يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

تحديد معدل النقل من الاكسيوبيوتك والمواد النانوية عبر المشيمة باستخدام

17.1K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/50401

⸱

يونيو 18, 2013

في هذه المقالة

ملخص

ال خارج الحي إعادة تدوير مزدوج الإنسان نموذج نضح المشيمة يمكن استخدامها لتحقيق نقل الاكسيوبيوتك والجسيمات النانوية عبر المشيمة البشرية. في هذا البروتوكول الفيديو وصفنا المعدات والتقنيات اللازمة لتنفيذ الناجح لنضح المشيمة.

الملخص

منذ عقود المشيمة البشرية كان يعتقد أن يكون حاجزا لا يمكن اختراقه بين الأم والطفل الذي لم يولد بعد. ومع ذلك، فإن اكتشاف العيوب الخلقية الثاليدومايد التي يسببها والعديد من الدراسات في وقت لاحق بعد ذلك أثبتت عكس ذلك. اليوم العديد من الاكسيوبيوتك الضارة مثل النيكوتين، وصفت الهيروين والميثادون أو المخدرات، وكذلك الملوثات البيئية للتغلب على هذا الحاجز. مع تزايد استخدام تكنولوجيا النانو، والمشيمة من المرجح أن تتلامس مع جزيئات رواية سواء عن قصد أو عن غير قصد من خلال التعرض في حالة التطبيقات الطبية فائقة الصغر المحتملة. لا يمكن استقراء البيانات من التجارب على الحيوانات إلى البشر لأن المشيمة هو الأكثر الجهاز الثدييات أنواع محددة 1. ولذلك، فإن فيفو السابقين المزدوجة إعادة تدوير نضح المشيمة البشرية، التي وضعتها Panigel وآخرون. في عام 1967 2 وتعديلها بشكل مستمر من قبل شنايدر وآخرون. في عام 1972 3، يمكن أن يكون بمثابة نموذج ممتاز رس دراسة نقل الاكسيوبيوتك أو جزيئات.

هنا، ونحن نركز على المزدوج فيفو السابقين إعادة تدوير الإنسان بروتوكول نضح المشيمة وزيادة تطويره للحصول على نتائج يمكن استنساخه.

تم الحصول على المشيمة بعد الموافقة المسبقة من الأمهات من حالات الحمل غير معقدة على المدى تمر الولادة القيصرية. تم مقنى الأوعية الجنين والأم من فلقة سليمة وperfused على الأقل لمدة خمس ساعات. كما جسيم نموذج تم إضافة جزيئات البوليستيرين fluorescently المسمى مع أحجام 80 و 500 نانومتر في القطر إلى الدائرة الأمهات. كانت قادرة على عبور حاجز المشيمة وتقديم نموذجا مثاليا للمادة التي يتم نقلها عبر المشيمة إلى الجنين في حين تم الإبقاء على الجسيمات نانومتر 500 في أنسجة المشيمة أو الدائرة الأمهات الجسيمات 80 نانومتر. الإنسان نموذج نضح المشيمة فيفو السابقين هي واحدة من عدد قليل من النماذج توفير معلومات موثوق بها حولسلوك نقل الاكسيوبيوتك في حاجز الأنسجة الهامة التي توفر البيانات التنبؤية والسريرية ذات الصلة.

المقدمة

المشيمة هي جهاز معقد وهو المسؤول عن تبادل الأكسجين وثاني أكسيد الكربون، والمواد المغذية والنفايات والمنتجات، وفي الوقت نفسه قادرة على الحفاظ على اثنين من الدوائر دم الأم والجنين المتنامي فصلها عن بعضها البعض. بالإضافة إلى ذلك، فإنه يمنع رفض الطفل من قبل النظام المناعي للأم وتفرز الهرمونات للحفاظ على الحمل. يتم تشكيل حاجز الخلوية من قبل خلايا الأرومة الغاذية الخلوية التي تلتحم وتشكيل مخلى صحيح من دون أغشية الخلايا الجانبي 4،5. ويتم تنظيم المشيمة كله في العديد من النبتات، والتي تحتوي على واحد شجرة الزغابي الجنين وتمثل وحدة وظيفية واحدة من المشيمة.

