نوضح هنا تقنية لنقل الخلايا العصبية على نطاق واسع عن طريق الحقن داخل البطين للفيروس المرتبط بالغدة في دماغ الفأر حديثي الولادة. توفر هذه الطريقة طريقة سريعة وسهلة لتحقيق التعبير مدى الحياة عن الجينات المعدلة وراثيا التي يتم تسليمها عن طريق الفيروس.
يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية
مقالة منهجية
حقن الفيروسي Intracerebroventricular من حديثي الولادة ماوس الدماغ للاستمرار وانتشار تنبيغ العصبية
* These authors contributed equally
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
مع وتيرة التقدم العلمي المتسارع، وهناك حاجة إلى أساليب جديدة لعلم الأعصاب التجريبي بسرعة وسهولة التلاعب التعبير الجيني في مخ الفأر. نحن هنا وصف تقنية لأول مرة من قبل Passini وولف للتسليم داخل الجمجمة المباشر من الجينات المحورة فيروسي-المشفرة في مخ الفأر حديثي الولادة. في أبسط أشكاله، فإن الإجراء يتطلب سوى دلو الجليد وحقنة ميكروليتر. ومع ذلك، يمكن أيضا أن تتكيف بروتوكول للاستخدام مع إطارات التجسيمي لتحسين الاتساق للباحثين جديد لهذه التقنية. تعتمد هذه الطريقة على قدرة الغدة المرتبطة الفيروسات (AAV) للتحرك بحرية من البطينات الدماغية في لحمة الدماغ في حين بطانة البطانة العصبية لا تزال غير ناضجة خلال 12-24 ساعة الأولى بعد الولادة. الحقن داخل البطينات من AAV في هذه النتائج في سن التنبيغ على نطاق واسع من الخلايا العصبية في جميع أنحاء الدماغ. يبدأ التعبير في غضون أيام من الحقن ويستمر لlifetim(ه) من الحيوان. عيار الفيروسية يمكن تعديلها للتحكم في كثافة الخلايا العصبية transduced، في حين شارك في التعبير عن بروتين فلوري يوفر تسمية الحيوية للخلايا transduced. مع ارتفاع توافر المرافق الأساسية الفيروسية لتوفير الكواشف كلا قبالة الجاهزة للاستخدام، وتعبئتها مسبقا وإعداد الفيروسي العرف، وهذا النهج يوفر طريقة في الوقت المناسب لمعالجة التعبير الجيني في مخ الفأر التي هي سريعة وسهلة وأقل تكلفة بكثير من الهندسة التقليدية سلالة الجرثومية.
المقدمة
الطرق التقليدية لتعديل العصبي التعبير الجيني تتطلب وقتا طويلا والتلاعب سلالة الجرثومية باهظة الثمن. البديل دي نوفو يقترب مثل Electroporation للفي الرحم أو الحقن lentiviral التجسيمي تحقق نتائج أسرع وأقل تكلفة ولكن لديها عيب تتطلب التدخل الجراحي المعقد 1-3. وعلاوة على ذلك، التعبير التحوير لديها مجموعة والمكاني المحدود مع هذه الأساليب. هنا، نحن تصف طريقة سريعة وسهلة واقتصادية للتلاعب على نطاق واسع عن طريق حقن الخلايا العصبية داخل البطينات من الغدة المرتبطة الفيروسات (AAV) في مخ الفأر حديثي الولادة. وقد وصفت طريقة أول مرة من قبل جون وولف وماركو Passini في عام 2001، حيث اقترح حجم الجسيمات الصغيرة من سمح AAV لنزع فتيل داخل السائل الدماغي الشوكي لأنها تمر من البطينات الجانبية من خلال حاجز بطانية عصبية غير ناضجة وإلى لحمة الدماغ 4، 5. الحقن داخل البطينات من AAV داخل وIRST 24 ساعة بعد الولادة عوائد تنبيغ الفيروسية على نطاق واسع من مجموعات فرعية العصبية التي تغطي كل منطقة من مناطق الدماغ، من بصيلات الشم لجذع الدماغ 6،7. يتم التعبير عن الجينات المحورة تسليمها فيروسي ونشطة خلال أيام من الحقن ويستمر لمدة تصل الى عام بعد ترنسدوكأيشن. وبالتالي، هذا التلاعب تنوعا يتيح الدراسات تتراوح بين أوائل نمو الدماغ بعد الولادة إلى الشيخوخة وانحطاط في الكبار.
