايات في حاوية بنفس الطريقة القسم 1.
- تجاهل معمل الورق في مقاعد البدلاء بن بيولوجية ويمسح أسفل جميع الأسطح والأدوات التي قد تأتي في اتصال مع الفيروس مع التبييض 10 ٪.
- يجوز تجميد الفيروس المستخدمة مرة أخرى ، مع الأخذ في الاعتبار أن تتكرر تجميد / الذوبان دورات يسبب تدهور للفيروس.
6. ممثل النتائج
Transduced الشكل 1. عصبون بعد الحقن المزدوج تقطعت بهم السبل المصلي الفيروس الغدة المرتبطة 1 (dsAAV S1) تحمل بروتين الفلورية الخضراء (GFP) تحت سيطرة promotor CMV. تصوير خلايا الجسم فضلا عن التشعبات والداني القاصي مرئية بشكل واضح في الأبواب الثابتة باستخدام المجهر epifluorescent. مقياس بار = 100 ميكرومتر.
الشكل 2. صفها نموذجي لحقن الفيروس داخل القحف في القشرة البصرية الأولية باستخدام S1 dsAAV تبين مدى انتشار الفيروس وكذلك الخلايا العصبية المسماة ، الدبقية والعمليات. مقياس بار = 250 ميكرومتر.
الشكل 3. صفها من الخلايا في قرن آمون باستخدام dsAAV S1. مقياس بار = 250 ميكرومتر. تتكيف هذه الأرقام من لوري وآخرون 2009 1
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المناقشة
فيروسي بوساطة توصيل الجينات يحمل إمكانات كبيرة لدراسة العمليات العصبية وعلاج اضطرابات الدماغ 1،2،3. ويمكن أيضا للتنوع كبير من هذه التقنية يمكن استغلالها لتسمية الخلايا fluorescently التصوير على حد سواء في المختبر والمجراة 4. نحن هنا يبرهن على وجود إجراءات مفصلة لتنبيغ الخلايا العصبية والدبقية في القشرة البصرية باستخدام الماوس مزدوج الجديلة الغدة معربا عن تعزيز ارتباط الفيروس بروتين الفلورية الخضراء.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
الإفصاحات
وتمت الموافقة على البروتوكولات الحيوانية والتجريبية من جامعة روتشستر جامعة جنة الموارد الحيوانية (UCAR) وفقا لسياسة رعاية PHS الرفق بالحيوان واستخدام الحيوانات المختبرية.
شكر وتقدير
وقدم هذا العمل ممكن من المنح المقدمة من المعاهد الوطنية للصحة (EY012977) ، وجائزة شهادة في العلوم الطبية الحيوية من صندوق ويلكوم بوروز ، ومؤسسة وايتهول ، ومؤسسة سلون (AKM).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| محول تثبيت الفئران وجراء الجرذان من St–lting | Stoelting Co. | 51625 | يمكن استبداله بجهاز تثبيت مجسمي قياسي لتثبيت الحيوانات أثناء الجراحة |
| مقصات Bonn فائقة الدقة، 8.5cm، طرف مستقيم، حافة قطع 13mm | Fine Science Tools | 14084-08 | |
| ملاقط ضماد العين، 10cm، عرض الطرف 0.5mm، منحنية | Fine Science Tools | 11152-10 | |
| ملاقط Dumont #5/45 - طرف Dumoxel قياسي، 11cm، مائلة | Fine Science Tools | 11251-35 | ملاقط ذات طرف فائق الدقة لإجراء عملية فتح الجمجمة |
| ملاقط ذات نمط قياسي، مستقيمة، طرف 2.5mmx1.35mm، 12cm | Fine Science Tools | 11000-12 | |
| صندوق تحكم Microtorque وقطعة يد Tech2000 | Ram Products, Inc. | TECH2000ON/OFF | مثقاب أسنان |
| سنابل مثقاب دقيق من الفولاذ المقاوم للصدأ، قطر الطرف 1.4mm | Fine Science Tools | 19008-14 | |
| ماصات دقيقة Wiretrol، لتوصيل 1-5 µL | VWR international | 5-000-1001 or 53480-287 | |
| زيت معدني | VWR international | 29447-338 | |
| متلاعب دقيق يدوي وقاعدة مائلة (لليمين) | World Precision Instruments, Inc. | M3301-M3-R | يُستخدم لتحديد الإحداثيات المجسمية |
| مضخة UltraMicroPump (UMP3) (واحدة) مع وحدة تحكم SYS-Micro4 | World Precision Instruments, Inc. | UMP3-1 | |
| خيوط جراحية | VWR international | 95056-952 | |
| جهاز سحب الماصات الدقيقة P-97 Flaming/Brown | Sutter Instrument Co. | P-97 | |
| Tobradex | متوفر من الخدمات البيطرية بمؤسستك’ |
المراجع
- Kaplitt, M. G., Leone, P., Samulski, R. J., Xiao, X., Pfaff, D. W., O'Malley, K. L., During, M. J. Long-term gene expression and phenotypic correction using adeno-associated virus vectors in the mammalian brain. Nat Genet. 8, 148-154 (1994).
- Harding, T. C., Dickinson, P. J., Roberts, B. N., Yendluri, S., Gonzalez-Edick, M., Lecouteur, R. A., Jooss, K. U. Enhanced gene transfer efficiency in the murine striatum and an orthotopic glioblastoma tumor model, using AAV-7- and AAV-8-pseudotyped vectors. Hum Gene Ther. 17, 807-820 (2006).
- Lo, W. D., Qu, G., Sferra, T. J., Clark, R., Chen, R., Johnson, P. R. Adeno-associated virus-mediated gene transfer to the brain: duration and modulation of expression. Hum Gene Ther. 10, 201-213 (1999).
- Lowery, R. L., Zhang, Y., Kelly, E. A., Lamantia, C. E., Harvey, B. K., Majewska, A. K. Rapid long-term labeling of cells in the developing and adult rodent visual cortex using double-stranded adeno-associated viral vectors. Dev Neurobiol. 69, 674-688 (2009).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
إعادة الطباعة والأذونات
