مقالة منهجية

A هيدروجيل بناء والليفين المستندة الغراء النهج لتسليم التداوي في الفئران احتشاء عضلة القلب النموذجي.

8.3K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/52562

⸱

يونيو 14, 2015

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Bioengineering, University of Illinois at Urbana-Champaign

في هذه المقالة

ملخص

يهدف هذا البروتوكول إلى التخفيف من قيود نقش الخلايا الضعيفة لعلاج الخلايا الجذعية لاحتشاء عضلة القلب من خلال استخدام نظام هيدروجيل وغراء قائم على الفيبرين. باستخدام هذا النهج ، يمكن الحفاظ على التلامس بين الخلايا والأنسجة بعد الاحتشاء ، مما يزيد من الإمكانات العلاجية للعوامل المفيدة في موقع الإصابة.

الملخص

نموذج MI الفئران معترف به على نطاق واسع في مجال أمراض القلب والأوعية الدموية ، وقد تم استخدامه باستمرار كخطوة أولى لاختبار فعالية العلاجات في الجسم الحي1. تم ضبط البروتوكول التقليدي المعمول به لتقليل الضرر الذي يلحق بالحيوان. والجدير بالذكر أن طبقات العضلات الصدرية يتم إزعاجها بدلا من قطعها ببساطة ، ويتم الاقتراب من بضع الصدر بين الوربية بدلا من كسر الأضلاع في بضع القص ، مما يحافظ على سلامة القفص الصدري. مع هذه التغييرات ، ينخفض الضغط الكلي على.

أظهرت علاجات الخلايا الجذعية التي تهدف إلى التخفيف من الضرر الناجم عن MIs نتائج واعدة على مر السنين لفوائدها المؤيدة لتولد الأوعية الدموية ومضادة لموت الخلايا المبرمج. عادة ما تتضمن الأساليب الحالية لتوصيل الخلايا إلى سطح القلب حقن الخلايا إما بالقرب من الموقع التالف أو داخل الشريان التاجي أو في مجرى الدم المحيطي2-4. في حين أن الخلايا أثبتت أنها موطن لعضلة القلب التالفة ، فإن الوظيفة محدودة بسبب ضعف تطعيمها في موقع الإصابة ، مما يؤدي إلى الانتشار في مجرى الدم5. تسلط هذه المخطوطة الضوء على إجراء يتغلب على هذه العقبة باستخدام رقعة هيدروجيل مغلفة بالخلايا. يتم تصنيع الرقعة قبل الإجراء الجراحي وتوضع على عضلة القلب المصابة مباشرة بعد انسداد الشريان التاجي الأيسر. للصق الرقعة في مكانها ، يتم وضع غراء الفيبرين الخارجي المتوافق حيويا مباشرة فوق الرقعة ، مما يسمح لها بالجفاف على كل من الرقعة وسطح القلب. يوفر هذا النهج طريقة التصاق جديدة لتطبيق بنية علاجية دقيقة تغلف الخلايا.

المقدمة

ويعرف احتشاء عضلة القلب (MI)، وانقطاع الدم إلى منطقة القلب الناجمة عن انسداد في الشريان التاجي الرئيسي. الأضرار الناجمة عن MI ويرجع ذلك إلى إعادة تشكيل أنسجة القلب قابلة للحياة إلى ندبا غير وظيفية، مما يقلل من قدرة القلب، أو بشكل أكثر تحديدا، البطين الأيسر، للفوز بشكل صحيح. هذا يؤدي إلى انخفاض في حجم الدم التي يمكن تسليمها للجسم مع كل نبضة قلب، والمعروفة باسم حجم المخ، ونسبة الدم التي يتم ضخها من القلب مع كل نبضة قلب، والمعروفة باسم جزء طرد 6. هذه، جنبا إلى جنب مع وظائف تضاءلت أخرى، ويزيد من الضغط على بقية من القلب للحفاظ على وظيفة مناسبة. في كثير من الأحيان، يمكن أن هذه السلالة زيادة تصبح شديدة بحيث يؤدي إلى نوبة قلبية ثانية، وهي ظاهرة ينظر في ما يقرب من 10٪ من الأفراد (7).

بينما تطورت الممارسات الطبية لعلاجوفور وقوع MI، وقد تم تطوير تقنية لوقف أي، بطيئة، أو عكس الآثار الجانبية السلبية لإعادة تشكيل الأنسجة. لم تثبت الجذعية ظهرت علاجات الخلايا باعتبارها السبل الممكنة لمثل هذا العلاج، ولكن، على الرغم من إمكانياتها الواعدة، والخلايا الجذعية بنجاح في إعداد سريرية. نظرية واحدة لأوجه القصور فيها هي عدم القدرة على ضمان بقاء الخلايا مفيدة في موقع احتشاء طويلة بما يكفي لتوليد نتائج إيجابية 5. وقد تبين أن ما لا يزيد عن 24٪ من الخلايا التي يتم حقنها ببساطة إلى موقع احتشاء نجت وبقيت في تلف الموقع 1 يوم بعد الولادة 2. وهناك احتمال ممكن لمعالجة هذه القضية من الاحتفاظ الخلية هو تطوير أنظمة هيدروجيل حيويا التي تغلف إما خلايا أو العلاجات التي يمكن تسليمها إلى الموقع المتضرر. هيدروجيل الاختيار في هذا البروتوكول هو بولي (جلايكول الإثيلين) dimethacrylate بسبب الاستخدام السابق في تغليف الخلايا العلاقات العامةocedures، ومع ذلك، أي هيدروجيل قادرة على التغليف ويمكن استخدام 8. تسليم التصحيح مباشرة إلى موقع الإصابة يضمن اتصال الخلية الى النسيج على مدار فترة طويلة من الزمن، مما يزيد من طول الوقت الذي يمكن لخلايا توفر عوامل مفيدة لعضلة القلب الأساسي.

A عنق الزجاجة لنهج التصحيح هو صعوبة الالتزام التصحيح إلى سطح القلب. والتغلب على العديد من المجموعات ذلك من خلال مجموعة متنوعة من التقنيات، والأكثر انتشارا كونه خياطة بسيطة لربط بناء على سطح القلب 9،10. وقد ثبت هذا النجاح في عدد من الحالات التي يتم فيها بناء من مادة أشد، ولكن فشل عندما حاول على نظام هيدروجيل، نظرا لتركيز كميات كبيرة من المياه والطبيعة الحساسة للبناء التصحيح. للتغلب على هذا، ونحن قد تستخدم لالفيبرين الغراء نظام لاصق الخارجي الذي يحاكي كيمياء تشكيل الجلطة. وقد استخدمت الليفين الغراء في العديد من العمليات الجراحية الطبية، المؤتمر الوطني العراقيluding الدموع الجافية، الناسور الشعب الهوائية، وزراعة القرنية، وتسليط الضوء على توافق مع الحياة للمنتج وتسرب الجرح 11-13. بالإضافة إلى ذلك، تم استخدام الفيبرين لمجموعة متنوعة من الأغراض القلب، بما في ذلك العلاج الجراحي للتمزق البطين الأيسر والشريان التاجي جراحات الشريان الالتفافية، ومع ذلك، واستخدامه بمثابة الغراء التصاق لرقعة القلب لا يستخدم عادة 14-17. A صياغة بسيطة من الثرومبين والفيبرينوجين النتائج في الغراء حيويا التي يمكن وضعها مباشرة على السطح الخارجي للرقعة القلب الخارجي، وتوفير نظام التصاق قابل للتطبيق لضمان التصحيح لتفاعل القلب.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

الإجراء هو في التوافق التام مع بروتوكول IACUC عدد 13302 وتمت الموافقة من قبل تقسيم الثروة الحيوانية.

1. أداة إعداد

  1. الأوتوكلاف جميع الصكوك غير القابل للتصرف الذي كان يستخدم قبل العملية الجراحية لضمان العقم.
  2. تعقيم الأدوات المستخدمة عدة مرات في جلسة للتعقيم الزجاج حبة بين الاستخدامات.