في تطويع التقنية لاحتياجات تجريبية محددة لدينا، فقد ركزنا بشكل أساسي على AAV8 المصلي لأنه هو الأكثر كفاءة في transducing الخلايا العصبية 6. وتبين لنا أن عيار الفيروسية يمكن أن تضعف السيطرة على كثافة الخلايا العصبية transduced للتجارب اختبار خلايا الجوهرية عواقب التلاعب الجيني. بالإضافة إلى ذلك، علينا أن نظهر أن اثنين من الفيروسات يمكن أن يشترك حقن لإنتاج أنماط التعبير التي هي منحازة مجموعات متميزة أو متداخلة من الخلايا العصبية، اعتمادا على الأنماط المصلية المختارة لالتعبئة والتغليف الفيروسي. عملنا توسع براعة هذه التقنية للاستخدام في مجموعة واسعة من إعدادات علم الأعصاب التجريبية.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
البروتوكول
أداء جميع الإجراءات والبروتوكولات التي تنطوي على الحيوانات وفقا للمعاهد الوطنية للصحة دليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية. تم استعراض الإجراءات الموضحة هنا والموافقة عليها من قبل كلية بايلور للطب المؤسسي رعاية الحيوان واللجنة الاستخدام.
تمت الموافقة فيروس الغدة المرتبطة (AAV) ناقلات النسخ المتماثل غير كفء للتسليم التحوير في الدماغ القوارض للسلامة الأحيائية المستوى 1 استخدام. الرجوع إلى الموقع CDC لنشر حكومة الولايات المتحدة "السلامة الأحيائية في علم الأحياء الدقيقة والمختبرات الطبية الحيوية (BMBL)" الذي يفصل متطلبات محددة فيما يتعلق بإجراءات الحماية ومعالجة فيروس المناسبة. تحقق مع موظفي السلامة البيطرية والبيئية المحلية لمعرفة المتطلبات المحددة للإجراءات المؤسسية باستخدام الفيروسات. الأنظمة المتعلقة غرف الإجراء، والحجر الصحي، وتحديد أقفاص واقية تختلف باختلاف المؤسسات.
1. قبلحلج P0 الجراء وفوستر والأمهات
- توفير مستوى عال من الدهون طعام لجميع الإناث الحوامل والمرضعات لدعم الطلب على الطاقة من تربية والرضاعة.
- في المساء، وإنشاء قفص تربية عن طريق إضافة واحدة أو اثنتين من الإناث صحية للقفص من ذكر مقيم واحد. في صباح اليوم التالي، والتحقق من الإناث المكونات التزاوج وفصل الإناث عن الذكور إذا المكونات موجودا.
- استخدام الأمهات الحاضنة لرفع الجراء من خلفية وراثية ذات الخصائص الأم الفقيرة (على سبيل المثال، C57BL / 6 أو C3HeJ). أمهات فوستر تقبل الجراء من القمامة أخرى إذا ولدت الجراء نقل في غضون أربعة أيام من القمامة الحاضنة الأم الخاصة.
- إنشاء قفص التزاوج منفصل باستخدام ICR أو الإناث FVB إلى جانب مربي التجريبية بحيث مجموعتين من الإناث تسليم في نفس الوقت تقريبا.
- سوف الإناث في تقديم 19 ± 1 يوما من تاريخ قابس، اعتمادا على سلالة الخلفية. ثلاثة أيام قبل دelivery (بعد 16 يوما من تاريخ قابس)، ووضع الإناث الحوامل في قفص نظيفة مع مواد التعشيش الطازجة وملجأ مغطى.
- التحقق من وجود الجراء حديثي الولادة مرتين يوميا بدءا 2 أيام قبل تاريخ التسليم المتوقع (بعد 17 يوما من تاريخ قابس). دراسة القفص مع الحد الأدنى من الإجهاد للأمهات من قبل الطفولية من خلال الجزء السفلي من وجود حديثي الولادة الوردي. الفئران تقديم الجراء عموما في الصباح ولكن في مناسبات نادرة سيلقي في الظهر.
- تخطط لإجراء الحقن في أقرب وقت الجراء والتمريض (الذي سيكون واضحا من خلال بقع الحليب مرئية)، أو في غضون 6 ساعة من الولادة، أيهما يأتي أولا.
2. إعداد المعدات اللازمة لحقن
- إعداد حقن حقنة 10 ميكرولتر مع إبرة 32 G للولدان P0 العامة. إذا كان أداء حقن التجسيمي، جبل المحقنة إلى الذراع مناور.
- إذا باستخدام إطار التجسيمي للحقن، تبريد مرحلة حديثي الولادة إلى 4-8 درجة مئوية بإضافة 100٪ إيثان رأ والثلج الجاف إلى الخزان في الواجهة الأمامية للكتلة. الحفاظ على درجة حرارة أعلى من 1 ° C لتجنب قضمة الصقيع من الجراء.
3. إعداد التخفيفات الفيروسية للحقن
- إعداد 1٪ حل التريبان صبغة زرقاء (20x والأسهم).
- إعداد 5-25 مكل من الفيروسات (AAV) الأسهم الغدة المرتبطة داخل مجلس الوزراء من الدرجة 2 السلامة الأحيائية. ضع هذه aliquots في -80 درجة مئوية لاستخدامها في المستقبل. تجنب دورات إضافية تجميد ذوبان الجليد ويسبب هذا الفيروس لانقاص فعالية ترنسدوكأيشن.
- إزالة قسامة من AAV من -80 ° C الفريزر ومكان على الجليد لذوبان الجليد.
- إعداد الحل الفيروسي للحقن عن طريق تمييع الفيروس في المالحة الجليد الباردة 1X الفوسفات مخزنة (PBS). تبدأ مع التخفيف التسلسلي عشرة أضعاف (10 أكتوبر - 10 أغسطس الجسيمات الفيروسية / نصف الكرة الأرضية) لتعظيم الاستفادة الأولي لنمط ترنسدوكأيشن.
- إضافة 20x والأزرق التريبان في حل AAV إلى تركيز النهائي من 0.05٪.
الطبقة = "jove_title"> 4. تنظيم الجراء الوليد للحقن
- وضع لوحة الألومنيوم صغيرة على الجليد لتبرد. وضع مهمة الجافة مسح على رأس لوحة لحماية الجلد الجرو من المعدن البارد. هذا بمثابة سطح بارد شقة للالتخدير وحقن الجراء.
- إعداد لوحة الاحترار مناسبة لحفظ الفئران حديثي الولادة دافئة قبل وبعد الحقن.
- بمجرد أن تبدأ الجراء حديثي الولادة إلى ممرضة، وإزالة ما يقرب من نصف منهم من القفص وترك النصف الآخر مع والدتهما. وضع الجراء التي تم جمعها على لوحة ظاهرة الاحتباس بانتظار الحقن.
ملاحظة: إذا لم تهتم الأم البيولوجية لالجراء، وإزالة القمامة بالكامل من القفص فورا ووضع الجراء على لوحة ظاهرة الاحتباس انتظار الحقن. وقد تنشأ هذه الحالة مع القمامة أول ولد لC57BL / 6 الإناث أو مع السلالات الفطرية الأخرى التي لها خصائص تربية الفقيرة. في هذه الحالة، سوف بقع الحليب لا تكون مرئية على الجراء حديثي الولادة. - نقل الجرو واحد من لوحة الاحترار على لوحة معدنية الباردة للحث على التخدير انخفاض حرارة الجسم. الانتظار 2-3 دقائق لالجرو لتصبح تخدير كامل. تأكيد التخدير عن طريق الضغط بلطف جدا مخلب ورصد لقلة الحركة أو التنفس.
5. حقن AAV في الفئران حديثي الولادة
- يد خالية من الحقن داخل الجمجمة في الفئران حديثي الولادة AAV:
- تحميل 5 ميكرولتر من AAV المخفف مع 0.05٪ التريبان الأزرق في حقنة الحقن.
- قم بمسح رأس الجرو تخدير مع مسحة القطن غارقة في الايثانول 70٪.
- تحديد مواقع الحقن في 2/5 المسافة من خياطة امدا إلى كل عين. يقع موقع بديل حقن حوالي 0.8-1 ملم الوحشي من الدرز السهمي، في منتصف الطريق بين امدا bregma و. هذه المعالم واضحة من خلال الجلد في P0.
