تحليل مشيه الحركية في الطائرة السهمي تعطي معلومات دقيقة جداً حول كيف يتم تنفيذ الحركة. يصف لنا تطبيق هذه التقنيات على تحديد العجز مشيه للفئران التي تتعرض للمناعة الذاتية بوساطة demyelination. كما يمكن استخدام هذه الأساليب لوصف العجز مشيه لنماذج الماوس أخرى تتميز بضعف الحركة.
يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية
مقالة منهجية
تحليل مشيه الحركية الطائرة السهمي في الفئران C57BL/6 تعرض إلى MOG35-55 التي يسببها التجريبية النخاع المناعة الذاتية
* These authors contributed equally
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
كثيرا ما استخدمت تحليل مشيه الحركية في الطائرة السهمي لتوصيف حالات العجز الحركي في التصلب المتعدد (MS). يصف لنا تطبيق هذه التقنيات على تحديد العجز مشيه في نموذج الفأر من مرض التصلب العصبي المتعدد، المعروفة باسم النخاع الذاتية التجريبية (ع). يتم تقييم العجز الشلل والحركية في الفئران التي تعرضت إلى ع عادة استخدام مقياس التهديف سريرية. ومع ذلك، هذا المقياس غلة البيانات الترتيبية فقط أن يقدم القليل من المعلومات حول الطبيعة الدقيقة لحالات العجز الحركي. وقسمت أيضا شدة المرض إي بأداء روتارود، الذي يوفر قدرا من التنسيق الحركي العام. على النقيض من ذلك، تحليل مشيه الحركية من أطرافهم هند في الطائرة السهمي يولد معلومات دقيقة جداً عن كيفية حركة البصر. لتنفيذ هذا الإجراء، يتم وضع علامات عاكسة على أطرافهم هند للكشف عن الحركة المشتركة بينما ماوس يسير في حلقة مفرغة. الحركة تحليل البرمجيات المستخدمة لقياس حركة علامات أثناء المشي. معلمات مشيه الحركية ثم مستمدة من البيانات الناتجة. وتبين لنا كيف يمكن استخدام هذه المعلمات مشيه لقياس حركات البصر من مفاصل الورك والركبة والكاحل في ع. يمكن استخدام هذه التقنيات لتحسين فهم آليات المرض وتحديد علاج محتمل لمرض التصلب العصبي المتعدد واضطرابات الأعصاب الأخرى التي تعوق التنقل.
المقدمة
مشيه عبارة عن سلسلة من الحركات المتكررة للأطراف المستخدمة لتحقيق الحركة. مشيه يتكون من دورات الخطوة التي تنقسم إلى مرحلتين: المرحلة موقفا، وعندما تتحرك القدم إلى الوراء على الأرض لدفع يرسل الجسم؛ وفي مرحلة سوينغ، حيث القدم الخروج الأرض وتتحرك إلى الأمام. اضطرابات مشيه سمات مميزة للعديد من اضطرابات الأعصاب، مثل إصابات النخاع الشوكي (علوم) والتصلب المتعدد (MS)، والتصلب العضلي الجانبي (المرض)، ومرض باركنسون (PD) والسكتة الدماغية؛ نماذج القوارض الإكلينيكية لهذه الاضطرابات غالباً الخص بهم العاهات مشيه كل منها1. وكانت آليات المراقبة الأساسية للحركة في الفئران دراسة مكثفة2،3. بالإضافة إلى ذلك، هناك نماذج الماوس للعديد من الاضطرابات العصبية البشرية4. ولذلك هو تحليل مشيه في الفئران نهج جذابة لقياس جوانب متعددة من العجز الحركي التي يعرف يرتبط التشريحية. دراسة مشيه في نماذج الفأر قد ثاقبة لاثيل قواعد العجز الحركي في اضطرابات الأعصاب، وتمكين تحديد العلاجات المحتملة.
وتشمل بعض التقنيات التي استخدمت لقياس مشيه في القوارض التفتيش البصري (مثلاً، باسو الماوس مقياس5 وفتح مجال الاختبار6) وتحليل مشيه من الطائرة البطني7. في الآونة الأخيرة، أساليب لقياس الكينماتيكا السهمي الطائرة حركات اللكتات اكتسبت شعبية نظراً لأنها توفر مزيد من المعلومات حول تنفيذ الحركة، وهي بالتالي أكثر حساسية للتغييرات الطفيفة في مشيه8، 9 , 10 , 11-التقنيات الحركية المتقدمة لدراسة حركة اللكتات في الطائرة السهمي بينما كان يسير في حلقة مفرغة9،12 وقد درست على نطاق واسع في سياق الخيال، المرض، الإصابات الرضية القشرية، والسكتة الدماغية، و مرض هنتنغتون8،9،10،11،،من1314،،من1516. وفي المقابل، شهدت هذه التقنيات استخدام محدود في دراسة حالات العجز الحركي لنماذج الماوس من التصلب المتعدد17.
النخاع الذاتية التجريبية (إي) هو النموذج الأكثر استخداماً الماوس من مرض التصلب العصبي المتعدد18. طريقتين الرئيسي لتحريض ع عن طريق التطعيم الإيجابي أو السلبي. وفي EAE نشطة، يتم تحصين الفئران مع المستضدات المايلين وتسبب neuroinflammation تي الخلية بوساطة أوتورياكتيفي وديميليناتيون في الحبل الشوكي والمخيخ. من ناحية أخرى، هو فعل EAE السلبي، نقل الخلايا أوتورياكتيفي تي من ماوس مع EAE النشطة ل ماوس السذاجة19. كما هو موضح في مكان آخر، سير المرض وأمراض الأعصاب تتأثر مستضد الجهاز العصبي المركزي (CNS) وضغط الماوس20،21،،من2223،24 ،25. في التجارب إي، وهي حقن الفئران التحكم الكامل فروند الشعبية adjuvant (CFA) دون مستضد المايلين. EAE تتميز بترتيب تصاعدي الشلل الذي يبدأ مع ضعف الذيل، ويمكن أن تنطوي على الأمامية، أسفر عن ترنح والشلل الذي أصاب20. نحن اتسمت مؤخرا تغييرات مشيه في الفئران C57Bl/6 تعرض لبروتين سكري oligodendrocyte المايلين 35-55 (35-55من موج)-التي يسببها ع. وقد أظهرت هذه الدراسات تحليل مشيه أن تكون متفوقة من التحليل السلوكي الكلاسيكي للانحرافات عن حركة الكاحل طبيعية عالية ترتبط بدرجة فقدان هذه المسألة الأبيض في الحبل الشوكي القطني من الفئران ع26. على النقيض من ذلك، قوة العلاقة بين فقدان هذه المسألة الأبيض واثنين الأخرى السلوكية التدابير التقليدية (التهديف السريرية وروتارود) كان أضعف بكثير26.
يصف لنا هنا في استخدام تحليل مشيه الحركية للكشف عن العجز في الحركة في الطائرة السهمي من الفئران ع المشي في حلقة مفرغة. وضعت خمس علامات عاكسة اللكتات تحديد حركة الورك والركبة، والمفاصل الكاحل في تسجيلات الفيديو عالية السرعة. برمجيات تحليل الحركة استخدمت لاستخراج البيانات الحركية عن الرحلات المشتركة. وتناقش جدوى هذه التقنيات لقياس العجز حركة لنموذج35-55 موج EAE. هذه التقنيات تنطبق أيضا على دراسة العجز مشيه في نماذج أخرى الماوس من اضطرابات الأعصاب.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
البروتوكول
هذا البروتوكول وفقا "المجلس الكندي" المبادئ التوجيهية "رعاية الحيوان"، ووافقت عليه "لجنة جامعة دالهوزي" على "الحيوانات المختبرية".