2. إعداد هيدروجيل

  1. ذوبان الجليد والخلايا الجذعية لوحة لا تقل عن 24 ساعة قبل إنشاء بناء هيدروجيل.
  2. إعداد بقع يوم واحد قبل إجراء العمليات الجراحية باستخدام جهاز المجسمة (أو أداة مماثلة) التي وصفت بالتفصيل الكامل في المنشورات السابقة 8،18.
  3. لإنشاء هيدروجيل، أولا إنشاء التصميم بمساعدة الكمبيوتر (CAD) نموذج من التصحيح المطلوب وتصدير تصميم لشكل المجسم (STL).
  4. إيجاد حل قبل هلام التي كتبها dissolvinز بولي (جلايكول الإثيلين) dimethacrylate (PEGDMA) في العقيمة برنامج تلفزيوني 1X للحصول على 20٪ ث / ت حل. وفي الوقت نفسه، حل photoinitiator 1- [4- (ethoxy 2-هيدروكسي) -phenyl] -2-هيدروكسي-2-ميثيل-1-البروبان-1-واحد في DMSO. إضافة photoinitiator إلى حل PEGDMA في نهائي ث / ت من 0.5٪. مباشرة قبل يشابك، إضافة 100 مل من كثافة المطلوب من الخلايا. ملاحظة: A كثافة الخلايا بين 2.0 × 10 5 -2.0 × 10 6 خلية / مل يوصى.
  5. ماصة الحل قبل هلام في طبق في وسط المنصة جيش تحرير السودان وتشغيل البرنامج جيش تحرير السودان مع المحكمة الخاصة بلبنان تنسيق التصميم التي تم تحميلها سابقا.
  6. إزالة البقع من الجهاز واحتضان الهلاميات المائية O / N في تعديل متوسطة النسر Dulbecco و(DMEM) تستكمل مع المصل 5٪ بقري جنيني (FBS)، و 100 U / البنسلين مل، و 100 ملغ / مل الستربتومايسين للسماح للخلايا لضبط على البيئة في التصحيح.

3. إعداد الحيوانية وintubati عن طريق الفمعلى

  1. تقييم كل فأر قبل الإجراء للتأكد من أن الحيوان هو في صحة جيدة، كما هو محدد من عادات النظافة الشخصية والتفاعل مع زملائه في قفص. ملاحظة: استخدمت أنثى 8-10 أسبوع من العمر C57BL / 6J الفئران لهذا الإجراء، ومع ذلك، أي سن الماوس أو نوع يمكن استخدامها.
  2. وضع الحيوانات في دائرة التخدير وفضح إلى 5٪ isofluorane مع 1 لتر / دقيقة O 2 الدعم. رصد مستوى التخدير من قرصة أخمص قدميه لا ارادي.
  3. مرة واحدة يتم تخدير الحيوان بشكل صحيح، تزن ووضعها على الوقوف التنبيب.
  4. توجيه مصدر الضوء نحو تجويف الصدر الحيوان واستخدام الملقط لسحب سطح الحنجرة وفضح الحبال الصوتية. توجيه بعناية 20 G angiocath بين الحبال الصوتية، وإدراج بسلاسة في القصبة الهوائية. الكشف عن الإدراج الصحيح من قبل حركة ميكانيكية من تجويف الصدر بمجرد توصيل القسطرة إلى التنفس الصناعي الحيوانات الصغيرة.
  5. ضبط إعدادات التهوية إلى thه وزن الحيوان استنادا إلى المبادئ التوجيهية للشركة المصنعة.
  6. مرة واحدة مدخل أنبوب، ووضع الحيوان في موقف ضعيف على وسادة التدفئة لمنع انخفاض حرارة الجسم. تأكد من أن لوحة التدفئة لا تتجاوز 40 درجة مئوية. إذا لزم الأمر، ووضع حاجز بين الحيوان وسادة التدفئة لتقليل فرصة الحروق.
  7. إزالة الشعر من موقع الجراحية من خلال استخدام كريم مزيل الشعر. تعقيم الموقع من قبل 3 الدعك بالتناوب من betadine و 75٪ من الإيثانول لضمان التعقيم السليم. وضع الستارة لفضح مجرد موقع الجراحية، ووضع مرهم التعليم والتدريب المهني على العيون لمنع جفاف أثناء العملية.

4. إجراء العمليات الجراحية

  1. يتم تنفيذ بضع الصدر على الجانب الأيسر من الحيوان، وبالتالي، وجعل شق الجلد حوالي 1 سم إلى يسار عظمة القص، الذي يمتد على طول القص.
  2. استخدام ملقط لفصل الطبقة العضلية من القفص الصدري الأساسي في خطوتين. نلاحظ على Deline فيخط أثناء التشغيل الذي يمثل العضلات الصدرية الكبرى للحيوان. رفع هذه العضلة قليلا، تفصلها عن الكامنة في العضلات المائلة الخارجية وسحب إعلامي. ثم، تحرير العضلات المائلة الخارجية من القفص الصدري الأساسي بنفس الطريقة، وسحب أفقيا، وتوفير وجهة نظر غير محجوب من أضلاعه الثاني والثالث، والرابع.
  3. أداء بضع الصدر بين الأضلاع الثالث والرابع. رفع بلطف الضلع الرابع واستخدام cauterizer لفتح تجويف الصدر بين الأضلاع الثالث والرابع. وضع مبعدات لمواصلة فتح تجويف وكشف القلب.
  4. استخدام ملقط لتمزق التامور رقيقة من القلب.
  5. Ligate الشريان التاجي الأيسر مع النايلون خياطة 8-0 حيدة. وضع الخيط حوالي 4 مم من قمة القلب، مباشرة تحت الحافة السفلي من الأذين الأيسر. تحديد موضع خياطة السليم من قبل ابيضاض من عضلة القلب البطيني وزيادة في حجم الأذين الأيسر بعد sutuوقد تم ربط إعادة.

5. تصحيح التنسيب والغراء

  1. الحفاظ بقع عند 37 درجة مئوية و 5٪ CO 2 الشروط حتى الاستخدام.
  2. رفع بلطف التصحيح باستخدام ملعقة مسطحة العضوية ووضعه برفق على سطح القلب، في موقع احتشاء.
    ملاحظة: لمنع الانزلاق البطين الأيسر، ويمكن عقد التصحيح في المكان من خلال الحفاظ على محمل الجد الاتصال باستخدام ملعقة أو غيض من زوج من الملقط.
  3. إعداد الغراء عن طريق خلط نسبة 4: 1 من الفيبرينوجين إلى ثرومبين. مزيج الحل بواسطة pipetting المتكررة حتى يبدأ في رشاقته، عادة في حدود 1 دقيقة بعد بداية الإعداد.
  4. وبمجرد وصول اللزوجة حل على المستوى المطلوب، بسرعة نقل ما يقرب من 10 مل إلى السطح التصحيح. ملاحظة: زمن التخثر من الغراء الليفين سريعا، وتوفير نافذة صغيرة من فرصة لنقل فعالة من الغراء.

6. خياطة

  1. تنفيذ كافة خيوط إغلاق باستخدام 6-0 حيدة النايلون خياطة.
  2. إغلاق طبقة ضلع مع 3-4 خيوط متقطعة الفردية.
  3. قبل الإغلاق الكامل للطبقة بين الضلوع، اضافة الى وجود قنية PE-10 في شق لاخلاء تجويف الصدر بعد إغلاق اكتمال واعادة الضغط داخل الجنبة السليم.
  4. إغلاق عضلات الصدر مع 3-4 خيوط متقطعة الفردية.
  5. ختم طبقة الجلد مع خياطة مستمرة.
  6. بعد اغلاق تام، ونعلق حقنة 1.0 مل إلى نهاية قنية واستخدامها لاخلاء تجويف الصدر.
  7. تطبيق لاصق الأنسجة لموقع شق لتعزيز موقع خياطة.

7. علاج ما بعد الجراحة

  1. إعطاء الفئران حقن البوبرينورفين (0،05 حتي 1،0 ملغ / كلغ) وكاربروفين (2.2 ملغ / كلغ) تحت الجلد مباشرة بعد ربط الشريان التاجي والأقل 20 دقيقة قبل إحياء. إدارة كل من المخدرات 08/06 ساعة بعد الجراحة، ومن ثم إعطاء مرتين يوميا لمدة تصل إلى ثلاثة أيام للسيطرة على الألم والضيق.
  2. باستمرار مراقبة الحيوانات حتى ساعة واعية وكل لأول 4 ساعات بعد الجراحة. إجراء فحص ثان ليلة الجراحة (لاحقا 04/02 ساعة) لإدارة جرعة ثانية من مسكن.
  3. مراقبة الحيوانات يوميا بعد اليوم الثاني بعد العملية، حتى تظهر الحيوانات مستقرة.