تم تكثيف دراسة وظيفة حاجز المشيمة مع اكتشاف التشوهات التي يسببها الثاليدومايد في عام 1960. لأسباب واضحة الدراسات إزفاء مع النساء الحوامل لا يمكن أن يؤديها. ونتيجة لذلك، تم تطوير نماذج بديلة مختلف 6،7 . النموذج الأكثر واعدة وربما الأكثر السريرية ذات الصلة هو نموذج الإنسان نضح المشيمة فيفو السابقين التي وضعتها Panigel وزملاء العمل 2،3.

تتعرض العديد من النساء إلى الاكسيوبيوتك المختلفة مثل الأدوية أو ملوثات البيئة أثناء الحمل 8. بالنسبة لبعض الأدوية التي كانت تدار بالفعل بانتظام أثناء الحمل، في الدراسات المجراة يمكن أن يقوم بها مقارنة بين تركيز دم الأم مع أن في دم الحبل السري. ومع ذلك، وعموما ليس هناك سوى معلومات محدودة عن الدوائية والديناميكية في الجنين والتشوهات الخلقية من هذه المواد.

على سبيل المثال المواد الأفيونية مثل الهيروين عبور بسهولة حاجز المشيمة ويمكن أن يؤدي إلى تقييد النمو داخل الرحم، الولادة المبكرة أو الإجهاض العفوي 9،10. لذا، في حالة من الامتناع عن ممارسة الجنس في عداد المفقودين أثناء الحمل ينصح استبدال العلاج مع الميثادون. السابقينكشفت فيفو الإنسان نموذج نضح المشيمة أن نقل الميثادون في الدورة الدموية للجنين لا يكاد يذكر 11، الذي يرتبط بشكل جيد مع دم الحبل السري إلى الأمهات نسبة تركيز الدم تحسب بعد الولادة 12.

تكنولوجيا النانو هو حقل المتنامية خصوصا في مجال الطب. لذلك، تحت طبيعيا غرامة (<2.5 ميكرون في القطر) وجزيئات متناهية الصغر (<0.1 ميكرون في القطر) في أبخرة من حرائق الغابات، الانفجارات البركانية والغبار في الصحراء، والتعرض للمواد متناهية الصغر هندسيا (بعد واحد على الأقل <0.1 ميكرون 13 ) آخذ في الازدياد. هذا أثار تساؤلات حول إمكانية السمية للمواد متناهية الصغر هندسيا. على الرغم من أن ليس هناك خطر من الإنسان يمكن أن ثبت حتى الآن، وهناك دراسات تجريبية الرئيسية تشير إلى أن الجسيمات النانوية المهندسة يمكن أن يسبب الاستجابات البيولوجية الضارة مما يؤدي إلى نتائج السمية 14. في الآونة الأخيرة، أشارت بعض الدراسات إلى أن التعرض قبل الولادة لويرتبط تلوث الهواء لحاجة الجهاز التنفسي العالي والتهاب الشعب الهوائية في الأطفال حديثي الولادة والأطفال 15،16. وبالإضافة إلى ذلك، يمكن استخدام جزيئات صغيرة مثل ناقلات المخدرات لعلاج على وجه التحديد إما الجنين أو الأم. وبالتالي، يصبح من الواضح أن هناك حاجة لدراسات واسعة من الاكسيوبيوتك أو المواد النانوية متميزة وقدرتهم على عبور الحاجز المشيمي. ويلخص نظرة عامة الفعلي على الدراسات الحالية على نفاذية المشيمة إلى المواد متناهية الصغر هندسيا في مينيزيس وآخرون 2011 17 و Buerki-Thurnherr وآخرون. 2012 7.

المزدوج فيفو السابقين إعادة تدوير الإنسان نموذج نضح المشيمة يوفر نظام للرقابة وموثوق بها لدراسة النقل المشيمة من الذاتية المختلفة ومركبات خارجية 3،11،12،18،19 ومجموعة واسعة من وظائف أخرى من المشيمة مثل الآليات المسؤولة عن تطوير الحالات المرضية مثل تسمم الحمل <سوب> 20-22. في هذا البروتوكول ونحن نركز بشكل رئيسي على اقامة والمناولة والطريقة التي تسمح للدراسة تراكم والآثار ومعدلات إزفاء من مجموعة واسعة من الاكسيوبيوتك أو النانوية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

1. إعداد نظام الارواء

  1. إعداد نظام نضح تتألف من حمام مائي، وغرفة نضح، عمودين للالأوكسجين، واثنين من مضخات ماصه، واثنين من الفخاخ فقاعة، واثنين من سخانات التدفق واحد استشعار الضغط (الشكل 1). ربط هذه المكونات مع أقسام الأنابيب تتكون من السيليكون والبولي فينيل كلوريد المواد وفقا للمخطط في الشكل 2. وأخيرا هناك نوعان من دوائر تمثل الدائرة الجنين والأم، على التوالي.
  2. بدوره على حمام مائي، وسخانات التدفق والتدفئة للغرفة نضح. وينبغي أن تكون درجة الحرارة 37 درجة مئوية.
  3. الاحماء المتوسطة نضح (NCTC-135 الأنسجة مستنبت المخفف 01:02 مع العازلة ايرل (6.8 جم / كلوريد الصوديوم L، 0.4 جم / لتر كلوريد البوتاسيوم، 0.14 جم / لتر فوسفات الصوديوم، 0.2 جم / لتر كبريتات المغنيسيوم، 0.2 غرام / L كلوريد الكالسيوم، 2 ز / L الجلوكوز) تستكمل مع الجلوكوز (1 غرام / لتر)، ديكستران 40 (10 جم / لتر)، مصل بقري الزلال (10 ز/ L)، الهيبارين الصوديوم (2،500 وحدة دولية / لتر)، أموكسيسيللين (250 ملغم / لتر) وبيكربونات الصوديوم (2.2 جم / لتر)؛ 7.4 درجة الحموضة) في حمام مائي.
  4. على التوالي شطف نظم الشرياني من الدائرة الجنين والأم مع أ) 200 مل من الماء المقطر، ب) 50 مل 1٪ هيدروكسيد الصوديوم، ج) 1٪ حامض الفوسفوريك ود) مرة أخرى 200 مل من الماء المقطر (معدل التدفق: 15 - 20 مل / دقيقة).
  5. الاتصال قنية الجنين (Ø 1.2 ملم، وينبغي أن ترفق إبرة حادة إلى مجموعة التسريب المجنح إبرة تعديل) إلى الأنبوب الشرياني الجنين.
  6. شطف نظم الشرياني من الدائرة الجنين والأم مع المتوسطة نضح حتى تحتوي على جميع الأنابيب المتوسطة (معدل التدفق: مل 15-20 / دقيقة). خلال هذه الخطوة تملأ الفخاخ فقاعة وإزالة جميع فقاعات المصب من الفخ. ثم توقف المضخات. من المهم حقا أن أنابيب الشرايين وارد دائما خالية من فقاعات، وإلا بعد القسطرة خصوصا في الأوعية الجنين غرامة يمكن أن تمزق.
  7. بدوره على تدفق الغاز. والاوكسيجين الدائرة الأمهات وايال 5٪ من ثاني أكسيد الكربون و 95٪ هواء الاصطناعية والدائرة الجنين مع 5٪ من ثاني أكسيد الكربون والنيتروجين 95٪.
  8. بدء التسجيل لاستشعار الضغط.

2. Cannulating المشيمة

  1. الحصول المشيمة سليمة من حالات الحمل غير معقدة الطويل بعد العملية القيصرية الأولية. موافقة خطية يجب أن تعطى (تم الحصول عليها في حالة دراساتنا) من قبل الأمهات قبل الولادة، وأنه الدراسة إلى أن تتم الموافقة من قبل لجنة الأخلاق المحلية (كان الحال في دراساتنا). وينبغي أن يتم السيطرة البصرية الأولى من قبل القابلات لضمان وجود المشيمة صحية وسليمة.
  2. كيفية تركيب الكانيولا من المشيمة هو خطوة حاسمة! خلال نضح كل اضطراب صغير في الأنسجة يمكن أن يؤدي إلى تسرب بين الدورة الدموية للأم والجنين. المشيمة لابد من الحصول عليها في غضون 30 دقيقة بعد الولادة.
  3. حدد فلقة سليمة في المنطقة الهامشية من المشيمة دون انقطاع مرئية على الجانب الأمهات. في لوحة المشيمي،ربط كل الفروع المرتبطة من الشريان والوريد السري المنبع إلى الجانب القسطرة في وقت لاحق (نحو الحبل السري) باستخدام مواد خياطة الجروح الجراحية. جعل دائما وهما عقدة.
  4. يقني؛ يدخل القنية الشريان الجنين الأولى. الشرايين المشيمة الجنين هي دائما أصغر وأرق من الأوردة.
  5. جعل خياطة حول الشريان الجنين، ولكن لا ادراك التعادل على الفور. عقد السفينة مع ملقط، وقطع سفينة بعناية ووضع قنية الصغيرة (1.2 ملم Ø) في الشريان. ثم ربط الخيط (وهما عقدة).
  6. المضي قدما في الوريد الجنين بنفس الطريقة ولكن استخدام قنية أكبر (1.5-1.8 ملم Ø، وينبغي أن ترفق إبرة حادة إلى مجموعة التسريب المجنح إبرة تعديل).
  7. بدوره على مضخة الجنين (2 مل / دقيقة). إذا لم يكن هناك تسرب مرئية وينبثق الدم من الوريد قنية الجنين، ببطء زيادة تدفق تصل إلى 4 مل / دقيقة. مراقبة الضغط في الشريان الجنين، فإنه لا ينبغي أن يتجاوز 70 مم زئبق. إذا تسرب السائل خارج في الجنين أو زميلهrnal قنية اصلاحها مع آخر غرزة.
  8. وضع المشيمة على حامل الأنسجة مع الجانب الجنين صعودا وسحب غشاء المشيمة والأنسجة على المسامير. في النهاية يجب أن يكون فلقة perfused في وسط حفرة في حامل الأنسجة.
  9. استقرار الجزء حيث يحمل سوى غشاء المشيمة مع غشاء السيليكون (Ø 1 مم) أو بدلا من قطعتين parafilm.
  10. تجميع حامل الأنسجة كاملة، وتشديد الخناق وقطع الأنسجة المتدلية. يرجى ملاحظة أن الوريدي والشرياني حقنة عادية ليست مقروص لكن بدلا من ذلك يكمن في قنوات صغيرة من حامل الأنسجة.
  11. تحويل حامل الأنسجة رأسا على عقب، ووضعها في غرفة نضح وإضافة غطاء. الآن، ينبغي أن يكون الجانب الأمهات في الأعلى. تحقق دائما إذا كانت الدائرة الجنين لا تزال سليمة والمتوسطة يتدفق من الأنبوب الوريد الجنين.
  12. بدوره على مضخة الأمهات (12 مل / دقيقة). أعرض حادة حقنة عادية ثلاث (Ø 0.8 ملم) في اله نهاية الأنبوب الشريان الأمهات في الفضاء بين الزغابات عن طريق اختراق لوحة الساقطية. لإرجاع سائل الإرواء إلى الدائرة الأمهات وضع أنبوب واحد كما استنزاف الوريدي الذي يرتبط أيضا مع مضخة الأمهات إلى أدنى موقف في الجزء العلوي من غرفة نضح.
  13. الاتصال قنية الوريد الجنين لأنبوب الوريد الجنين.

3. تنفيذ المرحلة ما قبل التجريبية من والإرواء

  1. للسماح للأنسجة للتعافي من فترة نقص تروية بعد الولادة واخراج الدم في الفضاء بين الزغابات، وهي مرحلة ما قبل الفتح من 20 دقيقة هو ضروري. وهذا يعني الوريد الأم والجنين لا تؤدي إلى خزان يحتوي على الشرايين المتوسطة نضح. جمع تدفق الوريدي الجنين والأم في زجاجة وتخلص منه بعد مرحلة ما قبل.
  2. لتقييم سلامة نضح تنفيذ المرحلة ما قبل آخر من 20 دقيقة ولكن في دائرة مغلقة. استخدام اثنين من خزانات منفصلة مع نضح المتوسطةللدائرة الجنين والأم وإغلاق الدوائر التي تقود تدفق الوريدي الجنين مرة أخرى في الخزان الجنين وتدفق الوريدي الأمهات مرة أخرى في الخزان الأمهات.
  3. للتجربة نضح الرئيسية إعداد اثنين من قوارير مع 120 مل المتوسطة نضح (واحد للأم واحدة للخزان الجنين). إضافة رديولبلد 14 C-خافضات الحرارة (4 نانوكوري / مل؛ بمثابة مراقبة إيجابية؛ تنبيه: مادة مشعة) وfluorescently المسمى أجنبي بيولوجيا أو النانوية التي يريد واحدة لتحليل إلى الخزان الأمهات. مزيج سائل الإرواء الأمهات أيضا.
  4. تبدأ التجربة من خلال تبادل والمتوسطة نضح الخالص مع اثنين من قوارير مصنوعة (الخزانات الجنين والأم). إغلاق الدوائر التي تقود تدفق الوريدي الجنين مرة أخرى في الخزان الجنين وتدفق الوريدي الأمهات مرة أخرى في الخزان الأمهات.
  5. تواصل نضح لمدة 6 ساعة وأخذ عينات بانتظام. resuspend دائما المتوسطة في الجنين والأمالخزان قبل الانسحاب.
  6. السيطرة على الضغط في الشريان الجنين (يجب أن لا تتجاوز 70 مم زئبق)، ودرجة الحموضة في كل من الدوائر (يجب أن يكون في نطاق الفسيولوجية 7،2-7،4) وحجم كل من الخزانات (فقدان الجنين حجم يجب أن لا تتجاوز 4 مل / ساعة) خلال نضح . إذا لزم الأمر ضبط قيم الرقم الهيدروجيني باستخدام حامض الهيدروكلوريك أو هيدروكسيد الصوديوم.
  7. إذا كان فقدان وحدة التخزين في خزان الجنين يتجاوز 4 مل / ساعة هناك تسرب في الأنسجة واحد لديه لوقف نضح. معدل نجاح نضح لمدة 6 ساعة دون تسرب حوالي 15-20٪.
  8. وقف نضح بعد 6 ساعة. تتحول مضخات، حمام الماء، سخانات تدفق وتدفق الغاز.
  9. إزالة المشيمة من حامل الأنسجة، وقطع فلقة perfused (أكثر إشراقا من الأنسجة unperfused) وتزن عليه.
  10. أخذ عينات من unperfused (جزء من المشيمة التي قطعت في البداية؛ يمكن اتخاذها بالفعل خلال مرحلة ما قبل) والأنسجة perfused (كل منها حوالي 1 غرام) وتخزينها في -20 ° Cحتى التجانس أو في النيتروجين السائل لتحليلها لاحقا. إصلاح عينة أنسجة أخرى في 4٪ من الفورمالين لتقييم التشريحية المرضية. وينبغي أن تشمل العينات جميع طبقات من المشيمة.
  11. تنظيف أنابيب بعد نضح من قبل الشطف تباعا أنظمة الشرياني من الدائرة الجنين والأم مع أ) 200 مل من الماء المقطر، ب) 50 مل 1٪ هيدروكسيد الصوديوم، ج) 50 مل 1٪ حامض الفوسفوريك ود) مرة أخرى 200 مل من الماء المقطر (تدفق: مل 15-20 / دقيقة).

وصفت إجراءات العمل بأكمله من التجربة نضح المشيمة في الشكل 3.

4. تحليل العينات

  1. الطرد المركزي عينات سائل الإرواء لمدة 10 دقيقة في 800 XG قبل التحليل لإزالة الكريات الحمراء المتبقية. اتخاذ طاف لإجراء مزيد من التحليل. يمكن ترك هذه العينات بين عشية وضحاها في 4 درجات مئوية. ويمكن لتحليل إنتاج اللبتين وقوات حرس السواحل الهايتية يتم تخزين العينات في -20 درجة مئوية.
  2. لتقييم نفاذيةالمشيمة تحليل C-14 خافضات الحرارة عن طريق التلألؤ السائل. مزيج 300 ميكرولتر من العينات الجنين والأم مع 3 مل كوكتيل التلألؤ والتدبير لمدة 5 دقائق في عداد بيتا.
  3. لتقييم نقل الجسيمات النانوية الفلورسنت أو أجنبي بيولوجيا من الفائدة قراءة مضان في 485 نانومتر الإثارة و 528 نانومتر الانبعاثات في القارئ صفيحة ميكروسكوبية (موجات المشار إليها هي لتحليل التسمية أخضر أصفر التي استخدمناها للالنانوية).
  4. لتحديد الجدوى من أنسجة المشيمة خلال قياس استهلاك الجلوكوز نضح وإنتاج اللاكتات في الدائرة الجنين والأم مع نظام الغاز في الدم الآلي. بالإضافة إلى ذلك، وتقييم إنتاج هرمونات المشيمة البشرية choriongonadotropin (قوات حرس السواحل الهايتية) واللبتين في عينات الأنسجة المتجانس وperfusates بواسطة المقايسة المناعية المرتبطة بالإنزيم (ELISA).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

ويبين الشكل 4A لمحات نضح من جزيئات البوليستيرين صغيرة (80 نانومتر) التي تم نقلها عبر المشيمة مقارنة مع جزيئات البوليستيرين أكبر (500 نانومتر) التي كانت لا ينقل لحجرة الجنين. كل نقطة بيانات يمثل تركيز الجسيمات يعني إلى نقطة زمنية معينة لا يقل عن 3 تجارب مستقلة. لالبوليستيرين النانوية نقل المشيمة هي التي تعتمد على حجم 19. بعد 3 ساعة من المشيمة نضح بالفعل تم نقل 20-30٪ من وأضاف في البداية 80 نانومتر جزيئات البوليستيرين من الأمهات إلى الدائرة الجنين، في حين...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تحت نضح إعادة تدوير مزدوج أظهر هنا، وهناك عدة تكوينات تجريبية أخرى ممكن اعتمادا على السؤال الذي لابد من الإجابة عليها. وتستخدم perfusions المشيمة مفتوحة خاصة عادة لتقييم التخليص المخدرات في تركيز ثابت للدولة 3. نضح اعادة توزيع مجموعة المتابعة يمكن تطبيقها أيضا لتأكيد النقل النشط للمواد داخلية أم خارجية. لهذا النهج نفس التركيز من أجنبي بيولوجيا لابد من إضافتها إلى الأمهات والدورة الدموية للجنين. يفترض أن هناك النقل النشط ضد تدرج التركيز، وتراكم مادة الاختبار في أي واحد م...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يعلن الكتاب أنه ليس لديهم مصالح مالية المتنافسة.

شكر وتقدير

ويؤيد هذا العمل ماليا من قبل المؤسسة الوطنية السويسرية، (المفدال برنامج 64، منح لا 4064-131232).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
NCTC-135 المتوسطةICN Biomedicals، Inc.يمكن استبدال 10-911-22Cب Medium 199 من Sigma (M3769)
كلوريد الصوديوم (NaCl)Sigma-Aldrich ، Fluka71381
كلوريد البوتاسيوم (KCl) صيدليةالمستشفىممكنة أيضا: Sigma (P9541)
فوسفات أحادي الصوديوم (NaH2< / sub>PO4< / sub> &# 183; H2O)Merck106346
كبريتات المغنيسيوم (MgSO4 · H2< / sub>O)سيجما ألدريتش ، فلوكا63139
كلوريد الكالسيوم (كلوريد الكالسيوم ، اللامائي ) ميرك102388
D (+) الجلوكوز (اللامائي )سيجما ألدريتش ، فلوكا49138
بيكربونات الصوديوم (NaHCO3< / sub>)Merck106329
Dextran من Leuconostoc spp.Sigma-Aldrich31389
ألبومين مصل الأبقار (BSA)ApplichemA1391
أموكسيسيلين (Clamoxyl)GlaxoSmithKline AG2021101A
هيبارين الصوديومB. Braun Medical AG3511014
كريات هيدروكسيد الصوديوم (NaOH)Merck106498تنبيه: تآكل
حمض الفوسفوريك 85٪ (H3< / sub>PO4< / sub>)Merck100573تنبيه:
خليط غاز الأم: 95٪ هواء اصطناعي ، 5٪ CO2< / sub>
غاز الجنين: 95٪ N2< / sub> ، 5٪ CO2< / sub>PanGas AG
Antipyrine (N-methyl-14< / sup>C)شركة American Radiolabeled Chemicals، Inc.ARC 0108-50 &# 956; Ciتنبيه: مادة مشعة (نشاط محدد: 55mCi / mmol)
كوكتيل التلألؤ (IrgaSafe Plus)Zinsser Analytic GmbH1003100
جزيئات البوليسترين 80 نانومترPolyscience، Inc.17150
جسيمات البوليسترين 500 نانومترPolyscience، Inc.17152
EQUIPMENT< / strong>
حمام مائيVWR462-7001
ترموستاتIKA-Werke GmbH Co. KG3164000
مضخات تمعجيةIsmatecISM 833
مصائد الفقاعات (الزجاج)UNI-GLAS Laborbedarf
سخان التدفقUNI-GLAS Laborbedarf
مستشعر الضغط + برنامج للتحليلات MSRElectronics GmbH145B5
NotebookHewlett Packard
مصغر لتبادل الغاز الأكسجين أنظمةالحياة الأجهزةLSI-OXR
Tygon Tube (المعرف: 1.6 مم ؛ OD: 4.8 مم)IsmatecMF0028
للمضخات (PharMed BPT ؛ رقم التعريف: 1.52 مم)IsmatecSC0744
قنية حادة (0.8 مم)مركز بوليميد الطبي03.592.81
قنية حادة (1.2 مم)مركز بوليميد الطبي03.592.90
حادة (1.5 مم)مركز بوليميد الطبي03.592.94
حادة (1.8 مم)مركز بوليميد الطبي03.952.82
ParafilmVWR291-1212
غرفة التروية مع حامل الأنسجة (زجاج شبكي)القسمتتوفر معدات مماثلة من Hemotek Limited ، مادة الخياطة الجراحية في المملكة
المتحدة (PremiCron)B. Braun Medical AGC0026005
مجموعة ضخ الإبرة المجنحة (21G Butterfly)Hospira، Inc.ASN 2102
محبس متعدد الاتجاهات (Discofix C-3)B. مقص جراحي براون ميديكال AG16494C
B. مقص تشريح براون الطبي AGBC304R
مقصب. حامل إبرة براون الطبية AGBC162R
B. براون الطبية AGBM200R
ملقطب. براون الطبية AGBD215R
نظام غازات الدم الآلي مقياس الإشعاع الطبي APSABL800 FLEX
قارئ الألواح الدقيقة متعدد الأوضاعBioTekSynergy HT
محلل التلألؤ السائلGMI، Inc.باكارد ثلاثي الكربوهيدرات 2200
أنبوب التلألؤ 5.5 ملZinsser Analytic GmbH3020001
Tissue HomogenizerOMNI، Inc.TH-220
+ القطب الكهربائيVWR662-2779
تآكل خليط أنابيب قنية قنيات الفني الداخلي تشريح تشريح مقياس الأس الهيدروجيني

