مقالة منهجية

تصحيح التجارب المطبعية ومقايسة إصلاح الحمض النووي باستخدام ملحق النوكليوتيدات واحدة واستخدام TOF تحليل الطيف الكتلي

DOI:

10.3791/57862

يونيو 19, 2018

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وضع أسلوب غير المسمى، والنظائر المشعة في الراديو غير لتصحيح التجارب المطبعية بوليميراز الدنا ومقايسة إصلاح الحمض النووي استخدام الاستبانة TOF استخدام الطيف الكتلي واستراتيجية تمديد النوكليوتيدات واحدة. ثبت الفحص أن تكون محددة، وبسيطة، وسريعا جداً، وسهلة لإجراء لتصحيح التجارب المطبعية، وإصلاح بقع أقصر من 9-النيوكليوتيدات.

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

صيانة الجينوم والنسخ المتماثل المؤمنين به أمر بالغ الأهمية للحفاظ على المعلومات الجينية. تقييم النسخ المتماثل عالية الدقة، قمنا بتطوير بسيط غير المسماة والنظائر المشعة في الراديو غير أسلوب استخدام تاين الامتزاز ليزر ساعد مصفوفة مع الوقت للطيران (استخدام-TOF) الشامل تحليل الطيف (مللي ثانية) لدراسة تصحيح التجارب المطبعية. هنا، بوليميراز الدنا [مثلاً الجزء كلينوو (KF) من الإشريكيّة القولونية دنا بوليميريز أنا (بول أنا) في هذه الدراسة] حضور جميع تريفوسفاتيس ديديوكسيريبونوكليوتيدي الأربعة يتم استخدامها لمعالجة الوجهين قالب التمهيدي غير متطابقة. هو ثم صحح/تمديد التمهيدي غير متطابقة وإخضاعها ل TOF استخدام مرض التصلب العصبي المتعدد. المنتجات تتميز بالتغيير الشامل للتمهيدي وصولاً إلى الاختلافات النوكليوتيدات واحدة. الأهم من ذلك، تصحيح التجارب المطبعية يمكن أيضا تحديد لعدم التطابق واحد الداخلية، لو على الكفاءات المختلفة. عدم التطابق الموجود في 2-4-النيوكليوتيدات (nt) من نهاية 3 ' كانت كفاءة تدقيق ببول أنا، وعدم تطابق في 5 nt من المحطة التمهيدي أظهر تصحيح جزئي فقط. تصحيح التجارب المطبعية لا حدث لعدم التطابق الداخلية الواقعة في الإقليم الشمالي 6-9 من التمهيدي 3 ' نهاية. يمكن أيضا تطبيق هذا الأسلوب لفحوصات إصلاح الحمض النووي (مثلاً، تقييم إصلاح قاعدة الآفة من ركائز لمسار إصلاح إندو الخامس). يمكن تصحيح الإشعال تحتوي على 3 ' آفات ما قبل الأخيرة ديوكسيينوسيني (دي) عن طريق بول أنا. في الواقع، تي قبل الأخيرة-الأول، ز-الأول، و A-أنا ركائز كان الأخير 2 النيوكليوتيدات المحتوية على دي اقتطعت بول أنا قبل إضافتها الشبكة الداخلية صحيحة 5 '-الأدينوزين (دنمب) بينما ج قبل الأخيرة-أنا عدم التطابق قد تتغاضى عن بول الأول، يسمح الدليل التمهيدي تمديدها دون إصلاح، مما يدل على حساسية والقرار من مرض التصلب العصبي المتعدد الاعتداء على قياس إصلاح الحمض النووي.

المقدمة

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تصحيح التجارب المطبعية وظائف [بولمرس] الحمض النووي من خلال تكرار الحمض النووي ضرورية لضمان الدقة العالية للمعلومات الوراثية التي تحتاج إلى نقلها إلى ذرية1،2،،من34، 5،،من67. التمكن من تقييم إسهامات بوليميريز تصحيح التجارب المطبعية اكسونوكليسيس أن توضح آليات حماية الاستقرار الوراثي.

