مقالة منهجية

التوسع و أديبوجينيسيس تحريض الأسلاف خلية شحمية من الأنسجة الدهنية حول الأوعية معزولة من قبل المغناطيسي تنشيط الخلايا الفرز

DOI:

10.3791/55818

⸱

يونيو 30, 2017

 ,  ,  , 
1Department of Large Animal Clinical Sciences, Michigan State University, 2Department of Pharmacology and Toxicology, Michigan State University

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هنا نحن تقرير طريقة لعزل الخلايا خلية خلية خلية (أبك) من الأنسجة الدهنية حول الأوعية (بفات) باستخدام المغناطيسي تنشيط الخلايا فرز (مكس). هذا الأسلوب يسمح لزيادة عزل أبك لكل غرام من الأنسجة الدهنية بالمقارنة مع مضان تنشيط الخلايا الفرز (فاكس).

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

توسع الأنسجة الدهنية حول الأوعية (بفات)، وهو منظم رئيسي لوظيفة الأوعية الدموية من خلال الإشارات باراكرين، يرتبط ارتباطا مباشرا بتطور ارتفاع ضغط الدم أثناء السمنة. مدى تضخم وتضخم يعتمد على موقع مستودع، والجنس، ونوع من الخلايا السليفة خلية خلية (أبك) الظواهر الحالية. التقنيات المستخدمة ل أبك و برياديبوسيتس العزلة في السنوات ال 10 الماضية قد تحسنت بشكل كبير في دقة الخلايا الفردية التي يمكن تحديدها على أساس محدد علامات سطح الخلية. ومع ذلك، فإن عزل أبك والشحميات يمكن أن يكون تحديا بسبب هشاشة الخلية، وخاصة إذا كان يجب الاحتفاظ الخلية سليمة لتطبيقات زراعة الخلايا.

يوفر تنشيط الخلايا المغناطيسي ( مكس) طريقة لعزل عدد أكبر من أبك قابلة للحياة في وحدة الوزن من الأنسجة الدهنية. أبك تحصدها مكس يمكن استخدامها لبروتوكولات في المختبر لتوسيع برياديبوسيتس والتفريق بينها في الخلايا الشحمية من خلال استخدام الكوكتيلات عامل النمو مما يسمح لتحليل إمكانات غزير و أديبوجينيك الاحتفاظ بها من قبل الخلايا. وركزت هذه التجربة على المستودعات الباطنية المساريقية الأبهرية، والتي تلعب أدوارا رئيسية في تطوير أمراض القلب والأوعية الدموية أثناء التوسع. تصف هذه البروتوكولات طرق لعزل، توسيع، وتمييز مجموعة محددة من أبك. هذا البروتوكول مكس يسمح العزلة لاستخدامها في أي تجربة حيث الفرز الخلية هو مطلوب مع الحد الأدنى من المعدات أو التدريب. هذه التقنيات يمكن أن تساعد المزيد من التجارب لتحديد وظائف السكان خلية محددة على أساس وجود علامات سطح الخلية.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الأنسجة الدهنية حول الأوعية (بفات)، نظرا لقربها من الأوعية الدموية، هو عنصر باراكرين إشارة رئيسية في وظيفة الأوعية الدموية 1 . التوسع في هذا النسيج الدهني يعتمد على النمط الظاهري للخلايا خلية الخلايا الشحمية (أبك) الحاضر 2 ، 3 . عزل الخلايا من الأنسجة الدهنية أمر صعب كما الخلايا الشحمية الأولية هشة، مزدهرة، ومدى في الحجم. بعض تقنيات العزلة يمكن أيضا تغيير النمط الظاهري الخلية والمورفولوجيا عن طريق زيادة تخليق البروتين الالتهابي والحد من التعبير الجيني أديبوجينيك 4 ، مؤكدا على أهمية بروتوكول يحافظ على سلامة الخلايا.

ثقافة الخلايا الأولية والقطاعات الفرعية برياديبوسيت محددة يعطي نهج الاختزال في نمو الجسم الحي ويحافظ على ما يعادل التركيب الخلوي الخلوي 5 ، على الرغم من أن العمل تيلي مع هذه الخلايا محدودة بسبب تدهور مع الشيخوخة، أو الشيخوخة 6 . وتظهر الخلايا المسبقة من المستودعات الدهنية المختلفة، بما في ذلك المستودعات تحت الجلد والمستودعات، اختلافات في الانتشار 7 ، مما يؤكد أهمية جمع الخلايا من مواقع تشريحية محددة. وقد اتسمت الخلايا السلائف من غير بفات مستودعات الدهنية البيضاء في الدراسات السابقة 7 ، 8 ، 9 ، ولكن أقل هو معروف عن المظاهر بفات أبك.

التقنيات الموصوفة هنا تسمح لتحليل السكان محددة ومحددة أبك مع تأثير ضئيل على مورفولوجيا، وقابلية البقاء، وإمكانية التكاثر والتمييز. تصنيف الخلايا المغناطيسية تنشيط (مكس) هو قابل للتطبيقات المصب، مثل الثقافة، وحبات تذوب دون تغيير الخلية. مكس هو أيضا اقتصادية، وبمجرد أن يخدع الأجسام المضادةوقد تم توحيد الترآيزات، والحاجة إلى المقايسات التدفق الخلوي هو الحد الأدنى. في الدراسات المختبرية مع السلائف بفات يمكن أيضا إعطاء لمحة عن احتمال أن هذه الخلايا الأولية قد يكون.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

جميع الإجراءات الموضحة في هذه الورقة تتبع المبادئ التوجيهية التي وضعتها اللجنة المؤسسية رعاية الحيوان واستخدام (إاكوك) من جامعة ولاية ميشيغان. وينبغي حماية جميع المخازن المؤقتة ووسائل الإعلام من الضوء.

1. إعداد المخازن المؤقتة، وسائل الإعلام، والأدوات

  1. إعداد كريبس قارع الأجراس بيكربونات-مخزنة الحل (كرب): 135 ملي كلوريد الصوديوم، 5 ملي كلوريد البوتاسيوم، 1 ملم كبريتات المغنيسيوم، 0.4 ملي فوسفات البوتاسيوم ثنائي القاعدة، 5.5 ملي الجلوكوز، 1٪ المضادات الحيوية / أنتيميكوتيك (10،000 وحدة / مل البنسلين، 10000 ميكروغرام / مل ستربتوميسين، 25 ميكروغرام / مل الأمفوتريسين B)، و 10 ملي هيبيس (الرقم الهيدروجيني = 7.4). هذا الحل هو مستقر لمدة 3 أسابيع عندما تبقى معقمة وعند 4 درجات مئوية.
  2. إعداد كولاجيناز نوع 1 الحل: 1 ملغ / مل في كرب مع 4٪ مصل البقري المصل (بسا). وينبغي أن يبقى هذا الحل عند 37 درجة مئوية ومستقر لمدة 4 ساعات.
  3. إعداد كريات الدم الحمراء تحلل العازلة الحل: 154 ملي كلوريد الأمونيوم، 10 ملي بيكربونات البوتاسيوم، و 0.1 ملي إدتا. إبقاء في 4 درجات مئوية لمدة تصل إلى شهر واحد.
  4. إعداد مكس حظر العازلة: دمم / F12 قاعدة وسائل الإعلام، 10٪ مصل بقري الجنين (فبس)، 5٪ مصل حمار العادي، 40 ميكرولتر / مل F (أب) جزء حمار مكافحة الجرذ مفتش. إبقاء في 4 درجات مئوية لمدة تصل إلى شهر واحد.
  5. إعداد مكس العازلة الحل: الفوسفات مخزنة المالحة (بس، الرقم الهيدروجيني = 7.5)، 0.5٪ بسا، و 2 ملي إدتا. إبقاء في 4 درجات مئوية لمدة تصل إلى شهر واحد. حل دي الغاز عن طريق التسخين إلى 37 درجة مئوية في وعاء زجاجي ثم تطبيق فراغ for15 ق. ترك غير المستخدمة مخزنة مختومة.
  6. (سفف) باسال ميديا: Dulbecco's-تعديل النسور المتوسطة (دمم): F12، 15٪ مصل عجل الجنين (فس)، 1٪ المضادات الحيوية / أنتيميكوتيك (10،000 وحدة / مل البنسلين، 10000 ميكروغرام / مل الستربتومايسين، 25 ميكروغرام / مل أمفوتريسين B)، 44.05 ملي بيكربونات الصوديوم، و 100 ميكرومتر حمض الاسكوربيك، 33 ميكرومتر البيوتين، 17 ميكرومتر بانتوثينات، 2 ملي L- الجلوتامين، و 20 ملي هيبيس. الحفاظ على العقيمة و 4 درجات مئوية لمدة تصل إلى 2 أسابيع.
  7. إعداد أبك &# 160؛ وسائل الإعلام: وسائل الإعلام القاعدية مع عوامل نمو إضافية بما في ذلك عامل نمو البشرة 10 نانوغرام / مل)، عامل تثبيط اللوكيميا (10 نانوغرام / مل)، عامل النمو المشتقة من الصفيحات بب (10 نانوغرام / مل)، وعامل نمو الخلايا الليفية الأساسية 5 نانوغرام / مل). الحفاظ على العقيمة و 4 درجات مئوية لمدة تصل إلى 2 أسابيع.
  8. إعداد وسائل الإعلام أبك التعريفي: أبك وسائل الإعلام مع 10٪ فبس، 2.5 ميكروغرام / مل الأنسولين، 0.5 ملي 2-ايزوبيوتيل-1-ميثيلاكسانثين (عبكس)، 1 ميكرومتر ديكساميثازون، و 200 P3 T3 (هرمون الغدة الدرقية تريودوثيرونين). الحفاظ على العقيمة و 4 درجات مئوية لمدة تصل إلى 2 أسابيع.

2. أديبوسيت الأسلاف العزلة

  1. تخدير الفئران وفقا للمبادئ التوجيهية المؤسسية. وضع الفئران في الاستلقاء الظهري. تأكيد عمق التخدير عن طريق اصبع القدم قرصة وفقدان رد الفعل لا ارادي لهذا التحفيز المؤلم.
    ملاحظة: يستخدم هذا البروتوكول 10 عاما سبراغ داولي الفئران و 70 ملغ / كغ من بينتوباربيتال تسليمها عن طريق الحقن داخل الصفاق.
  2. جعل شق خط الوسط الرأسي ثإيث مقص على طول القص في المنطقة الصدرية ومنطقة العجان. الوصول إلى تجويف البطن وفضح الشريان المساريقي العلوي، وأوعية المقاومة المساريقي الصغيرة (مبفات) والشريان الأورطي الصدري (آبفات).
    1. قطع جميع الاتصالات إلى المساريقي والشريان الأورطي وإزالة السفن من الحيوان. عزل بفات باستخدام المجهر تشريح وطبق بتري مليئة كرب لعرض السفن وعزل بفات.
    2. في هذه التجربة، وجمع غونادال (غون) الدهنية لتمثيل مستودع الدهنية غير بفات. وضع منصات الدهون معزولة على الجليد في كرب مع 10 ملي هيبيس (الرقم الهيدروجيني = 7.4).
    3. في غطاء السلامة الأحيائية، ونقل حوالي 50 ملغ من الأنسجة إلى أنبوب 1.7 مل مع 1 مل من حل كولاجيناز نوع I واللحم المفروم مع مقص الأنسجة (1 - 3 ملم قطعة).
  3. هضم العينات عن طريق احتضان عند 37 درجة مئوية في حاضنة المشواة (أو حاضنة مع شاكر المداري) لمدة 1 ساعة. في غطاء السلامة الأحيائية، مرشح بالتسلسل هضم المواد من خلال 100 و 40 مصافي الخلية ميكرون في أنبوب 50 مل. الطرد المركزي الناتج الترشيح في 4 درجات مئوية لمدة 10 دقيقة في 300 × ز.
    ملاحظة: جميع الخطوات في البروتوكول من هنا إلى الأمام هي التي يتعين القيام بها في غطاء السلامة الحيوية للحفاظ على الخلايا العقيمة.
  4. صب قبالة طاف و ريسوسبيند الكريات التي تحتوي على الخلايا سفف في 1 مل من 1X كريات الدم الحمراء تحلل العازلة الحل ونقل إلى أنبوب ميكروفوج 1.7 مل. احتضان الخلايا لمدة 5 دقائق في رت محمية من الضوء وأجهزة الطرد المركزي في 4 درجات مئوية لمدة 5 دقائق في 300 × ز.
  5. صب قبالة طاف و ريسوسبيند المتبقية بيليه الخلية في سفف بسال وسائل الإعلام. جمع 20 ميكرولتر عينة فرعية لحساب الخلايا الحية مع تريبان الحل الأزرق.
    ملاحظة: عدد الخلايا سفف التي يمكن عزلها تختلف حسب الموقع. متوسط ​​عدد سفف تحصد في ملغ من الأنسجة هي: أبفات = 5.0 ± 2.0x10 3 ، مبفات = 1.04 ± 0.62x10 4 ، غون = 2.4 ± 1.2x10 5 .

3. المغناطيسي تنشيط الخلايا الفرز

_content "> ملاحظة: عزل أبك من سفف على أساس CD34 و PDGFRα علامات سطح الخلية عن طريق تنفيذ جميع الخطوات في 4 درجات مئوية.

  1. تدور الخلايا لمدة 5 دقائق في 300 × ز. صب قبالة طاف و ريسوسبيند بيليه الخلية في مكس حظر العازلة في 1 × 10 6 خلايا / مل واحتضان لمدة 20 دقيقة.
    ملاحظة: تعليق خلية من 1 × 10 6 - 2 × 10 8 خلايا / مل يمكن فصلها على نحو فعال.
  2. احتضان الخلايا مع 5 ميكرولتر من فيتس مترافق ماوس مكافحة CD34 (1 ميكروغرام / 1 × 10 6 خلايا) لمدة 30 دقيقة في 4 درجات مئوية. تدور الخلايا لمدة 5 دقائق في 300 x ج و 4 درجة مئوية.
    1. احتضان مع 4 ميكرولتر من ميكروبلات مكافحة فيتس و 96 ميكرولتر من العازلة مكس (إجمالي حجم 100 ميكرولتر) لمدة 5 دقائق في 4 درجات مئوية في الظلام لفصل CD34 + و CD34 - الخلايا.
  3. إرفاق فاصل المغناطيسي إلى موقف ووضع عمود مولتيسورت (مس)، مع أجنحة العمود إلى الأمام، في فاصل. وضع 5 ملأنبوب جمع تحت عمود مس في حامل أنبوب العلوي.
  4. إعداد مس العمود عن طريق الشطف مع مكس العازلة الحل. تطبيق 500 ميكرولتر من مكس العازلة على رأس العمود والسماح تشغيل العازلة من خلال. تجاهل النفايات السائلة وتغيير أنبوب جمع.
  5. تحميل الأجسام المضادة تعليق تعليق الخلية على مس إعداد العمود. جمع تدفق من خلال تحتوي على الخلايا غير المسماة.
  6. غسل مس عمود مع 500 ميكرولتر من مكس التفريغ العازلة 3X. جمع الخلايا غير المسماة التي تمر من خلال والجمع مع تدفق من خلال من الخطوة السابقة.
  7. إزالة مس العمود من فاصل المغناطيسي ووضعه على أنبوب جمع جديد. ماصة 1 مل من مكس المخزن المؤقت على عمود مس. على الفور مسح جزء مع الخلايا المسمى مغناطيسيا بحزم، ولكن ببطء، وتطبيق المكبس الموردة مع العمود لعدم السماح الغاز الزائد في العمود.
    ملاحظة: سوف تختلف أرقام الخلايا المعزولة حسب الموقع. متوسط ​​عدد CD34 + أبك معزولة عن السكان سفف لكلملغ من الأنسجة هي: أبفات = 2.6 ± 0.43x10 2 ، مبفات = 9.6 ± 1.4x10 2 ، غون = 1.3 ± 0.22x10 3 .
  8. تدور الخلايا لمدة 5 دقائق في 300 × ز و 4 درجة مئوية. احتضان CD34 + جزء جمعها في 10 ميكرولتر من 1: 200 حل / 1 × 10 6 خلايا الأرنب المضادة PDGFRα لمدة 30 دقيقة في 4 درجات مئوية.
    1. خلايا الطرد المركزي مرة أخرى لمدة 5 دقائق في 300 x ج و 4 درجة مئوية. احتضان الخلايا المسمى مع 4 ميكرولتر من ميكروبلات المضادة للأرنب مفرق و 96 ميكرولتر من العازلة مكس بتكرار الخطوات من 3.3 إلى 3.7 لعزل.
      ملاحظة: سوف تختلف أرقام الخلايا المعزولة حسب الموقع. متوسط ​​عدد PDGFRα + أبك المعزول من السكان CD34 + لكل ملغ من الأنسجة هي: أبفات = 2.4 ± 0.64، مبفات = 8.4 ± 2.4، غون = 10.4 ± 1.9، وهو 0.5 - 10٪ من السكان المعزولين سابقا.

4. خلية الثقافة و أديبوجينيسيس التعريفي

  1. ثقافة سففو أبك في 6-حسنا لوحات زراعة الأنسجة في وسائل الإعلام القاعدية مع استبدال كل يومين. بعد 3 المقاطع التسلسلية، لوحة في الأسود 96-جيدا لوحات زراعة الأنسجة في 1x10 2 خلايا / جيدا لفحوصات الانتشار، والتي يتم تقييمها في 8، 24، 48، و 96 ساعة، وفي 50،000 خلية / جيدا في لوحات 24 جيدا أو 10000 خلية / جيدا في 48-جيدا لوحات زراعة الأنسجة لمقايسات أديبوجينيسيس، والتي هي النوعية والكمية.
  2. الملحق أبك وسائل الاعلام القاعدية لمدة 48 ساعة بعد كونفلنسي وقبل الاستقراء مع بروتين العظام المورفوجني 4 (3.3 نانومول / لتر) كما هو مبين 10 للتمايز. إغناء الخلايا بعد 48 ساعة من 100٪ كونفلنسي (يوم 0) باستخدام وسائل الإعلام التعريفي أبك لاحتضان الخلايا.
  3. بعد 48 ساعة، تغيير وسائل الإعلام للحفاظ على الخلايا في وسائل الإعلام أبك التعريفي دون عبكس و ديكساميثازون، لمدة 14 يوما مع تغيرات وسائل الإعلام كل 48 ساعة.
  4. مكس التحقق من صحة نظام مراقبة الأصول الميدانية.
    1. خذ 50 ميكرولتر (50،000 خلية) عينة فرعية من فصل مغناطيسياوتغسل مع حل فاكس.
    2. خلايا الطرد المركزي و ريسوسبيند في 100 ميكرولتر من حل 1: 1000 من حمار المضادة للأرنب مفتش ديليت 405 لتسمية PDGFRα + الخلايا. احتضان لمدة 30 دقيقة محمية من الضوء وعند 4 درجات مئوية.
    3. غسل الخلايا و ريسوسبيند في 200 ميكرولتر من محلول الفورمالديهايد 2٪ حتى الوقت للتحليل باستخدام 488 نانومتر (فيتس) و 405 نانومتر (ديليت 405) مرشحات على مقياس التدفق الخلوي.
      ملاحظة: يتم تقييم تراكم الدهون بواسطة الخلايا المستزرعة كميا باستخدام مقايسة مضان للدهون أديبوجينيسيس في قارئ ميكروبلات قياس مضان واستخدام برياديبوسيتس كما معايرة لتراكم الدهون. ويقاس تراكم الدهون أيضا نوعيا من قبل تلطيخ صبغ الدهون والتصوير أجريت على المجهر مقلوب مجهزة الكاميرا، مما يجعل نسبة من الخلايا الكلية التي تفعل أو لا تحتوي على الدهون يمكن ملاحظتها. أي قارئ لوحة قادرة على قياس مضان مع الإثارة في 485 نانومتر والانبعاثات في 572نانومتر هو مناسبة للتحليل وكذلك أي المجهر مع كاميرا قادرة على التقاط الصور الرقمية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

القدرة التكاثري لل برياديبوسيتس وإمكانات أديبوجينيك السلائف خلية شحمية هي الخصائص التي يتم الاحتفاظ بها في المختبر 11 . تم تقييم انتشار المختبر من سفف معزولة و أبك من أبفات، مبفات، وحكومة نيبال من الفئران الذكور في 8، 24، 48، و 96 ساعة بعد الطلاء باستخدام فحص الحمض النووي الكمي. لم يلاحظ أي اختلافات في الموقع في معدل التوسع سفف في أي نقطة زمنية باستثناء أبك من أبفات، التي كان أقل انتشارا 96 ساعة با...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

التركيز الرئيسي من التجربة الحالية هو العزلة، والتوسع، وتحريض أديبوجينيك من أبك من مستودعات بفات. هنا نقدم بروتوكول لعزل أبك على أساس تحديد الخلايا معربا عن علامات سطح CD34 و PDGFRα. تم تحديد هذه البروتينات السطحية سابقا على أبك مع معدلات انتشار عالية وإمكانية التفريق إلى الخلايا الشحمية البيضاء أو البني في مختلف المستودعات الدهنية 14 ، 15 . عن طريق اختيار الخلايا على أساس هذه علامات محددة، كنا قادرين على عزل السكان أبك مم...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب ليس لديهم ما يكشف.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

و كونتريراس و واتس المختبرات والدكتور ويليام رفائيل. وقد دعمت هذه التجارب من قبل نهلبي F31 HL128035-01 (الأنسجة بروتوكول الهضم التوحيد)، نهلبي 5R01HL117847-02 و 2 P01HL070687-11A1 (الحيوانات)، و نهلبي 5R01HL117847-02 (عزل الخلية والثقافة).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
<قوي > تشريح الأنسجة < / قوي >
تشريح أطباقمصنوعة يدويا مع سيليكون
ثقافة بتري طبقبيركس7740 سيليكون زجاجي
مطاطمعدني داو كورنينجسيلجارد 170كيت
خياطة حريرية مضفرةجهاز هارفارد51-7615SP104
مجهر مجهر مجهر مجسم MZ6لايكا10447254
مجهر ستيريوماستر مصدر ضوء الألياف البصريةفيشر ساينتفيك12562-36
مقص فاناسجورج تيمان & Co160-150
ملقط منشقجورج تيمان & أمبير Co160-55
مقص المناديلجورج تيمان & أمبير Co105-400<
strong>KRBB Solution< / قوي >
كلوريد الصوديومسيجما ألدريتش7647-14-5
كلوريد البوتاسيومسيجما ألدريتش7447-40-7
كبريتات المغنيسيومسيجما ألدريتش7487-88-9
فوسفات البوتاسيوم ثنائي القاعدةسيجما ألدريتش7758-114
الجلوكوزسيجما ألدريتش50-99-7
المضادات الحيوية / المضادة للميكروبوتيككورنينج30-004-CI
هيبسكورنينج25-060-CI
قوي > هضم الأنسجة < / قوي >
كولاجيناز نوع 1ورثينجتون الكيمياء الحيويةLS004196
ألبومين مصل الأبقار (BSA)فيشر العلمي9048-46-8
عازلة تحلل خلايا الدم الحمراءBioLegend4203011X حل العمل
حمام مائيThermo-Fisher Scientific2876الحيوية للحمام الاهتزاز
المتبادل Thermo-Fisher Scientific1385
حاضنة المشواةDaiggerEF4894C
100 & الصغيره; م مصفاة خليةحراري فيشر علمي22-363-549أصفر
40 & مصفاة خلية mThermo-Fisher Scientific22-363-547مقياس الدم الأزرق
Cole-ParmerUX-79001-00
Trypan BlueSigma-Aldrich93595
Cell Isolation
OctoMACS KitMiltenyi Biotech130-042-108
(DMEM): F12 MediumCorning90-090
مصل بقري الجنين متوسط القاعدة (FBS)كورنينج35016CVأصول الولايات المتحدة الأمريكية
مصل الحمار العاديAbCamAB7475
Anti-CD34سانتا كروزSC-7324FITC المترافق
مضاد PDGFR & alpha ؛Thermo-Fisher ScientificPA5-17623
حمار مضاد للأرانب IgGJackson ImmunoResearch712-007-003
محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS) 10XCorning46-013-CM1X حل عمل
EDTAFisher Scientific15575020
<قوي > ثقافة الخلية< / قوي >
CO 2< / sub> حاضنة الخليةThermo-Fisher Scientific51030285Heracell 160i & nbsp ؛
6 ألواح آبارCorning3516
ألواح 48 بئراTC Corning3548
ألواح 96 بئرا معالجة TC ،كورنينج353376
بيكربونات الصوديومسيجما ألدريتش144-55-8
مصل ربلة الساق الجنينية المعالجة TC (FCS)كورنينج35011CVأصول الولايات المتحدة الأمريكية
حمض الأسكوربيكسيجما ألدريتش50-81-7
البيوتينسيجما ألدريتش58-85-5
بانتوثيناتسيجما ألدريتش137-08-6
ل-جلوتامينكورنينج61-030
بروتين مورفوجينيك للعظام 4 (BMP4)بروسبيك بيوسيت-081
عامل نمو البشرة (EGF)بيبروتك400-25
عامل مثبط لسرطان الدمPeproTech250-02
عامل النمو المشتق من الصفائح الدموية BBProspec BioCYT-740
عامل نمو الخلايا الليفية الأساسي (bFGF)PeproTech450-33
الأنسولينCorning25-800-CRITS Solution
IBMXSigma-Aldrich28822-58-4
ديكساميثازونسيجما ألدريتش50-02-2
T3 (ثلاثي يودوثيرونين)سيجما ألدريتش6893-023
<تحليل > خلية قوي< / قوي >
CyQUANT مقايسةالانتشار الحرارية فيشر العلميC7026
Adipo كاشف فحص التألق الأحمرلونزاPT-7009
كاشف صبغة الدهون الأحمر الأحمرSigma-AldrichO1391في الحل
M1000 قارئ الصفائح الدقيقةTecan
Eclipse مجهر مقلوبنيكون
الرقمي DS-Qil كاميرانيكون
< خزانة السلامة معالجة الجدار الأسود المعالجة TC البصر

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Watts, S. W., et al. Chemerin connects fat to arterial contraction. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 33 (6), 1320-1328 (2013).
  2. Dodson, M. V., et al. Adipose depots differ in cellularity, adipokines produced, gene expression, and cell systems. Adipocyte. 3 (4), 236-241 (2014).
  3. Police, S. B., Thatcher, S. E., Charnigo, R., Daugherty, A., Cassis, L. A. Obesity promotes inflammation in periaortic adipose tissue and angiotensin II-induced abdominal aortic aneurysm formation. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 29 (10), 1458-1464 (2009).
  4. Ruan, H., Zarnowski, M. J., Cushman, S. W., Lodish, H. F. Standard isolation of primary adipose cells from mouse epididymal fat pads induces inflammatory mediators and down-regulates adipocyte genes. J Biol Chem. 278 (48), 47585-47593 (2003).
  5. Stacey, G. in eLS. , John Wiley & Sons, Ltd. (2001).
  6. Swim, H. E., Parker, R. F. Culture characteristics of human fibroblasts propagated serially. Am J Hyg. 66 (2), 235-243 (1957).
  7. Van Harmelen, V., Rohrig, K., Hauner, H. Comparison of proliferation and differentiation capacity of human adipocyte precursor cells from the omental and subcutaneous adipose tissue depot of obese subjects. Metabolism. 53 (5), 632-637 (2004).
  8. Roncari, D. A., Lau, D. C., Kindler, S. Exaggerated replication in culture of adipocyte precursors from massively obese persons. Metabolism. 30 (5), 425-427 (1981).
  9. Church, C. D., Berry, R., Rodeheffer, M. S. Isolation and study of adipocyte precursors. Methods Enzymol. 537, 31-46 (2014).
  10. Fontana, L., Eagon, J. C., Trujillo, M. E., Scherer, P. E., Klein, S. Visceral fat adipokine secretion is associated with systemic inflammation in obese humans. Diabetes. 56 (4), 1010-1013 (2007).
  11. Tchkonia, T., et al. Fat depot-specific characteristics are retained in strains derived from single human preadipocytes. Diabetes. 55 (9), 2571-2578 (2006).
  12. Macotela, Y., et al. Intrinsic differences in adipocyte precursor cells from different white fat depots. Diabetes. 61 (7), 1691-1699 (2012).
  13. Contreras, G. A., Thelen, K., Ayala-Lopez, N., Watts, S. W. The distribution and adipogenic potential of perivascular adipose tissue adipocyte progenitors is dependent on sexual dimorphism and vessel location. Physiol Rep. 4 (19), (2016).
  14. Lee, Y. H., Petkova, A. P., Granneman, J. G. Identification of an adipogenic niche for adipose tissue remodeling and restoration. Cell Metab. 18 (3), 355-367 (2013).
  15. Lee, Y. H., Petkova, A. P., Mottillo, E. P., Granneman, J. G. In vivo identification of bipotential adipocyte progenitors recruited by beta3-adrenoceptor activation and high-fat feeding. Cell Metab. 15 (4), 480-491 (2012).
  16. Ahrens, M., et al. Expression of human bone morphogenetic proteins-2 or -4 in murine mesenchymal progenitor C3H10T1/2 cells induces differentiation into distinct mesenchymal cell lineages. DNA Cell Biol. 12 (10), 871-880 (1993).
  17. Bowers, R. R., Lane, M. D. A role for bone morphogenetic protein-4 in adipocyte development. Cell Cycle. 6 (4), 385-389 (2007).
  18. Schulz, T. J., Tseng, Y. H. Emerging role of bone morphogenetic proteins in adipogenesis and energy metabolism. Cytokine Growth Factor Rev. 20 (5-6), 523-531 (2009).
  19. Choi, J. R., et al. In situ normoxia enhances survival and proliferation rate of human adipose tissue-derived stromal cells without increasing the risk of tumourigenesis. PLoS One. 10 (1), 0115034(2015).
  20. Gupta, R. K., et al. Zfp423 expression identifies committed preadipocytes and localizes to adipose endothelial and perivascular cells. Cell Metab. 15 (2), 230-239 (2012).
  21. Rodeheffer, M. S., Birsoy, K., Friedman, J. M. Identification of white adipocyte progenitor cells in vivo. Cell. 135 (2), 240-249 (2008).
  22. Scott, M. A., Nguyen, V. T., Levi, B., James, A. W. Current methods of adipogenic differentiation of mesenchymal stem cells. Stem Cells Dev. 20 (10), 1793-1804 (2011).
  23. Edmondson, R., Broglie, J. J., Adcock, A. F., Yang, L. Three-dimensional cell culture systems and their applications in drug discovery and cell-based biosensors. Assay Drug Dev Technol. 12 (4), 207-218 (2014).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

CD34 PDGFR

مقالات ذات صلة