تحليل 8. من وظيفة القلب والأنسجة

  1. أداء echocardiographs على الفئران 4 أسابيع بعد إجراء لتحديد مدى الضرر بعد MI.
  2. تخدير الفئران مع 4-5٪ الأيزوفلورين داخل غرفة التخدير لتحريض التخدير استنشاق، ومن ثم 2٪ الأيزوفلورين عبر قناع الوجه للتخدير الصيانة.
  3. تطهير المنطقة التصوير مع كريم مزيل الشعر واستخدام الموجات فوق الصوتية حيوان صغير للحصول على 2D M-وضع تخطيط صدى القلب فحص القلب النابض وتسجيل المعلمات أسو الوظيفيciated معها.
  4. الموت ببطء الفئران في غرفة غاز ثاني أكسيد الكربون، ثم جمع قلوب من الحيوانات وضعها في محلول الفورمالين 10٪ لمدة 24 ساعة. بعد 24 ساعة، ونقل القلوب إلى 70٪ من الإيثانول والحفاظ على 4 درجات مئوية حتى معالجة الأنسجة.
  5. معالجة قلوب وتضمينها في كتل البارافين.
  6. قطع 5 مم أقسام من خلال المنطقة البطين في القلب، بدءا من قمة وتنتهي في الأذين.
  7. وصمة عار مقطوع شرائح مع كل من ثلاثي الألوان ماسون والهيماتوكسيلين وصمة عار يوزين باستخدام البروتوكولات القياسية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

أثناء إجراء العمليات الجراحية، ربط الشريان التاجي الأيسر يمكن التعرف من خلال وضع علامة ابيضاض المصب من الشريان المغطي. كاختبار قبل ربط العقده، خياطة ويمكن تشديد لفترة وجيزة للتحقق مما إذا كان في المكان المناسب. بالإضافة إلى ذلك، منذ انسداد الشريان النتائج إلى انخفاض فوري تقريبا في قدرة الأذين الأيسر للفوز بشكل صحيح، فإن الأذين الأيسر تكبير ردا على ارتجاع الدم في النظام.

قياسات تخطيط صدى القلب M-وضع اتخذت في وقت م...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

مع هذا النهج إلى نموذج MI الفئران، وقد وضعنا نظاما يقلل من الأضرار التي لحقت المناطق غير عضلة القلب التي ترتبط مع تقنيات MI الفئران الأخرى. وتشمل هذه المناطق الضرر الذي يسببه القصبة الهوائية، وقطع من الطبقة العضلية، وكسر أضلاعه لفضح تجويف الصدر. ونحن نعتقد أن هذه التغييرات تحسين الشاملة وذلك بفضل نتائج العمليات الجراحية إلى الحرص للحفاظ على أكبر ق...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يعلن المؤلفون أنه ليس لديهم مصالح مالية متنافسة.

شكر وتقدير

وقد تم تمويل هذا العمل من قبل الجيش الأمريكي غرانت (W81XWH-08-1-0701) وعلى زمالة من مستشفى مؤسسة كارل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
هارفارد موديل 687 جهاز التنفس الصناعي للفأرهارفارد55-0001
Inintech Biosciences LLC معقم حبة زجاجية جافةفيشر ساينتفيكNC9531961
لايكا MZ6 مجهر جراحيليكا
الكيالجوزاء5917
ملقط دقيق - 0.4 مم نصائحأدواتالعلوم الدقيقة بزاوية11063-07
ضام أجريكولا - 3.5 سمأدوات العلوم الدقيقة17005-04
مقص زنبركي - شفرات 2.5 مم أدواتالعلوم الدقيقة15000-08
حامل إبرة Castroviejo - مع قفل كربيد التنجستن 14 سمأدوات العلوم الدقيقة12565-14
مقص قزحية - مستقيم رقيق 10.5 سمأدوات العلوم الدقيقة14060-10
8-0 خياطة أحادية الشعيراتEthicon8730P
6-0 خياطة حريريةEthicon639G
ThrombinSigmaT7009
FibrinogenSigmaF3879
لاصق الأنسجة Vetbond3M1469SB
طقم المستقيمة

المراجع

  1. Kolk, M. V., et al. LAD-ligation: a murine model of myocardial infarction. Journal of visualized experiments : JoVE. , (2009).
  2. Li, Y., Yao, Y., Sheng, Z., Yang, Y., Ma, G. Dual-modal tracking of transplanted mesenchymal stem cells after myocardial infarction. International journal of nanomedicine. 6, 815-823 (2011).
  3. Nagaya, N., et al. Intravenous administration of mesenchymal stem cells improves cardiac function in rats with acute myocardial infarction through angiogenesis and myogenesis. American journal of physiology. Heart and circulatory physiology. 287, H2670-H2676 (2004).
  4. Wang, J. S., Shum-Tim, D., Chedrawy, E., Chiu, R. C. The coronary delivery of marrow stromal cells for myocardial regeneration: pathophysiologic and therapeutic implications. The Journal of thoracic and cardiovascular surgery. 122, 699-705 (2001).
  5. Cashman, T. J., Gouon-Evans, V., Costa, K. D. Mesenchymal stem cells for cardiac therapy: practical challenges and potential mechanisms. Stem cell reviews. 9, 254-265 (2013).
  6. Sutton, M. G., Sharpe, N. Left ventricular remodeling after myocardial infarction: pathophysiology and therapy. Circulation. 101, 2981-2988 (2000).
  7. Smolina, K., Wright, F. L., Rayner, M., Goldacre, M. J. Long-term survival and recurrence after acute myocardial infarction in England, 2004 to 2010. Circulation. Cardiovascular quality and outcomes. 5, 532-540 (2012).
  8. Chan, V., Zorlutuna, P., Jeong, J. H., Kong, H., Bashir, R. Three-dimensional photopatterning of hydrogels using stereolithography for long-term cell encapsulation. Lab on a chip. 10, 2062-2070 (2010).
  9. Kai, D., et al. Stem cell-loaded nanofibrous patch promotes the regeneration of infarcted myocardium with functional improvement in rat model. Acta biomaterialia. 10, 2727-2738 (2014).
  10. Serpooshan, V., et al. The effect of bioengineered acellular collagen patch on cardiac remodeling and ventricular function post myocardial infarction. Biomaterials. 34, 9048-9055 (2013).
  11. Cavallo, L. M., Solari, D., Somma, T., Savic, D., Cappabianca, P. The Awake Endoscope-Guided Sealant Technique with Fibrin Glue in the Treatment of Postoperative Cerebrospinal Fluid Leak After Extended Transsphenoidal Surgery: Technical Note. World neurosurgery. , (2013).
  12. Chung, H. W., Mehta, J. S. Fibrin glue for Gundersen flap surgery. Clinical Ophthalmology. 7, 479-484 (2013).
  13. Dunn, C. J., Goa, K. L. Fibrin sealant: a review of its use in surgery and endoscopy. Drugs. 58, 863-886 (1999).
  14. Chi, N. H., et al. Cardiac repair achieved by bone marrow mesenchymal stem cells/silk fibroin/hyaluronic acid patches in a rat of myocardial infarction model. Biomaterials. 33, 5541-5551 (2012).
  15. Erb, M. A., Claus, T., Hartrumpf, M., Bachmann, S., Albes, J. M. The use of Tachosil surgical patch or fibrin glue in coronary artery surgery does not affect quality of anastomosis or provoke postoperative adhesions in pigs. European journal of cardio-thoracic surgery : official journal of the European Association for Cardio-thoracic Surgery. 36, 703-707 (2009).
  16. Okada, K., et al. Surgical treatment for rupture of left ventricular free wall after acute myocardial infarction. Interactive cardiovascular and thoracic surgery. 4, 203-206 (2005).
  17. Simpson, D., Liu, H., Fan, T. H., Nerem, R., Dudley, S. C. A tissue engineering approach to progenitor cell delivery results in significant cell engraftment and improved myocardial remodeling. Stem Cells. 25, 2350-2357 (2007).
  18. Jeong, J. H., et al. Living' microvascular stamp for patterning of functional neovessels; orchestrated control of matrix property and geometry. Advanced Materials. 24, 58-63 (2012).
  19. Wu, X., Ren, J., Li, J. Fibrin glue as the cell-delivery vehicle for mesenchymal stromal cells in regenerative medicine. Cytotherapy. 14, 555-562 (2012).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة