Method Article

تصوير ثلاثي الأبعاد وتحليل الميتوكوندريا داخل الألياف العصبية إينترايبيديرمال البشرية

DOI:

10.3791/53369

⸱

September 29th, 2017

 ,  ,  , 
1University of Michigan Medical School, 2Department of Neurology, University of Michigan, 3Department of Internal Medicine, University of Michigan

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هذا البروتوكول يستخدم تقنيات التصوير والتحليل (3D) ثلاثي الأبعاد لتصور وتحديد حجم الميتوكوندريا العصب على حدة. التقنيات قابلة للتطبيق على حالات أخرى حيث يتم استخدام إشارة الفلورسنت واحدة لعزل مجموعة فرعية بيانات من آخر إشارة الفلورسنت.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

والهدف من هذا البروتوكول دراسة الميتوكوندريا داخل الألياف العصبية إينترايبيديرمال. ولذلك، تم تطوير تقنيات تصوير وتحليل 3D لعزل الميتوكوندريا العصب على حدة وتقييم التعديلات التي يسببها مرض الميتوكوندريا في تلميح القاصي من الأعصاب الحسية. يجمع البروتوكول immunohistochemistry الأسفار والفحص المجهري [كنفوكل] وتقنيات تحليل الصور الثلاثية الأبعاد لتصور وتحديد حجم الميتوكوندريا العصب على حدة. يتم تعريف المعلمات مفصلة طوال الإجراءات بغية تقديم مثالاً ملموسا على كيفية استخدام هذه التقنيات لعزل الميتوكوندريا العصب على حدة. الأجسام المضادة استخدمت لتسمية العصب وإشارات المتقدرية داخل أقسام الأنسجة الجلد لكمه الخزعات، الذي أعقب الفلورة غير المباشرة وضع تصور للأعصاب والميتوكوندريا مع إشارة فلورية الخضراء والحمراء على التوالي. الصور ض سلسلة تم الحصول عليها مع الفحص المجهري [كنفوكل] وتم استخدام برمجيات التحليل ثلاثي الأبعاد لمعالجة وتحليل الإشارات. فإنه ليس من الضروري لمتابعة المعلمات المحدد وصف داخل، ولكن من المهم أن تكون متسقة مع تلك التي اختارت في جميع أنحاء تلطيخ، اقتناء وتحليل الخطوات. أن قوة هذا البروتوكول هو أنها تنطبق على مجموعة متنوعة من الظروف حيث يتم استخدام إشارة الفلورسنت واحدة لعزل الإشارات الأخرى التي وإلا سيكون من المستحيل لدراسة وحدها.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الميتوكوندريا تخدم الوظائف الخلوية الحيوية التي تشمل إنتاج طاقة الخلية، التخزين المؤقت الكالسيوم، وتنظم نخرية و apoptotic خلية الموت1،،من23. الجهاز العصبي، ارتفاع معدل الأيض مقارنة ب الجسم4 ، مما يوحي بأن الخلايا العصبية تولد درجة عالية من الطاقة الخلوية في شكل أدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP) عن طريق التنفس المتقدرية. هناك كثير من وثائق الإثبات أن وظائف الخلايا العصبية تعتمد على ATP5، لا سيما في نهايات6. ولذلك، من المهم توزيع الميتوكوندريا في الخلايا العصبية.

الغاية ينظم على مدى السنوات العشر الماضية كثير من المعلومات قد أظهرت أن الاتجار بالأشخاص والتحام الخلايا العصبية الميتوكوندريا. وتشارك البروتينات موتور في توزيع الميتوكوندريا إلى مقصورات الهاتف الخلوي محددة في جميع أنحاء العصبية. الاتجار في الميتوكوندريا بأهمية خاصة نظراً لأن الخلايا العصبية المشروع محاور عصبية و dendrites بعيداً عن سوما. المقام الأول المباشر البروتينات موتور Kinesin anterograde (بعيداً عن سوما) الاتجار في الميتوكوندريا على طول microtubules بينما دينين البروتينات موتور الحركة الرجعية (نحو سوما) مباشرة7،8،9 , 10-وهناك الإشارات الخلوية هذا غشاء الميتوكوندريا المحتملة والتوصيل الاندفاع التي تؤثر على وجود واتجاه المتقدرية الاتجار11،،من1213.

بالإضافة إلى نقل الميتوكوندريا، هناك بروتينات متخصصة لتعريب الميتوكوندريا إلى مقصورات الهاتف الخلوي محددة التي لها مطالب الطاقة العالية، مثل رانفييه للعقد ونهايات8،14، 17-والواقع أن أغلبية الميتوكوندريا ضمن محاور عصبية من غير متحركة9،،من1318. البروتينات المتخصصة مثل الميتوكوندريا مرساة سينتافيلين إلى ميكروتوبوليس على طول محاور عصبية بينما البروتينات الأخرى الارتساء الميتوكوندريا أكتين سيتوسكيليتون19–21. أبلغ عوامل النمو والايونات مثل الكالسيوم لدعم وقف حركة الميتوكوندريا إلى ترجمة لها إلى المناطق التي تكون فيها الحاجة إليها21،،من2223.

مجتمعة، بالاتجار بالبشر والارساء من الميتوكوندريا حيوية بالنسبة لوظيفة مناسبة للخلايا العصبية. ودعما لهذه الاضطراب في الاتجار المتقدرية ارتبط مع ظروف عصبية عدة بما في ذلك مرض الزهايمر، التصلب العضلي الجانبي، شاركو-ماري الأسنان المرض، ومرض هنتنغتون، وراثية التشنجي خزل سفلي، وضمور الألياف البصرية15،،من2425،،من2627. ركزت الدراسات التي أجريت مؤخرا على خلل mitochondrial وعلم الأمراض كآلية محتملة لاعتلال الأعصاب السكري، فقدان الحواس المرتبطة بمرض السكري28،،من2930،31 ،،من3233. الافتراض أن مرض السكري يغير توزيع الميتوكوندريا ضمن إسقاطات حسية تنتهي الأعصاب الجلدي. ولذلك، تم تطوير تقنية لتصور وتحديد حجم الميتوكوندريا داخل الألياف العصبية إينترايبيديرمال (إيينفس)، نصائح القاصي من العقدة الجذر الظهرية أفيرينتس الحسية. الأسلوب الذي يجمع بين immunohistochemistry الأسفار الخاصة mitochondrial وتسميات الألياف العصبية مجهرية [كنفوكل] اقتناء ض سلسلة من الإشارات مع برمجيات التحليل صورة 3D قوية لقياس توزيع العصب على حدة الميتوكوندريا من خزعات لكمه الجلدية البشرية لتحقيق هذا الهدف.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم الحصول على خزعات الجلد لكمه من المواضيع التي تم تجنيدهم من شبكة كبيرة من رعاية الأولية المستندة إلى المجتمع المحلي في مركز السكري جامعة يوتا (سولت لايك سيتي، يوتا). هذه الدراسة التي وافق عليها مجلس جامعة ميشيغان الاستعراض المؤسسي والامتثال لمبادئ "إعلان هلسنكي". كتب تم الحصول على الموافقة المستنيرة من كل موضوع قبل اختبار-

1. إيمونوهيستوتشيميستري fluorescence

  1. تحضير لكمه خزعات للألياف العصب إينترايبيديرمال إيمونوهيستوتشيميستري:
    1. الجلد 3 مم إجراء خزعات بالطب للموظفين ووضع خزعة كله في 1.5 مل Zamboni ' s الحل مثبت (بارافورمالدهيد 2%، حامض البكريك 0.3% المشبعة بالفوسفات مخزنة المالحة (PBS)، الرقم الهيدروجيني 7.4) في 4 درجات مئوية بين عشية وضحاها.
    2. شطف عينات بمحلول السكروز 30% في برنامج تلفزيوني في 4 درجات مئوية لح 16-24 أو حتى المصارف العينة-
    3. Embed العينات في درجة حرارة القطع الأمثل مجمع (OCT) استخدام كريومولد. تجري خزعة كله 3 مم بالبشرة أسفل في القالب وملء القالب مع حوالي 2 مل من أكتوبر الجاري تجميد العفن في سحق الثلج الجاف. مخزن في-80 درجة مئوية حتى جاهزة للاستخدام-
    4. قطع 50 ميكرومتر سميكة من كريوستات باستخدام المقاطع العرضية وتخزينها في الآبار الفردية من صفيحة 96-كذلك استخدام حل تخزين المذيب ميليلتر 180 لكل بئر (30% جليكول، والغليسيرول 30% في برنامج تلفزيوني). الإرشادات التالية من أجل 8 آبار للوحة جيدا 96. وصمة عار المقاطع من كل موقع خزعة 200-300 ميكرون بعيداً عن بعضها البعض.

يوم 1:

  1. آرو وسم غير محددة من الطبقة القرنية:
    1. لوحة التسمية 96-جيدا كما هو مبين في الشكل 1.
    2. بيبيت 150 ميليلتر من إشارة الأسهم محسن الحل للحد من الربط غير محدد من الأجسام المضادة الثانوية 34 ، 35 في كل بئر. تحويل الأقسام إلى إشارة محسن الحل باستخدام حلقة إينوكولاتينج.
      ملاحظة: العناية أثناء العمل مع الأنسجة لتجنب إتلاف أو تمزيق أقسام الأنسجة. يبقى في حل إشارة محسن لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة في شقة الروك.
    3. شطف تحضير الآبار في الصفوف 2 و 3 من لوحة 96-جيدا بإضافة 150 ميليلتر من 1 × الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) في كل بئر-
    4. نقل المقاطع بعناية في الصف 2 والشطف في 1 x برنامج تلفزيوني لمدة 10 دقائق في درجة حرارة الغرفة-
    5. الشطف مرة ثانية في برنامج تلفزيوني 1 x لمدة 10 دقائق في درجة حرارة الغرفة (صف 3)-
  2. إعداد 5% البقري ألبومين المصل (BSA) عرقلة الحل:
    1. إعداد 5% إعاقة الحل الذي يحتوي على 5% جيش صرب البوسنة و 0.3% X تريتون هي تفرخ 100 (تكساس-100) في 0.1 M برنامج تلفزيوني (انظر الجدول 1) بينما المقاطع في إشارة محسن الحل. جيش صرب البوسنة لا يذهب إلى الحل بسهولة. الحل دوامة حتى جيش صرب البوسنة تماما يذوب.
    2. إعداد الآبار حظر في صف 4 من لوحة 96-جيدا بإضافة 150 ميليلتر من عرقلة الحل في كل بئر جيش صرب البوسنة 5 ٪.
    3. تحويل الأقسام إلى الآبار الفردية لعرقلة حل جيش صرب البوسنة 5% واحتضان الأقسام في عرقلة الحل ح 1-2 في درجة حرارة الغرفة في شقة الروك جيش صرب البوسنة 5 ٪.
  3. إعداد جيش صرب البوسنة 1% الشطف الحل وتمييع الأجسام الأولية:
    1. أقسام TX-100 في 0.1 M برنامج تلفزيوني (انظر الجدول 2) أثناء تحضير 1% الشطف الحل الذي يحتوي على جيش صرب البوسنة 1% و 0.3% هي حضانة في حل حظر جيش صرب البوسنة 5%. جيش صرب البوسنة لا يذهب إلى الحل بسهولة. الحل دوامة حتى جيش صرب البوسنة تماما يذوب.
    2. تمييع الأجسام الأولية في محلول الشطف جيش صرب البوسنة 1% بينما هي تفرخ المقاطع في حل حظر جيش صرب البوسنة 5%.
      1. 1,500 ميليلتر من حل جسم الأولية وإضافة إلى كل جيدا في الصف 5.
      2. تمييع الأجسام المضادة الأولية: استخدام التسمية الخاصة بالاعصاب، أرنب [بولكلونل] الجينات المضادة البروتين المنتج 9.5 (PGP9.5) في 1:1، 000. استخدم التسمية المحددة الميتوكوندريا، الماوس [مونوكلونل] بيروفات المضادة نازعة E2/E3bp جسم (PDH) في 1: 100 في جيش صرب البوسنة 1% الشطف الحل.
  4. جسم الابتدائي تحضير:
    1. بيبيت 150 ميليلتر من جسم الأولية في كل صف أيضا في 5 لوحة 96-جيدا-
    2. باستخدام أداة التكرار الحلقي، نقل أقسام من عرقلة الحل (صف 4) في الصف 5 تحتوي على جسم الأولية.
    3. التفاف لوحة محكم مع بارافيلم الحفاظ عليه من الجفاف.
    4. وضع العينات في الروك المسطحة في درجة حرارة الغرفة ح 1، وثم احتضان عينات من 4 درجة مئوية في الروك شقة بين عشية وضحاها.

يوم 2:

  1. شطف العينات:
    1. تحضير شطف الآبار في الصفوف 6 و 7 و 8 من لوحة 96-جيدا بإضافة 150 ميليلتر من جيش صرب البوسنة 1% الشطف الحل في كل بئر-
      2. تحويل الأقسام إلى جيش صرب البوسنة 1% الأول محلول الشطف (الصف 6)
    2. واحتضانها ح 1 في درجة حرارة الغرفة. كرر يشطف أكثر من مرتين خلال حضانة المقاطع في جيش صرب البوسنة 1% الشطف الحل في الصفوف 7 و 8 لكل 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة-
  2. تمييع الأجسام المضادة الثانوية في جيش صرب البوسنة 1% الشطف الحل:
    1. ميليلتر 1,500 تجعل من حل جسم الثانوية بينما هي تفرخ المقاطع في الشطف الأخير لجيش صرب البوسنة 1% الشطف الحل (صف 8)-
    2. تمييع الأجسام المضادة الثانوية: ل PGP9.5 (جسم الأرنب المضادة الماعز مترافق الفلورية الخضراء، 1: 1000) ل PDH (الماعز مترافق الأحمر نيون المضادة الماوس، 1:1، 000) في جيش صرب البوسنة 1% الشطف الحل.
  3. جسم تحضير الثانوي:
    1. بيبيت 150 ميليلتر من جسم الثانوية في الصف 9 من لوحة 96-جيدا-
    2. بلطف نقل الأقسام من جيش صرب البوسنة 1% الشطف الحل (صف 8) في آبار جسم الثانوي (الصف 9)-
    3. استخدام بارافيلم، التفاف لوحة محكم الحفاظ عليه من الجفاف. وتغطي برقائق الألومنيوم. وضع العينات في الروك المسطحة في درجة حرارة الغرفة ح 1، وثم احتضان عينات ˚C 4 في الروك مسطحة بين عشية وضحاها.

يوم 3:

  1. تحضير تنظيف 1 x PBS بعملية التصفية من خلال عامل تصفية 0.22 ميكرومتر:
    1. بيبيت 150 ميليلتر من تصفية 1 x PBS إلى الصف 10 و 11 و 12-
      2. نقل العينات إلى الصف 10
    2. وشطف في برنامج تلفزيوني x 1 ح 1 في درجة حرارة الغرفة. تغطية لوحة 96-جيدا مع رقائق الألومنيوم ومكان في شقة الروك أثناء الشطف. تكرار بتصفية 1 × شطف PBS اثنين مرات أكثر 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة في صفوف 11 و 12-
  2. إعداد شرائح المجهر لتركيب أبواب الأنسجة:
    1. ميليلتر 50 مكان لتصفية PBS x 1 على شريحة.
      2. إسقاط
    2. نقل قسم من س 1 برنامج تلفزيوني (الصف 12) إلى 50 ميليلتر. بعناية ضع المقطع في الإسقاط لبرنامج تلفزيوني التي تتكشف في الأنسجة والتسوية بلطف على شريحة الزجاج. قم بإزالة برنامج تلفزيوني الزائدة مع ماصة زجاجية لتجنب إضعاف الكاشف المتصاعدة. لا تلمس الأبواب مع لمبة زجاجية.
    3. بيبيت 1-2 قطرات من كاشف المتصاعدة التي تتضمن DAPI مباشرة على رأس الفرع المتعلق باستخدام شريحة مجهر الرعاية أن لا تخل بالتوجه للقسم. بلطف ضع ساترة زجاجية مجهر 50 مم x 24 مم #1.5 على المقطع.
      4. مسح أي فقاعات الهواء التي تشكلت أثناء وضع ساترة
    4. ومسح السائل الزائدة قبالة حواف ساترة. إعداد شريحة جديدة، ثم كرر تصاعد العلاقات العامةأوسيس لكل مقطع.
    5. علاج جاف وسائل الإعلام المتزايدة بوضع الشرائح في ليل مظلم في درجة حرارة الغرفة. نقل الشرائح إلى 4 درجة مئوية لفترات قصيرة (1-2 أسابيع) أو-20 درجة مئوية للتخزين طويل الأجل (أكثر من أسبوعين)-
      ملاحظة: عناصر سلبية حذف الأجسام الأولية ل PGP9.5 أو PDH في خطوة 1.4.2.2 وعرض لا تسمية مميزة للأعصاب أو الميتوكوندريا في البشرة. نفذت عناصر إيجابية PDH الضد لإثبات أنها تسميات جميع الميتوكوندريا (البيانات لا تظهر). عناصر إيجابية وأجريت على الماوس الأساسي مثقف الجذرية الظهرية العقدة العصبية التي ترانسدوسيد مع باكولوفيروس إلى الميتوكوندريا التسمية مع إشارة أخضر نيون بروتين (بروتينات فلورية خضراء) وثم الثابتة وملطخة بجسم PDH والأحمر نيون الجسم المضاد الثانوي. كانت جميع الميتوكوندريا التي تم الإعراب عن التجارة والنقل المشترك المسمى مع العلامة الحمراء ل PDH immunohistochemistry (البيانات لا تظهر).

2. تصوير [كنفوكل]

  1. إجراء تصوير [كنفوكل]:
    1. جمع الصور باستخدام ليزر المسح مجهر [كنفوكل] مع 40 × الهدف النفط-الغمر (1.25 الفتحة العددية (السلطة الوطنية)) المتعلق مجهر مقلوب.
      1. في كل المستوى البؤري تسلسلياً الحصول على إشارات الفلورسنت:
        الأنوية: λ الإثارة = 405 nm, λ تصفية الانبعاثات الطيفية = 420-480 نانومتر
        الألياف العصبية: λ الإثارة = 488 نانومتر، والانبعاثات الطيفية تصفية λ = 505-560 نانومتر
        ميتش أوندريا: الإثارة λ = 543 شمال البحر الأبيض المتوسط، والانبعاثات الطيفية تصفية λ = 606-670 نانومتر
    2. دخول البرنامج مجهر مسح المعلمات التالية: تفحص معدل 600 هرتز مع الإطار المتوسط 2 والتكبير من 2.2؛ القرار كثافة 12-بت (4096 رمادي مستويات).
      1. مجموعة البرمجيات المجهر للقرار الأمثل الأفقي (دقة المسح الضوئي = 1,024 x 1,024) وتمزيقها القرار المحوري/ضوئية (الفتحة [كنفوكل] = 1 وحدة مهواة (الاتحاد الأفريقي) مع z-خطوة بحجم 210 nm).
        ملاحظة: القرار XYZ الناتج هو 172.2 نيوتن متر x 172.2 نانومتر نانومتر x 210 مع صورة بحجم ميكرون 176.1 x µm 176.1 x 30-50 ميكرون.
    3. تنشيط تفحص حية للإشارات العصبية (الأخضر-الأسفار) وقم بضبط z-التركيز إيجاد وتعيين العلوي وانخفاض الطائرات المحورية في برنامج مجهر التي تشمل الإشارات العصبية داخل قسم الأنسجة. ض-النطاق الإجمالي هو عادة 30-50 ميكرون لقسم أنسجة 50 ميكرومتر.
    4. تدوير ميدان المسح الضوئي مع برنامج مجهر أثناء تفحص يعيش حيث أن البشرة يوضع أفقياً أو عمودياً في الصورة-
    5. مسح كل إشارة على حدة وضبط الكاشف (أنبوب ضوئي، PMT) الجهد وإزاحة لتقليل/إزالة أي فوق وتحت مشبعة بكسل-
      ملاحظة: مسح مرات مع المعلمات أعلاه يستغرق حوالي 20-40 دقيقة تبعاً لعدد الشرائح z.

3. 3D التصور وتحليل الميتوكوندريا داخل الإنسان الألياف العصبية إينترايبيديرمال

  1. عزل البشرة ثلاثي الأبعاد:
    1. تكرار الصورة الأصلية واستخدام أقصى شدتها الإسقاط (تمديد عرض التركيز) للصورة لتحديد وعزل البشرة.
    2. استخدام منطقة أداة الفائدة للتتبع على طول الحواف العلوية والسفلية للبشرة لإزالة المناطق غير المرغوب فيها مثل الطبقة القرنية والادمه التي غائبة من الألياف العصبية إينترايبيديرمال. المحاصيل لهذا التحديد-
  2. Deconvolution الاستخدام على الأعصاب وإشارات الفلورسنت المتقدرية:
    ملاحظة: Deconvolution يساعد على استعادة سلامة إشارات الفلورسنت. استعادة المستخدمة في هذا البروتوكول يتم استدعاء deconvolution الأعمى لأنه يستخدم إشارات مضيئة في الصور لتحديد مدى انتشار الإشارات من مصدرها الأصلي (نقطة انتشار وظيفة). يحسن العملية إشارة القرار بإعادة تعيين إشارة تنتشر مرة أخرى إلى موقعة الأصلي. نشر
    1. حساب نقطة دالة (PSF) للإشارة العصبية الفلورية الخضراء (الأخضر-الأسفار) مع المعلمات التالية: تعيين
      1. PSF المحسوب إلى [كنفوكل]. تعيين معامل الانكسار المتوسط إلى الفتحة 1.515 والعددية إلى 1.25. تعيين للكشف عن الثقب لوحدة مهواة 1 (A.U.). ليزر مجموعة الإثارة الطول الموجي للطول الموجي نانومتر والانبعاثات 488 إلى 515 نانومتر.
    2. حساب PSF للإشارة المتقدرية الفلورسنت الأحمر (الأحمر-الأسفار) مع المعلمات التالية:
      1. مجموعة حساب PSF إلى [كنفوكل]. تعيين معامل الانكسار المتوسط إلى الفتحة 1.515 والعددية إلى 1.25. تعيين للكشف عن الثقب 1 الاتحاد الأفريقي. ليزر مجموعة الإثارة الطول الموجي للطول الموجي نانومتر والانبعاثات 543 إلى 617 نانومتر.
    3. تعيين أمثلية إشارات الفلورسنت العصب والميتوكوندريا من deconvolution استخدام بسفس المقابلة المذكورة أعلاه وميزة استعادة متكررة في الثقة 100% وحدا تكرار من 10 دورات.
  3. إنشاء الأسطح الخاصة بالاعصاب:
    1. الاستخدام " إنشاء سطح " وحدد أداة لجعل سطح صلب الأعصاب من ديكونفولفيد الأخضر-فلوري الثانوي العلامات PGP9.5 الأعصاب.
    2. أزل " السلس " ميزة واستخدام ميزة الكثافة المطلقة لتعيين الحد الأدنى للإشارات العصبية نظراً لأنه أكثر إشراقا بكثير من الأسفار الخلفية.
    3. استخدام ميزة الكثافة المطلقة لتعيين الحد الأدنى للإشارات العصبية نظراً لأنه أكثر إشراقا بكثير من الأسفار الخلفية. قم بتعيين قيمة عتبة منخفضة بما فيه الكفاية للتعرف بدقة على الأعصاب-
    4. عامل تصفية على الأسطح الصغيرة، غير العصب استناداً إلى حجم.
      ملاحظة: إذا لزم الأمر، تحرير يدوياً من الأسطح غير العصب إضافية داخل " تحرير " علامة التبويب بالضغط على مفتاح التحكم لتسليط الضوء على كائنات متعددة وحذفها ثم مع المفتاح Delete.
  4. عزل إشارة المتقدرية الفلورسنت العصب على حدة:
    1. حدد علامة التبويب تحرير سطح العصب لعرض " "خصائص قناع" " الميزة. يستخدم سطح العصبية التي تم إنشاؤها في الخطوات 3.3 عزل الميتوكوندريا داخل تلك الأعصاب بعيداً عن إشارات المتقدرية المرتبطة بالخلايا الكيراتينيه.
    2. " "كل قناع" ' زر يفتح " قناة قناع " النافذة، اختر الإشارة الأحمر نيون ديكونفولفيد من السحب لأسفل القائمة تحت " "اختيار القناة" " للإشارة المتقدرية.
    3. انقر فوق في مربع لوضع علامة الاختيار " قناة مكررة قبل تطبيق قناع " الخيار.
      4. زر
    4. انقر على الراديو أمام " المستمر داخل/خارج " خيار "قناع الإعدادات" وانقر فوق في المربع لوضع علامة اختيار " تعيين فوكسل خارج أرض " الخيار واكتب 0.00 للقيمة. انقر فوق الزر موافق لإنشاء القناة الجديدة التي تمثل إشارات المتقدرية داخل سطح العصب.
  5. إنشاء الأسطح الخاصة الميتوكوندريا:
    1. استخدامها " إنشاء سطح " أداة لجعل سطح صلب من الميتوكوندريا من قناة الفلورسنت التي أنشئت حديثا من إشارات المتقدرية العصب على حدة من خطوات 3.4.
    2. قم بإلغاء تحديد " السلس " ميزة وحدد " خلفية الطرح " ميزة تعيين العتبة. تستخدم هذه الميزة على النقيض المحلية حول إشارة المتقدرية لتحديد الميتوكوندريا من الخلفية.
    3. تعيين قيمة عتبة منخفضة بما فيه الكفاية للتعرف بدقة على الميتوكوندريا. في هذا المثال تم تعيين عتبة أدنى في 2000 لمقياس 16-بت (65,536)-
      4. تصفية
    4. الأسطح المتقدرية استناداً إلى حجم. في هذا المثال، تم تعيين الحد فوكسل فوكسيلس 1.0، وهو أدنى الحد الممكن. إذا لزم الأمر، بتحرير يدوياً على الأسطح غير الميتوكوندريا داخل " تحرير " علامة التبويب بالضغط على مفتاح التحكم لتحديد كائنات متعددة وحذفها ثم مع المفتاح Delete.
      ملاحظة: في بعض الأحيان، البرنامج سيقوم بإنشاء الأسطح التي لا ترتبط مع إشارة المتقدرية فلورسنت يمكن تمييزها. وفي هذه الحالات، من الممكن إزالتها مع " تحرير " التبويب
  6. التصدير وحساب قيم شكلي لتحليل:
    1. تصدير قيم للأعصاب والسطوح المتقدرية من " الإحصاءات " التبويب لمزيد من التحليل مع برامج جداول البيانات الإلكترونية.
    2. تصدير قيم وحدة التخزين لكل من الأعصاب والسطوح المتقدرية.
    3. إحصاء عدد الألياف العصبية الفردية الموجودة في كل صورة وسجل القيمة في جدول البيانات الإلكترونية-
    4. لكل صورة، وحساب القيم المحتملة التالية للتحليل في جدول البيانات الإلكترونية:
      1. مجموع وحدات التخزين لجميع الأسطح الأعصاب-
      2. عامل تصفية على السطوح المتقدرية العصب على حدة أدناه حجم أقل من 0.02 ميكرومتر 3 وبن السطوح بالحجم. على سبيل المثال، استخدام صناديق مثل 0.02-0.04، 0.04-0.08، 0.08-0.16، 0.16-0.32، 0.32-0.64، 0.64-1.28، 1.28-2.56، أكبر من 2.56 ميكرومتر 3-
        ملاحظة: تم تعيين الحد الأدنى لحجم الميتوكوندريا إلى 0.02 ميكرومتر 3 استناداً إلى وحدات تخزين تم نشرها مسبقاً من ميتونتشودريا 36 ، ، من 37 38-
      3. عد عدد الأسطح المتقدرية العصب على حدة داخل كل بن والعدد الإجمالي للسطوح عبر صناديق (0.02-أكبر من 2.56 ميكرومتر 3)-
      4. حساب نسبة السطوح المتقدرية العصب على حدة في كل بن. استخدام العد كل بن مقسوماً على العدد الكلي للأسطح الميتوكوندريا.
      5. مجموع وحدات التخزين لكل الأسطح المتقدرية العصب محددة.
      6. حساب نسبة العصب مع إشارة المتقدرية بقسمة حجم مجموع الأعصاب السطحية على مجموع كافة وحدات التخزين السطحي المتقدرية.
      7. حساب عدد الميتوكوندريا الواحدة حجم العصب بقسمة حجم سطح العصب مجموع عدد جميع الأسطح المتقدرية.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

والتصور والتقدير الكمي الميتوكوندريا داخل إيينفس البشرية

إيمونوهيستوتشيميستري fluorescence يسمح للعلامات المتزامنة لإشارات متعددة داخل خزعات الجلد البشري لتصور الأعصاب، الميتوكوندريا، ونوى. صفيحة 96-جيدا طريقة ملائمة لتنظيم الخطوات في الإجراء إيمونوهيستوتشيميستري. الشكل 1 يبين أن هذه الحسابات التكوين لما يصل إلى 8 أقسام بحيث تتم معالجتها من خلال مراحل 12 من الحلول. طريقة التعويم الح...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ويهدف هذا البروتوكول إلى عزل وتحديد وتحليل حجم وتوزيع الميتوكوندريا العصب على حدة داخل إيينفس في 3D من خزعات الجلد البشري. وهناك العديد من الخطوات الهامة في البروتوكول. تم تصميم إيمونوهيستوتشيميستري fluorescence التعويم الحر لوصمة عار وتحليل إشارات متعددة في كل عينة، تقديم منهجية أكثر تنوعاً للبحوث الاستكشافية44،45. يسمح هذا الإجراء للاختراق من الأجسام المضادة في الأنسجة بغية تحقيق أقصى قدر من الحصول على الصور في جميع أنحاء القسم 50 ميكرومتر، هو أمر ضروري للحصول ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

لا يوجد تضارب في المصالح تعلن.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هذا العمل كان يدعمها المعاهد الوطنية للصحة منح K08 NS061039-01A2، "البرنامج" "أبحاث الأمراض العصبية" & الاكتشاف، وا الفريد توبمان معهد الأبحاث الطبية في جامعة ميشيغان. هذا العمل المستخدمة في مورفولوجيا وصورة التحليل الأساسية لمركز أبحاث مرض السكري ميشيغان، تموله "المعاهد الوطنية للصحة منحة" 5 ف 90 كمبوتشيا الديمقراطية-20572 من المعهد الوطني لمرض السكري والجهاز الهضمي وأمراض الكلي. الكتاب يود أن يشكر ج. روبنسون المفرد وألف غوردون سميث (جامعة يوتا) على التبرع السخي من عينات الجلد البشري.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
المثبتة من زامبوني، ميدلتون ، ويسكونسن & nbsp ؛1459A2٪ بارافورمالدهيد ، 0.2٪ حمض البيكريك المشبع في محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) ، درجة الحموضة 7.4
10x محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS)   ؛فيشر ساينتفيك ، بيتسبرغ ، بنسلفانياBP399-4لتكوين 1x PBS
Image-iT FX Signal EnhancerThermoFisher Scientific ، Waltham ، MassachusettsI36933يعزز إشارات صبغة Alexa Fluor عن طريق تقليل منتج
الجينات المضادة للبروتين غير المحدد 9.5 الجسم المضاد (أرنب متعدد النسيلة )Proteintech Group Inc. روزمونت ، إلينوي14730-1-APيتم اختصاره باسم PGP9.5 ، ويحل محل AbD Serotec (Cat. رقم 7863-0504) الجسم المضاد
المضاد لنازعة هيدروجين البيروفات E2 / E3bp الأجسام المضادة (فأر أحادي النسيلة )abcam ، كامبريدج ، ماساتشوستسab110333اختصار باسم PDH
Goat المضاد للفأر الجسم المضاد الثانوي Alexa Fluor 594 المترافقThermoFisher Scientific ، والثام ، ماساتشوستسA-11034المضاد الثانوي المترافق
الماعز المضاد للأرانب الجسم المضاد الثانوي Alexa Fluor 488 المترافقThermoFisher Scientific ، Waltham ، ماساتشوستسA-11032ألبومين الأجسام المضادة الثانوية المترافقة ذات الفلورسنت
الأخضر ، من مصل البقرSigma-Aldrich ، سانت لويس ، MOA7906-100المختصر باسم BSA
Triton X- 100Sigma-Aldrich ، سانت لويس ، MOT9284المختصر باسم TX-100
0.22 & micro ؛ م فلترEMD Millipore ، Billerica
MA		MILLEX GP SLGP 033NS0.22 & micro ؛ مرشح m Millipore
Parafilm MFisher Scientific ، بيتسبرغ ، بنسلفانيا13-374-10Curwood Wisconsin LLC Parafilm M (PM-996) حلقة
Loop Fisher Scientific غير المعايرة ، بيتسبرغ ، بنسلفانيا22-032092التلقيح بواسطة Decon LeLoop (MP 199-25)
96-well Assay PlateCorning Incorporated ، Corning ، NY360396 بئر لوحة قاع مسطحة
إطالة كاشف الذهب المضاد للبهتان مع DAPIThermoFisher Scientific ، Waltham ، MassachusettsP-36931DAPI تلطيخ النوى
غطاء المجهر زجاجي 50 × 24 ممفيشر Scientific ، بيتسبرغ ، بنسلفانيا12-544ECoverslips
Superfrost Plus Microscope SlidesFisher Scientific ، بيتسبرغ ، بنسلفانيا12-550-15شرائح مجهر
Leica SP5 مجهر متحد البؤر المسح بالليزرLeica Microsystems ، بوفالو Grove, ILSP5المجهر متحد البؤر
Volocity x64 Software Perkin Elmer ، Waltham ، MAالإصدار 4.4.0يستخدم برنامج Volocity للخطوتين 3.1 و 3.2 في بروتوكول معالجة الصور
Imaris x64 3 Dimensional Analysis SoftwareBitplane ، Concord ، MAالإصدار 7.7.1يستخدم برنامج Imaris للخطوات من 3.3 إلى 3.5 في بروتوكول تحليل الصور
ExcelMicrosoft و Redmond وWA إصدار Office 2013يتم استخدام برنامج جداول بيانات Excel للخطوة 3.6 في البروتوكول لتلخيص الميزات المورفومترية
مركب درجة حرارة القطع الأمثلSakura Finetek USA، Inc.، Torrance، CA4583المختصر باسم OCT
Leica CryostatLeica Biosystems، Buffalo Grove، ILCM1850Cryostat للقطع 50 & micro; م الأقسام
CellLight Mitochondria-GFP ، BacMam 2.0ThermoFisher Scientific ، Waltham ، MassachusettsC10600تستخدم كعنصر تحكم إيجابي لتسمية الميتوكوندريا بإشارة فلورية خضراء
2٪ إمدادات الوافدين الجدد الجسم الفلوري الأحمر حلقة

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Nicholls, D. G., Budd, S. L. Mitochondria and neuronal survival. Physiol Rev. 80 (1), 315-360 (2000).
  2. Chan, D. C. Mitochondrial fusion and fission in mammals. Ann Rev Cell Dev Biol. 22, 79-99 (2006).
  3. Ni, H. M., Williams, J. A., Ding, W. X. Mitochondrial dynamics and mitochondrial quality control. Redox Biol. 4 (C), 6-13 (2015).
  4. Mink, J. W., Blumenschine, R. J., Adams, D. B. Ratio of central nervous system to body metabolism in vertebrates: its constancy and functional basis. Am J Physiol. 241 (3), R203-R212 (1981).
  5. Ames, A. 3rd CNS energy metabolism as related to function. Brain Res Brain Res Rev. 34 (1-2), 42-68 (2000).
  6. Harris, J. J., Jolivet, R., Attwell, D. Synaptic energy use and supply. Neuron. 75 (5), 762-777 (2012).
  7. Hollenbeck, P. J. The pattern and mechanism of mitochondrial transport in axons. Front Biosci. 1, d91-d102 (1996).
  8. Cai, Q., Sheng, Z. H. Mitochondrial transport and docking in axons. Exp Neurol. 218 (2), 257-267 (2009).
  9. Schwarz, T. L. Mitochondrial trafficking in neurons. Cold Spring Harb Perspect Biol. 5 (6), (2013).
  10. Saxton, W. M., Hollenbeck, P. J. The axonal transport of mitochondria. J Cell Sci. 125 (Pt 9), 2095-2104 (2012).
  11. Sajic, M., et al. Impulse conduction increases mitochondrial transport in adult mammalian peripheral nerves in vivo. PLoS Biol. 11 (12), e1001754(2013).
  12. Ohno, N., et al. Myelination and axonal electrical activity modulate the distribution and motility of mitochondria at CNS nodes of ranvier. J Neurosci. 31 (20), 7249-7258 (2011).
  13. Miller, K. E., Sheetz, M. P. Axonal mitochondrial transport and potential are correlated. J Cell Sci. 117, 2791-2804 (2004).
  14. Macaskill, A. F., et al. Miro1 is a calcium sensor for glutamate receptor-dependent localization of mitochondria at synapses. Neuron. 61 (4), 541-555 (2009).
  15. Sheng, Z. H., Cai, Q. Mitochondrial transport in neurons: impact on synaptic homeostasis and neurodegeneration. Nat Rev Neurosci. 13 (2), 77-93 (2012).
  16. Berthold, C. H., Fabricius, C., Rydmark, M., Andersen, B. Axoplasmic organelles at nodes of Ranvier. I. Occurrence and distribution in large myelinated spinal root axons of the adult cat. J Neurocytol. 22 (11), 925-940 (1993).
  17. Fabricius, C., Berthold, C. H., Rydmark, M. Axoplasmic organelles at nodes of Ranvier. II. Occurrence and distribution in large myelinated spinal cord axons of the adult cat. J Neurocytol. 22 (11), 941-954 (1993).
  18. Hollenbeck, P. J., Saxton, W. M. The axonal transport of mitochondria. J Cell Sci. 118 (Pt 23), 5411-5419 (2005).
  19. Ohno, N., et al. Mitochondrial immobilization mediated by syntaphilin facilitates survival of demyelinated axons. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (27), 9953-9958 (2014).
  20. Kang, J. S., et al. Docking of axonal mitochondria by syntaphilin controls their mobility and affects short-term facilitation. Cell. 132 (1), 137-148 (2008).
  21. Chada, S. R., Hollenbeck, P. J. Nerve growth factor signaling regulates motility and docking of axonal mitochondria. Curr Biol. 14, 1272-1276 (2004).
  22. Yi, M., Weaver, D., Hajnoczky, G. Control of mitochondrial motility and distribution by the calcium signal: a homeostatic circuit. J Cell Biol. 167 (4), 661-672 (2004).
  23. Saotome, M., et al. Bidirectional Ca2+-dependent control of mitochondrial dynamics by the Miro GTPase. Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (52), 20728-20733 (2008).
  24. Schon, E. A., Przedborski, S. Mitochondria: the next (neurode)generation. Neuron. 70 (6), 1033-1053 (2011).
  25. Petrozzi, L., Ricci, G., Giglioli, N. J., Siciliano, G., Mancuso, M. Mitochondria and neurodegeneration. Biosci Rep. 27 (1-3), 87-104 (2007).
  26. Maresca, A., la Morgia, C., Caporali, L., Valentino, M. L., Carelli, V. The optic nerve: a "mito-window" on mitochondrial neurodegeneration. Mol Cell Neurosci. 55, 62-76 (2013).
  27. Su, B., et al. Abnormal mitochondrial dynamics and neurodegenerative diseases. Biochim Biophys Acta. 1802 (1), 135-142 (2010).
  28. Vincent, A. M., et al. Mitochondrial biogenesis and fission in axons in cell culture and animal models of diabetic neuropathy. Acta Neuropathol. 120 (4), 477-489 (2010).
  29. Leinninger, G. M., et al. Mitochondria in DRG neurons undergo hyperglycemic mediated injury through Bim, Bax and the fission protein Drp1. Neurobiol Dis. 23, 11-22 (2006).
  30. Leinninger, G. M., Edwards, J. L., Lipshaw, M. J., Feldman, E. L. Mechanisms of disease: mitochondria as new therapeutic targets in diabetic neuropathy. Nat Clin Pract Neurol. 2, 620-628 (2006).
  31. Edwards, J. L., et al. Diabetes regulates mitochondrial biogenesis and fission in mouse neurons. Diabetologia. 53 (1), 160-169 (2010).
  32. Fernyhough, P., Roy Chowdhury, S. K., Schmidt, R. E. Mitochondrial stress and the pathogenesis of diabetic neuropathy. Expert Rev Endocrinol Metab. 5 (1), 39-49 (2010).
  33. Schmidt, R. E., Green, K. G., Snipes, L. L., Feng, D. Neuritic dystrophy and neuronopathy in Akita (Ins2(Akita)) diabetic mouse sympathetic ganglia. Exp Neurol. 216 (1), 207-218 (2009).
  34. Penna, G., et al. Human benign prostatic hyperplasia stromal cells as inducers and targets of chronic immuno-mediated inflammation. J Immunol. 182 (7), 4056-4064 (2009).
  35. Lentz, S. I., et al. Mitochondrial DNA (mtDNA) Biogenesis: Visualization and Duel Incorporation of BrdU and EdU Into Newly Synthesized mtDNA In Vitro. J Histochem Cytochem. 58 (2), 207-218 (2010).
  36. Glas, U., Bahr, G. F. Quantitative study of mitochondria in rat liver. Dry mass, wet mass, volume, and concentration of solids. J Cell Biol. 29 (3), 507-523 (1966).
  37. Bertoni-Freddari, C., et al. Morphological plasticity of synaptic mitochondria during aging. Brain Research. 628 (1-2), 193-200 (1993).
  38. Kaasik, A., Safiulina, D., Zharkovsky, A., Veksler, V. Regulation of mitochondrial matrix volume. Am J Physiol. 292 (1), C157-C163 (2007).
  39. Misgeld, T., Kerschensteiner, M., Bareyre, F. M., Burgess, R. W., Lichtman, J. W. Imaging axonal transport of mitochondria in vivo. Nat Meth. 4 (7), 559-561 (2007).
  40. Park, J. Y., et al. Mitochondrial swelling and microtubule depolymerization are associated with energy depletion in axon degeneration. Neuroscience. 238, 258-269 (2013).
  41. Court, F. A., Coleman, M. P. Mitochondria as a central sensor for axonal degenerative stimuli. Trends Neurosci. 35 (6), 364-372 (2012).
  42. Baloh, R. H. Mitochondrial dynamics and peripheral neuropathy. Neuroscientist. 14 (1), 12-18 (2008).
  43. Chowdhury, S. K., Smith, D. R., Fernyhough, P. The role of aberrant mitochondrial bioenergetics in diabetic neuropathy. Neurobiol Dis. 51, 56-65 (2013).
  44. Kennedy, W. R., Wendelschafer-Crabb, G., Johnson, T. Quantitation of epidermal nerves in diabetic neuropathy. Neurology. 47, 1042-1048 (1996).
  45. Lauria, G., et al. EFNS guidelines on the use of skin biopsy in the diagnosis of peripheral neuropathy. Eur J Neurol. 12 (10), 747-758 (2005).
  46. Lauria, G., et al. European Federation of Neurological Societies/Peripheral Nerve Society Guideline on the use of skin biopsy in the diagnosis of small fiber neuropathy. Report of a joint task force of the European Federation of Neurological Societies and the Peripheral Nerve Society. Eur J Neurol. 17 (7), e944-e909 (2010).
  47. Umapathi, T., Tan, W. L., Tan, N. C. K., Chan, Y. H. Determinants of epidermal nerve fiber density in normal individuals. Muscle Nerve. 33 (6), 742-746 (2006).
  48. Lauria, G., et al. Epidermal innervation: changes with aging, topographic location, and in sensory neuropathy. J Neurol Sci. 164 (2), 172-178 (1999).
  49. Lauria, G., et al. Intraepidermal nerve fiber density at the distal leg: a worldwide normative reference study. J Peripher Nerv Syst. 15 (3), 202-207 (2010).
  50. Hamid, H. S., et al. Hyperglycemia- and neuropathy-induced changes in mitochondria within sensory nerves. Ann Clin Transl Neurol. 1 (10), 799-812 (2014).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Mitochondria ImagingNerve FibersConfocal Microscopy3D Image AnalysisFluorescence ImmunohistochemistryEpidermal MitochondriaNerve specific MitochondriaZ series AcquisitionSurface MaskingMitochondrial Quantification

Related Articles