- بمناسبة موقع الحقن بالقلم المختبر غير سامة.
- عقد المحقنة مع مقياس موني مرئيةtoring حجم حل الاستغناء.
- تأكد من أن الإبهام يمكن أن تصل إلى أعلى المكبس. ثم إزالة الإبهام من المكبس في حين تحديد المواقع الإبرة لتجنب الاستغناء قصد الفيروس.
- إيجاد وضع مريح ليستعدوا الذراع للحقن عن طريق وضع الكوع على مقاعد البدلاء ويميل الذراع على دلو الجليد.
- وضع الجرو على جانبها مع رئيسها مباشرة تحت حقنة. تحويل رأس الجرو بحيث يواجه موقع الحقن ملحوظ يصل، ولكن بلطف اعتقادا راسخا هذا الموقف مع يد مفتوحة.
- عقد حقنة عمودي على سطح الجمجمة وادخال الإبرة في موقع الحقن ملحوظ على عمق حوالي 3 ملم. حقن الإبرة حتى يقلل من مقاومة طفيفة، مشيرا إلى أن الإبرة قد توغلت إلى البطين الجانبي. إذا كانت هناك حاجة إشارة، علامة 3 ملم من غيض من الإبرة مع صانع غير سامة. ضبط عمق الحقن لحجم الجرو والضغط على أساس صبغ رargeting من البطينين.
- عقد المحقنة بشكل صارم بحيث المكبس يمكن أن يكون الاكتئاب دون تحريك الإبرة كلما أوغلنا في الدماغ. إذا تم حقن النازحين في المهاد، وانتشار فيروسي ستكون محدودة للغاية.
- تبدأ ببطء حقن الفيروس في حين رصد حجم الاستغناء عن حقنة. إدارة حجم أقصى من 2 ميكرولتر في كل بطين. إذا كانت الإبرة في الموضع الصحيح، سوف تنتشر الصبغة لملء البطين.
- سحب ببطء الإبرة.
- يسمح موقع الحقن الأول ليغلق قبل حقن نصف الكرة الأرضية الأخرى.
ملاحظة: لا يحقن نفس الموقع أكثر من مرة. إعادة إدراج فيروس القوات إبرة الذي سبق أن حقن ليتسرب ويسبب إصابة أو وفاة الجرو. - ضخ البطين المقابل باستخدام نفس الإجراء.
- حقن التجسيمي من AAV في الفئران حديثي الولادة:
- تحميل 5 ميكرولتر من AAV المخفف مع 0.05٪ كثافة العمليات أزرق التريبانس حقن الحقنة التي عقدها تتلاعب التجسيمي.
- ضع بلطف رأس الجرو بين القضبان الأذن من الإطار حديثي الولادة. تأكد من أن الرأس هو مستوى في المحور Y (الأمام إلى الخلف) من خلال التحقق من أن الخط الفاصل بين bregma امدا وموازية للمرحلة. تأكد من أن الرأس هو مستوى في محور X (جنبا إلى جنب) عن طريق فحص أن يتصور خط بين الأذنين، أو خط بين العينين، موازية للمرحلة.
- قم بمسح رأس الجرو تخدير مع مسحة القطن غارقة في الايثانول 70٪.
- استخدام تتلاعب التجسيمي لوضع حقنة فوق امدا ثم الصفر X و Y إحداثيات. نقل الأسلحة إلى التجسيمي (X، Y) = (0.8، 1.5) ملم لالجراء P0 القياسية.
ملاحظة: حجم الجرو والإحداثيات التجسيمي قد تختلف من سلالة والعمر. ضبط الإحداثيات بناء على حقن صبغة حسب الحاجة لاستهداف البطينات الجانبية. - خفض ببطء الإبرة في موقع الحقن. سوف سطح الجمجمة INDالأنف والحنجرة ثم حرر بمجرد اختراق الإبرة الجلد. سحب الإبرة حتى يسترد الجمجمة شكل مقعر العادي، ولكن الحفاظ على شطبة من الإبرة تحت الجلد. الصفر وZ تنسيق في هذه المرحلة.
- ادخال الإبرة حتى Z = -1.7 ملم ثم تتراجع إلى -1.5 ملم.
- حقن ببطء الفيروس. يمكن لكل نصف الكرة يقبل تصل إلى 2 ميكرولتر من الحل.
- الحفاظ على حقنة في مكان لمدة 30-60 ثانية بعد الانتهاء من الحقن ومن ثم سحب الإبرة ببطء على مدى 1-2 دقيقة.
- تكرار لنصف الكرة الأرضية المقابل، باستخدام الإحداثيات السلبية في المحور السيني للموقع الحقن.
ملاحظة: إحداثيات بديلة للحقن هي (X، Y، Z) = (0.8، 2.0، -1.5) ملم و (1.2، 1.0، -1.5) ملم. إجراء الحقن الأولى في (0.8، 2.0)، ثم الانتقال إلى (0.8 -2.0)، (1.2، 1.0) وأخيرا (1.2 -1.0). حقن 1 ميكرولتر من الحل في كل موقع، ليصبح المجموع 2 ميكرولتر في نصف الكرة الغربي. التحرك بسرعة بين الحقن لاستكمال الإجراء في ليهق من 10 دقيقة.
6. بعد حقن العناية
- بعد الانتهاء من الحقن في نصفي الكرة الأرضية، ضع الجرو مرة أخرى على لوحة ظاهرة الاحتباس حتى في درجة حرارة الجسم والجلد عودة اللون إلى وضعها الطبيعي ويبدأ الجرو للتحرك.
- إذا باستخدام الأم البيولوجية لممرضة حديثي الولادة حقن، والعودة الجراء حقن للأم البيولوجية بعد أن استعادة الحركة الطبيعية. وضع الجراء uninjected المتبقية على لوحة الاحترار. كرر الإجراء حتى تم حقن جميع الفئران.
- في حالة استخدام حاضنة لأمي ممرضة حديثي الولادة حقن، نقل جميع الجراء حقنه إلى الحاضنة الأم للحصول على الرعاية بعد أن استعادة الحركة الطبيعية.
- إزالة معظم أو كل من الجراء التي تنتمي إلى الحاضنة الأم من القفص لضمان نجاح حقن الحيوانات.
- إذا الجراء الحاضنة الأم وحقن الجراء لها نفس العين ولون البشرة، وبمناسبة الجراء من الحاضنة الأم بالقلم المختبر حتى أنها يمكن أن تكونتتميز لاحقا.
- وضع الجراء الحاضنة الأم وبعض الفراش معا مع الجراء حقن. تأكد من أن الجراء حقن تكتسب رائحة ذرية البيولوجي لها لتحسين قبول الجراء جديدة.
- مكان إلا الجراء حقنه مرة أخرى في قفص الحاضنة الأم. اعدام أي الجراء المتبقية من الأم الحاضنة.
- ضمان أن الأم يحضر لوالتمريض الجراء حقنه في غضون 10 دقيقة من وضعها في قفص. إذا لم الأم جمع الجراء في هذا الوقت، نقل الجراء إلى الحاضنة أم أخرى.
- تسمية القفص مع بطاقة اقية لإظهار أنه يحتوي على الحيوانات المحقونة فيروسي. بيت القفص في منطقة افق لمدة 72 ساعة.
- بعد فترة الحجر 72 ساعة، ونقل الأم والجراء (ولكن لا الفراش أو عناصر أخرى القفص) إلى قفص نظيفة. إجراء هذا التحويل داخل المستوى لمجلس الوزراء للسلامة الأحيائية 2 لتجنب التعرض لأية الفراش الملوثة فيروسي. Return القفص نظيفة مع الحيوانات المحقونة إلى مرفق الماوس العادية.
- وضع القفص القذرة في حقيبة واقية، تعقيم بواسطة التعقيم، ومن ثم العودة القفص إلى الحظيرة.
7. تنظيف
- وضع حل الفيروس المتبقية في 4 درجات مئوية لاستخدامها في المستقبل. يحتفظ الفيروس كفاءة ترنسدوكأيشن لا يقل عن 2 أشهر عند تخزينها في 4 درجات مئوية 8.
- تطهير إبرة الحقن والمحاقن مع 2٪ التبييض يليه يشطف المتكررة في الماء منزوع الأيونات.
- تنظيف المنطقة العمل مع 2٪ التبييض تليها الايثانول 70٪.
- جمع كل السلع الاستهلاكية بما في ذلك نصائح ماصة، وأنابيب، وقناع، وقفازات واقية في كيس من البلاستيك. التخلص من النفايات كما هو مطلوب بموجب القانون المحلي والسياسات المؤسسية (أي الأوتوكلاف أو حرقها).
8. إعداد أدمغة فئران للتصوير
- وضع الماوس حقن ثاني أكسيد الكربون في القتل الرحيم في غرفة 3-4 أسابيع بعد الحقن. اتباع المبادئ التوجيهية المؤسسية لإجراءات القتل الرحيم المناسبة. لا يروي الحيوانات مع بارافورمالدهيد حيث سيؤدي ذلك إلى إخماد التسمية مضان.
- إزالة العقول كلها من الجمجمة وإصلاح ل3-12 ساعة في بارافورمالدهيد 4٪ في برنامج تلفزيوني في 4 درجات مئوية.
- نقل الدماغ الثابتة إلى 30٪ سكروز لcryoprotection. احتضان عند 4 درجات مئوية حتى يغرق الدماغ إلى أسفل.
- جمع دلو من الجليد الجاف سحقا ناعما. قطع المخ في نصف أسفل خط الوسط. دفن نصفي الدماغ في الجليد الجاف لتجميد.
- تبريد مرحلة مشراح بإضافة الثلج الجاف والإيثانول بنسبة 100٪.
- تأمين الدماغ إلى مرحلة مع خط الوسط أسفل باستخدام برنامج تلفزيوني، والسماح لتجميد.
- القسم من خلال الدماغ في 30-45 ميكرون سمك باستخدام مشراح للانزلاق التجمد.
- أقسام المكان الى 24 لوحات تحتوي كذلك حل التجمد (الجلسرين 250 مل، 300 مل جلايكول الإثيلين، 500 مل 0.1 م العازلة الفوسفات، ودرجة الحموضة 7.4). بطانات وايال احباط القصدير وتخزينها في -20 درجة مئوية لاستخدامها في المستقبل.
- جمع الأجزاء 1-4 الآبار وغسل 3X في برنامج تلفزيوني.
- جبل المقاطع على الشرائح المجهر وساترة. تسمح الشرائح لتجف في مكان مظلم.
- الشرائح الصورة باستخدام الفلاتر المناسبة لYFP الأصلي أو tdTomato للتحقق من نمط التنبيغ الفيروس.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
النتائج
عائدات حقن ناجحة الفيروسي داخل البطين على نطاق واسع وقوي التعبير العصبية. نحن هنا تقييم تنبيغ الفيروسية باستخدام YFP أو tdTomato الجينات الفلورية تحت سيطرة بيتا الدجاج الأكتين المروج (CBA المروج). تم تعبئتها هذه التركيبات في AAV8 وحقنه في البطينات الجانبية من الفئران حديثي الولادة (P0) ICR. أسفرت التتر الفيروسية عالية (10 10 جزيئات في نصف الكرة الأرضية) في وضع العلامات كثيفة من البصلة الشمية، المخطط، قشرة المخ، المخيخ والحصين (الشكل 1A، يسار). كان وضع ا...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المناقشة
وصفناها إجراء تنوعا لمعالجة الخلايا العصبية التعبير الجيني باستخدام AAV كوسيلة للتسليم على نطاق واسع في مخ الفأر حديثي الولادة. بالمقارنة مع غيرها من أساليب نقل الجينات العصبية مثل في الرحم Electroporation لل1 أو التجسيمي الحقن داخل الجمجمة 2،3، حقن الفيروسي حديثي الولادة سهلة نسبيا وبسيطة. لا يمكن أن يؤديها الإجراء الأساسي في دقائق فقط مع دلو الجليد وحقنة ميكروليتر. بقاء الأمثل والتحوير التعبير يمكن أن يتحقق من خلال حضور لبعض التفاصيل التقنية، وأهمها نوعية ا...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
الإفصاحات
الكتاب تعلن أنه ليس لديهم المصالح المالية المتنافسة.
شكر وتقدير
تم دعم هذا البحث من قبل مؤسسة عائلة روبرت أ. ورينيه إي بيلفر ، و NIA R21 AG038856 (JLJ) ، و A2010097 منحة أبحاث مرض الزهايمر لمؤسسة BrightFocus Foundation (JLJ) ، ومنحة NIA لبيولوجيا التدريب على الشيخوخة T32 AG000183 (دعم أهداف التنمية المستدامة).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| الفئران المتناثرة ICR | Harlan | Hsd: ICR (CD-1) | تعرف هذه السلالة أيضا باسم |
| الفئران الفطرية CD-1 FVB | مختبر جاكسون | 1800 | 5-6 أسابيع من |
| العمر Nestlets | Lab Supply | NESTLETS | |
| Shepherd shacks | Lab Supply | SS-mouse | |
| chow القوارض عالية الدهون | Purina Mills | PicoLab Mouse Diet 20 ، # 5058 | هذا هو مربي القياسية لدينا تشاو |
| القوارض عالية الدهون (بديل) | مختبرات هارلان | تيكلاد جلوبال 19٪ بروتين القوارض #2019S | إذا كان هناك حاجة إلى نظام غذائي قابل للتعقيم |
| حقنة | هاميلتون | 7653-01 | 10 مل حقنة |
| إبر حقن هاميلتون | 7803-04 ، RN 6PK PT4 ، 0.375 " | 32 جم ، لحقن P0 القياسية | |
| لوحة معدنية ل التخدير بالتبريد | McMaster Carr | 8975K439 | صفيحة الألمنيوم الخام ، 6 × 12 بوصة ، 0.25 بوصة ، ستحتاج إلى تقطيعها إلى 3 قطع وحواف متساوية من قبل متجر الآلات المحلي |
| جهاز تجسيمي للحيوانات الصغيرة مع قراءة رقمية | David Kopf Instruments | Model 940 | |
| حامل حقنة عالمي مع قدم دعم إبرة | David Kopf Instruments | موديل 1772-F1 | |
| إطار حديثي الولادة | Stoelting | 51625 | يطلق عليه رسميا محول الفأر والفئران حديثي الولادة |
| أكياس التخلص من المخاطر البيولوجية مع مؤشر معقم | VWR | 14220-030 | هام! – تحقق مع الموظفين البيطريين المحليين والسلامة البيئية لمعرفة معهدك" بروتوكول S للتخلص من النفايات البيولوجية |
المراجع
- De Vry, J., et al. In vivo electroporation of the central nervous system: a non-viral approach for targeted gene delivery. Progress in neurobiology. 92, 227-244 (2010).
- Sun, B., Gan, L. Manipulation of gene expression in the central nervous system with lentiviral vectors. Methods Mol Biol. 670, 155-168 (2011).
- Puntel, M., et al. Gene transfer into rat brain using adenoviral vectors. Curr Protoc Neurosci. 4, (2010).
- Passini, M. A., Wolfe, J. H. Widespread gene delivery and structure-specific patterns of expression in the brain after intraventricular injections of neonatal mice with an adeno-associated virus vector. J Virol. 75, 12382-12392 (2001).
- Passini, M. A., et al. Intraventricular brain injection of adeno-associated virus type 1 (AAV1) in neonatal mice results in complementary patterns of neuronal transduction to AAV2 and total long-term correction of storage lesions in the brains of beta-glucuronidase-deficient mice. J Virol. 77, 7034-7040 (2003).
- Kim, J. Y., et al. Viral transduction of the neonatal brain delivers controllable genetic mosaicism for visualising and manipulating neuronal circuits in vivo. Eur J Neurosci. 37, 1203-1220 (2013).
- Chakrabarty, P., et al. Capsid serotype and timing of injection determines AAV transduction in the neonatal mice brain. PloS one. 8, (2013).
- Croyle, M. A., Cheng, X., Wilson, J. M. Development of formulations that enhance physical stability of viral vectors for gene therapy. Gene therapy. 8, 1281-1290 (2001).
- Bauer, H. C., Bauer, H. Neural induction of the blood-brain barrier: still an enigma. Cellular and molecular neurobiology. 20, 13-28 (2000).
- Cearley, C. N., et al. Expanded repertoire of AAV vector serotypes mediate unique patterns of transduction in mouse brain. Molecular therapy : the journal of the American Society of Gene Therapy. 16, 1710-1718 (2008).
- Grimm, D., et al. In vitro and in vivo gene therapy vector evolution via multispecies interbreeding and retargeting of adeno-associated viruses. J Virol. 82, 5887-5911 (2008).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
إعادة الطباعة والأذونات