المراجع

  1. Ala-Kokko, T. I., Myllynen, P., Vahakangas, K. Ex vivo perfusion of the human placental cotyledon: implications for anesthetic pharmacology. Int. J. Obstet. Anesth. 9, 26-38 (2000).
  2. Panigel, M., Pascaud, M., Brun, J. L. Radioangiographic study of circulation in the villi and intervillous space of isolated human placental cotyledon kept viable by perfusion. J. Physiol. (Paris). 59, 277(1967).
  3. Schneider, H., Panigel, M., Dancis, J. Transfer across the perfused human placenta of antipyrine, sodium and leucine. Am. J. Obstet. Gynecol. 114, 822-828 (1972).
  4. Enders, A. C., Blankenship, T. N. Comparative placental structure. Adv. Drug Deliv. Rev. 38, 3-15 (1999).
  5. Takata, K., Hirano, H. Mechanism of glucose transport across the human and rat placental barrier: a review. Microsc. Res. Tech. 38, 145-152 (1997).
  6. Saunders, M. Transplacental transport of nanomaterials. Wiley Interdiscip. Rev. Nanomed. Nanobiotechnol. 1, 671-684 (2009).
  7. Buerki-Thurnherr, T., von Mandach, U., Wick, P. Knocking at the door of the unborn child: engineered nanoparticles at the human placental barrier. Swiss Med. Wkly. 142, w13559(2012).
  8. Gendron, M. P., Martin, B., Oraichi, D., Berard, A. Health care providers' requests to Teratogen Information Services on medication use during pregnancy and lactation. Eur. J. Clin. Pharmacol. 65, 523-531 (2009).
  9. Burns, L., Mattick, R. P., Lim, K., Wallace, C. Methadone in pregnancy: treatment retention and neonatal outcomes. Addiction. 102, 264-270 (2007).
  10. von Mandach, U. Drug use in pregnancy. Ther. Umsch. 62, 29-35 (2005).
  11. Malek, A., Obrist, C., Wenzinger, S., von Mandach, U. The impact of cocaine and heroin on the placental transfer of methadone. Reprod. Biol. Endocrinol. 7, 61(2009).
  12. Hutson, J. R., Garcia-Bournissen, F., Davis, A., Koren, G. The human placental perfusion model: a systematic review and development of a model to predict in vivo transfer of therapeutic drugs. Clin. Pharmacol. Ther. 90, 67-76 (2011).
  13. International Organization for Standardization (ISO). Technical Specification (ISO/TS) 27687. Nanotechnologies – Terminology and definitions for nano-objects – Nanoparticles, nanofibre and nanoplate. , (2008).
  14. Pietroiusti, A. Health implications of engineered nanomaterials. Nanoscale. 4, 1231-1247 (2012).
  15. Latzin, P., Roosli, M., Huss, A., Kuehni, C. E., Frey, U. Air pollution during pregnancy and lung function in newborns: a birth cohort study. Eur. Respir. J. 33, 594-603 (2009).
  16. Lacasana, M., Esplugues, A., Ballester, F. Exposure to ambient air pollution and prenatal and early childhood health effects. Eur. J. Epidemiol. 20, 183-199 (2005).
  17. Menezes, V., Malek, A., Keelan, J. A. Nanoparticulate drug delivery in pregnancy: placental passage and fetal exposure. Curr. Pharm. Biotechnol. 12, 731-742 (2011).
  18. Muhlemann, K., Menegus, M. A., Miller, R. K. Cytomegalovirus in the perfused human term placenta in vitro. Placenta. 16, 367-373 (1995).
  19. Wick, P., et al. Barrier capacity of human placenta for nanosized materials. Environ. Health Perspect. 118, 432-436 (2010).
  20. Dancis, J. Why perfuse the human placenta. Contrib Gynecol. Obstet. 13, 1-4 (1985).
  21. May, K., et al. Perfusion of human placenta with hemoglobin introduces preeclampsia-like injuries that are prevented by alpha1-microglobulin. Placenta. 32, 323-332 (2011).
  22. Guller, S., et al. Protein composition of microparticles shed from human placenta during placental perfusion: Potential role in angiogenesis and fibrinolysis in preeclampsia. Placenta. 32, 63-69 (2011).
  23. Challier, J. C. Criteria for evaluating perfusion experiments and presentation of results. Contrib. Gynecol. Obstet. 13, 32-39 (1985).
  24. Kraemer, J., Klein, J., Lubetsky, A., Koren, G. Perfusion studies of glyburide transfer across the human placenta: implications for fetal safety. Am. J. Obstet. Gynecol. 195, 270-274 (2006).
  25. leal, J. K., et al. Modification of fetal plasma amino acid composition by placental amino acid exchangers in vitro. J. Physiol. 582, 871-882 (2007).
  26. athiesen, L., et al. Quality assessment of a placental perfusion protocol. Reprod. Toxicol. 30, 138-146 (2010).
  27. Myllynen, P., et al. Preliminary interlaboratory comparison of the ex vivo dual human placental perfusion system. Reprod Toxicol. 30, 94-102 (2010).
  28. Malek, A., Sager, R., Schneider, H. Maternal-fetal transport of immunoglobulin G and its subclasses during the third trimester of human pregnancy. Am. J. Reprod. Immunol. 32, 8-14 (1994).
  29. Prouillac, C., Lecoeur, S. The role of the placenta in fetal exposure to xenobiotics: importance of membrane transporters and human models for transfer studies. Drug Metab. Dispos. 38, 1623-1635 (2010).
  30. Poulsen, M. S., Rytting, E., Mose, T., Knudsen, L. E. Modeling placental transport: correlation of in vitro BeWo cell permeability and ex vivo human placental perfusion. Toxicol. In Vitro. 23, 1380-1386 (2009).
  31. Mathiesen, L., Rytting, E., Mose, T., Knudsen, L. E. Transport of benzo[alpha]pyrene in the dually perfused human placenta perfusion model: effect of albumin in the perfusion medium. Basic Clin. Pharmacol. Toxicol. 105, 181-187 (2009).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

نقل المواد الغريبة عن الجسمانتقال الجسيمات النانويةالمشيمة البشريةنموذج خارج الجسمالحاجز المشيميجسيمات البوليسترين النانويةالانتقال من الأم إلى الجنينغرفة الترويةالانتشار السلبي