تصنيف النظائر المشعة وفحوصات على أساس جل في تركيبة مع التحليلات دينسيتوميتريك أوتوراديوجرامس أو الفوسفور التصوير8،،من910 تقليديا قد استخدمت للكشف عن النشاط تصحيح التجارب المطبعية للحمض النووي [بولمرس]. بينما الوظيفية، هذه فحوصات شاقة ومكلفة وغير قابلة لتنسيقات الفائق. وبالإضافة إلى ذلك، تعاني النظائر المشعة مسائل السلامة، بما في ذلك التخلص من النفايات. وبدلاً من ذلك، أنشطة التدقيق قد تم تحليلها باستخدام تقنيات فلوروميتريك. على سبيل المثال، 2-أمينوبوريني (2-AP) يمكن إدراجها في منتجات ملحق أثناء بوليميراز في المختبر على تصحيح التجارب المطبعية فحوصات لإنتاج إشارة فلورسنت11،12. لسوء الحظ، تعاني هذه النهج نوعية منخفضة، منذ 2-AP يمكن إقران مع الثايمين والسيتوزين. تشمل نهج أكثر حداثة حساسة ز-كوادروبليكس-تعتمد الإنارة التبديل في تحقيق بوليميراز 3 '-5' [ااكسونوكلس] مقايسة13 ، فضلا عن تحقيق فلورسنت المسمى منفردة بوليميريز تصحيح التجارب المطبعية المقايسة أن يتغلب على بعض 14من العيوب المذكورة آنفا. الحماس لهذه الأساليب فلوروميتريك يتناقص بسبب الحاجة إلى وسم معين من ركائز الحمض النووي.

على النقيض من ذلك، استخدام TOF "مرض التصلب العصبي المتعدد" لتحليل الحمض النووي قد استخدمت في التحليل تحديد، حيث يمكن استخدام ردود الفعل تمديد التمهيدي غير مسمى دنتبس 4 تحديد مجمع الأشكال المتعددة في موضع معين15،،من1617 و وقد اعتمدت على نطاق واسع في التطبيقات السريرية للطفرة المكتشفة وتشخيص السرطان18. باستخدام هذه المبادئ الأساسية، وقد أنشأنا مقايسة خالية من التسمية للبت في المختبر بوليميراز الدنا تصحيح التجارب المطبعية نشاط استغلال عالية الدقة، وخصوصية عالية، وإمكانات الفائق للسيدة TOF استخدام استخدام هاء القولونية بوليميراز الدنا أنا كلينوو تجزئتها إنزيم نموذج، ديديوكسيريبونوكليوتيدي تريفوسفاتيس (ddNTPs) كما يمكن أن تتخذ ركائز "لقطة" لتصحيح التجارب المطبعية المنتجات بعد النوكليوتيدات واحدة ملحق عن طريق استخدام TOF MS (الشكل 1).

وبالمثل، هذا الأسلوب أيضا نمواً مقايسة إصلاح الحمض النووي حيث تحتوي على 3 ' الآفات دي قبل الأخيرة تتعرض لبول يمكنني إصلاح أجهزة الإشعال الاعتداء الذي يقلد إندو الخامس رصدت إصلاح وسيطة. بينما غير مفهومة تماما، مسار إصلاح إندو الخامس هو نظام إصلاح الوحيد المعروف لتوظيف pol أنا تصحيح التجارب المطبعية [ااكسونوكلس] نشاط للآفة الختان19،20. استخدام MS استخدام TOF، علينا إظهار تصحيح إصلاح محددة بوضوح حيث يمكن أن اقتطعت بول دي أنا عندما تحدث في الماضي 2 nt الدليل التمهيدي قبل إضافة النوكليوتيدات تستكمل الصحيح.

للدراسة لتصحيح التجارب المطبعية وإصلاح الحمض النووي، هذا الأسلوب أسرع وأقل مشقة من الأساليب السابقة ويوفر معلومات إضافية صوب إليه ودالة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1-"إعداد" التمهيدي/قالب

  1. تصميم كبسولة تفجير/قوالب ذات محتوى G + C متوازنة بين 40% و 60% كما هو الحال التسلسل أو التصميم التمهيدي PCR. استخدام كبسولة تفجير من 18 إلى 21 nt للصلب مناسبة وإشارات MS أفضل.
  2. تصميم القالب بتعيين 50 درجة مئوية كأدنى ذوبان درجة الحرارة في المنطقة المزدوجة مع مالا يقل عن 7 nt 5 '--المتراكمة لفصل الإشارات بين التمهيدي والقالب.
    ملاحظة: على سبيل المثال، للركيزة P21/T28 في الجدول 1، 21-nt التمهيدي هو يقترن قالب 28-nt. الخيار: استخدام الأحماض النووية البديلة مثل سندات فوسفوروثيواتي نوكلاس المقاوم لاستبدال السندات phosphodiester آخر 4 في 3 'نهاية القالب يمكن منع أي تداخل محتمل بتدهور نهاية غير محددة 3' القوالب ( مثل، T28S4 في الجدول 1)، وعلى الرغم من أن هذا سيضيف بعض التكاليف لإعداد قالب.
  3. باستخدام معيار النوكليوتيد ديسالتيد دون أي مزيد من تنقية غير مرضية لهذه الدراسة. استخدام اليغنوكليوتيد الإشعال/قوالب بتركيز 100 pmol/ميليلتر في ح2س أسهم وتخزينها في-20 درجة مئوية. التحقق من جودة ونقاء الإشعال وقوالب بتشغيل النوكليوتيد TOF استخدام MS (الخطوات 4-7) لضمان إشارات ذروة فريدة من نوعها وإشارة جيدة لنسبة الضوضاء.
  4. تحديد كثافة إشارة TOF استخدام مرض التصلب العصبي المتعدد النسبي (الخطوة 7) من الإشعال المولى متساوية من التسلسلات ذات الصلة كرد فعل للتطبيع والمعايرة وتركيز (الشكل 2).

2-تصحيح التجارب المطبعية ردود الفعل

ملاحظة: نفس حالة رد فعل تصحيح التجارب المطبعية والبروتوكول تنطبق على إصلاح الحمض النووي (أ)-الأول، ز-الأول، ج-أنا، و T--أنا.

  1. استخدام عدم تطابق T-ز من الركازة P21/T28 للتدقيق في الجدول 1 على سبيل مثال، يؤدي إلى تمييع التمهيدي P21 وقالب T28 إلى 12.5 pmol/ميليلتر مع ح2س؛ قم بنقل 12 ميليلتر من التمهيدي المخفف وميليلتر 12 قالب المخفف لأنبوب 1.5 مل معقمة ميكروسينتريفوجي.
    ملاحظة: مقدار قالب/التمهيدي مزيج غير كافية لردود الفعل 2؛ متناسب مع زيادة حجم المواد الكاشفة تبعاً لذلك لردود فعل متعددة.
  2. أغلق الأنبوب محكم. تبني عليه لمدة 30 دقيقة في تغطية 65 ° ج حمام مائي، تليها في حمام مائي 37 ° C، و 30 دقيقة، وأخيراً على الجليد التأكد من الصلب السليم.
  3. أنبوب 1.5 مل معقمة ميكروسينتريفوجي، إضافة 8 ميليلتر من التمهيدي وقالب مزيج (50 بمول)، 2 ميليلتر من 10 × التدقيق رد فعل المخزن المؤقت, 4 ميليلتر دنتبس 4 ميكس (2 مم لكل دنتبس 4)، وح2س ما يصل إلى 18 ميليلتر. نفض الغبار على أنبوب لمزيج.
    ملاحظة: 1 x تصحيح التجارب المطبعية رد فعل المخزن المؤقت يحتوي على 50 مم كلوريد الصوديوم و 10 ملم مجكل2، ديثيوثريتول 1 مم، 10 مم تريس-HCl (الرقم الهيدروجيني 7.9 عند 25 درجة مئوية). انظر الجدول للمواد التجارية مصدر 10 x تصحيح التجارب المطبعية رد فعل المخزن المؤقت. تركيز كل دنتب في رد الفعل النهائي 0.1 ملم.
  4. تمييع بوليميراز الدنا في المثلج 1 x تصحيح التجارب المطبعية رد فعل المخزن المؤقت إلى التركيز المطلوب [مثلاً، إضافة إلى أنبوب 1.5 مل ميكروسينتريفوجي، ميليلتر 4 1 x تصحيح التجارب المطبعية رد فعل المخزن المؤقت و 1 ميليلتر من بوليميراز كلينوو 5-U من مصدر تجاري (الجدول من Materials)]. تخزين الإنزيم المخفف على الجليد في جميع الأوقات.
    ملاحظة: كمية المخفف دنا بوليميريز كافية لردود الفعل 2؛ متناسب مع زيادة حجم الإنزيمات تبعاً لذلك لردود فعل متعددة. يمكن أن يوازن بين حجم ميليلتر 2.0، التي تحتوي على وحدات 2.0 من بوليميراز كلينوو، أكثر من نصف بمول 50 من T-ز المحطة الطرفية غير متطابقة P21/T28 في 5 دقائق.
  5. بريوارم أنبوب ميكروسينتريفوجي مع مزيج الركيزة من الخطوة 2، 3 درجة حرارة التفاعل المطلوب (مثلاً، عادة 37 درجة مئوية بوليميراز كلينوو و 25 درجة مئوية بوليميراز الدنا T4). ثم نقل ميليلتر 2.0 من بوليميريز الحمض المخفف من الخطوة 2، 4 إلى خليط الركيزة بريوارميد ونفض الغبار على أنبوب لخلط محتوياته.
  6. الطرد المركزي هذه الأنابيب مع الإنزيم والركيزة لبضع ثوان في 3,200 س ز في درجة حرارة الغرفة تدور أسفل العناصر المكونة لردود الفعل. نقل على الفور رد فعل على كتلة تدفئة أو حمام مائي في درجة حرارة الحضانة المطلوب كما هو الحال في الخطوة 2، 5.
  7. إنهاء رد فعل
    1. إضافة وحدة تخزين متساوية من الفينول مخزنة ومزجها فورتيكسينج لبضع ثوان، والطرد المركزي أنه في ميكروسينتريفوجي في 3,200 س ز في درجة حرارة الغرفة لمدة 5 دقائق.
      1. نقل المرحلة المائية إلى أنبوب ميكروسينتريفوجي نظيفة وإضافة وحدة تخزين متساوية من كلوروفورم، مزيج من فورتيكسينج لثوان قليلة وأجهزة الطرد المركزي في [ميكروفوج] في 3,200 س ز في درجة حرارة الغرفة للحد الأدنى 3 نقل المرحلة المائية نظيفة [ميكروفوج] أنابيب وفي كوبيت أنه عند 95 درجة مئوية لمدة 5 دقائق؛ ثم وضعه على الجليد.
        تنبيه: الفينول كلوروفورم والمواد الكيميائية الخطرة. التخلص من النفايات ومعالجة ينبغي اتباع الأنظمة المؤسسية.
    2. بدلاً من ذلك، استخدام حمض تبريد البروتوكول. لهذا، إضافة 2 ميليلتر من 1 M HCl للتوقف عن رد فعل على الجليد لمدة 6 دقائق، ثم أضف 0.64 ميليلتر من 1 م الديثانولامين (إدارة مكافحة المخدرات) لتحييد الرقم الهيدروجيني لخليط رد فعل واحتضان أنه عند 95 درجة مئوية لمدة 5 دقائق؛ ثم وضعه على الجليد.

3-راتنج بالإضافة إلى القضاء على التلوث بالملح

  1. استخدام المجرفة الراتنج من الملحي التجاري كيت (انظر الجدول للمواد)، وتأخذ راتنج كافية لتغطية الدمامل لوحة الدمل راتنج 384-الدمل، 6 مغ.
  2. توزيع الراتنج عبر جميع الدمامل بشكل متساو (6 مغ/الدمل) بإلغاء عبر الجزء العلوي من اللوحة. استرداد أي راتنج الزائدة واستبداله في الزجاجة.
  3. نقل المنتجات النهائية في رد فعل من الخطوة 2.7 من الأنابيب [ميكروفوج] إلى لوحة 384-جيدا. الاستغناء عن 16 ميليلتر من ح2س لتمييع نواتج التفاعل النهائي في كل بئر ثم ختم اللوحة والطرد المركزي لإزالة أي فقاعات.
  4. إزالة الختم، وتشغيل لوحة 384-جيدا مع نواتج التفاعل رأسا على عقب لتغطية صفيحة مملوءة راتنج الدمل.
  5. اقلب ساندويتش لوحات جيدا الدمل وعناية ترك الراتنج إسقاط في لوحة 384-جيدا (تأكد من لوحة 384-جيدا تدفق ضد شماعة المعدنية على لوحة مملوءة راتنج الدمل).
  6. إزالة لوحة نقرة على أعلى، ختم 384-جيدا اللوحة التي تحتوي على خليط نواتج التفاعل والراتنج، بإيجاز الطرد المركزي في س 3,200 ز إزالة أي فقاعات ووضعه على دوار لمدة 15 دقيقة على الأقل في درجة حرارة الغرفة الملحي محتوياته.
  7. بعد تنظيف الراتنج، الطرد المركزي لوحة 384-جيدا في س 3,200 ز لمدة 5 دقائق ضغط الراتنج إلى الجزء السفلي من الآبار.

4-نقل نواتج التفاعل إلى شريحة المصفوفة

  1. مجموعة لوحات العينة موزع نانولتر (نانوديسبينسير، انظر الجدول للمواد).
  2. وضع المصفوفة رقاقة (انظر الجدول للمواد) لوحة 384-جيدا من المقطع 3.7 في علبة المقابلة و.
  3. تعمل نانوديسبينسير على الفور رد فعل المنتجات إلى شرائح؛ اضغط على زر تشغيل على شاشة تعمل باللمس نانوديسبينسير لبدء.
  4. الاختيار الآلي الصورة التي تم التقاطها من البقع عينة تحتوي على معلومات تشبع على الشاشة للتأكد من حجم رصدت على الرقاقة حوالي 5-10 nL. كرر شاهد العينة إذا كانت وحدة التخزين غير كافية.

5-إعداد المعلومات المقايسة على الطيف الكتلي

  1. إعداد ملف في تنسيق.xls الذي يحتوي على المعلومات إشارة المتوقعة لاستيراد. على سبيل المثال، استخدم الإعداد "P21_T28.xls" (الجدول 2) لتصحيح التجارب المطبعية رد فعل P21/T28 في الخطوات 2 و 3 و 4.
  2. إنشاء وتعريف مقايسة جديدة في تطبيق البرنامج (انظر الجدول للمواد) زر الماوس الأيمن فوق المجموعة استيراد الفحص في "شكل مصمم" وحدد الملف.xls (مثلاً، "P21_T28.xls" من الخطوة 5، 1).
  3. وضع هدف المقايسة لوحة عن طريق شجرة الخيار العميل: المشروع: اللوحة على الجانب الأيسر من الشاشة بزر الماوس الأيمن فوق الجزء العلوي من الشجرة وإعطائها اسم ملف (مثلاً، "CTT20171201" يمثل رمز المقايسة والتاريخ).
  4. حدد نوع لوحة 384-جيدا واضغط موافق؛ وسوف تظهر لوحة فارغة.
  5. حدد التحليل المناسب (مثلاً، P21_T28) على الجانب الأيسر من الشاشة.
  6. تعيين التحليل المحدد (مثلاً، P21_T28) لكل عينة رصدت الموقف عينة على الرقاقة بتسليط الضوء على البئر والنقر بالزر الأيمن لتحديد إضافة من نوع Plex.
  7. إعداد قائمة عمل جميع الاختبارات على الرقاقة في تنسيق.xlsx مع لا رأس (مثلاً، 1201.xlsx من الجدول 3). استيراد عمل قائمة عن طريق الخيار إضافة مشروع نموذج جديد .
  8. تعيين الاختبار في قائمة العمل (مثلاً، من 1201.xlsx) لكل موقف من الإنزيم P21_T28 واختر بزر الماوس الأيمن.

6-استخدام-TOF تشغيل MS

  1. ربط مطياف كتلة إلى شرائح باستخدام برنامج التطبيق (انظر الجدول للمواد).
  2. حدد الإعداد الافتراضي في الجانب الأيمن من الشاشة.
  3. ملء اسم الإنزيم من الخطوة 5.3 (مثلاً، CTT20171201)، معرف الرقائق في الركن الرقاقة، وحفظ الإعدادات.
  4. ابدأ تشغيل برنامج مكافحة مرض التصلب العصبي المتعدد (انظر الجدول للمواد).
  5. اضغط على زر في الخارج وأخرج لوحة الكشفية. ضع رقاقة مرقط من الخطوة 4، 4 على لوح الكشفية واضغط على الزر في الخارج لرقاقة رصدت دخول مطياف كتلة.
  6. انقر فوق الزر الحصول على برنامج التطبيق (انظر الجدول للمواد) للبدء في الطيف الكتلي والحصول على البيانات اللازمة.

7-بيانات التحليل

  1. افتح البرنامج لتحليل البيانات (انظر الجدول للمواد).
  2. استعراض شجرة قاعدة بيانات في الزاوية اليسرى العليا وحدد معرف رقاقة من الخطوة 6.3. فتح ملف البيانات على الجانب الأيمن من الشاشة.
  3. انقر فوق رمز الطيف لعرض الطيف الشامل. للاقتصاص بمجموعة محددة من m/z، انقر بالزر الأيمن لتحديد الحوار التخصيص وفي نافذة جديدة انقر على المحور السيني وتعيين الحد الأعلى والأدنى المطلوب واضغط على موافق لإظهار نطاق محدد من الطيف.
  4. تصدير الطيف لحفظ بالنقر تصديرالسجلات.
    ملاحظة: استخدام مقياس 1,600 العرض/1,200 وحدة حجم معقول لفحص البيانات على شاشة كمبيوتر.
    1. حدد نوع ملف JPEG، انقر فوق الوجهة، حدد القرص تصفح (مثلاً، قرص فلاش e:)، اكتب اسم الملف (مثلاً، 1201-1.jpg)، ومن ثم انقر فوق تصدير.
  5. كوانتيتيشن البيانات، استخدم المؤشر وانقر فوق الذروة لإظهار ارتفاع الذروة في الركن الأيمن العلوي.
    1. وبدلاً من ذلك، طباعة ملف JPEG وقياس ارتفاع الذروة مع مسطرة يدوياً.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

القوالب وأجهزة الإشعال:

باستخدام الإجراء الذي قدم هنا، على قدم المساواة قوالب اليغنوكليوتيد الاصطناعية المولى وتم فحص كبسولة تفجير تسلسلات ذات الصلة التي تم الحصول عليها من مصادر تجارية للنقاء والجودة (الشكل 3 ألف؛ ملاحظة الإشارات مطابقة كتلة المعينة والخلفية منخفضة) فضلا عن العلاقة بين كثافة الذروة وكتلة أكثر (الشكل 2A). مرتفعات ذروة تم قياسها وحسابها ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ووصف هذه الدراسة تحليل نشاط تصحيح التجارب المطبعية خطوة بخطوة تحليلها بواسطة الأداة التجارية المختارة (انظر الجدول للمواد) باستخدام MS استخدام TOF. وتشمل المزايا الرئيسية أن التمهيدي والقالب هي التسمية مجانية وسهلة لإجراء، مما يسمح بمزيد من المرونة في تصميم التجارب. تيار جير كامل سيستغرق تجهيز 30 تصحيح الاختبارات ح 4، بما في ذلك 3 ح للقيام يدوياً بردود فعل تصحيح التجارب المطبعية وتحيط بهم تنظيف، بينما التحليلات TOF استخدام "مرض التصلب العصبي المتعدد" باستخدام البروتوكول المذكور ح 1 لإكمال. والعيب الرئيسي...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

شكر وتقدير

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ونحن نشكر "مرفق الأساسية المتكاملة نكفبب" للجينوم الوظيفي (تايبيه، تايوان) ومختبر مواضيعها NRPB (تايبيه، تايوان) لتقديم الدعم التقني لهم. هذا العمل كان يدعمها منحا بحثية من مؤسسة الصحة تايوان (L-I.L.) ووزارة العلوم والتكنولوجيا، تايبيه، تايوان، جمهورية الصين [التي الأكثر 105-2320-ب-002-047] "هو جين تاو" ياو وي، [الأكثر 105-2628-ب-002-051-MY3] "سو" يي كانغ، و [ MOST-105-2320-B-002-051-MY3] للين ليانغ.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
قليل النوكليوتيداتمهمة التكنولوجيا الحيوية (تايوان)
الفوسفوروثيوات معدلة قليل النوكليوتيداتتقنيات الحمض النووي المتكاملة (تايوان)
بوليميراز الحمض النووي الأول ، جزء كبير (Klenow)New England Biolabs ، MAM0210L
جزء Klenow (3'→ 5 'exo-)New England Biolabs ، MAM0212L
NEBuffer 2.1 (10X)New England Biolabs ، MAB7202S
2 '، 3 'ddATPTrilink Biotechnologies ، CAN4001
2 '، 3' ddGTPTrilink Biotechnologies ، CAN4002
2 '، 3 'ddTTPTrilink Biotechnologies ، CAN4004
2 '، 3 'ddCTPTrilink Biotechnologies، CAN4005
dATP ، dGTP ، dCTP ، مجموعة dTTPClubio ، تايوانCB-R0315
مجموعة SpectroCHIPAgena Bioscience ، CA# 01509
MassARRAYAgena Bioscience ، CA
Typer 4.0 برنامجAgena Bioscience ، CA# 10145
مجموعة أدوات الراتنج النظيفأجينا للعلوم البيولوجية ، كاليفورنيا# 08040

المراجع

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Loeb, L. A., Kunkel, T. A. Fidelity of DNA synthesis. Annual Review of Biochemistry. 51, 429-457 (1982).
  2. Kornberg, A., Baker, T. DNA replication. , W.H. Freeman. Oxford, UK. (1992).
  3. Carroll, S. S., Benkovic, S. J. Mechanistic aspects of DNA polymerases: Escherichia coli DNA polymerase I (Klenow fragment) as a paradigm. Chemical Reviews. 90 (7), 1291-1307 (1990).
  4. Echols, H., Goodman, M. F. Fidelity Mechanisms in DNA Replication. Annual Review of Biochemistry. 60 (1), 477-511 (1991).
  5. Johnson, K. A. The kinetic and chemical mechanism of high-fidelity DNA polymerases. Biochimica et Biophysica Acta. 1804 (5), 1041-1048 (2010).
  6. Reha-Krantz, L. J. DNA polymerase proofreading: Multiple roles maintain genome stability. Biochimica et Biophysica Acta. 1804 (5), 1049-1063 (2010).
  7. Fidalgo da Silva, E., Reha-Krantz, L. J. DNA polymerase proofreading: active site switching catalyzed by the bacteriophage T4 DNA polymerase. Nucleic Acids Research. 35 (16), 5452-5463 (2007).
  8. Petruska, J., Goodman, M. F. Influence of neighboring bases on DNA polymerase insertion and proofreading fidelity. The Journal of Biological Chemistry. 260 (12), 7533-7539 (1985).
  9. Mendelman, L. V., Petruska, J., Goodman, M. F. Base mispair extension kinetics. Comparison of DNA polymerase α and reverse transcriptase. The Journal of Biological Chemistry. 265 (4), 2338-2346 (1990).
  10. Lutz, S., Burgstaller, P., Benner, S. A. An in vitro screening technique for DNA polymerases that can incorporate modified nucleotides. Pseudothymidine as a substrate for thermostable polymerases. Nucleic Acids Research. 27 (13), 2792-2798 (1999).
  11. Da Silva, E. F., Mandal, S. S. S., Reha-Krantz, L. J. Using 2-aminopurine fluorescence to measure incorporation of incorrect nucleotides by wild type and mutant bacteriophage T4 DNA polymerases. The Journal of Biological Chemistry. 277 (43), 40640-40649 (2002).
  12. Frey, M. W., Sowers, L. C., Millar, D. P., Benkovic, S. J. The nucleotide analog 2-aminopurine as a spectroscopic probe of nucleotide incorporation by the Klenow fragment of Escherichia coli polymerase I and bacteriophage T4 DNA polymerase. Biochemistry. 34 (28), 9185-9192 (1995).
  13. Leung, K. H., et al. A highly sensitive G-quadruplex-based luminescent switch-on probe for the detection of polymerase 3'-5' proofreading activity. Methods. 64 (3), 224-228 (2013).
  14. Song, C., Zhang, C., Zhao, M. Rapid and sensitive detection of DNA polymerase fidelity by singly labeled smart fluorescent probes. Biosensors and Bioelectronics. 26 (5), 2699-2702 (2011).
  15. Haff, L. A., Smirnov, I. P. Single-nucleotide polymorphism identification assays using a thermostable DNA polymerase and delayed extraction MALDI-TOF mass spectrometry. Genome Research. 7 (4), 378-388 (1997).
  16. Haff, L. A., Smirnov, I. P. Multiplex genotyping of PCR products with MassTag-labeled primers. Nucleic Acids Research. 25 (18), 3749-3750 (1997).
  17. Blondal, T., et al. A novel MALDI-TOF based methodology for genotyping single nucleotide polymorphisms. Nucleic Acids Research. 31 (24), e155(2003).
  18. Su, K. Y., et al. Pretreatment Epidermal Growth Factor Receptor (EGFR) T790M mutation predicts shorter EGFR tyrosine kinase inhibitor response duration in patients with non-small-cell lung cancer. Journal of Clinical Oncology. 30 (4), 433-440 (2012).
  19. Lee, C. C., et al. Endonuclease V-mediated deoxyinosine excision repair in vitro. DNA Repair. 9, 1073-1079 (2010).
  20. Lee, C. C., et al. The excision of 3' penultimate errors by DNA polymerase I and its role in endonuclease V-mediated DNA repair. DNA Repair. 12 (11), 899-911 (2013).
  21. Kucera, R. B., Nichols, N. M. DNA-Dependent DNA Polymerases. Current Protocols in Molecular Biology. 84 (1), 3.5.1-3.5.19 (2008).
  22. Tabor, S., Richardson, C. C. A single residue in DNA polymerases of the Escherichia coli DNA polymerase I family is critical for distinguishing between deoxy- and dideoxyribonucleotides. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92 (14), 6339-6343 (1995).
  23. Weiss, B. Removal of deoxyinosine from the Escherichia coli chromosome as studied by oligonucleotide transformation. DNA Repair. 7 (2), 205-212 (2008).
  24. Cao, W. Endonuclease V: an unusual enzyme for repair of DNA deamination. Cellular and Molecular Life Sciences. 70 (17), 3145-3156 (2013).
  25. Su, K. Y., et al. Application of single nucleotide extension and MALDI-TOF mass spectrometry in proofreading and DNA repair assay. DNA Repair. 61, 63-75 (2018).
  26. Carver, T. E., Hochstrasser, R. A., Millar, D. P. Proofreading DNA: recognition of aberrant DNA termini by the Klenow fragment of DNA polymerase I. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (22), 10670-10674 (1994).
  27. Santa Lucia, J. Jr, Hicks, D. The thermodynamics of DNA structural motifs. Annual Review of Biophysics and Biomolecular Structure. 33, 415-440 (2004).
  28. Su, K. Y., et al. DNA polymerase I proofreading exonuclease activity is required for endonuclease V repair pathway both in vitro and in vivo. DNA Repair. 64, 59-67 (2018).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة