Method Article

نموذج أرنب من تسارع تصلب الشرايين: منظور منهجية من إصابة شريان حرقفي بالون

DOI:

10.3791/55295

⸱

October 3rd, 2017

 ,  ,  ,  , 
1Cardiology, Department of Medicine, University of Fribourg

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نماذج حيوانية لتصلّب الشرايين أساسية لفهم الآلية والتحقيق في النهج الجديدة لمنع تطوير اللوحة أو تمزق، سبب الرئيسي للوفاة في العالم الصناعي. هذا البروتوكول يستخدم مزيجاً من الإصابة بالون وحمية الكولسترول الغنية للحث على لويحات تصلب الشرايين في شريان حرقفي الأرانب.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

متلازمة الشريان التاجي الحادة الناتجة عن الانسداد التاجي بعد وضع لوحة تصلب الشرايين وتمزق هو السبب الرئيسي للوفاة في العالم الصناعي. أرانب نيوزيلندا الأبيض (نزو) تستخدم على نطاق واسع كنموذج لحيوانات لدراسة تصلب الشرايين. أنها تتطور الآفات عفوية عند تغذية مع نظام غذائي أثيروجينيك؛ ومع ذلك، وهذا يتطلب وقت طويل من 4 إلى 8 أشهر. لزيادة تعزيز وتسريع أثيروجينيسيس، غالباً ما تستخدم مزيجاً من الحمية أثيروجينيك وإصابة غشائي الميكانيكية. يستخدم الإجراء المقدم لحفز لويحات تصلب الشرايين في الأرانب قسطرة بالون لعرقلة البطانة في شريان حرقفي الأيسر نزو الأرانب التي تتغذى على النظام الغذائي أثيروجينيك. هذه الأضرار الميكانيكية بالقسطرة بالون الحث على سلسلة من ردود الفعل الملتهبة بدء تراكم الدهن نيوينتيمال بطريقة تعتمد وقت. البلاك تصلب الشرايين بعد بالون الإصابة تظهر سماكة نيوينتيمال مع تسلل واسعة النطاق في الدهون والعضلات الملساء ارتفاع محتوى الخلية ووجود سنخية اشتقاق خلايا الرغاوي. هذه التقنية بسيطة واستنساخه وتنتج لوحة طول التي تسيطر عليها داخل شريان حرقفي. يتم إكمال الإجراء بأكمله داخل 20-30 دقيقة. الإجراءات آمنة مع انخفاض معدلات الوفيات، ويقدم أيضا نجاح عالية في الحصول على الآفات إينتيمال كبيرة. إجراء قثطرة البالون الناجمين عن نتائج الإصابة الشريانية في تصلب الشرايين خلال أسبوعين. يمكن استخدام هذا النموذج للتحقيق في أمراض المرض، التصوير التشخيصي وتقييم استراتيجيات علاجية جديدة.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمزق لويحات تصلب الشرايين الضعيفة واحد من الأسباب الرئيسية للوفاة في الدول الصناعية1. ورغم أن البحوث على مدى العقود الماضية قد تكشفت عدة الآليات الجزيئية والخلوية التي تشارك في تطور اللوحة، استمرت الجهود لا تزال هناك حاجة ليس فقط لكشف الآلية المعقدة لتطور المرض ولكن أيضا لاختبار جديد العلاجية النهج. واقترحت عدة نماذج حيوانية لدراسة تصلب الشرايين. التلاعب بالجينات، الكولسترول التغذية أو ميكانيكية إصابة البطانة هي الاستراتيجيات الموحدة تتقاسمها نماذج حيوانية أكثر من تصلب الشرايين بما في ذلك الفئران والأرانب أو مينيبيجس. ومن بين هذه حساسة الأرانب نزو الكولسترول الغذائي بينما العادي الفئران والجرذان لا تستوعب كثيرا الكولسترول الغذائي2،،من34. تلقائياً وضع الأرانب آفات الابهر غنية بالضامة مع بعض مكونات الليفي عند تغذية مع الكوليسترول حمية غنية،من56. غير وقت طويل التحضيرية 4-8 أشهر للحث على تصلب الشرايين بلاكويسبي تغذية حمية الكولسترول وحدها6،7 عيب رئيسي لمعظم الإعدادات التجريبية. قد وضعت في السعي لحمل الآفات في فترة زمنية قصيرة نسبيا، مزيج من ارتفاع الكولسترول الغذائي وبالون الإصابة باومجارتير وستودير8. والهدف العام لهذا الأسلوب للحث على لويحات تصلب الشرايين وتتألف من خلايا الرغاوي (على غرار متواصلة الدهني في أناس) في الأرانب hypercholesterolemic في غضون أسابيع 2. الأسلوب الحالي الذي يصف إجراءات إصابة الجدار الشرياني استناداً إلى أسلوب باومجارتير لاستخدام قسطرة بالون متقدمة في شريان حرقفي من الأرانب hypercholesterolemic نزو.

جنبا إلى جنب مع اتباع نظام غذائي الكولسترول غنية، الضرر الناتج عن البالون التي يسببها اندوثيلياليزيشن دي سوف تؤدي إلى تصلب الشرايين. إصابة بالون يسرع تشكيل الآفات تصلب الشرايين، وتنتج اللوحة موحدة الحجم والتوزيع. زيادة سماكة إينتيمال على مدى فترة من الوقت وخلية intimal تسلل يبدأ في غضون أيام قليلة بعد الإصابة. تبدأ في الظهور بعد 7-10 أيام إصابة بالون الشرائط الدهنية مع الضامة كبيرة ويمثلها كالآفة "النوع الثاني" وفقا للتصنيف "جمعية القلب الأمريكية". غالباً ما تتم الإصابة بالون في الأرنب في الشريان الاورطي لدراسة تكوين اللوحة. البطانة نيوينتيمال تعرب عن مستويات عالية من جزيء الالتصاق بين الخلايا. لويحات ترتبط بتشريح الآنسي والتغييرات أدفينتيتيال. الآفات تصلب الشرايين تتكون من الدهون، خلايا العضلات الملساء المتكاثرة (سمكس)، ألياف الكولاجين والخلايا التحريضية التي تتراكم تحت البطانة المجددة وهي غالباً من النوع الثاني في الطبيعة. وكان توزيع طوبولوجي أرنب لويحات مشابهة للتي ذكرت في 9،أورتاس البشرية10 في مبدأ، الشريان الاورطي هو أكبر في الحجم مقارنة بالشرايين الحرقفي وسوف تنتج اللوحة في الطول أكبر. ومع ذلك، الميزة الرئيسية لاستخدام شريان حرقفي كموقع لتصلّب الشرايين في الأرانب هو إمكانية الوصول إليها، تشابه في المحتوى العضلي للشريان التاجي البشرية11، الآفة موحدة التنمية12، عامل نسيج عالية نشاط13 والبعد السفينة متسقة قابلة للمقارنة للبشرية الشريان التاجي يسمح تقييم الأجهزة المصنعة تجارياً لشكلي والنهاية أنجيوجرافيك. حققت أساليب الغازية وغير الغازية لتحليل لويحات في الشرايين حرقفي الأرنب في الحيوانات الحية. تصف التقارير السابقة استخدام الرنين المغناطيسي التصوير (التصوير بالرنين المغناطيسي) مع المساعدة من نظام السيد تسلا 2.35 14 بالإضافة إلى ذلك، يمكن أن تكون الموجات فوق الصوتية داخل الأوعية (عباس) أو التماسك الضوئية التصوير المقطعي (OCT) القسطرة تأهيلاً مناسباً تطبيقها على الصورة لويحات تصلب الشرايين في الشرايين حرقفي الأرانب. شريان حرقفي قابل للتصوير بالموجات فوق الصوتية عند استخدام شعاعية ذات الدقة عالية، ويمكن أيضا استكشاف الشريان الاورطي مع هذا الأسلوب.