1-"بناء علامات عاكسة":
- استخدام لكمه ثقب اليد، لكمه العدد المطلوب من دوائر صغيرة من ورقة العاكسة. ويتطلب كل الحيوانات 5 علامات لتسجيل واحد؛ اثنان كبيرة وثلاث علامات صغيرة.
- باستخدام مقص جيد، جعل قطع مستقيمة تمتد من المحيط إلى مركز الدائرة.
- إزالة ورق النسخ علامة لتكشف عن السطح اللاصقة. استخدام الملقط غرامة، قبضة العلامة بحزم وحليقة أنه في المعني نفسه باستخدام أصبعك لتشكيل شكل مخروط. لجعل علامة صغيرة، كورل المخروط محكم. لجعل علامة كبيرة، كورل المخروط فضفاضة.
- باستخدام مسدس غراء باليد، ملء داخل علامة على شكل مخروط مع الغراء بينما تجتاح غيض المخروط مع الملقط وتتقيد العلامة على قطعة مسطحة من الورق المقوى. سيتم منع الغراء العلامة من الانهيار والانحناء أثناء التسجيل لضمان انعكاس الأمثل للضوء. عندما يكون الغراء الجاف (حوالي 10 دقائق)، وإزالة العلامة من الورق المقوى مع مشرط ( الشكل 1A).
2. إعداد الحيوان لتسجيل
- أنيسثيتيزي الماوس مع الغاز إيسوفلوراني (2.5%؛ 2 لتر في الدقيقة س 2) بوضع الماوس إلى دائرة التعريفي. مرة واحدة الماوس فاقد الوعي، وضعه في مخروط الآنف تم وضعه فوق مياه تعمل تدفئة بطانية. وغرض أنيسثيتيزيشن إلى شل الماوس لوضع علامة؛ الإجراء غير مؤلم. ولذلك، عمق التخدير لا تحتاج إلى تقييم-
- تطبيق مواد تشحيم عين الموضعية لكلتا العينين.
- يحلق اللكتات المطلوب استخدام كليبرز الكهربائية. تبدأ في الكاحل ويشمل العمود الفقري وأسفل الأضلاع؛ التأكد من ترك لا الفراء كهذا من شأنه أن يقلل التصاق علامة.
ملاحظة: هنا، اللكتات حق تم تسجيلها؛ ومع ذلك، يمكن استخدام أما اللكتات. - باستخدام علامة دائمة، تشير إلى الموقع في الحرقفي والورك. الحرقفي الموجود أسفل الجزء السفلي من الأضلاع وهو محسوس بسهولة بالجمع بين الركبتين تحت الماوس ' الجسم s.
ملاحظة: يمكن الاطلاع على الورك بالثناء وتمديد الساق للعثور على نقطة الترابط بين الحوض وعظم الفخذ. - استخدام الملقط غرامة، فهم أشار نهاية علامة صغيرة وتراجع القاعدة في الغراء لاصق سريع المفعول أو بديل مكافئ. ضع العلامة على غيض الرقم الرابع وعقد في مكان ل s 2-3 للسماح بالغراء لتجف. ضع العلمين الصغيرة الأخرى في الكاحل والمشترك ميتاتارسوفالانجيل بنفس الطريقة ( الشكل 1B).
- وضع علامات كبيرة على الحرقفي والورك ( الشكل 1B) بنفس الطريقة كعلامات صغيرة. إزالة الماوس من مخروط الآنف
- ونقل على الفور إلى غرفة تسجيل استخدام قفص نقل. ضع الماوس في حلقة مفرغة ثابتة والسماح للانتعاش الكامل من التخدير.
3. مشيه تسجيل
- السابقة لتسجيل الماوس ' s مشيه، تتخذ صورة كتلة المعايرة مع الأبعاد المعروفة في حلقة مفرغة.
ملاحظة: هذا سوف يسمح بكسل في الفيديو لتحويلها إلى قياسات حقيقية. وينبغي وضع الكاميرا حوالي 120 سم من حلقة مفرغة.- وضع الكاميرا في نفس الارتفاع ومستوى كحلقة مفرغة. المحافظة على نفس الموقف الكاميرا للتسجيلات بعد الصورة المعايرة.
- مرة واحدة الماوس تعافي تماما من التخدير، تشغيل المطحنة إلى سرعة منخفضة (5 سم/ثانية) للسماح للماوس يبدأ المشي. التأكد من أن اتجاه حزام المطحنة أن تواجه علامات على الماوس صوب الكاميرا.
- زيادة المطحنة السرعة تدريجيا تصل إلى 20 سم/ثانية؛ وهذا هو سرعة مثالية لمشية متسقة في الفئران صحية أكثر.
ملاحظة: على الرغم من أنها مثالية لجميع الفئران يسير بنفس السرعة، بعض قد تكون غير قادر على استمرار الوصول إلى هذه السرعة. تقليل السرعة عند الاقتضاء- إذا كان الماوس غير قادر على المشي في 20 سم/ثانية، ومن المؤكد أن تقديم مذكرة من هذا. الحد من سرعة المطحنة حتى تتحقق دورات خطوة متسقة.
ملاحظة: يمكن ضبط تحليل البيانات الأحدث للاختلافات في سرعة.
- إذا كان الماوس غير قادر على المشي في 20 سم/ثانية، ومن المؤكد أن تقديم مذكرة من هذا. الحد من سرعة المطحنة حتى تتحقق دورات خطوة متسقة.
- بدء تسجيل الفيديو وبمجرد الماوس هو المشي في اطراد (أي، يسير بوتيرة متسقة، لا تربية أو النسيج جنبا إلى جنب). يستمر التسجيل حتى سجلت دورات متتالية الخطوة 8 إلى 12. لكل فيديو، تسجيل سرعة المطحنة وجانب الماوس المسجلة.
- بمجرد اكتمال التسجيل، إيقاف تشغيل المطحنة والعودة الماوس إلى قفصة. تنظيف مطحنة دقيق بين التسجيلات الروائح التي خلفتها وراءها الفئران الأخرى قد يغير سلوك الفئران واردة. للحد من التوتر والأضرار بالبشرة، لا تقم بإزالة العلامات؛ السماح للفئران لإزالتها بمفردها.
4. تحليل
- العملية الفيديو باستخدام برمجيات تحليل الحركة.
ملاحظة: في تجاربنا، ونحن استخدام البرامج النصية المخصصة المصممة للبرامج الإحصائية والتصوير (انظر الجدول للمواد) التي كتبها الدكتور نيكولاس ستيفاني. يتم تنفيذ الخطوات التالية باستخدام برمجيات تحليل الحركة المحددة.- استخراج إحداثيات البكسل من العلامات من أشرطة الفيديو، واستخدام الفيديو المعايرة، تحويل قيم بكسل إلى سنتيمترات وحساب الزوايا المشتركة في كل إطار.
- تحديد بداية ونهاية كل دورة خطوة، وبالتالي الحصول على معلومات حول الخطوة المدة وطول-
- تطبيع الخطوة مدة دورة إلى 200 إطارات طبيعية، مثل أن سوينغ وموقف تتمثل بإطارات 100، على التوالي.
- باستخدام إطارات تم تسويتها، حساب معلمات الحركية لتحليل البيانات باستخدام برنامج جداول البيانات (انظر الجدول للمواد).
- لإنشاء زاوية متوسط مشترك معين، واتخاذ المتوسط من جميع الزوايا في إطار تطبيع ك:
ملاحظة: هنا يمثل x قيمة زاوية في نظراً لطبيعية الإطار، و n تمثل عدد الإطار تم تسويتها. - لإنشاء نطاق الحركة مشترك خاص لماوس معينة، طرح الزاوية أصغر من زاوية أكبر في مجموعة من الأطر الموحدة على النحو التالي:
مجموعة من الحركة = الزاوية القصوى-زاوية الحد الأدنى.
