مقالة منهجية

نموذج الأنسجة 3D الرئة الإنسان للدراسات وظيفية على

DOI:

10.3791/53084

أكتوبر 5, 2015

في هذه المقالة

ملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

عدوى السل البشري هي عملية معقدة يصعب نمذجتها في المختبر. نصف هنا نموذجا جديدا لأنسجة الرئة البشرية ثلاثية الأبعاد يلخص الديناميكيات التي تحدث أثناء الإصابة ، بما في ذلك هجرة الخلايا المناعية وتكوين الورم الحبيبي المبكر في بيئة فسيولوجية.

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

السل (TB) لا يزال يحمل خطرا كبيرا على صحة الناس في جميع أنحاء العالم، وهناك حاجة لنماذج فعالة من حيث التكلفة ولكن يمكن الاعتماد عليها لتساعدنا على فهم آليات المرض وتقدم الاكتشافات من خيارات العلاج الجديدة. في المختبر الثقافات خلية من الطبقات الوحيدة أو زملاء الثقافات تفتقر إلى ثلاثية الأبعاد (3D) والبيئة والردود الأنسجة. وهنا، نحن تصف مبتكر في نموذج المختبر من أنسجة الرئة الإنسان، والتي تبشر بالخير لتكون أداة فعالة لدراسة الأحداث المعقدة التي تحدث أثناء الإصابة بمرض السل المتفطرة (M. السل). يتكون نموذج الأنسجة 3D من الخلايا والخلايا الليفية الظهارية الأنسجة محددة، والتي يتم تربيتها في مصفوفة الكولاجين على رأس غشاء مسامي. عند التعرض للهواء، والخلايا الظهارية تطبق وتفرز المخاط في الجانب قمي. عن طريق إدخال الضامة الأولية مع M. الإنسان بالعدوى السل إلى وضع الأنسجةلتر، ونحن قد أظهرت أن الخلايا المناعية تهاجر إلى الأنسجة المصابة وتشكل المراحل المبكرة من الورم الحبيبي السل. هذه الهياكل تلخيص سمة مميزة لمرض السل البشري، الحبيبي، والذي يختلف جذريا أو لم يلاحظ عادة في استخدامها على نطاق واسع النماذج الحيوانية التجريبية. هذه الطريقة ثقافة عضوي النمط يمكن التصور 3D والتحليل الكمي القوي الذي يوفر معلومات مهمة حول الميزات المكانية والزمانية لخلايا المضيف الممرض التفاعلات. معا، ويقدم نموذجا أنسجة الرئة والأنسجة البيئة الصغرى ذات الصلة من الناحية الفسيولوجية للدراسات على مرض السل. وبالتالي، فإن النموذج أنسجة الرئة آثار محتملة على كل الدراسات الميكانيكية والتطبيقية الأساسية. الأهم من ذلك أن النموذج يسمح إضافة أو التلاعب من أنواع الخلايا الفردية، والتي بالتالي يوسع استخدامه لنمذجة مجموعة متنوعة من الأمراض المعدية التي تؤثر على الرئتين.

المقدمة

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

في البشر، والاستجابات للعدوى، والتهاب الأنسجة، والتوظيف الخلوية، وإعادة عرض الأنسجة وتنظيم توازن الأنسجة هي الأحداث المعقدة التي تنطوي على أنواع مختلفة من الخلايا. وبالتالي، فإن هذه العمليات أفضل درس في بيئة النسيج المحلية. سابقا، وقد كان هذا أساسا الممكن استخدام النماذج الحيوانية التجريبية. ومع ذلك، فإن حيوانات التجارب المستخدمة على نطاق واسع عقد العديد من حدود لأنها غالبا ما تستجيب لمسببات الأمراض بطريقة مختلفة من البشر وأيضا عرض مسارا مختلفا من مرض 1. A البشرية في المختبر نموذج أنسجة الرئة يحمل إمكانيات دراسة الاستجابات المناعية محددة في رئة الإنسان.

عدوى السل البشري (TB) هو أساسا مرض يصيب الرئتين. المتفطرة السلية (M. السل)، العامل المسبب للمرض السل، تصل إلى الرئة عن طريق قطرات التي يتم نقلها إلى الفضاء السنخية، حيث اجتاحت البكتيريا عن طريق dendri الرئويةخلايا التشنج والضامة السنخية كجزء من الاستجابة المناعية الفطرية للعدوى 2،3. البلعمة من مسببات المرض يؤدي إلى تجزئة علة ضمن يبلوع ومثالي يؤدي إلى تحييد وقتل العامل الممرض من قبل بلعمية. ما يصل الى 50٪ من الأشخاص الذين تعرضوا لM. ويعتقد أن مرض السل لتكون قادرة على مسح العدوى عن طريق الاستجابة المناعية الفطرية 4. النتائج الأخرى للعدوى هي تطهير من قبل النظام المناعي التكيفي في مرحلة لاحقة، والعدوى كامنة أو في أسوأ الحالات المرض المزمن النشط 5.

في السابق لم تكن هناك نماذج الأنسجة في المختبر للدراسات السل البشري. وكثيرا ما استخدمت الثقافات وحيدة الخلية الضامة الإنسان أو خلايا الدم الطرفية الأخرى 6،7. وعيب هذا النهج هو أنها لا يمكن أن تعكس ديناميكية أنواع مختلفة من الخلايا التي تعمل معا في نسيج الرئة تتعرض لM. مرض السل . وبالتالي، هناك حاجة إلى نموذج في المختبر لتكون قادرة على إجراء دراسات الفنية والميكانيكية على السل. أنشئت في المختبر نموذج أنسجة الرئة الإنسان هو موضح هنا خلية القاعدة في الأصل من قبل مجموعتنا لإجراء دراسات عن وظائف الخلية الجذعية 8 لقد تكيفت هذه الطريقة لدراسة مرض السل.

نموذج أنسجة الرئة البشرية المقدمة هنا يتكون من خلايا والخلايا الليفية 8 الظهارية الأنسجة محددة. هذه الخلايا يتم تربيتها في مصفوفة الكولاجين على رأس غشاء مسامي في إدراج transwell وهياكل تشبه شكل العادية أنسجة الرئة الإنسان (الشكل 1). عند تعرضها للهواء تبدأ الخلايا على إفراز المخاط في الجانب قمي 8. من خلال زرع الضامة الإنسان الأساسية المصابين M. السل للنموذج، لاحظنا كيف تهاجر الخلايا المناعية في الأنسجة وتشكل المراحل الأولى من حبيبية TB 9. وهذا هو أول البشري نموذج الأنسجة described لمكافحة السل وأنه يشكل أداة واعدة لدراسة الاستجابات المناعية الفطرية لمرض السل وغيرها من الأمراض في الرئة. حتى الآن، وقد استخدمنا فقط وحيدات الضامة كما الخلايا المناعية في النموذج ولكن يمكن زيادة مستوى التعقيد من خلال إدراج أنواع الخلايا الإضافية ذات الصلة.

figure-introduction-1
الشكل 1. مخطط تخطيطي لنموذج أنسجة الرئة. (A) ويتكون هذا النموذج من خلايا الرئة البشرية خاصة الظهارية، M. السل -infected الضامة الابتدائية والمصنفة صبغة حمراء حيدات المسمى على الكولاجين جزءا لا يتجزأ من الخلايا الليفية التي أعدت حول مرشح transwell. التعرض للنموذج النسيج في الهواء يبدأ إنتاج البروتينات المصفوفة خارج الخلوي وإفراز المخاط والطبقية التي كتبها الظهارة. نموذج الأنسجة 3D بالتالي المتقدمة هو أداة مفيدة لدراسة M. عدوى السل في بيئة CLOيشبه كتبها sely رئة الإنسان. (B) الصور المجهرية التمثيلية للخطوات المختلفة في إعداد نموذج الأنسجة. (C) الهيكل الكامل للقسم الأنسجة نموذج الرئة. على نطاق و- 100 ميكرون الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ملاحظة: الدم المحيطي الإنسان من صحة المتبرعين بالدم مجهولة شراؤها في بنك الدم في مستشفى جامعة ينكوبينج، وكان يستخدم السويد كمصدر للخلايا المناعية لهذه الدراسة. تم تصميم هذا البروتوكول لمدة 24 إدراج لوحة مم 6 جيدا. لا ينصح التكيف المباشر إلى صيغ أخرى كذلك منذ عقود نموذجية الأنسجة عموديا وأفقيا خلال التنمية.

1. إعداد المواد والإعلام والثقافة من البكتيريا / خطوط الخليوي

  1. ثقافة البكتيريا:
    1. تنمو سلالة الفطرية M. السل H37Rv تحمل البلازميد pFPV2 للتعبير جوهري بروتين الفلورية الخضراء (GFP)، في ميدلبروك 7H9 المتوسطة التي تحتوي على 0.05٪ توين-80، و 0.5٪ الجلسرين، كانامايسين (20 ميكروغرام / مل)، وتستكمل مع ميدلبروك الزلال، وسكر العنب وإثراء الكاتالاز ( ميدلبروك ADC التخصيب)، عند 37 درجة مئوية مع CO 2 5٪ لمدة 7-10 أيام.
      ملاحظة: جميع خطوة تجريبيةالصورة التي تنطوي على الهواء مباشرة ضراوة M. يجب أن يتم تنفيذ سلالات السل في منشأة BSL-3.
  2. إعداد التعديل النسر المتوسطة (DMEM) المتوسطة كاملة 1X Dulbecco و(تستكمل مع 1 ملي البيروفات الصوديوم، 2 مم L-الجلوتامين، و 100 U / البنسلين مل، 100 ميكروغرام / مل الستربتومايسين، 10 ملي HEPES، 0.1 ملم الأحماض الأمينية غير الأساسية و10 الحرارة المعطل٪ مصل بقري جنيني (FBS)). إعداد أيضا DMEM المتوسطة كاملة خالية من المضادات الحيوية.
  3. إعداد 1X الحد الأدنى المتوسطة (MEM) المتوسطة كاملة الأساسية (1 ملي البيروفات الصوديوم، 2 مم L-الجلوتامين، و 100 U / البنسلين مل، 100 ميكروغرام / مل الستربتومايسين، 10 ملي HEPES، 0.1 ملم الأحماض الأمينية غير الأساسية و 10٪ للحرارة المعطل مصل بقري جنيني (FBS)).
  4. إعداد فبرونيكتين / قوارير المغلفة الكولاجين (مجموع 10 مل):
    1. ماصة 8.8 مل العقيمة 1X الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) في أنبوب نظيفة. إضافة 1 مل مصل بقري الزلال (1 ملغ / مل)، و 100 نوع ميكرولتر أنا الكولاجين البقري (3 ملغ / مل) و 100 ميكرولتر المؤتلف هو جين تاورجل فبرونيكتين (1 ملغ / مل).
    2. مزيج الحل من خلال تحويل أنبوب رأسا على عقب 5 مرات. والمغلفة قوارير بمحلول فبرونيكتين / الكولاجين (1 مل لT-25 و 2 مل لT-75 قارورة). ترك الأمر O / N عند 37 درجة مئوية. بعد الحضانة، وإزالة الحل وتخزين قوارير المغلفة في RT.
      ملاحظة: يمكن تخزين حل جمعها في 4 ° C وإعادة استخدامها لمدة ثلاث مرات. التخزين لأكثر من 2 أسابيع قد يسبب السائل لتحويل البني (تكوين بلورات)، حيث يجب أن يقوم عليها التخلص منها.
  5. ثقافة الخلايا الليفية:
    1. النمو والحفاظ على MRC-5، (خط الخلايا الليفية الرئة حقوق الإنسان مستمد من أنسجة الرئة العادية لل14 أسبوعا الجنين الذكر القديم)، في DMEM الكامل في CO 2 5٪ عند 37 درجة مئوية. استخدام الخلايا الليفية في الممرات 24-26 وتنمو حتى 70-80٪ متموجة.
      ملاحظة: MRC-5 خط الخلية في مرور> 30 تميل الى فقدان التشكل وليس من المستحسن للاستخدام في نموذج الأنسجة.
  6. ثقافة الخلايا الظهارية:
    1. الحصول 16HBE14o- (16HBE)، والقصبي خط الخلية خلد الإنسان الظهارية التي تحتفظ التشكل متباينة وظيفة طبيعية ظهائر الهوائية البشري، (وهذا كان هدية من الدكتور ديتر Gruenert، جبل صهيون مركز السرطان بجامعة كاليفورنيا في سان فرانسيسكو ، الولايات المتحدة الأمريكية (10).). خلايا الثقافة 16HBE في فبرونيكتين / قوارير المغلفة الكولاجين والحفاظ على الخلايا في MEM الكامل في CO 2 5٪ عند 37 درجة مئوية.
  7. إعداد 5X DMEM
    1. إعداد 5X DMEM عن طريق إذابة 13.4 غرام من مسحوق DMEM و 3.7 غرام من بيكربونات الصوديوم في 150 مل من الماء المقطر المعقم. ضبط درجة الحموضة في المتوسط ​​إلى 7.3، وجعل ما يصل حجم 200 مل وتصفية باستخدام 0.22 ميكرون فلتر الغشاء. جمع المتوسطة التي تمت تصفيتها في وعاء معقم وتخزينها حتى استخدامها في RT.

2. إعداد الخلايا الليفية الكولاجين جزءا لا يتجزأ من

  1. قسامات المجمدة ذوبان الجليد من FBS وL-الجلوتامين في 37 ° C حمام الماء.بعد ذوبان حفاظ على عينات على الجليد. وضع بيكربونات الصوديوم (71.2 ملغ / مل)، وجنتاميسين (50 ملغ / مل) في 4 درجات مئوية. قبل بارد 50 مل أنابيب الطرد المركزي و 10 مل ماصات معقمة ل4 ° C.
    ملاحظة: يتم برود جميع المواد المستخدمة (باستثناء 5X DMEM) على الجليد قبل استخدامها ويتم تنفيذ كافة الخطوات على الجليد. النوع الأول من الأبقار الكولاجين (1.1 ملغ / مل) يجب أن تبقى باردة، وهذا يمنع تصلب الكولاجين.
  2. إعداد الخلايا الليفية:
    1. دافئ التربسين في 37 ° C حمام الماء واحتضان كمية كافية مع الخلايا الليفية الرئة (MRC-5) خلايا لمدة 10 دقيقة في CO 2 5٪ عند 37 درجة مئوية. تحييد التربسين بإضافة 1X DMEM كاملة. نضح تعليق الخلية وأجهزة الطرد المركزي في 300 x ج لمدة 5 دقائق. نضح في وطاف resuspend الخلايا في 2.3 × 10 5 خلية / مل في DMEM كاملة. وضع الخلايا على الجليد حتى جاهزة للاستخدام.
  3. إعداد ما قبل مزيج:
    1. إضافة ما يلي إلى أنبوب المسمى "قبل مزيج". 395ميكرولتر من 5X DMEM، 40 ميكرولتر L-الجلوتامين، 120 ميكرولتر NaHCO3 (71.2 ملغ / مل)، 440 ميكرولتر FBS، 5 ميكرولتر جنتاميسين (50 ملغ / مل)، السعة الإجمالية 1000 ميكرولتر، ثم دوامة مسبقا تخلط جيدا وتوضع على الثلج.
      ملاحظة: وحدات التخزين المعطاة هي واحدة 24 ملم 6 جيدا ثقافة إدراج. حساب المبالغ المحددة اللازمة لعدد من الملاحق ولكن مع إضافة واحد إضافي للتأكد، على استعداد كاف قبل المزيج.
  4. تحضير خليط الكولاجين لا خلوي:
    1. لكل ثقافة إضافة 1 مل من لا خلوي مزيج الكولاجين. إضافة ما يلي إلى أنبوب مخروطي 50 مل على الجليد في ترتيب معين. 686 ميكرولتر من 1.1 ملغ / مل الكولاجين، 250 ميكرولتر قبل المزيج و64 ميكرولتر 1X DMEM الكامل إلى إجمالي حجم 1000 ميكرولتر. مزيج الحل كذلك ضمان عدم وجود فقاعات الهواء. العمل بسرعة وإضافة الكولاجين على جدار الأنبوب لتجنب فقاعات الهواء.
    2. إضافة 1 مل من الخليط طبقة لا خلوي إلى إدراج وضعها في لوحة 6 جيدا. لا تضيف أي وسيلة إلى البئر خارج إدراج. فيcubate لمدة 30 دقيقة في الحاضنة 37 درجة مئوية. تأكد من أن الخليط لا خلوي يغطي إدراج كامل دون أي فقاعات الهواء.
  5. تحضير خليط الكولاجين الخلوي:
    1. خلط مكونات الطبقة الخلوية في 50 مل أنبوب مخروطي أبقى على الجليد في الترتيب التالي. 2 مل الكولاجين، 615 ميكرولتر قبل المزيج، 58 ميكرولتر من 1X DMEM كاملة و 327 تعليق خلية ميكرولتر الخلايا الليفية الرئة (MRC-5) لتعويض الحجم الإجمالي ل3000 ميكرولتر. يتطلب كل ثقافة 3 مل من مزيج الكولاجين الخلوية.
      خطوة حاسمة: تأكد من مزيج الكولاجين وبريمكس بعناية قبل إضافة تعليق الخلية. هذا وسوف تحييد الحموضة من الكولاجين لتجنب آثار سامة على الخلايا الليفية.
    2. إضافة طبقة الخلوية (3 مل) على الجزء العلوي من طبقة الكولاجين ديكي واحتضان لمدة 2 ساعة في الحاضنة 37 درجة مئوية. العمل بسرعة وإضافة الكولاجين على جدار الأنبوب لتجنب فقاعات الهواء.
    3. بعد البلمرة، إضافة 2 مل من DMEM كاملة لركان الجزء السفلي من لوحة 6 جيدا (تحت إدراج)، واحتضان لمدة 24 ساعة.
      ملاحظة: إذا البلمرة لم يحدث، تجاهل إدراج لوحة تحتوي على مصفوفة الخلايا الليفية الكولاجين وبدء من جديد. السبب الأكثر احتمالا هو حدوث خطأ في إضافة أو حجم غير صحيح واحد من الكواشف المذكورة أعلاه.

3. الثقافة مستمرة من مصفوفة الخلايا الليفية-الكولاجين

  1. رفع بعناية إدراج باستخدام ملقط نظيفة ونضح وسائل الإعلام الثقافة من قاع البئر. إضافة DMEM 2 مل الكامل إلى أسفل يتبع بشكل جيد من قبل 2 مل DMEM الكامل ضمن إدراج. تجنب إدخال فقاعات الهواء تحت إدراج، حيث سيؤدي ذلك إلى منع نشر المواد الغذائية بين الدوائر الخارجية والداخلية. إزالة فقاعات الهواء مع طرف micropipette.
  2. تغيير ثقافة وسائل الإعلام (داخل وتحت إدراج) كل يوم الثاني والثقافة لحوالي 5-7 أيام. العناية في إزالة وسائل الإعلام من إدراج. لتجنب حساب المشتركط م مع مصفوفة الخلايا الليفية الكولاجين، وإمالة قليلا إدراج باستخدام ملقط نظيفة ونضح وسائل الإعلام من الجدران إدراج.
    خطوة حاسمة: يجب على الخلايا الليفية في مصفوفة الكولاجين الحصول على النمط الظاهري ممدود، وإعادة تشكيل الكولاجين، ثم العقود. في حوالي 5-7 أيام، وقد تعاقدت مصفوفة لتشكيل منصة (10-14 ملم في القطر) في وسط إدراج. مصفوفة التعاقد جاهزة للاستخدام في الخطوة التالية. للحصول انكماش الموحد للمصفوفة فمن الأهمية بمكان أن الخلايا الليفية مختلطة بشكل جيد مع الكولاجين قبل البذر (الخطوة 2.6.1).

4. البذر من الخلايا المناعية (المصابة / غير المصابة الوحيدات البلاعم خليط)

ملاحظة: تشمل الخطوات التجريبية التالية المتفطرات خبيثة، وبالتالي يجب أن يؤديها في منشأة BSL-3.

  1. إعداد حيدات الابتدائية والضامة:
    1. عزل حيدات الدموية المحيطية من الدم المانحة باستخدام establiإلقاء البروتوكول. عزل حيدات في نفس اليوم الذي وضع نموذج الأنسجة والثقافة وتميزهم في الضامة ما يقرب من 7 أيام قبل الإصابة مع M. السل.
      ملاحظة: هذا سيضمن كلاهما الضامة والمتعاقد مع الخلايا الليفية الكولاجين مصفوفة متوفرة بعد 7 أيام. أيضا عزل حيدات الجديدة التي ستضاف إلى جانب الضامة المصابة.
  2. إعداد M. السل -infected الضامة
    1. حصاد البكتيريا مثقف، ويغسل مع برنامج تلفزيوني 1X تحتوي على 0.05٪ توين-80، resuspend في DMEM كاملة خالية من المضادات الحيوية، تمر من خلال اقتطاع العقيمة 27 G إبرة لتفريق كتل البكتيرية وقياس الكثافة الضوئية.
      ملاحظة: قبل تحديد M. مستعمرة السل تشكيل حكمه حدة الكثافة البصرية في المختبر. وهذا يعطي تقديرا لعدد من البكتيريا لاستخدامها في العدوى.
    2. احتضان الضامة لمدة 4 ساعة مع <م> M. مرض السل في تعدد العدوى (وزارة الداخلية) 10). بعد الإصابة، وغسل 3X مع برنامج تلفزيوني 1X لإزالة البكتيريا خارج الخلية. استخدام الضامة غير المصابة مثقف في نفس الطريق ولكن دون M. السل، والضوابط.
    3. فصل الضامة من لوحة الثقافة عن طريق العلاج مع 2 مم EDTA لمدة 10 دقيقة عند 37 درجة مئوية، ومعلق الخلايا في خالية من المضادات الحيوية DMEM كاملة.
  3. وسمها حيدات
    ملاحظة: عزل وتصنيف وحيدات لا يمكن أن يؤديها في مقاعد البدلاء BSL-2 ثم تؤخذ في BSL-3 منشأة لمزيد من المعالجة.
    1. وصمة عار الطازجة وحيدات (2 × 10 7 الخلايا) مع تركيز النهائي من 2 ميكرومتر PKH26 صبغة حمراء لمدة 5 دقائق، وفقا لتعليمات الشركة الصانعة. غسل 3X و resuspend الخلايا مع خالية من المضادات الحيوية DMEM الكامل في كثافة 1 × 10 7 خلية / مل.
  4. إضافة الخلايا المناعية إلى الخلايا الليفية الكولاجين مصفوفة
    1. After 5-7 أيام من ثقافة مصفوفة الخلايا الليفية الكولاجين، ونضح وسائل الإعلام الثقافة من الدوائر الخارجية والداخلية وإضافة 1.5 مل من جديد خالية من المضادات الحيوية DMEM الكامل إلى غرفة الخارجي.
    2. إعداد وصفت الوحيدات البلاعم (غير مصاب / مصابة) خليط مع نسبة MO: MQ (5: 1) في 50 ميكرولتر DMEM كاملة. 50،000 الضامة، واتخاذ 250،000 حيدات المسمى.
    3. إضافة 50 ميكرولتر MO: MQ المزيج على مصفوفة الخلايا الليفية الكولاجين واحتضان لمدة 1 ساعة في CO 2 5٪ عند 37 درجة مئوية. بعد الحضانة، إضافة بلطف 2 مل من وسائل الإعلام الثقافة في إدراج واحتضان ل24 ساعة إضافية في CO 2 5٪ عند 37 درجة مئوية.
      ملاحظة: كما خلايا أضاف تعلق فضفاضة، وينبغي أن تكون إضافة وسائل الإعلام بطيء عن طريق إضافة بلطف على جدران إدراج.

5. بذر خلايا الرئة الظهارية (16HBE)

ملاحظة: يجب أن يتم تنفيذ الخطوات التالية في منشأة BSL-3.

  1. البذور الرئة هخلايا pithelial (16HBE) على رأس MO: MQ-الليفية الكولاجين طبقة. لتنفيذ هذا، فصل أول 16HBE الخلايا من قارورة عن طريق التعامل مع التربسين (كما في 2.2.1.) و resuspend في 4 × 10 6 خلية / مل في DMEM مجانا المضادات الحيوية.
  2. نضح في وسائل الإعلام ثقافة داخل وخارج إدراج. ثم يضاف 1.5 مل خالية من المضادات الحيوية DMEM الكامل في قاع البئر خارج إدراج.
  3. إضافة 50 ميكرولتر من 16HBE على رأس الخلية الليفية المناعة الكولاجين المصفوفة. يترك لمدة 2 دقيقة في غطاء محرك السيارة واحتضان لمدة 1 ساعة في الحاضنة 37 درجة مئوية مع 5٪ CO 2. بعد الحضانة، إضافة بلطف 2 مل من خالية من المضادات الحيوية DMEM الكامل في إدراج والثقافة في 37 درجة مئوية لمدة 3 أيام. الخطوة ثقافة تسهل انتشار الخلايا الظهارية في نموذج الأنسجة.
    ملاحظة: كما خلايا أضاف تعلق فضفاضة، وينبغي أن تكون إضافة وسائل الإعلام بطيئة ورقيقة من الانزلاق من خلال الجدران من إدراج.

6. الهواء والتعرض للالرئة 3Dنموذج

ملاحظة: بعد يوم 5 بالإضافة منصب الضامة المصابة، ونماذج الأنسجة هي المعرضة للهواء ويجب أن يتم تنفيذ الخطوات التالية في منشأة BSL-3.

  1. نضح في وسائل الإعلام ثقافة داخل وخارج إدراج.
    ملاحظة: في هذه الخطوة يمكن جمع supernatants للكشف عن العوامل يفرز. أجهزة الطرد المركزي، معقم التصفية وتخزين supernatants في -70 ° C.
  2. إضافة 1.8 مل مجانا المضادات الحيوية DMEM كاملة في غرفة الخارجية واحتضان في CO 2 5٪ عند 37 درجة مئوية الحاضنة لمدة 2 أيام. لا تقم بإضافة سائل الإعلام والثقافة ضمن إدراج.
    ملاحظة: الهواء ورفع نموذج الأنسجة تسهل تشكيل ظهائر الطبقية وإفراز المخاط، والذي يوفر قوة إلى الأنسجة وتشابه الفسيولوجية للأنسجة رئة الإنسان.

7. حصاد وتركيب و3D الرئة الأنسجة نموذج


ملاحظة: يجب أن يتم تنفيذ الخطوات التالية في منشأة BSL-3.

  1. في يوم 7 آخر غرس الضامة المصابة، ونماذج الأنسجة جاهزة للحصاد. إزالة وسائل الإعلام الثقافة تماما عن نموذج الأنسجة. إصلاح نموذج الأنسجة مع بارافورمالدهيد 4٪ لمدة 30 دقيقة في الظلام في RT. هذه الخطوة يقتل البكتيريا وإصلاح الأنسجة التشكل / خلية لمزيد من المعالجة.
  2. باستخدام مشرط، فصل الغشاء من إدراج جيدا. نقل غشاء التي تحتوي على الأنسجة إلى تحتوي أيضا برنامج تلفزيوني 1X.
  3. قطع وإزالة الجانبين من نموذج الأنسجة باستخدام مشرط نظيفة. ثم شريحة نموذج الأنسجة إلى 4 قطع مربعة متساوية تقريبا. نقل قطعة من النسيج على شريحة زجاجية superfrost. تخزين القطع الأنسجة في برنامج تلفزيوني 1X في 4 درجات مئوية.
  4. تجفيف الأنسجة لمدة 5 دقائق وجبل باستخدام إطالة الذهب antifade مع دابي وساترة. مغادرة الشرائح دون إزعاج في الظلام في RT حتى تجف.
    ملاحظة: سمك الأنسجة قد تختلف بين المركز والأطراف، مما تسبب في tilti طفيفنانوغرام من ساترة. لتجنب هذا، فاصل (على سبيل المثال parafilm) يجوز أن يوضع على الزاوية من انزلاق الغطاء.
  5. تطبيق طلاء الأظافر إلى حواف ساترة واتركه حتى يجف. تزج الشرائح في الايثانول 70٪ لجعلها آمنة لاخراج مرفق BSL-3.

8. التصور، شراء والتحليل الكمي 3D

  1. تصور الشرائح الأنسجة باستخدام نظام المجهر متحد البؤر مع الليزر التي ينبعث منها في 488 نانومتر لإثارة GFP (قناة خضراء)، 420 نانومتر لدابي (الأزرق) و 555 نانومتر للحيدات PKH26 المسمى (الحمراء) على التوالي.
  2. الحصول على صور 3D في قرار 512x512 مع Z-مداخن تغطي على الأقل سماكة 20 ميكرون وجود 1-1،5 ميكرومتر الفصل بين أكوام. الحصول 5-10 مختلف المجالات التي تغطي كامل القطعة من النسيج.
    ملاحظة: استخدم التكوين مثل Nyqvist لالإعدادات المثلى من قرار بصري (الطول الموجي، قوة الليزر / التعرض، وحجم بكسل وزووم). تجنب الامم المتحدةدير أو أكثر تشبع بكسل.
  3. تحليل الصور مبائر مع برنامج 3D معالجة الصور. لتقدير 3D من مجموعات الخلايا، وينصح الخطوات التالية لتحليل الأمثل.
  4. فتح 3D معالجة الصور والبرمجيات وتحميل الصورة. قياس أبعاد الأجسام ليتم تحليلها في الصورة، على سبيل المثال، حجم النواة، الوحيدات الفردية والبكتيريا واحدة. هذه الملاحظات هي مفيدة لتحديد أو تصفية الكائنات.
  5. باستخدام أداة تعديل العرض، وتحسين جعل حجم عن طريق ضبط كل قناة على النقيض صورة والسطوع ومزيج التعتيم. هذه الخطوة للحد من تدخل الضوضاء في جعل حجم.
    ملاحظة: قد يؤدي تصحيح غاما إلى التلاعب في الصور، وبالتالي يجب تجنبها.
  6. إنشاء الأسطح عن طريق اختيار القناة الحمراء (حيدات) وتعيين عتبة (اختيار تلقائي أو يدوي). إذا لزم الأمر، واستخدام المرشحات لتقييد اختيار حيدات حمراء أو استبعاد بackground. وبالمثل، إنشاء الأسطح للأخضر (M. السل) والزرقاء (نوى) القنوات كما هو موضح أعلاه.
  7. تصدير البيانات إلى ملفات إكسل. فمن الممكن لتصدير معلمة معينة أو كافة البيانات. المعلمات التي هي ذات الصلة لتحليل تجميع الخلية هي وحدة التخزين، وكثافة، وعدد من الأشياء، وعدد من voxels وكروية.
  8. حفظ وتصدير الصور في شكل صور مناسبة ويفضل TIFF.
    ملاحظة: يمكن أيضا أن تكون متحركة باستخدام القائمة الرسوم المتحركة وحفظها كملف وسائل الإعلام.
  9. حفظ الإعدادات تحليل كل قناة باستخدام الخيار إضافة المعلمات ويمكن استرجاعها في وقت لاحق باستخدام وظيفة إعادة الإنشاء. في وقت واحد تحليل المزيد من الملفات باستخدام أداة تجهيز الدفعات.
    ملاحظة: جميع الصور يمكن مقارنتها يجب الحصول عليها ومعالجتها وتحليلها بنفس الطريقة. على سبيل المثال لا ينبغي مقارنة صورة 8 بت (256 صحيح) مع صورة 12 بت (4096 صحيح).

النتائج

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نموذج الأنسجة 3D الرئة لمكافحة السل البشري يمكن استخدامها بشكل فعال لدراسة التفاعلات المضيف الممرض في M. عدوى السل. الخطوات الأساسية لهذا الأسلوب، وترد الصور المجهرية التمثيلية لمختلف الخطوات وبنية المجهرية العام للقسم الأنسجة في الشكل 1. نموذج لديها العديد من مكونات أنسجة الرئة الإنسان، بما في ذلك الخلايا الليفية الرئة، الخلايا الظهارية الشعب الهوائية وحيدات الأولية / الضامة جزءا لا يتجزأ من البيئة الأنسجة 3D. بالإضافة إلى دمج مكونات أنسجة الرئة الإنسان، ونموذج يشبه الظروف الفسيولوجية وهي الطبقية من ظهائر وإفراز المخاط.

وقدم مثالا لاستخدام نموذج أنسجة الرئة في مراقبة عدوى السل في الشكل 2. لتصور M. السل -immune هجرة الخلايا والتفاعل، قدمنا ​​الضامة المصابة M. السل التي تعبر عن GFP(الأخضر) مع حيدات المسمى PKH26 المعزولة حديثا (الأحمر) في نموذج الأنسجة (الأزرق وملطخة دابي لنوى). في يوم 7 بالإضافة منصب M. السل خلايا -infected لنموذج الأنسجة، والفحص المجهري متحد البؤر يكشف تجميع حيدات حمراء في موقع الإصابة (الأخضر) (الشكل 2)، الذي يحاكي الآفات السمة المميزة لمرض السل البشري 9.

سلسلة من الصور التمثيلية لل3D التصور من M. -infected السل يظهر نموذج الأنسجة وتقدير من مجموعات الخلايا في الشكل (3). والتصور 3D يعطي مرونة للمستخدم التفاعل وفحصها وتحديد العديد من الميزات في صورة 3D. ويمكن النظر إلى الترتيب المكاني من البكتيريا الخضراء ومجموعات الوحيدات الحمراء من وجهة نظر القمي، والتناوب الجانبي كما هو موضح في الشكل 3B، الذي يكشف عن تجميع وحيدات في موقع M. السل. العناقيد لم أوبخدم في الأنسجة غير المصابة (الشكل 3A). نحن كميا حجم وعدد من مجموعات الخلايا الوحيدات وجدت أن حجم (حجم) من مجموعات الخلايا مما يعزز (P <0.001)، في حين انخفض عدد حيدات الفردية (p <0.01) في M. السل إصابة الأنسجة بالمقارنة مع نماذج الأنسجة غير المصابة (الشكل 3C و 3D). بالتحقق من صحة هذه البيانات لدينا الحقائق السابقة من تشكيل الحبيبي في وقت مبكر من M. لاحظ عدوى السل في نماذج أنسجة الرئة تحليلها في 2D أقسام الأنسجة 9.

وتشير البيانات المتوفرة لدينا أن هذا النموذج الأنسجة يوفر الموائل 3D الطبيعي للتحقيق الخلوي المضيف معقدة M. شبكة الاتصالات السل. وجدنا أيضا أن التصور 3D والتحليل الكمي وأدوات أفضل لدراسة الخصائص الموجودة في نموذج الأنسجة (الشكل 3). الكمي من كتلة الخلية (الورم الحبيبي على سبيل المثال) غالبا ما تمتد [هس إلى عدة طبقات الخلايا ويمكن الحصول عليها تماما من قبل التحليل الكمي 3D. وعلاوة على ذلك، والتصور الدقيق من الميزات المكانية والزمانية لخلايا فردية أو البكتيريا الموجودة في نموذج يسمح الحية التصوير والهجرة وتتبع الدراسات في مختبر مخصص.

figure-results-1
الشكل 2. الوحيدات في الكتلة نموذج الأنسجة المحيطة ضراوة M. السل. الصور مبائر التمثيلية للغير مصاب وM. ويرد السل نموذج الأنسجة المصابة. لوحات من الأخضر (M. tuberculosis- GFP) والأحمر (وحيدات المسمى PKH26) والأزرق (نوى دابي الملون) وقنوات اندمجت تظهر تجنيد حيدات في الأنسجة المصابة بالمقارنة مع الأنسجة غير المصابة. على نطاق و- 100 ميكرون.large.jpg "على غرار =" FONT-SIZE: 14px؛ خط الطول: 28px؛ "الهدف =" _ فارغة "> الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-2
الرقم التصور 3. 3D والتحليل الكمي للنموذج الأنسجة توفير معلومات مفيدة. صور الممثل التصور 3D نموذج الأنسجة كامل (A) الأنسجة غير المصابة، (B) مصابة M. السل، من خلال باجتزاء البصرية باستخدام زايس LSM700 المجهر متحد البؤر والتحليل الكمي Imaris برامج معالجة الصور (الإصدار 7.6.8). تم الحصول على هذه الصور في 20X التكبير، 14 ض مداخن تغطي سمك الأنسجة 19.5 ميكرون مع 1.5 ميكرون الفاصل، مما يسمح التصور من قمية، أفقي التناوب، وعرض الرأسي والأفقي التناوب (A و B). (C) رابعةتحليل ntitative من مجموعات الخلايا الوحيدات تكشف محسن (P <0.0001) حجم الكتل الحبيبي في وقت مبكر بعد M. عدوى السل بالمقارنة مع عدم وجود عدوى. (D) الكمي لعدد من وحيدات أظهر انخفاضا (p <0.01) في الأنسجة المصابة بالمقارنة مع الأنسجة غير المصابة، مؤكدا المزيد من التجمعات في الأنسجة المصابة. الأخضر - M. -GFP السل، والأحمر - وحيدات PKH26 المسمى، الأزرق - نوى الخلايا، مقياس - 100 ميكرون الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

المناقشة

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

القدرة على تجنيد وتشكيل مجموعات الخلايا المنظمة في موقع العدوى هي السمة المميزة للسل البشري 11. تتكون هذه الهياكل الديناميكية المعروفة باسم الورم الحبيبي الدرني بشكل أساسي من خلايا مناعية (الضامة والخلايا الوحيدة والخلايا التائية والخلايا البائية) والخلايا العملاقة متعددة النوى المحيطة بالسل. لطالما اعتبر دور الورم الحبيبي لعرقلة العدوى ، ومنع الانتشار المحلي للبكتيريا. ومع ذلك ، تظهر الدراسات الحديثة أن تكوين الورم الحبيبي أمر بالغ الأهمية لبقاء البكتيريا ونموها وانتشارها في وقت مبكر 12. تتمثل إحدى استراتيجيات الدراسات الجديدة في تحديد الجزيئات أو المسارات التي يمكن استهدافها بكفاءة لمنع الهجرة الخلوية في تكوين الورم الحبيبي و / أو انتشار السل.

التحذير من الدراسات الجديدة حول السل هو عدم وجود نماذج تلخص السل البشري. لا تشكل التجارب الأكثر استخداما ورما حبيبيا حقيقيا عند عدوى السل ، وبالتالي فهي ليست خيارات مناسبة لدراسات السل 13-16. وللرئيسيات غير البشرية أقرب تشابه مع السل البشري 17، ولكنها ليست الخيار المفضل بسبب ارتفاع تكاليف التشغيل والقضايا الأخلاقية. السل البشري هو عملية مناعية معقدة ويصعب نمذجتها في المختبر. تفتقر مزارع الخلايا من الطبقات الأحادية أو الثقافات المشتركة إلى البيئة ثلاثية الأبعاد واستجابات الأنسجة. لذلك ، قمنا بتطوير نموذج مبتكر لأنسجة الرئة يعتمد على الخلايا المناعية الأولية البشرية وخطوط الخلايا الخاصة بالرئة البشرية 8،9. يعرض النموذج السمات المميزة لأنسجة الرئة البشرية ، بما في ذلك الظهارة ذات البلاعم المتكاملة بشكل متساو ، وتشكيل مصفوفة خارج الخلية ، والظهارة الطبقية وإفراز المخاط 9.

نموذج أنسجة الرئة البشرية ثلاثي الأبعاد له العديد من الفوائد مقارنة بالثقافات الفردية أو المشتركة في المختبر المزروعة على ألواح زراعة الأنسجة أو إدخالات الترانسويل. أولا ، لا يتم تضمين الخلايا الخاصة بالرئة البشرية (الخلايا الليفية والخلايا الظهارية) بشكل شائع في الثقافات الفردية أو المشتركة في المختبر . ثانيا ، يتم تضمين الخلايا المناعية والخلايا الخاصة بالرئة في سياق فسيولوجي ثلاثي الأبعاد (منتجات مصفوفة خارج الخلية غنية بالكولاجين). تختلف استجابة الخلايا للمحفز / العدوى وسلوك الهجرة للخلايا ، على سبيل المثال تكوين الورم الحبيبي ، اختلافا كبيرا بين بيئة ثنائية الأبعاد و ثلاثية الأبعاد. علاوة على ذلك ، تتيح الطريقة الموصوفة التصور ثلاثي الأبعاد والتحليل الكمي ثلاثي الأبعاد القوي الذي يوفر معلومات محورية حول التوزيع المكاني والتفاعلات الخلوية المعقدة.

أدت العدوى التجريبية في الأنسجة النموذجية بالمتفطرة السلية إلى تجمع البلاعم في موقع العدوى ، مما يذكرنا بالورم الحبيبي المبكر للسل (الشكل 2 و 3). لقد أثبتنا مؤخرا أن السلالات الطافرة المعيبة في القدرة على إفراز عامل الضراوة ESAT-6 أو المتفطرة bovis BCG التي تفتقر إلى ESAT-6 لم تحفز تجمع الخلايا الوحيدة (لا يوجد ورم حبيبي مبكر) ، على عكس الخبيث M. tuberculosis 9. تتوافق هذه البيانات مع الملاحظات التي تم إجراؤها من أجنة سمك الزرد المصابة بالمتفطرة المرئية ، والتي تسمح شفافيتها بالتصوير الحي الأنيق لتكوين الورم الحبيبي 12. نظرا لعدم وجود نموذج قياسي ذهبي للسل ، فقد استفدنا من خزعات الأنسجة التي تم استئصالها جراحيا من مرضى السل للتحقق من صحة الطريقة 9. يشترك نموذج الأنسجة في المختبر الخاص بنا في العديد من الخصائص مع خزعات الرئة والعقد الليمفاوية من مرضى السل ، بما في ذلك تراكم البلاعم في الورم الحبيبي ، ووجود كل من البكتيريا داخل الخلية وخارجها 18 وتحريض النخر 11.

على الرغم من أن النموذج الموصوف له صلة فسيولوجية بالسل البشري وله العديد من المزايا مقارنة بالنماذج المختبرية الأخرى ، إلا أن له بعض القيود. على سبيل المثال ، من بين أكثر من 20 بروتين كولاجين تم تحديده في البشر ، يتم تضمين النوع الأول فقط في النموذج لتقليد المصفوفة خارج الخلية. ومع ذلك ، فإن الكولاجين من النوع الأول هو مزيج معقد من منتجات المصفوفة خارج الخلية وهو الكولاجين الأكثر وفرة في جسم الإنسان. علاوة على ذلك ، أظهرنا وجود الكولاجين الوريدي والعديد من بروتينات المصفوفة خارج الخلية مثل التروبولاستين والفيمنتين واللامينين ، والتي تنتجها الخلايا الظهارية والخلايا الليفية في نموذج الأنسجة ، مما يشير إلى تخليق الكولاجين الجديد 8. في الوقت الحاضر ، يحتوي نموذج أنسجة الرئة على الخلايا الوحيدة والضامة فقط ، إلى جانب الخلايا الخاصة بالرئة. يفتقر إلى العدلات والخلايا الليمفاوية المعروفة أيضا بوجودها في الورم الحبيبي. ومن اللافت للنظر أن النموذج لا يقتصر على إدخال خلايا مناعية إضافية وهو من المهم استكشاف كيفية مساهمتها في التفاعلات الخلوية المعقدة في السل البشري. تم بالفعل اختبار زرع البلاعم السنخية الأولية والخلايا الخاصة بالجلد وخلايا سرطان الرئة في النموذج. نظرا لأن هدفنا كان استخدام نموذج يشبه إلى حد كبير السل البشري ، لم تتم محاولة إدخال خلايا الفأر.

باختصار ، نموذج أنسجة الرئة له آثار على كل من الدراسات الميكانيكية والتطبيقية الأساسية. تشمل التطبيقات المحتملة لنموذج الرئة دراسة المناعة الفطرية ، والتحقيق في الجوانب الميكانيكية لدفاعات المضيف مثل النضج البلعمي ، والالتهام الذاتي ، وإنتاج السيتوكينات ، والكيموكينات والببتيدات المضادة للميكروبات ، والتوصيف الوظيفي لأنواع الخلايا الفردية. اللافت للنظر ، يسمح نموذج الأنسجة في المختبر بالتلاعب بنوع واحد أو أكثر من أنواع الخلايا ويوفر بيئة دقيقة للأنسجة ذات الصلة ، ليس فقط للدراسات المتعلقة بالسل ، ولكن لمجموعة متنوعة من الأمراض المعدية وغير المعدية التي تصيب الرئتين.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعلن المؤلفون عدم وجود مصالح مالية متنافسة.

شكر وتقدير

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يقر المؤلفون بمرفق الفحص المجهري الأساسي في كلية العلوم الصحية بجامعة لينشوبينغ لتوفير الوصول إلى أنظمة التصوير المتقدمة. كارل إريك ماغنوسون (عالم فخري) في قسم الطب السريري والتجريبي ، جامعة لينشوبينغ لتوفير الوصول إلى برنامج معالجة الصور Imaris 3D / 4D (Bitplane ، سويسرا) ؛ و S. Braian لمساعدته في الرسوم المتحركة لنموذج الرئة. تم دعم هذا العمل من خلال تمويل من مجلس البحوث السويدي (بدائل البحوث الحيوانية ، 2012-1951) ومجلس البحوث السويدي (2012-3349) إلى M.L. والمؤسسة السويدية للبحوث الاستراتيجية لتلقي SB منحا من معهد كارولينسكا ، ومجلس البحوث السويدي ، والوكالة السويدية للتعاون الإنمائي الدولي (Sida) ، والوكالة السويدية للطوارئ المدنية (MSB) ، ومؤسسة القلب والرئة السويدية (HLF). تلقى MS منحا من معهد كارولينسكا ومجلس مقاطعة ستوكهولم.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
تدرج زراعة الخلاياBD Falcon353092
لوحات ثقافة 6 آبارBD Falcon353046
خلايا MRC-5 ، الخلاياATCC # CCL-171
16HBE ، الخلاياهدية من الدكتور ديتر جروينرت ، مركز جبل صهيون للسرطان ، جامعة كاليفورنيا ، سان فرانسيسكو ، الولايات المتحدة الأمريكية   ؛
5 × Dulbecco s النسر المعدل s متوسط (5 × DMEM)Gibco12800-082مصنوع من مسحوق ولكن أضف 5 مرات أقل من الماء. اضبط الرقم الهيدروجيني على 7.3 وقم بتصفيتها باستخدام 0.2 & micro; مرشح م.
دولبيكو s النسر المعدل s متوسط مع الجلوكوز (DMEM) 1xGibco41965-039
الحد الأدنى من الوسط الأساسي (MEM) 1x مع إيرل s أملاحSigmaM4655
محلول الأحماض الأمينية غير الأساسية ، 100xLife Technologies11140-035
L-glutamine 200 ملي مولار (100x)Gibco25030-024
Sodium PyruvateLife Technologies11360-039
NaHCO3 (71.2 مجم / مل)محضر في المنزل
مصل الأبقار الجنينية المعطل بالحرارة (FBS)Gibco10270-106الحرارة معطلة لمدة 30 دقيقة ، 56 درجة ؛ سي
جنتاميسين (50 مجم / مل)جيبكو15750-060
محلول عازلة هيبس 1Mجيبكو15630-056
بنسلين ستربتومايسين (عنب القلم)جيبكو15140-122
LymphoprepAxis-Shield7801
Ultrapure 0.5 M EDTAGibco15575
الكولاجين البقري PA المعالج (500 مل)تكوين الأعضاء200-055
محلول الكولاجين البقري النقي (100 مل)بروتين المصفوفة الحيوية المتقدم5005-B
خارج الخلية ، فيبرونيكتين (1 مجم)BD354008
الخلايا الوحيدة / الضامةمعزولة عن دم الإنسان الكامل أو المعاطف المصقولة.
PKH26 رابط الخلايا الفلورية الحمراءSigmaMINI26
المتفطرة السلية H37Rv التي تعبر عن البروتينالأخضر M. السل H37Rv تم تحويله من النوع البري مع بلازميد pFPV2 الذي يعبر بشكل أساسي عن GFP.
ميدلبروك 7H9 متوسط Difco271310
BBL Middlebrook ADC EnrichmentBBL211887
Tween-80
Glycerol
Kanamycin B كبريتات (20 & micro; جم / مل)سيجماB5264
إطالة كاشف الذهب المضاد = التلاشي مع DAPIInvitrogenP36935
Trypsin -EDTA
مصل الأبقار الألبومين
Paraformaldehyde
DAPI
LSM700 مجهر متحد البؤرZeiss
برنامج معالجة الصور iMaris Scientific 3D / 4D ، الإصدار 7.6.8Bitplane AG
الليفية الرئوية الظهارية للرئة البشرية الأولية الفلوري

المراجع

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Sakamoto, K. The pathology of Mycobacterium tuberculosis infection. Veterinary pathology. 49, 423-439 (2012).
  2. Saunders, B. M., Britton, W. J. Life and death in the granuloma: immunopathology of tuberculosis. Immunol Cell Biol. 85, 103-111 (2007).
  3. Kaufmann, S. H. New issues in tuberculosis. Ann Rheum Dis. Ann Rheum Dis. 63, Suppl 2. ii50-ii56 (2004).
  4. Morrison, J., Pai, M., Hopewell, P. C. Tuberculosis and latent tuberculosis infection in close contacts of people with pulmonary tuberculosis in low-income and middle-income countries: a systematic review and meta-analysis. Lancet Infect Dis. 8, 359-368 (2008).
  5. Barry 3rd, C. E., et al. The spectrum of latent tuberculosis: rethinking the biology and intervention strategies. Nat Rev Microbiol. 7, 845-855 (2009).
  6. Puissegur, M. P., et al. An in vitro dual model of mycobacterial granulomas to investigate the molecular interactions between mycobacteria and human host cells. Cell Microbiol. 6, 423-433 (2004).
  7. Kapoor, N., et al. Human Granuloma In Vitro Model, for TB Dormancy and Resuscitation. PLoS One. 8, e53657(2013).
  8. Nguyen Hoang,, T, A., et al. Dendritic cell functional properties in a three-dimensional tissue model of human lung mucosa. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 302, L226-L237 (2012).
  9. Parasa, V. R., et al. Modeling Mycobacterium tuberculosis early granuloma formation in experimental human lung tissue. Dis Model Mech. 7, 281-288 (2014).
  10. Cozens, A. L., et al. CFTR expression and chloride secretion in polarized immortal human bronchial epithelial cells. Am J Respir Cell Mol Biol. 10, 38-47 (1994).
  11. Brighenti, S., Andersson, J. Local immune responses in human tuberculosis: learning from the site of infection. J Infect Dis. 205, Suppl 2. S316-S324 (2012).
  12. Davis, J. M., Ramakrishnan, L. The role of the granuloma in expansion and dissemination of early tuberculous infection. Cell. 136, 37-49 (2009).
  13. Gupta, U. D., Katoch, V. M. Animal models of tuberculosis. Tuberculosis (Edinb). 85, 277-293 (2005).
  14. Kashino, S. S., Napolitano, D. R., Skobe, Z., Campos-Neto, A. Guinea pig model of Mycobacterium tuberculosis latent/dormant infection. Microbes Infect. 10, 1469-1476 (2008).
  15. Singhal, A., et al. Experimental tuberculosis in the Wistar rat: a model for protective immunity and control of infection. PLoS One. 6, e18632(2011).
  16. Subbian, S., et al. Phosphodiesterase-4 inhibition alters gene expression and improves isoniazid-mediated clearance of Mycobacterium tuberculosis in rabbit lungs. PLoS Pathog. 7, e1002262(2011).
  17. Lin, P. L., et al. Tumor necrosis factor neutralization results in disseminated disease in acute and latent Mycobacterium tuberculosis infection with normal granuloma structure in a cynomolgus macaque model. Arthritis Rheum. 62, 340-350 (2010).
  18. Rahman, S., et al. Compartmentalization of immune responses in human tuberculosis: few CD8+ effector T cells but elevated levels of FoxP3+ regulatory t cells in the granulomatous lesions. Am J Pathol. 174, 2211-2224 (2009).

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة