مقالة منهجية

التطبيق التتابعي من coverslips الزجاج لتقييم الضاغطة تصلب العدسة الفأر: الانفعال والمظهرية تحليلات

DOI:

10.3791/53986

⸱

مايو 3, 2016

 ,  ,  , 
1Department of Cell and Molecular Biology, The Scripps Research Institute

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ترتبط الزيادات المرتبطة بالعمر في تصلب عدسة العين بطول النظر الشيخوخي. يصف هذا البروتوكول طريقة بسيطة وفعالة من حيث التكلفة لقياس صلابة عدسة الماوس. تصبح عدسات الماوس ، مثل العدسات البشرية ، أكثر صلابة مع تقدم العمر. هذه الطريقة دقيقة ويمكن تكييفها مع العدسات من الكبيرة.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

عدسة العين هي جهاز شفاف ينكسر ويركز الضوء لتكوين صورة واضحة على الشبكية. في البشر، وانقباض العضلات الهدبية لتشويه العدسة، مما يؤدي إلى زيادة في قوة عدسة 'البصرية في التركيز على الأشياء القريبة، وهي عملية تعرف باسم الإقامة. وقد التغيرات المرتبطة بالعمر في عدسة صلابة مرتبطة طول النظر الشيخوخي، انخفاض في قدرة عدسة 'لاستيعاب، واستطرادا، فإن الحاجة لنظارة القراءة. على الرغم من العدسات الماوس لا تستوعب أو تطوير بصر الشيخوخة، يمكن أن نماذج الماوس توفر أداة لا تقدر بثمن الوراثية لأمراض عدسة الفهم، والشيخوخة المتسارعة التي لوحظت في الفئران يمكن دراسة التغيرات المرتبطة بالعمر في العدسة. يوضح هذا البروتوكول طريقة بسيطة ودقيقة، وفعالة من حيث التكلفة لتحديد عدسة الماوس صلابة، وذلك باستخدام coverslips الزجاج لتطبيق بالتتابع زيادة الأحمال الضغط على العدسة. وتؤكد بيانات تمثيلية أن العدسات الماوس تصبح أكثر صلابة مع التقدم في السن، مثلالعدسات الإنسان. هذا الأسلوب هو تكرار للغاية ويحتمل أن يتم زيادتها إلى ميكانيكيا العدسات اختبار من الحيوانات الكبيرة.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

العدسة عبارة عن عضو شفاف ولاوعائي في الغرفة الأمامية للعين وهو المسؤول عن التركيز الدقيق للضوء على شبكية العين. يحيط الغشاء القاعدي الشفاف ، المسمى كبسولة العدسة ، بجزء كبير من الخلايا الليفية الممدودة المغطاة بطبقة أحادية أمامية من الخلايا الظهارية1،2. يعتمد نمو العدسة مدى الحياة على التكاثر المستمر والتمايز للخلايا الظهارية عند خط الاستواء للعدسة إلى خلايا أليفية جديدة تضاف إلى الأجيال السابقة من الخلايا الليفية بطريقة متحدةالمركز 2. بمرور الوقت ، تخضع خلايا ألياف العدسة للضغط ، مما يؤدي إلى مركز صلب في منتصف العدسة يسمى النواة1. يحدث التكيف ، الذي يعرف بأنه تغيير انكسار في القوة البصرية للعين ، عند البشر عندما تنقبض العضلات الهبية لتشويه العدسة والسماح بزيادة حقيقية في الطاقة الضوئية للتركيز على الأجسام القريبةمن 3 إلى 5. في العين غير المستكيفة ، يتم تثبيت العدسة في حالة مسطحة نسبيا بسبب التوتر الناتج عن الألياف المنطقية. عندما تنقبض العضلات الهدبية ، يتم تحرير التوتر على العدسة ، مما يؤدي إلى انخفاض قطر العدسة الاستوائية وزيادة السماكة المحورية. تتسبب التغيرات المرتبطة بالعمر في العدسة في قصر النظر الشيخوخي ، وهو فقدان تدريجي لملاءمة العدسة ، مما يؤدي إلى الحاجة إلى نظارات القراءة.

ربطت العديد من الدراسات طول النظر الشيخوخي بالزيادة المرتبطة بالعمر في الصلابة الجوهرية للعدسة6-11. تعرف الصلابة بأنها مقاومة جسم مرن للتشوه تحت الحمل المطبق. تم استخدام مجموعة متنوعة من الطرق لفحص صلابة العدسات البشرية ، بما في ذلك ضغط الدوران12-14 ، وضغط المشغل15 ، والمسافة البادئةللمسبار 16 ، والتحليل الميكانيكي الديناميكي 6،10 ، وقوة الإشعاع الصوتي القائمة على الفقاعات17. في حين أن عدسات الفئران لا تستوعب أو تتطور إلى قصر النظر الشيخوخي ، فإن نماذج الفئران لأمراض العدسات هي أدوات قيمة لأن الفئران أقل تكلفة من الكبيرة ، وتتميز جيدا وراثيا وتخضع لتغيرات متسارعة مرتبطة بالعمر بسبب الشيخوخة السريعة. فحصت حفنة من الدراسات صلابة عدسة الفأر بطرق الضغط وأظهرت تغيرات في صلابة العدسة بسبب الشيخوخة أو الاضطرابات الجينية المستهدفة18-21. وبالتالي ، تعد عدسات الماوس نماذج جيدة لدراسة التغيرات المرتبطة بالعمر في صلابة العدسة.

يصف هذا البروتوكول طريقة ضغط بسيطة وغير مكلفة ولكنها دقيقة وقابلة للتكرار لتحديد صلابة عدسة الماوس بناء على تطبيق أغطية الزجاج على العدسة بالتزامن مع تصوير العدسة من خلال مجهر تشريح ومرآة. تنتج هذه الطريقة إجهاد قوي وبيانات مورفومترية مع جهاز سهل التصنيع والتجميع. تؤكد النتائج التمثيلية أن عدسات الماوس تزداد صلابة مع تقدم العمر.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم تنفيذ كافة الإجراءات الحيوانية وفقا للتوصيات الواردة في دليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية من قبل المعاهد الوطنية للصحة وبموجب البروتوكول الذي وافقت عليه لجنة رعاية واستخدام الحيوان المؤسسي في معهد سكريبس للأبحاث.

1. عدسة تشريح

  1. الموت ببطء الفئران وفقا لتوصيات في المعاهد الوطنية للصحة "دليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية" وافق بروتوكولات استخدام مؤسسة الحيوان.
  2. استأصل العين من الفئران باستخدام ملقط المنحنية. خفض الأنسجة حول العين مع ملقط لجعل العين من مأخذ، ثم نتف العين من مأخذ مع ملقط. نقل العيون العذبة 1X الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) في طبق تشريح.
  3. قطع العصب البصري وعلى مقربة من مقلة العين وقت ممكن. بلطف وعناية إدراج ملاقط غرامة على التوالي في مقلة العين من خلال وهر حفرةالبريد مخارج العصب البصري الخلفي.
  4. جعل بعناية شق مع مقص في مقلة العين من الخلفية إلى حافة القرنية. العدسات القوارض تحتل ~ 30٪ من العين. جعل هذه الشقوق بعناية، وعدم إدراج الملقط أو المقص عميق جدا داخل العين لتجنب حدوث تلف العدسة.
  5. قطع على طول التقاطع بين القرنية والصلبة على الأقل نصف الطريق حول مقلة العين.
  6. دفع بلطف على القرنية لإزالة العدسة من العين من خلال افتتاح المحرز في خطوات 1.4 و 1.5.
  7. استخدام غرامة ملقط غيض مباشرة لإزالة بعناية أي الحطام الكبيرة التي لا تزال تعلق على العدسة. تفقد البصر عدسة عن أي ضرر قبل الانتقال إلى قياسات صلابة.

2. قياس صلابة

  1. وزن لا يقل عن 10 coverslips من المربع نفسه باستخدام الميزان التحليلي. العثور على متوسط ​​وزن لل coverslips. من أجل التناسق، استخدم نفس مربع من coverslips لجميع التجارب. قبل الرطبلل coverslips والزاوية اليمنى مرآة في برنامج تلفزيوني 1X في درجة حرارة الغرفة لمدة 2 ساعة على الأقل قبل بدء التجارب.
  2. ملء غرفة القياس (انظر الشكل 1) مع 65-75 مل من برنامج تلفزيوني 1X. وجاء في غرفة القياس من زجاجي من قبل آلة متجر في المنزل، وقدمت ديفوتس في الغرفة عن طريق الحفر الصحافة لتعيين العمق المطلوب مع مثقاب المناسب. لا تزال عدسات شفافة في برنامج تلفزيوني 1X في درجة حرارة الغرفة لمدة الاختبارات الميكانيكية.

figure-protocol-1
الشكل 1: تصلب غرفة القياس صورة تظهر أبعاد غرفة قياس صلابة حسب الطلب مع مجموعة متنوعة من ديفوتس من أعماق وأشكال مختلفة. وتستخدم ديفوتس الجولة التي هي 200 ميكرون أو 300 ميكرون عميقة (السهام الصفراء) لقياسات العدسات الماوس. ديفوتس هي 2 ملم وقطرها 13 ~- 14 ملم من على حافة الغرفة الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

  1. وضع مرآة الزاوية اليمنى الى داخل القاعة على مسافة ثابتة من ديفت التي سيتم استخدامها لعقد العدسة. تأكد من أن المرآة لا تتحرك أثناء التجربة.
  2. نقل العدسات تشريح لغرفة القياس بدقة مع الاستيلاء على ملقط أو ملقط منحنية.
  3. التقاط صورة من أعلى إلى ضوء عدسة المفرغة من النفقات العامة مباشرة. خذ الماوس صور عدسة في 30X التكبير مع إضاءة من تشريح المجهر (القاع) ومصدر ضوء الألياف البصرية على الجانبين الأيمن والأيسر. تعيين امدادات الطاقة الألياف البصرية إلى 80٪ من الحد الأقصى لشدة الضوء. ضبط الانتاج امدادات الطاقة على أساس الإضاءة المحيطة، وتفضيلات المستخدم وجودة الصورة حسب الحاجة.
  4. التقاط صورة جانبية نظرا لعدسة المفرغة، وهو ما يمكن ملاحظته من خلال ريمرآة GHT الزاوية. إذا لم يتم معايرة الكاميرا، التقاط صورة من حافة المرآة في التركيز. حافة المرآة هي 5 ملم طويلة، ويمكن في وقت لاحق هذا القياس أن تستخدم لتحديد بكسل / مم، ويكون بمثابة شريط النطاق في الصور.
  5. مكان العدسة في ديفت، وتؤكد أن عدسة يجلس بشكل آمن ومباشرة في ديفت. التقاط صورة للعدسة قبل التحميل. العدسة يجب أن يستريح في ديفت على الأمامي، أو القطب الخلفي.
  6. ضع 1 ساترة بلطف على العدسة. الانتظار 2 دقيقة للسماح للزحف، وتأخذ صورة جانبية رأي آخر من عدسة المحملة.
  7. متابعة إضافة coverslips كما في الخطوة 2.8 واتخاذ جنبا عرض الصور بعد إضافة كل ساترة كما في الخطوة 2.8 حتى يتم تطبيق ما مجموعه 10 coverslips.
  8. إزالة جميع coverslips. الانتظار 2 دقيقة، والتقاط صورة جانبية نظرا للعدسة (داخل وخارج ديفت) بعد إزالة كافة coverslips.

قياس 3. عدسة نواة

  1. لdetermالمعهد الوطني للإحصاء حجم نواة العدسة، وتحريك العدسة لطبق بيتري نظيفة مليئة برنامج تلفزيوني 1X.
  2. decapsulate بلطف العدسة باستخدام ملقط غرامة على التوالي.
  3. تنصل من خلايا الألياف القشرية من قبل المتداول العدسة بين أصابع القفاز. فإن عدسة النواة المتبقية يشعر وكأنه الرخام الصلب. استخدام هذا الإجراء لعزل نواة على العدسات الكبار ابتداء من الساعة 1 شهر من العمر. منذ نواة معزولة هي هيئة جامدة، وإجراء مزيد من التجارب الميكانيكية للنواة العدسة لا يمكن القيام بها باستخدام هذه الطريقة الموصوفة.
  4. شطف بلطف نواة العدسة في برنامج تلفزيوني 1X في طبق بيتري.
  5. وضع نواة العدسة مرة أخرى إلى غرفة القياس (وليس في ديفت)، والتقاط صورة للنواة العدسة من خلال مرآة الزاوية اليمنى.

figure-protocol-2
الشكل 2: والعدسات الماوس مضغوط بواسطة Coverslips (A) تخطيطي و (ب) صورة من السابقينالإعداد perimental تظهر عدسة الماوس القديمة 2-أشهر في ديفت 200 ميكرون العميقة في غرفة قياس مليئة برنامج تلفزيوني 1X. استخدمت مرآة زاوية الحق وكاميرا رقمية محمولة على المجهر تشريح لجمع الصور من عدسة خلال ضغط من قبل coverslips. (C) صور وجهات النظر السهمي من عدسة من نوع البرية القديمة 2-أشهر ضغطها أعداد coverslips زيادة تباعا توفير البيانات الخام لقياس أقطار المحورية والاستوائية وحساب سلالات المحورية والاستوائية خلال القائم على ساترة اختبار ضغط. يمكن في بعض الأحيان أن ينظر إلى انعكاس العدسة في لل coverslips (الأكثر وضوحا بشكل واضح في الصورة 1 ساترة). عند إجراء القياسات، تجاهل التفكير وقياس لقمة العدسة. (D) صور وجهات النظر السهمي من العمر 2-أشهر من النوع البري عدسة بعد ضغط وعدسة نواة معزولة. عدسة بعد ضغط ونواة معزولة يجلسون خارج ديفت. الحانات الحجم، 1 مم. تم تعديل هذا الرقم من Gokhفي، وآخرون. بلوس واحد، 2012 19. يرجى النقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.

تحليل 4. صورة

  1. قياس أقطار الاستوائية والمحورية من العدسات قبل التحميل وبعد كل خطوة التحميل باستخدام يماغيج أو برامج مماثلة. قياس قطر كل نواة العدسة. نواة عدسة كروية تقريبا حتى قياس في أي اتجاه سوف تكفي 19،21.
  2. تصحيح العدسة المحورية أقطار عن طريق إضافة عمق ديفت المستخدمة. في غرفة القياس، حجب ديفت 200 ميكرون (العدسات القديمة 2-الشهر الماوس) أو 300 ميكرون (العدسات الماوس عمرها 4 أشهر وعمرها 8 أشهر) من سمك المحوري للعدسة.
  3. حساب محوري وسلالات الاستوائية من القياسات عدسة قطرها باستخدام المعادلة، ε = (د - د 0) / د 0، حيث ε هو سلالة، د هو محوري أو البريدقطر quatorial في حمولة معينة، ود 0 هو المقابلة قطر المحوري أو الاستوائي في حمولة الصفر.
  4. رسم محوري وسلالات الاستوائية وظائف من الحمل المفروض (في ملغ).
  5. رسم محوري، الاستوائية وبأقطار النووية. حساب ورسم نسبة الارتفاع عدسة بقسمة قطر المحوري بواسطة قطر الاستوائية.
  6. حساب ورسم حجم العدسة باستخدام المعادلة، وحجم = 4/3 × π × ص ض 2 × ص A، حيث r E هو الاستوائية دائرة نصف قطرها وص A هو دائرة نصف قطرها المحوري تقاس من صورة التي مأخوذة في الخطوة 2.6. تفترض هذه المعادلة العدسة هو كروي مفلطح (الإهليلجي) 1،22.
  7. حساب ورسم حجم النووي باستخدام المعادلة، وحجم = 4/3 × π × ص N 3، حيث r N هو نصف قطر نواة العدسة كما تقاس من صورة التي مأخوذة في الخطوة 3.5. تفترض هذه المعادلة ط عدسة نواةسا المجال 19،21.
  8. حساب ورسم جزء النووي الذي يشكل نسبة حجم النووي لحجم العدسة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم قياس صلابة وأبعاد العدسات الماوس القديمة 8 أشهر 2-، 4- و. وكانت الفئران كل البرية من نوع الحيوانات على C57BL6 خلفية سلالة نقية تم الحصول عليها من مرفق تربية TSRI الحيوان، وتحميل كل عدسة مع 1-10 coverslips. حسبت سلالات المحورية والاستوائية بوصفها وظيفة من الحمل التطبيقية عن طريق قياس محوري وبأقطار الاستوائية للعدسة بعد إضافة كل ساترة، ومن ثم تطبيع كل تغيير في قطر إلى قطر تفريغ المقابلة. تم اختبار ثمانية العدسات من كل عصر، ويتم التعبير عن نتائج مت...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هناك العديد من الاعتبارات الرئيسية عند استخدام هذه الطريقة لقياس عدسة صلابة. أولا، يتم تطبيق لل coverslips إلى عدسة بزاوية مائلة قليلا (8-8،5 درجة) فيما يتعلق السفلي من الغرفة (θ). وهذا ينطبق على عنصر صغير جدا من الحمل استوائيا بدلا من محوريا. ومع ذلك، يعتبر هذا الحمل الاستوائية ضئيلة بسبب الخطيئة θ ≈ 0.1 19. إذا تم تكييف هذا الأسلوب للعدسات أكبر، سيكون من الضروري قياس لتحديد ما إذا كان ينبغي أن تؤخذ تحميل الاستوائية في حسابات سلالة زاوية لل coverslips إلى الجزء السفلي ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب ليس لديهم ما يكشف.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم دعم هذا العمل من قبل منحة المعهد الوطني للعيون R01 EY017724 (VMF) والمعهد الوطني لالتهاب المفاصل وأمراض الجهاز العضلي الهيكلي والجلد K99 AR066534 (DSG).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
ملقط مستقيم ذو طرف ناعمأدوات علمية دقيقة11252-40
مقص تشريح دقيق ، حافة مستقيمةأدوات علمية دقيقة15000-00
ملقط منحنيأدوات علمية دقيقة11272-40
الاستيلاء على ملقطHammacherHSC 702-93
طبق تشريحفيشر 12565154 العلمي
طبق بتري 60 ممفيشر ساينتفيك0875713A
1x محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS)Life Technologies14190
أغطية زجاجية مقاس 18 × 18 ممغرفة قياس فيشر Scientific12-542A
مع فتحات لتثبيت العدساتحسب الطلب (انظر <قوي>الشكل 1< / قوي>)
مرآة الزاوية اليمنىإدموند للبصريات45-591
مصدر الضوءشوت / فوستيك8375
مجهر تشريح مضيءأوليمبوسSZX-ILLD100مع SZ-PT
phototube كاميرا رقميةنيكونCoolpix 990
اختياري

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Lovicu, F. J., Robinson, M. L. Development of the ocular lens. , Cambridge University Press. (2004).
  2. Piatigorsky, J. Lens differentiation in vertebrates. A review of cellular and molecular features. Differentiation. 19 (3), 134-153 (1981).
  3. Glasser, A. Restoration of accommodation: surgical options for correction of presbyopia. Clin Exp Optom. 91 (3), 279-295 (2008).
  4. Keeney, A. H., Hagman, R. E., Fratello, C. J. Dictionary of ophthalmic optics. , Butterworth-Heinemann. (1995).
  5. Millodot, M. Dictionary of optometry and visual science. 7, Elsevier/Butterworth-Heinemann. (2009).
  6. Heys, K. R., Cram, S. L., Truscott, R. J. Massive increase in the stiffness of the human lens nucleus with age: the basis for presbyopia. Mol Vis. 10, 956-963 (2004).
  7. Heys, K. R., Friedrich, M. G., Truscott, R. J. Presbyopia and heat: changes associated with aging of the human lens suggest a functional role for the small heat shock protein, alpha-crystallin, in maintaining lens flexibility. Aging Cell. 6 (6), 807-815 (2007).
  8. Pierscionek, B. K. Age-related response of human lenses to stretching forces. Exp Eye Res. 60 (3), 325-332 (1995).
  9. Glasser, A., Biometric Campbell, M. C. optical and physical changes in the isolated human crystalline lens with age in relation to presbyopia. Vision Res. 39 (11), 1991-2015 (1999).
  10. Weeber, H. A., van der Heijde, R. G. On the relationship between lens stiffness and accommodative amplitude. Exp Eye Res. 85 (5), 602-607 (2007).
  11. Weeber, H. A., et al. Dynamic mechanical properties of human lenses. Exp Eye Res. 80 (3), 425-434 (2005).
  12. Fisher, R. F. Elastic properties of the human lens. Exp Eye Res. 11 (1), 143(1971).
  13. Krueger, R. R., Sun, X. K., Stroh, J., Myers, R. Experimental increase in accommodative potential after neodymium: yttrium-aluminum-garnet laser photodisruption of paired cadaver lenses. Ophthalmology. 108 (11), 2122-2129 (2001).
  14. Burd, H. J., Wilde, G. S., Judge, S. J. An improved spinning lens test to determine the stiffness of the human lens. Exp Eye Res. 92 (1), 28-39 (2011).
  15. Glasser, A., Campbell, M. C. Presbyopia and the optical changes in the human crystalline lens with age. Vision Res. 38 (2), 209-229 (1998).
  16. Pau, H., Kranz, J. The increasing sclerosis of the human lens with age and its relevance to accommodation and presbyopia. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 229 (3), 294-296 (1991).
  17. Hollman, K. W., O'Donnell, M., Erpelding, T. N. Mapping elasticity in human lenses using bubble-based acoustic radiation force. Exp Eye Res. 85 (6), 890-893 (2007).
  18. Baradia, H., Nikahd, N., Glasser, A. Mouse lens stiffness measurements. Exp Eye Res. 91 (2), 300-307 (2010).
  19. Gokhin, D. S., et al. Tmod1 and CP49 synergize to control the fiber cell geometry, transparency, and mechanical stiffness of the mouse lens. PLoS One. 7 (11), e48734(2012).
  20. Sindhu Kumari, S., et al. Role of Aquaporin 0 in lens biomechanics. Biochem Biophys Res Commun. , (2015).
  21. Fudge, D. S., et al. Intermediate filaments regulate tissue size and stiffness in the murine lens. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52 (6), 3860-3867 (2011).
  22. Kuszak, J. R., Mazurkiewicz, M., Zoltoski, R. Computer modeling of secondary fiber development and growth: I. Nonprimate lenses. Mol Vis. 12, 251-270 (2006).
  23. Scarcelli, G., Kim, P., Yun, S. H. In vivo measurement of age-related stiffening in the crystalline lens by Brillouin optical microscopy. Biophys J. 101 (6), 1539-1545 (2011).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Mouse Lens StiffnessCompressive StiffnessGlass CoverslipsLens DissectionMorphometric AnalysisStrain MeasurementPBS ChamberDissecting MicroscopeImage AnalysisLens Nucleus

مقالات ذات صلة