ملاحظة: هنا زاوية الحد الأقصى وهي زاوية الحد الأدنى زوايا أكبر وأصغر تحقيقها ضمن دورة خطوة طبيعية، على التوالي. - على إنشاء الفرق RMS، وطرح أولاً متوسط زاوية كل نقطة الوقت التجريبي من تسجيل خط الأساس. بعد ذلك، ساحة كل الفرق، وأخذ متوسط قيم جميع التربيعية والجذر التربيعي يعني. المعادلة كالتالي:
ملاحظة: هنا
يمثل زاوية متوسط من خط الأساس تسجيل؛ y تمثل زاوية متوسط من كل وقت نقطة تجريبية؛ n، ويمثل عدد الإطارات تم تسويتها. يعني الجذر التربيعي (RMS) الفرق قياس يستخدم لتقييم الانحراف في مشيه من تسجيلات الأساس.
- لإنشاء زاوية متوسط مشترك معين، واتخاذ المتوسط من جميع الزوايا في إطار تطبيع ك:
- استخدام الرسوم البيانية العلمية والبرامج الإحصائية لتحليل وعرض البيانات (انظر الجدول للمواد)-
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
النتائج
ويمثل الشكل 1 تمثيل تخطيطي للإجراءات المستخدمة لتحليل مشيه الحركية. أولاً، تعكس علامات مصنوعة ووضعها على ماوس عند 5 نقاط تشريحية. ثم يتم تسجيل مشيه بينما الماوس يسير في حلقة مفرغة. الحركة تحليل البرمجيات المستخدمة لاستخراج البيانات الحركية للتحليل اللاحق.
الشكل 2 ألف -C تمثل دورة الخطوة ماوس فرنكات الجماعة المالية الأفريقية مراقبة الزوايا المشتركة الورك والركبة والكاحل سجلت في ثلاث دورات متتالية تسجيل متباعدة أسبوع وا...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المناقشة
في الفئران مع ع، هي التهديف السريرية الطريقتين الأكثر شيوعاً لقياس العجز الحركي وتقع الكمون من27،روتارود28. هذه التقنيات على قيود عدة. سجل السريرية محدودة على الرغم من ملاءمة والمستخدمة على نطاق واسع، التي تسفر عن بيانات المستوى الترتيبي فقط، مما يعني أن حجم الخلافات بين عشرات السريرية غير معروفة. التهديف السريرية تعاني أيضا من كونه غير قادر على توفير معلومات دقيقة عن الطبيعة العجز الحركي. اختبار روتارود يحسن على بعض القيود للتهديف السريرية، ولكن فقط تدابير التنس...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
الإفصاحات
الكتاب يعلن أن لديهم أي شيء كشف.
شكر وتقدير
نود أن نعترف شدراوي Sid لمساعدته التقنية مع التصوير. وكان هذا العمل مدعومة بتمويل من جمعية مرض التصلب العصبي المتعدد من كندا (EGID 2983).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| الكاميرا | نيكون | نيكون D750 | تستخدم لتصوير الفيديو |
| شريط عاكس | B & L Engineering | MKR-Tape-2 | |
| مقص ناعم | أدوات العلوم الدقيقة | 15023-10 | |
| ملقط | أدوات العلوم | الدقيقة 11252-20 | |
| مسدس الغراء | مقبض | مشرط E231647 | |
| Craftsmart # 4 | Roboz | R5-9884 | |
| شفرة مشرط رقم 10 | ريشة | 2020-12 | |
| C57BL / 6 فئران | نهر تشارلز | ||
| EZ Anesthesia | EZ-AF9000 نظام | ||
| بطانية تسخين المياه المعاد تدويرها | Androit | HTP-1500 | |
| زيوت تشحيم العين الموضعية | Refresh | DIN00210889 | |
| Shaver | Oster | 78997-010 | |
| كاميرا عالية السرعة | Fastec Fastec | IL3-100 | |
| مصباح عالي الطاقة | شركة سميث فيكتور | موديل 700 SG (ضوء كوارتز 600 وات ، 120 فولت) | |
| خفيف | Promaster | LS1 | |
| جهاز المشي | تم بناؤه مخصصا في معهد علم ، جامعة كولونيا | ||
| مايكروسوفت إكسل 2016 | إصدار مايكروسوفت | 2016 | |
| KinemaJ | نيكولاس ستيفاني | هذا برنامج نصي تم إنشاؤه للاستخدام مع ImageJ | |
| KinemaR | Nicolas Stifani | هذا برنامج نصي تم إنشاؤه للاستخدام مع Rstudio | |
| Vicon Motus | Vicon Motus | الإصدار 9.00 | |
| GraphPad Prism | GraphPad | الإصدار 6.00 |
المراجع
- Giladi, N., Horak, F. B., Hausdorff, J. M. Classification of gait disturbances: distinguishing between continuous and episodic changes. Mov Disord. 28 (11), 1469-1473 (2013).
- Kiehn, O. Decoding the organization of spinal circuits that control locomotion. Nat Rev Neurosci. 17 (4), 224-238 (2016).
- Akay, T., Tourtellotte, W. G., Arber, S., Jessell, T. M. Degradation of mouse locomotor pattern in the absence of proprioceptive sensory feedback. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (47), 16877-16882 (2014).
- Hafezparast, M., Ahmad-Annuar, A., Wood, N. W., Tabrizi, S. J., Fisher, E. M. Mouse models for neurological disease. Lancet Neurol. 1 (4), 215-224 (2002).
- Basso, D. M., et al. Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains. J Neurotrauma. 23 (5), 635-659 (2006).
- Tatem, K. S., et al. Behavioral and locomotor measurements using an open field activity monitoring system for skeletal muscle diseases. J Vis Exp. (91), e51785(2014).
- Hetze, S., Romer, C., Teufelhart, C., Meisel, A., Engel, O. Gait analysis as a method for assessing neurological outcome in a mouse model of stroke. J Neurosci Methods. 206 (1), 7-14 (2012).
- Preisig, D. F., et al. High-speed video gait analysis reveals early and characteristic locomotor phenotypes in mouse models of neurodegenerative movement disorders. Behav Brain Res. 311, 340-353 (2016).
- Leblond, H., L'Esperance, M., Orsal, D., Rossignol, S. Treadmill locomotion in the intact and spinal mouse. J Neurosci. 23 (36), 11411-11419 (2003).
- Ueno, M., Yamashita, T. Kinematic analyses reveal impaired locomotion following injury of the motor cortex in mice. Exp Neurol. 230 (2), 280-290 (2011).
- Zorner, B., et al. Profiling locomotor recovery: comprehensive quantification of impairments after CNS damage in rodents. Nat Methods. 7 (9), 701-708 (2010).
- Pearson, K. G., Acharya, H., Fouad, K. A new electrode configuration for recording electromyographic activity in behaving mice. J Neurosci Methods. 148 (1), 36-42 (2005).
- Balkaya, M., Krober, J. M., Rex, A., Endres, M. Assessing post-stroke behavior in mouse models of focal ischemia. J Cereb Blood Flow Metab. 33 (3), 330-338 (2013).
- Akay, T. Long-term measurement of muscle denervation and locomotor behavior in individual wild-type and ALS model mice. J Neurophysiol. 111 (3), 694-703 (2014).
- Taylor, T. N., Greene, J. G., Miller, G. W. Behavioral phenotyping of mouse models of Parkinson's disease. Behav Brain Res. 211 (1), 1-10 (2010).
- Chen, K., et al. Differential Histopathological and Behavioral Outcomes Eight Weeks after Rat Spinal Cord Injury by Contusion, Dislocation, and Distraction Mechanisms. J Neurotrauma. 33 (18), 1667-1684 (2016).
- de Bruin, N. M., et al. Multiple rodent models and behavioral measures reveal unexpected responses to FTY720 and DMF in experimental autoimmune encephalomyelitis. Behav Brain Res. 300, 160-174 (2016).
- Steinman, L., Zamvil, S. S. How to successfully apply animal studies in experimental allergic encephalomyelitis to research on multiple sclerosis. Ann Neurol. 60 (1), 12-21 (2006).
- Emerson, M. R., Gallagher, R. J., Marquis, J. G., LeVine, S. M. Enhancing the ability of experimental autoimmune encephalomyelitis to serve as a more rigorous model of multiple sclerosis through refinement of the experimental design. Comp Med. 59 (2), 112-128 (2009).
- Bittner, S., Afzali, A. M., Wiendl, H., Meuth, S. G. Myelin oligodendrocyte glycoprotein (MOG35-55) induced experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) in C57BL/6 mice. J Vis Exp. (86), (2014).
- Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. Induction and clinical scoring of chronic-relapsing experimental autoimmune encephalomyelitis. J Vis Exp. (5), e224(2007).
- Barthelmes, J., et al. Induction of Experimental Autoimmune Encephalomyelitis in Mice and Evaluation of the Disease-dependent Distribution of Immune Cells in Various Tissues. J Vis Exp. (111), (2016).
- Shaw, M. K., Zhao, X. Q., Tse, H. Y. Overcoming unresponsiveness in experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE) resistant mouse strains by adoptive transfer and antigenic challenge. J Vis Exp. (62), e3778(2012).
- Stromnes, I. M., Goverman, J. M. Passive induction of experimental allergic encephalomyelitis. Nat Protoc. 1 (4), 1952-1960 (2006).
- Stromnes, I. M., Goverman, J. M. Active induction of experimental allergic encephalomyelitis. Nat Protoc. 1 (4), 1810-1819 (2006).
- Fiander, M. D., Stifani, N., Nichols, M., Akay, T., Robertson, G. S. Kinematic gait parameters are highly sensitive measures of motor deficits and spinal cord injury in mice subjected to experimental autoimmune encephalomyelitis. Behav Brain Res. 317, 95-108 (2017).
- Jones, M. V., et al. Behavioral and pathological outcomes in MOG 35-55 experimental autoimmune encephalomyelitis. J Neuroimmunol. 199 (1-2), 83-93 (2008).
- van den Berg, R., Laman, J. D., van Meurs, M., Hintzen, R. Q., Hoogenraad, C. C. Rotarod motor performance and advanced spinal cord lesion image analysis refine assessment of neurodegeneration in experimental autoimmune encephalomyelitis. J Neurosci Methods. 262, 66-76 (2016).
- Sasaki, M., Lankford, K. L., Brown, R. J., Ruddle, N. H., Kocsis, J. D. Focal experimental autoimmune encephalomyelitis in the Lewis rat induced by immunization with myelin oligodendrocyte glycoprotein and intraspinal injection of vascular endothelial growth factor. Glia. 58 (13), 1523-1531 (2010).
- Merkler, D., Ernsting, T., Kerschensteiner, M., Bruck, W., Stadelmann, C. A new focal EAE model of cortical demyelination: multiple sclerosis-like lesions with rapid resolution of inflammation and extensive remyelination. Brain. 129 (Pt 8), 1972-1983 (2006).
- Franco-Pons, N., Torrente, M., Colomina, M. T., Vilella, E. Behavioral deficits in the cuprizone-induced murine model of demyelination/remyelination. Toxicol Lett. 169 (3), 205-213 (2007).
- Goldberg, N. R., Hampton, T., McCue, S., Kale, A., Meshul, C. K. Profiling changes in gait dynamics resulting from progressive 1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine-induced nigrostriatal lesioning. J Neurosci Res. 89 (10), 1698-1706 (2011).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
إعادة الطباعة والأذونات