في العقد الماضي، ساعد هذا النموذج الأرنب الإصابة بالون زيادة فهم آليات تطور اللوحة15واللوحة الانحدار16. وبالإضافة إلى ذلك، قد استخدمت النموذج لدراسة تأثير العوامل العلاجية رواية مثل الستاتين ووكلاء الصفيحات القياسية، ومضادات الأكسدة وكلاء17،18 والدعامات التينج المخدرات مثل افيروليموس أو زوتاروليموس التينج تركيب دعامات19،20 على سماكة نيوينتيمال. وقد استخدمت هذا النموذج أيضا للتحقيق في تصوير داخل الأوعية للأسفار القريبة من الأشعة تحت الحمراء التصوير القسطرة21.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هذا البروتوكول التجريبي قد أقرها مكتب الطب البيطري الكانتونات وفريبورغ السويسرية الاتحادية البيطري المكتب، سويسرا (2015 الأب/58)-

ملاحظة: استخدمت الأرانب نزو الذكور تزن بين 2.8 إلى 3.2 كجم. تم إيواء الحيوانات تحت ظروف التقليدية (12 ح الضوء ودورة الظلام، قدمت متواصلة للمياه والغذاء). قبل تعرية بالون، وقد تأقلم الحيوانات لمدة أسبوع واحد خلالها غذيت مع النظام الغذائي العادي تشاو. بعد أسبوع واحد من التأقلم، الأرانب كانت تحولت إلى النظام الغذائي أثيروجينيك تتكون من الدهون عالية (8.6%)، والأحماض الدهنية المشبعة بحمية الكولسترول (1%) 205 مغ/كغ لمدة الدراسة كاملة. أنجز الإصابة بالون في شريان حرقفي اليسرى 1 أسبوع بعد بدء النظام الغذائي وضحى الحيوانات بعد 2 أسابيع أو 4 أسابيع من الإصابة بالون.

1-"إجراءات قبل الجراحة"

  1. تعقيم جميع الأدوات الجراحية قبل الاستخدام مع معقم حبة من زجاج أو أي صك مناسب.
  2. تحضير وتحقق الجمعية قثطرة البالون.
    1. إرفاق قفل اللوير 1 مل حقنه مليئة بالمحلول الملحي العادي إلى الجزء اللوير لوك من قثطرة البالون. ترصد بدقة لعدم وجود الهواء المحبوس. تحقق من التسريبات وضمان التضخم بالون المناسب بالضغط على المكبس للمحاقن.
  3. وزن الأرنب وقم بتشغيل ثيرموباد إلى 37 درجة مئوية.
  4. استخدام حل البوبرينورفين بتركيز 0.3 مغ/مل حقن تحت الجلد بجرعة 0.01 ملغ/كغ.
  5. أنيسثيتيزي الأرنب مع إيسوفلوراني 5% و 5 لتر في الدقيقة س 2 في دائرة التعريفي لأجل 10-15 دقيقة
  6. مكان الأرنب أنيسثيتيزيد على لوحة تدفئة أبقى على المنصة الجراحية. وضع التصحيح ومقاطع رصد درجة الحرارة والتنفس، ورسم القلب-
    7. إرفاق
  7. آنف الأرنب إلى قناع لوجه متصل بجهاز تخدير مناسب. المحافظة على التخدير مع إيسوفلوراني (4.0 في المائة مع 2.5 لتر في الدقيقة س 2). تأكيد أنيسثيتيزيشن السليم (يشار إليه بعدم وجود قوة العضلات وفقدان ردود الفعل هفوة وبن).
  8. تطبيق مرهم العيون لكلتا العينين لمنع القرنيات من التجفيف. ثني الأرنب مع ورقة جراحية معقمة مع فقط سفلي مكشوف.

2. بروتوكول الجراحية

  1. إزالة الشعر من منطقة البطني أسفل مفاصل الركبة باستخدام مقص الشعر الحيواني.
  2. مسحه المنطقة بمطهر مناسب لتنظيف الجلد وإزالة الشعر فضفاضة.
  3. موقع الشريان الصافن وجعل شق جلد صغيرة حوالي 1.5 سم في طول استخدام مشرط.
  4. تعرض جزء صغير من الشريان الصافن بالملقط منحنى الصغيرة دون الأضرار بالوريد الفخذي والعصب الفخذي.
  5. مكان اثنين من الحلقات فضفاضة حرف مزدوج (الحرير 5-0) تحت الشريان الصافن وربط واحد حلقة حرف مزدوج نهاية القاصي الشريان. ضع المشبك microvascular أعلاه حرف مزدوج لوقف تدفق الدم من شريان حرقفي.
  6. موضعياً تطبيق قطره واحدة من بابافرين لتمدد الشريان ومنع بالتشنج.
  7. رفع الشريان الصافن بمساعدة حرف مزدوج المشروطة وجعل شق أرتيريوتومي صغيرة 24 باستخدام قياس الإبرة.
  8. رفع اللوحات شق مع الملقط غرامة، وإدراج اختيار الوريد أو إبرة توجيهية ببطء في تجويف الشريان.
  9. إدراج قسطرة الشرايين امبوليكتومي "فوغارتي الفرنسية" 2 في الشريان الصافن. إزالة اختيار الوريد والمشابك ميكروفاسكولار.
  10. تقدم القسطرة حتى العلامة السادسة (20-25 سم) المقابلة لموقف تقريبا سم 2-5 أعلاه التشعب حرقفي.
  11. تضخيم البالون مع المحلول الملحي العادي 0.1 مل استخدام المحاقن 1 مل أو عند ضغط اسمي من 6 أجهزة الصراف الآلي باستخدام inflator دليل تنظيم كما هو موضح في 16 ، 22-
  12. إجراء القسطرة بالون مع الملقط واسحب مرة أخرى في 6 سم من خلال أرتيريتووارد حرقفي نقطة الإدراج، في حين تناوب القسطرة.
  13. تنكمش البالون بسحب المكبس للمحاقن.
  14. كرر الخطوات 2.10 إلى 2.13 ثلاث مرات التأكد من تعرية بطانية كاملة-
  15. إزالة القسطرة وفورا التعادل في حلقة حرف مزدوج فوق الموقع أرتيريوتومي لوقف النزيف.
  16. تطبيق كل مطهر مناسب حول المحيط الجرح ومسحه بعيداً من الجلطات الدموية. إغلاق شق الجلد مع خياطة 5-0، وتطهير الموقع جراحة بمحلول بوفيدون-
  17. كرر الخطوات من 2.1 إلى 2.16 في contralateral حرقفي استخدام قسطرة جديدة-
  18. مسحه مرهم العيون من العيون.

3. الرعاية اللاحقة للعمليات الجراحية

  1. إدارة السلفادوكسين 40 مغ/كغ وميثوبريم 8 ملغ/كغ أو أي المضادات الحيوية الأخرى المناسبة فورا بعد العملية الجراحية.
  2. خلال فترة التخدير-الإنعاش، تبقى الأرنب فوق وسادة حرارة توضع في قفص نظيف يعقم.
  3. إزالة التصحيح الرصد ومقاطع.
  4. بعد شفائهم والعودة الأرانب إلى اقفاصها المنزل. تحت الجلد حقن البوبرينورفين 0.05-0.1 مغ/كغ بعد--عمليا كل ح 6-12 ل h. 48 متابعة النظام الغذائي أثيروجينيك لمدة أسبوعين أو أربعة أسابيع-

4. حصاد الأنسجة وتحليل تكوين البلاك

  1. بعد أسبوعين (للوحة رقيقة المبكر) أو ثلاثة أسابيع للإصابة بالون، تخدير الأرنب باستخدام إيسوفلوراني بنفس الطريقة كما هو موضح أعلاه.
  2. فتح تجويف الصدر و euthanize الأرانب قبل اكسسانجوينيشن إينتراكارديال-
    3. عزل
  3. الشرايين حرقفي كما هو موضح في 23. فتح البطن
    1. بإيجاز، ويعرض في ريتروبيريتونيوم. تتبع الشريان الاورطي نحو التشعب حرقفي والتعادل أعلاه التشعب. بعناية إزالة الأنسجة المحيطة بها لفضح وعزل كلا الشرايين حرقفي.
  4. ديسيكت من كلا الشرايين الحرقفي وتزج بها في المياه المالحة المثلج الفوسفات مخزنة. إزالة الجلطات بمساعدة الملقط. تقسيم كل شريان حرقفي 4-6 شرائح تميز سمك اللوحة في جميع أنحاء الشريان.
  5. الفور تضمين الجزء الشرياني في قالب الذي يحتوي على درجة الحرارة المثلى قطع المركبة، المفاجئة-التجميد باستخدام النيتروجين السائل ويبقيه في-70 ° 5 إعداد جيم ميكرومتر سميكة المقاطع باستخدام كريوستات كما هو موضح في 24-
    6. علم الأنسجة
  6. إجراء أو الفلورة أو المناعي تلطيخ مورفوميتري ودهن اللوحة والمحتوى الخلوية كما هو موضح في 10 ، 25-
    ملاحظة: بإيجاز، شطف الفروع الشريانية مع الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) وبيرميبيليزي باستخدام 0.2% تريتون. شطف المقاطع ببرنامج تلفزيوني وحظر مواقع غير محددة مع ألبومين المصل البقري 2% عن 30 دقيقة إينكوباتي المقاطع ح 1 في 37 درجة مئوية مع مكافحة α-SM أكتين (1: 200) أو الأجسام المضادة RAM11 (1: 200). شطف المقاطع ببرنامج تلفزيوني واحتضانها لهم مع الأجسام المضادة الثانوية المناسبة لمدة 30 دقيقة في 37 درجة مئوية. يغسل مرة أخرى مع برنامج تلفزيوني وإضافة هويشت (5 ميكروغرام/مل) لمدة 10 دقيقة للكشف عن الأنوية.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

إصابة البالون من شريان حرقفي أنجز بنجاح دون مضاعفات (الشكل 1). تنفيذ إجمالي الوقت المنطوق تتراوح من 20 إلى 30 دقيقة للإصابات في شريان حرقفي واحد فقط، و 35 إلى 45 دقيقة للإصابات في كلا الشرايين. الأرنب استردادها ضمن ح 1 بعد إصابة البالون. وبدأ جميع الحيوانات صحية دون فقدان الوزن الكبير. تمت مصادفة لا عدوى أو ذمة أو تجلط الدم الشرياني. وكان منطقة الجرح العادي إلى جانب بعض التليف معتدل في موقع خياطة الجروح. وبعد 4 أسابيع من التغذية النظام الغذائي atherogenic، عر...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نموذج تصلب شريان حرقفي أرنب يستخدم على نطاق واسع في أبحاث تصلب الشرايين. مع هذا البروتوكول وضع الأرانب سرعة لويحات أكثر شديدة ومتقدمة بالمقارنة مع آفات عفوية مع فقط الكولسترول الغذائي. الأهم من ذلك، استعادة الحيوانات بسرعة من الجراحة.

هو الحافز الرئيسي ل atherogenesis أضرار ميكانيكية قثطرة البالون الذي يضر بالبطانة وديستيندس الجدار السفينة26. يدفع هذا الإجراء استجابة إعادة تتميز بالتهاب مع تجنيد بلعم وتراكم الدهون عند المرتبطة بالنظام الغذائي هايبرتشوليستوروليميك والهجر...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب يعلن لا تضارب المصالح المالية.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وأيد هذا العمل 150271 منحة مؤسسة العلوم الوطنية السويسرية.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
نيوزيلندا الأرانب البيضاءتشارلز ريفر مختبرات ، فرنساCre: KBL (NZW)
نظام غذائي غني بالكوليسترولSsniff spezialdi ä عشرةSsniff EF K معقم حبة زجاجية عالية الدهون والكوليسترول
- بربات 500VWR ، ليسيسترشاير ، المملكة المتحدة101326-488
قسطرة استئصال صصمة بالون فوغارتي ، 2إدواردز لايف ساينس الفرنسية ، سويسرا120602Fللاستخدام الفردي فقط
حقنة Luer LockBecton ، Dickinson and Company ، الولايات المتحدة الأمريكية309628
Thermopad Type 226Solis ، سويسرا AG397387
بوبرينورفين- TemgesicReckitt Benckiser AG ، سويسرا7.68042E + 12
IsofluranePiramal Critical Care، Inc ، بيت لحم ، بنسلفانيا 180172667-46-7
التخدير - كومبي بيطري نظام التخدير الأساسيRothacher Medical GmbH ، سويسراCV 30-301-A
Cardell Touch Veterinary Vital Monitorميدمارك ، أوهايو ، الولايات المتحدة الأمريكية8013-001
مرهم العيون - HumigelVirbac ، فرنسا
ماكينة قص شعرAesculap AG ، ألمانياGT420
محلول مطهر - بيتادينMundipharmaMedical ، سويسرا14671-1203
Dumont # 7 ملقطFST ألمانيا11274-20
متوسط وصغير مقص دقيقMedline International سويسرا S & agrave ؛ rlUC4337
مشابك الأوعية الدموية الدقيقةFST ، ألمانيا18051-28
PapaverineESCA Chemicals ، سويسراRE 356 803
Vein PickHarvard Apparatus ، كامبريدج ، المملكة المتحدة72-4169للاستخدام الفردي فقط
الملحيDr. G. Bichsel AG ، سويسرا1330055
خياطةPolysorb 5-0Covidien AG ، سويسراUL 202Monofilament
Sulfadoxine و Trimethoprim-TrimethazolWerner Stricker AG ، سويسراSwissmedic Nr. 50'361
مطهر - OcteniseptSch ü lke & Mayr AG ، سويسراGTIN: 4032651214068
فوسفات مخزن محلولملحي روث1058.1
Isobutanol-2-MethylbutaneSigma-Aldrich ، سويسراM32631-1L
درجة حرارة القطع المثلى - Tissue-TekVWR Chemicals ، بلجيكا25608-930
CryostatLeica ، Glattbrugg ، سويسراLeica CM1860 UV
شريحة زجاجية- Superfrost PlusThermo Scientific4951PLUS4
Mayer's HaematoxylinSigma-Aldrich ، سويسراMHS32-1L
Eosin 0.5٪ aq.سيجما ألدريتش ، سويسراHT110232-1L
Oil Red OSigma-Aldrich ، سويسراO0625-25G
& alpha - الأجسام المضادة للأكتين في العضلات الملساءAbcam ، المملكة المتحدة.ab7817
استنساخ البلاعم الجسم المضاد RAM11DAKO ، سويسراM063301
HoechstAbcam ، المملكة المتحدة.ab145596
الجسم المضاد الثانوي متعدد النسيلة للماعز (Chromeo 546)Abcam ، المملكة المتحدة.ab60316
Alexa Fluor 488/547Abcam ، المملكة المتحدة.
Glycergel Mounting Medium ، DAKO المائي، سويسراC056330
Hematoxylin ل Movat pentachrome تلطيخSigma-Aldrich ، سويسراH3136-25G
كلوريد الحديديك ل Movat خماسي التلوينSigma-Aldrich ، سويسرا157740-100G
اليود لتلوين MovatSigma-Aldrich ، سويسرا207772-100G
يوديد البوتاسيوم لتلوين Movat pentachromeSigma-Aldrich ، سويسرا60400-100G-F
Alcian blue for Movat تلطيخSigma-Aldrich ، سويسراA5268-10G
أمونيا قوية لتلوين Movat pentachromeSigma-Aldrich ، سويسرا320145-500ML
Crocein اللامع MOO لتلوين Movat pentachromeSigma-Aldrich ، سويسرا210757-50G
حمض فوكسين لتلوين Movat خماسيSigma-Aldrich ، سويسراF8129-50G
ثيوسلفات الصوديوم لتلوين Movat pentachromeSigma-Aldrich ، سويسرا72049-250G
حمض الفوسفوتونغستيك لتلوين Movat pentachromeSigma-Aldrich ، سويسرا79690-100G
Crocin ل Movat pentachrome تلطيخسيجما ألدريتش ، سويسرا17304-5G
EUKITT لتلطيخ Movat pentachromeSigma-Aldrich ، سويسرا03989-100ML
جهاز المختبر التلوين

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Mozaffarian, D., et al. Heart disease and stroke statistics--2015 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 131, e29-e322 (2015).
  2. Boone, L. R., Brooks, P. A., Niesen, M. I., Ness, G. C. Mechanism of resistance to dietary cholesterol. J Lipids. 2011, 101242(2011).
  3. Kapourchali, F. R., et al. Animal models of atherosclerosis. World J Clin Cases. 2, 126-132 (2014).
  4. Carter, C. P., Howles, P. N., Hui, D. Y. Genetic variation in cholesterol absorption efficiency among inbred strains of mice. J Nutr. 127, 1344-1348 (1997).
  5. Kolodgie, F. D., et al. Hypercholesterolemia in the rabbit induced by feeding graded amounts of low-level cholesterol. Methodological considerations regarding individual variability in response to dietary cholesterol and development of lesion type. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 16, 1454-1464 (1996).
  6. Singh, V., Tiwari, R. L., Dikshit, M., Barthwal, M. K. Models to study atherosclerosis: a mechanistic insight. Curr Vasc Pharmacol. 7, 75-109 (2009).
  7. Dornas, W. C., Oliveira, T. T., Augusto, L. E., Nagem, T. J. Experimental atherosclerosis in rabbits. Arq Bras Cardiol. 95, 272-278 (2010).
  8. Baumgartner, H. R., Studer, A. [Effects of vascular catheterization in normo- and hypercholesteremic rabbits]. Pathol Microbiol (Basel). 29, 393-405 (1966).
  9. Tanaka, H., et al. Sustained activation of vascular cells and leukocytes in the rabbit aorta after balloon injury. Circulation. 88, 1788-1803 (1993).
  10. Phinikaridou, A., Hallock, K. J., Qiao, Y., Hamilton, J. A. A robust rabbit model of human atherosclerosis and atherothrombosis. J Lipid Res. 50, 787-797 (2009).
  11. Nakazawa, G., et al. Drug-eluting stent safety: findings from preclinical studies. Expert Rev Cardiovasc Ther. 6, 1379-1391 (2008).
  12. Aikawa, M., et al. Lipid lowering by diet reduces matrix metalloproteinase activity and increases collagen content of rabbit atheroma: a potential mechanism of lesion stabilization. Circulation. 97, 2433-2444 (1998).
  13. Jeanpierre, E., et al. Dietary lipid lowering modifies plaque phenotype in rabbit atheroma after angioplasty: a potential role of tissue factor. Circulation. 108, 1740-1745 (2003).
  14. Durand, E., et al. Magnetic resonance imaging of ruptured plaques in the rabbit with ultrasmall superparamagnetic particles of iron oxide. J Vasc Res. 44, 119-128 (2007).
  15. Stadius, M. L., et al. Time course and cellular characteristics of the iliac artery response to acute balloon injury. An angiographic, morphometric, and immunocytochemical analysis in the cholesterol-fed New Zealand white rabbit. Arterioscler Thromb. 12, 1267-1273 (1992).
  16. Khanna, V., et al. Cholesterol diet withdrawal leads to an initial plaque instability and subsequent regression of accelerated iliac artery atherosclerosis in rabbits. PLoS One. 8, e77037(2013).
  17. Zou, J., et al. Effect of resveratrol on intimal hyperplasia after endothelial denudation in an experimental rabbit model. Life Sci. 68, 153-163 (2000).
  18. Li, M., Zhang, Y., Ren, H., Zhang, Y., Zhu, X. Effect of clopidogrel on the inflammatory progression of early atherosclerosis in rabbits model. Atherosclerosis. 194, 348-356 (2007).
  19. Nakazawa, G., et al. Evaluation of polymer-based comparator drug-eluting stents using a rabbit model of iliac artery atherosclerosis. Circ Cardiovasc Interv. 4, 38-46 (2011).
  20. Van Dyck, C. J., et al. Resolute and Xience V polymer-based drug-eluting stents compared in an atherosclerotic rabbit double injury model. Catheter Cardiovasc Interv. 81, E259-E268 (2013).
  21. Abran, M., et al. Validating a bimodal intravascular ultrasound (IVUS) and near-infrared fluorescence (NIRF) catheter for atherosclerotic plaque detection in rabbits. Biomed Opt Express. 6, 3989-3999 (2015).
  22. Kanamasa, K., et al. Recombinant tissue plasminogen activator prevents intimal hyperplasia after balloon angioplasty in hypercholesterolemic rabbits. Jpn Circ J. 60, 889-894 (1996).
  23. Pai, M., et al. Inhibition of in-stent restenosis in rabbit iliac arteries with photodynamic therapy. Eur J Vasc Endovasc Surg. 30, 573-581 (2005).
  24. Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. Cryosectioning tissues. CSH Protoc. 2008, (2008).
  25. Chaytor, A. T., Bakker, L. M., Edwards, D. H., Griffith, T. M. Connexin-mimetic peptides dissociate electrotonic EDHF-type signalling via myoendothelial and smooth muscle gap junctions in the rabbit iliac artery. Br J Pharmacol. 144, 108-114 (2005).
  26. Zhang, W., Trebak, M. Vascular balloon injury and intraluminal administration in rat carotid artery. J Vis Exp. (94), (2014).
  27. Maillard, L., et al. Effect of percutaneous adenovirus-mediated Gax gene delivery to the arterial wall in double-injured atheromatous stented rabbit iliac arteries. Gene Ther. 7, 1353-1361 (2000).
  28. Sharif, F., et al. Gene-eluting stents: adenovirus-mediated delivery of eNOS to the blood vessel wall accelerates re-endothelialization and inhibits restenosis. Mol Ther. 16, 1674-1680 (2008).
  29. Lee, J. M., et al. Development of a rabbit model for a preclinical comparison of coronary stent types in-vivo. Korean Circ J. 43, 713-722 (2013).
  30. Tulis, D. A. Rat carotid artery balloon injury model. Methods Mol Med. 139, 1-30 (2007).
  31. Asada, Y., et al. Effects of inflation pressure of balloon catheter on vascular injuries and subsequent development of intimal hyperplasia in rabbit aorta. Atherosclerosis. 121, 45-53 (1996).
  32. Dornas, W. C., Oliveira, T. T., Augusto, L. E., Nagem, T. J. Experimental atherosclerosis in rabbits. Arq Bras Cardiol. 95, 272-278 (2010).
  33. Waksman, R., et al. PhotoPoint photodynamic therapy promotes stabilization of atherosclerotic plaques and inhibits plaque progression. J Am Coll Cardiol. 52, 1024-1032 (2008).
  34. Fernandez-Parra, R., et al. Pharmacokinetic Study of Paclitaxel Concentration after Drug-Eluting Balloon Angioplasty in the Iliac Artery of Healthy and Atherosclerotic Rabbit Models. J Vasc Interv Radiol. 26, 1380-1387 (2015).
  35. Dussault, S., Dhahri, W., Desjarlais, M., Mathieu, R., Rivard, A. Elsibucol inhibits atherosclerosis following arterial injury: multifunctional effects on cholesterol levels, oxidative stress and inflammation. Atherosclerosis. 237, 194-199 (2014).
  36. Manderson, J. A., Mosse, P. R., Safstrom, J. A., Young, S. B., Campbell, G. R. Balloon catheter injury to rabbit carotid artery. I. Changes in smooth muscle phenotype. Arteriosclerosis. 9, 289-298 (1989).
  37. Miyake, T., et al. Prevention of neointimal formation after angioplasty using nuclear factor-kappaB decoy oligodeoxynucleotide-coated balloon catheter in rabbit model. Circ Cardiovasc Interv. 7, 787-796 (2014).
  38. Fulcher, J., Patel, S., Nicholls, S. J., Bao, S., Celermajer, D. Optical coherence tomography for serial in vivo imaging of aortic plaque in the rabbit: a preliminary experience. Open Heart. 2, e000314(2015).
  39. Abela, O. G., et al. Plaque Rupture and Thrombosis: the Value of the Atherosclerotic Rabbit Model in Defining the Mechanism. Curr Atheroscler Rep. 18, 29(2016).
  40. Yamashita, A., Asada, Y. A rabbit model of thrombosis on atherosclerotic lesions. J Biomed Biotechnol. 2011, 424929(2011).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Rabbit Atherosclerosis ModelIliac Artery Balloon InjuryAtherogenic Diet FeedingEndothelial Disruption TechniquePlaque Formation AnalysisNeointimal Thickening AssessmentLipid Infiltration MeasurementSmooth Muscle Cell StainingMacrophage Foam Cell DetectionMorphometric Quantification Methods

Related Articles