مقالة منهجية

عالية الإنتاجية الحمض النووي بلازميد تعدد الإرسال والتحويل باستخدام تكنولوجيا نانوالاستغناء الصوتية

DOI:

10.3791/59570

⸱

أغسطس 8, 2019

 ,  ,  , 
1Institut Pasteur de Lille, Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (Inserm) U1177, Drugs and Molecules for Living Systems, Université de Lille, 2L'atelier du Développeur, Marquette lez Lille

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يصف هذا البروتوكول نقل الخلايا البلازمية عالي الإنتاجية في لوحة تبلغ 384 بئرًا باستخدام تقنية طرد قطرات القطرة الصوتية. وتستغرق وقتا طويلا، وعرضة للخطأ صرف الحمض النووي ومتعددة، ولكن أيضا الاستغناء عن الكاشف transfection، هي البرمجيات التي يحركها جهاز nanodispenser. ثم يتم زرع الخلايا في هذه الآبار المملوءة مسبقا.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نقل الخلايا، لا غنى عنه للعديد من الدراسات البيولوجية، يتطلب السيطرة على العديد من المعلمات لتحقيق إنجاز دقيق وناجح. في معظم الأحيان يؤديها في الإنتاجية المنخفضة، وعلاوة على ذلك تستغرق وقتا طويلا وعرضة للخطأ، حتى أكثر من ذلك عند تعدد البلازميدات. قمنا بتطوير طريقة سهلة وسريعة ودقيقة لتنفيذ نقل الخلايا في تخطيط لوحة 384-well باستخدام تقنية طرد قطرات الصوتية (ADE). ويستند جهاز nanodispenser المستخدمة في هذه الدراسة على هذه التكنولوجيا ويسمح تسليم نانوحجم دقيق بسرعة عالية من لوحة مصدر جيدا إلى وجهة واحدة. فإنه يمكن الاستغناء ومتعددة الحمض النووي وكاشف الانف وفقا لجدول بيانات مصممة مسبقا. هنا نقدم بروتوكول الأمثل لإجراء ADE القائم على عالية الإنتاجية البلازمية التغوط الذي يجعل من الممكن للوصول إلى كفاءة تصل إلى 90٪ وcotransfection ما يقرب من 100٪ في تجارب cotransfection. نقوم بتوسيع نطاق العمل الأولي من خلال اقتراح ماكرو يستند إلى جداول البيانات سهلالاستخدام، وقادر على إدارة ما يصل إلى أربعة بلازميدات/آبار من مكتبة تحتوي على ما يصل إلى 1536 بلازميدات مختلفة، وتطبيق دليل الأنابيب المستندة إلى الكمبيوتر اللوحي. يقوم الماكرو بتصميم القالب (القوالب) الضرورية للوحة (لوحات) المصدر ويقوم بإنشاء الملفات الجاهزة للاستخدام للتطبيق المستند إلى nanodispenser والكمبيوتر اللوحي. بروتوكول الانتقطاع أربع خطوات ينطوي على ط) الاستغناء عن مخفف مع معالج السائل الكلاسيكية، '2' توزيع بلازميد ومتعددة، '3' كاشف الانعتراب الاستغناء عن موزع النانو، و 4) طلاء الخلايا على الآبار المملوءة مسبقا. تسمح السيطرة الموصوفة المستندة إلى البرامج من تعدد الإرسال والتغوط بلازميد ADE حتى غير المتخصصين في الميدان بإجراء عملية نقل خلايا موثوق بها بطريقة سريعة وآمنة. تتيح هذه الطريقة التعرف السريع على الإعدادات المثلى لنوع خلية معين ويمكن نقلها إلى نهج أعلى مقياسوية ويدوية. ويخفف البروتوكول من التطبيقات، مثل بروتين ORFeome البشري (مجموعة من إطارات القراءة المفتوحة في الجينوم) أو التحقق من صحة وظيفة الجينات المستندة إلى CRISPR-Cas9، في استراتيجيات الفحص غير المجمعة.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تصف الطريقة المعروضة هنا بالتفصيل كيفية إجراء تعدد الإرسال والتركيب الحمض النووي في خلايا الثدييات ذات الإنتاجية العالية باستخدام موزع نانوي سائل صوتي في لوحة تبلغ مساحتها 384 بئرًا، حتى لغير المتخصصين في هذا المجال. يسمح هذا الأسلوب1 نشرت مؤخرا أداء ما يصل إلى 384 حالة متعددة الحمض النووي بلازميد مستقلة وأجهزة التغوط في تجربة واحدة، في أقل من 1 ح. كانت التجارب واحدة أو cotransfection ناجحة، لتصل إلى ما يقرب من 100٪ التكفين داخل السكان الخلايا المنقولة. يجعل هذا البروتوكول التغوط أسهل لأن معظم الخطوات المملة والمستهلكة للوقت والمعرضة للأخطاء هي الآن مدفوعة بالبرامج (راجع الشكل 1 للحصول على نظرة عامة). وقد بُذلت جهود أخرى لوضع أدوات مكرسة لتعزيز سهولة الاستخدام مع تجنب الأخطاء البشرية خلال العملية ككل وتشجيع التغوط الناجح حتى لغير المتخصصين في الميدان. يتضمن البروتوكول الموصوف جدول بيانات ماكرو "سهل الاستخدام" قمنا بتطويره من أجل إدارة 384 حالة تحويل مستقلة مع إمكانيات تعدد المضاعفات تصل إلى أربعة بلازميدات في كل بئر. يقوم الماكرو تلقائياً بإنشاء قوالب لوحة (لوحات) المصدر لتحميل وحدة تخزين بلازميد الحمض النووي المتوقعة من بدء حلول المخزون والملفات المطلوبة لدفع برنامج nanodispenser على التصميم التجريبي الذي تم إدخاله. كما الاستغناء اليدوي للحمض النووي في لوحة مصدر 384 جيدا مملة وعرضة للخطأ، كما قمنا بتطوير تطبيق مخصص المستندة إلى قرص لتوجيه المستخدم في حين الاستغناء عن محلول الحمض النووي وفقا للقالب.

figure-introduction-1
الشكل 1: سير العمل التجريبي. التمثيل التخطيطي لبروتوكول الانعطاف العكسي الآلي الأمثل (من التصميم التجريبي إلى الاستخدام البيولوجي المخصص). تتم الإشارة إلى الخطوات اليدوية بواسطة رمز اليد ويتم كتابة الوقت التقريبي لكل خطوة في مربع أحمر. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

العديد من التجارب القائمة على الخلايا تبدأ مع نقل الحمض النووي بلازميد، وحتى لو كان العديد من الكواشف المخصصة ولا تزال قيد التطوير لتعزيز كفاءة التغوط و / أو تخفيف الإجراء، لا يزال هناك الكثير الذي يتعين القيام به2،3 , 4.الحمض النووي بلازميد خلية التغوط ينطوي على عدة خطوات للوصول إلى كفاءة عالية، مثل التناول الأولي المعقد، والهروب الانزودوم، ونقل السيتوبلازمية إلى النواة 5،6. بالإضافة إلى هطول الكالسيوم أو التقنيات الفيزيائية مثلالكهربائي أو الحقن الدقيق باستخدام أجهزة مخصصة 7، ركزت الأساليب الكيميائية الحديثة على تعزيز تسليم خلايا الحمض النووي مع خفض السمية الخلوية الخلية8، 9. استخدام الدهون أو البوليمرات الموجبة تشكيل المجمعات مثل liposome، ومؤخرا، نظم الكيمياء البوليمرية nonliposomal جعلت التغوط أسهل وأكثر كفاءة10. وعلى الرغم من هذه التطورات، لا يزال نقل الخلايا يتطلب مهارات محددة ليتم تنفيذها بدقة لأن معظم هذه البروتوكولات الفيزيائية الفيزيائية أو الكيميائية تتطلب من العلماء إعداد كل حالة تفاعل عبر الحمض النووي يدوياً، وبالتالي إضعاف الإنتاجية. وللتحايل على هذه المشكلة، تم تطوير بروتوكولات التغوط العكسي باستخدام كواشف الانفال الكيميائي11و12و13، مما يمكّن المستخدم من اختبار أو الجمع بين العديد من البلازميدات بطريقة أسرع. في هذه البروتوكولات ، يتم تشكيل مجمعات الأحماض النووية مع الكواشف عبر التغوط قبل بذر الخلايا على المجمعات. ومع ذلك، لا تزال هذه البروتوكولات العكسية محدودة بالمعالجة اليدوية لحلول الحمض النووي والجمع بين كل من الشروط المستقلة. على الرغم من أنه من الممكن تنفيذها في شكل لوحة 96 جيدا، وإعداد الحمض النووي والاستغناء ستكون مملة، ومن المرجح أن تكون هناك أخطاء. عندما تكون هناك حاجة إلى كميات مختلفة من بلازميدات الحمض النووي عدة وتعدد مع بعضها البعض، وتبديل الخلايا يصبح أكثر صعوبة لتحقيق وأكثر استهلاكا للوقت، والأخطاء البشرية تصبح حتمية جدا. يصبح الارتقاء إلى شكل لوحة 384 بئر في نهج التغوط العكسي، على الرغم من عدد قليل من ظروف الانف من الحمض النووي المتعدد، تحديا مستحيلا بسبب الأسباب التالية. '1' كميات الحمض النووي، أو كاشف التغوط، أو أحجام خليط التفاعل التي يجب إدارتها أقل من 1 ميكرولتر لكل بئر. '2' يصبح تعدد الإرسالات لـ 384 حالة مستقلة معقداً للغاية. التسليم في كل من الآبار 384 هو أيضا 3) تستغرق وقتا طويلا للغاية و '4' عرضة للخطأ. والواقع أن الاستغناء عن الحل الصحيح في الآبار المتوقعة من الصعب إدارته لأن الأحجام المنخفضة التي تم صرفها بالفعل لا تسمح بالمراقبة البصرية بين الآبار الفارغة والمملوءة بالفعل. v) وأخيرا، هناك خطر كبير من تجفيف الخليط عن طريق التبخر قبل إضافة الخلايا بسبب الوقت اللازم لتنفيذ الخطوات اللازمة الاستغناء. وباختصار، يبدو أن العامل المقيد لإعداد اختبارات الاستئصال بلازميد الحمض النووي عالية الإنتاجية هو تصغير الاختبار، مما يعني تعدد الإرسال والإدارة بكميات منخفضة والتي لا يمكن معالجتها يدوياً بعد الآن ولكن هاهي أيضاً بالكاد يمكن تحقيقها في طريقة موثوق بها من قبل معالجات السائل حول الاستاتيكيه الكلاسيكية.

وكدليل على صعوبة أتمتة مثل هذه الاختبارات والحصول على الإنتاجية العالية، لم يتم نشر سوى عدد قليل من المحاولات لأتمتة التغوط: شكل لوحة 96 بئر باستخدام جهاز مناولة السائل التجاري وهطول الأمطار فوسفات الكالسيوم14 ومؤخرا، كاشف lipoplex، ورقاقة microfluidic تمكين 280 transfections مستقلة15 ولكن تتطلب مهارات متخصصة في هذا المجال. طريقة أخرى، acoustophoresis، مما يسمح رفع السائل ويؤدي إلى التلاعب السائل وخلط، واستخدمت لأداء التغوط الحمض النووي في 24- إلى 96 جيدا أشكال لوحة16. وعلى الرغم من أن هذا النهج ممكن، إلا أنه يعاني من انخفاض شديد في الإنتاجية لأن اختلاط الخلايا بخليط الانفعالات الحمض النووي يتطلب حضانة 60 درجة لكل نقطة قبل البذر. وهذا يعني مدة لا تقل عن 96 دقيقة للوحة كاملة 96 جيدا. وعلاوة على ذلك، فإن هذا البروتوكول بعيد كل البعد عن أن يكون قابلاً لجمهور علماء الأحياء عموماً لأن هذا العمل قد أنجز باستخدام جهاز داخلي مصمم ومصنع غير متوفر حالياً في السوق. على العكس من ذلك، في السنوات القليلة الماضية، ظهرت تكنولوجيا صرف سهلة الاستخدام تستند إلى البرمجيات والصوتية مع أجهزة موزع نانوحجم. باستخدام الطاقة الصوتية المركزة، تسمح هذه الأجهزة بالطرد بإحكام للأحجام السائلة الصغيرة من 2.5 نل إلى 500 نل من لوحة المصدر إلى وجهة واحدة17. هذه التكنولوجيا، وتسمى طرد قطرات الصوتية (ADE)، لديها العديد من المزايا: أنها مؤتمتة بالكامل، لا تلامس، tipless، دقيقة، ودقيقة، واستنساخ للغاية، ولها نسبة عالية من الإنتاجية18. أول مكرسة لتقديم حلول كبريتيد ثنائي الميثيل (DMSO)، وقد تم تعزيز إعدادات لتوزيع المخازن المؤقتة المائية19. ثم، تبدو موزعات النانو الصوتية مناسبة لبروتوكولات نقل الخلايا العكسية ويمكن أن تتحايل على معظم القيود اليدوية المذكورة أعلاه. وبما أنه لم يتم وصف أي محاولات للمُخِّل البلازميد باستخدام هذه التكنولوجيا، فقد قمنا مؤخرًا بتقييم مدى ملاءمة نظام الاستغناء الصوتي لأداء عمليات نقل الخلايا العكسية.

الاستفادة من الإنتاجية nanodispenser وسهولة الاستخدام، ونحن الأمثل بروتوكول التغوط العكسي لخلايا HeLa عن طريق عبر اختبار العديد من المعلمات التي يمكن أن تؤثر على الحمض النووي transfection على 384 جيدا، لوحة واحدة، وهي كمية الحمض النووي الإجمالي و مصدر تركيز الحمض النووي بداية، حجم مخفف، كاشف التغوط، وعدد من الخلايا انتشار. يتحايل البروتوكول المطور على القيود اليدوية الموصوفة أعلاه لسلك الخلايا ويعرض العديد من المزايا على محاولات الانسياق الآلي الأخرى. أولا، هو مصغرة، مما يسمح لكاشف الانفعال من حيث التكلفة عن طريق حفظ الاستعدادات بلازميد الحمض النووي وكاشف التغوط. ثانيا، هو أكثر من ذلك بكثير عالية الإنتاجية واستنساخها من البروتوكول اليدوي (حتى للمبتدئين)، كما يمكن تحقيق التغوط من لوحة 384 جيدا كامل في أقل من 1 ساعة. وأخيرا، هو البرمجيات يحركها، مما يسمح للسيطرة على كمية الحمض النووي الاستغناء عنها ومضاعفات من العديد من بلازميدات. في الواقع، وذلك بفضلبرنامج nanodispenser (جدول المواد)، يمكن للمستخدم وضع خطة دراسية للسيطرة على وحدات التخزين التي سيتم الاستغناء عنها من مصدر محدد لوحة جيدا إلى وجهة واحدة.

البروتوكول المعروض هنا مخصص بشكل رئيسي لأولئك الذين لديهم إمكانية الوصول إلى موزع نانوويرغبون في إعداد تجارب التغوط بالإنتاجية العالية، ولكن أيضًا لأولئك الذين يرغبون في تحسين معلمات الانفبنسبة بسرعة لنوع خلية معين من خلال تطبيق هذا البروتوكول لاختبار عدة معلمات في الإنتاجية العالية. وفي الواقع، أظهرنا أن البارامترات المحسنة المحددة بهذا البروتوكول على نطاق نانوي يمكن نقلها إلى تجارب عمليات الانعترا بالكامل وعلى نطاق أوسع. وأخيراً، بما أن كاشف الانفة المستخدمة في هذا البروتوكول يسمح بالحمض النووي أو الكسر في الحمض النووي وفقاً للشركة المصنعة، فإن البروتوكول يهم أيضاً أولئك الذين يهدفون إلى تنفيذ نُهُج الصفيف للإفراط في التعبير الجيني أو الضربة القاضية. لوحات الوجهة المليئة مسبقا مع الحمض النووي يمكن الحفاظ عليها تصل إلى 7 أيام قبل استخدامها في اختبار التغوط دون فقدان الفعالية، والتي هي ميزة أخرى من البروتوكول التالي لهذا النوع من التطبيق.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1 - الأعمال التحضيرية المسبقة

  1. إعداد برامج معالج السائل التمعجي
    ملاحظة: للحصول على خطوات الاستغناء عن الخلية والخلية من البروتوكول، يجب إعداد برنامج مخصص، مع الأخذ في الاعتبار ارتفاع رأس الاستغناء إلى اللوحة المستخدمة والقصد الخطوة.
    1. بالنسبة لخطوة الاستغناء عن الاستغناء عن الديّة 1 ميكرول، قم بتركيب كاسيت 1 ميكرولتر وإعداد برنامج مع الإعدادات الموضحة في الخطوتين 1-1-1-1 و1.1.1.2.
      1. ضبط معلمة معدل التدفق إلى عالية للحصول على أفضل الإنتاجية كما لا يتوقع أي ضرر المواد البيولوجية في هذه الخطوة. ضبط ارتفاع الاستغناء إلى 9.6 ملم (وفقا للوحة ثقافة الخلية المستخدمة، الشكل التكميلي1) للسماح لإسقاط 1 درجة مئوية للمس الجزء السفلي من الآبار أثناء الاستغناء.
        ملاحظة: هذه الخطوة حاسمة لتجنب الاحتفاظ قطرات على رئيس الاستغناء حتى الوصول إلى حجم كاف لإسقاط.
      2. ضبط ارتفاع لوحة واضحة إلى 14.4 ملم للسماح التشريد الحر من رئيس الاستغناء على لوحة بعد الاستغناء عن كل صف. التحكم بصريا في الإعدادات المناسبة لارتفاع رأس معالج السائل التمعجي: تأكد من عدم الاحتفاظ بأي قطرات على نصائح الاستغناء أثناء الاستغناء والتحقق من أن الرأس مرتفع بما فيه الكفاية للسماح بإزاحة الرأس بعد الاستغناء عن كل صف.
        ملاحظة: تجنب الاحتفاظ قطرة معلمة حاسمة كما أنها سوف تضعف دقة حجم الاستغناء.
    2. لتوزيع تعليق الخلية 40 درجة مئوية، قم بتركيب كاسيت 10 ميكرولتر وإعداد برنامج مع الإعدادات الموضحة في الخطوات 1.1.2.1-1.2.2.
      1. ضبط المعلمة معدل التدفق إلى منخفض لتوزيع الخلايا بسرعة منخفضة لتجنب تعزيز الأضرار المحتملة للخلايا عن طريق الإجهاد القص وتأثير كبير على الجزء السفلي من الآبار. ضبط ارتفاع الاستغناء إلى 11.43 ملم (وفقا للوحة ثقافة الخلية المستخدمة، الشكل التكميلي1)، عالية بما يكفي لخفض تأثير الخلية على الجزء السفلي من الآبار خلال عملية الاستغناء ولكن منخفضة بما فيه الكفاية لتجنب الاحتفاظ قطرات على صرف الرأس. ضبط ارتفاع لوحة واضحة إلى 16 ملم للسماح التشريد الحر من رئيس الاستغناء على لوحة بعد الاستغناء عن كل صف.
      2. التحكم بصريا في الإعدادات المناسبة لارتفاع رأس معالج السائل التمعجي: تأكد من عدم الاحتفاظ بأي قطرات على نصائح الاستغناء أثناء الاستغناء والتحقق من أن الرأس مرتفع بما فيه الكفاية للسماح بإزاحة الرأس بعد الاستغناء عن كل صف.
        ملاحظة: تجنب الاحتفاظ بالإفلات معلمة هامة كما أنها سوف تؤدي إلى الاستغناء عن رقم خلية غير موثوق بها.
  2. إعداد بلازميد الحمض النووي (بروتوكول استخراج مصغرة الكلاسيكية)
    1. تنمو سلالة البكتيريا DH5α تحول في LB المتوسطة تستكمل مع 125 ميكروغرام/ مل أمبيسيلين اختيار المضادات الحيوية (جدول المواد) بين عشية وضحاها في 37 درجة مئوية وتحت التحريض لطيف (200 دورة في الدقيقة) على شاكر المداري (جدولالمواد).
    2. حصاد 2 مل من الثقافة، بيليه الخلايا عن طريق الطرد المركزي لمدة 5 دقائق في 6000 × ز، وتجاهل supernatant.
    3. إعادة تعليق بيليه الخلية مع 250 درجة مئوية منالعازلة إعادة تعليق تحتوي على RNase A (جدول المواد). إضافة 250 درجة مئوية من العازلة lysis وحضانة لمدة 5 دقائق في درجة حرارة الغرفة، وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
    4. وقف رد فعل lysis عن طريق إضافة 300 درجة مئوية من العازلة تحييد (جدولالمواد)ودوامة قريبا. الطرد المركزي الأنابيب لمدة 5 دقائق في 11،000 × ز.
    5. وضع عمود مصغر بلازميد جديد (جدولالمواد)في أنبوب جمع 2 مل وdecant supernatant في العمود عن طريق الطرد المركزي لمدة دقيقة واحدة في 11،000 × ز.
    6. تجاهل التدفق من خلال ووضع العمود المصغر مرة أخرى في أنبوب جمع.
    7. اغسل العمود المصغّر بلازميد بـ500 ميكرولتر من مخزن الغسيل الاختياري (جدول المواد) والطرد المركزي لمدة دقيقة واحدة عند 11000 × ز،وفقًا لتعليمات الشركة المصنعة.
    8. تجاهل التدفق من خلال ووضع العمود المصغر بلازميد مرة أخرى في أنبوب جمع.
    9. إضافة 700 درجة مئويةمن العازلة الغسيل (جدول المواد) تستكمل مع الإيثانول والطرد المركزي لمدة دقيقة واحدة في 11،000 × ز،وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
    10. تخلص من التدفق والطرد المركزي العمود المصغر بلازميد وأنبوب جمعها 1X أكثر لمدة 2 دقيقة في 11000 × ز لتجفيف غشاء السيليكا.
    11. ضع العمود المصغّر البلازميد المجفف في أنبوب جديد بسعة 1.5 مل وأضف 30 ميكرولتر من الماء المقطر المُسخّن في درجة حرارة 60 درجة مئوية، واحتضنه لمدة دقيقتين في درجة حرارة الغرفة، ثم طرد مركزي لمدة دقيقة واحدة عند 11000 × ز.
    12. تخلص من العمود المصغّر بلازميد وحافظ على الإيلات الذي يحتوي على بلازميد الحمض النووي النقي.
    13. قياس تركيز الحمض النووي للحمض النووي المنصهر باستخداممقياس الطيف الضوئي الدقيق (جدول المواد).
      1. قم بتشغيل مقياس الطيف واختر إعدادات قياس الحمض النووي.
      2. رفع ذراع أخذ العينات من مقياس الطيف وماصة 1 ميكرولتر من الماء على قاعدة القياس لإجراء معايرة فارغة.
      3. خفض ذراع أخذ العينات، وبدء القياس فارغة، والانتظار للإنجاز.
      4. رفع ذراع أخذ العينات ومسح العينة من الركائز العليا والسفلى.
      5. ماصة 1 ميكرولتر من محلول الحمض النووي على قاعدة التمثال السفلى لقياسذلك.
      6. خفض ذراع أخذ العينات، وبدء قياس تركيز الحمض النووي، والانتظار للإنجاز.
      7. رفع ذراع أخذ العينات ومسح العينة من الركائز العليا والسفلى.
      8. وللحصول على قياسات تركيز الحمض النووي الأخرى، كرر الخطوات 1-2-13-5-1-2-13-7.
    14. بمجرد الانتهاء من القياسات، قم بتخزين حلول الحمض النووي عند درجة حرارة 4 درجة مئوية حتى يتم استخدامها.

2. التصميم التجريبي وتوليد قوائم الاختيار لدفع الاستغناء القائم على ADE

ملاحظة: تم تطوير ماكرو جدول بيانات "سهل الاستخدام" مخصص لإدارة كميات الحمض النووي وخلط ما يصل إلى أربعة بلازميدات في تنسيق لوحة 384 جيداً. استناداً إلى التصميم التجريبي الذي تم إدخاله، ينشئ هذا الماكرو الملفات الضرورية لدفع بروتوكول تحويل الحمض النووي المستند إلى ADE بواسطة nanodispenser. لإنشاء هذه الملفات، يجب ملء العديد من الحقول في ورقة القالب كما هو موضح في الشكل 2.

figure-protocol-1
الشكل 2 إنشاء قوائم الاختيار لدفع الاستغناء ADE باستخدام ماكرو جدول البيانات. يجب ملء العديد من المعلمات، وهي (1) كاشف الانف (TR) وكميات الحد الأدنى / القصوى لاستخدامها في لوحة المصدر، (2) تركيزات بلازميد الأولية التي سيتم الاستغناء عنها في لوحة المصدر، و (3) تصميم لوحة كاملة، بما في ذلك كميات بلازميد المتوقعة ومتعددة في كل من الآبار 384. (4) إنشاء تنشيط Picklists يسمح للحقول المختلفة ليتم التحقق منها، وبمجرد ملء بشكل صحيح، يتم إنشاء قوائم الاختيار للحمض النووي وTR الاستغناء والقالب لوحة المصدر اللازمة تلقائيا. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

  1. أدخل معلمات بروتوكول nanodispenser في الحقول الوردية. تعيين قيمة خليط الكاشف المتحول (TR) إلى 500 نمل. تعيين الحد الأدنى لقيمة الحجم في آبار لوحة المصدر إلى 4 درجة مئوية.
    ملاحظة: nanodispenser المستخدمة هنا يمكن فقط نقل الحد الأقصى 500 نانولتر في تشغيل واحد من ADE. يتم تعبئة هذه الحقول الوردية مسبقًا بالقيم الموصى بها ولكن يمكن تعديلها وفقًا لاحتياجات المستخدم.
  2. أدخل 100 نانوغرام/ميكرولتر من الحمض النووي بدءاً من التركيزات في الحقول الزرقاء المقابلة للحمض النووي الأساسي.
    ملاحظة: هذه القيمة هي التركيز الأمثل المعرفة مسبقاً ولكن، ومع ذلك، يمكن تعديلها لاحتياجات المستخدم المختلفة.
  3. أدخل كمية الحمض النووي المطلوبة في الحقول الرمادية/ الخضراء. أدخل الكميات والأسماء البلازمية للآبار 384، وضمان نفس الهجاء إذا تم استخدام نفس البلازميد في العديد من الآبار.
  4. إنشاء تصميم لوحة المصدر وملفات قوائم الاختيار وملف دليل توجيه الأنابيب. انقر على إنشاء قوائم الانتقاء للسماح للماكرو لتوليد الحمض النووي-Picklist.csv، وT.R.-Picklist.csv وملفات 384-Wells-Pipetting-Guide.csv من البيانات التي تم جمعها على الورقة المقابلة. إذا طُلب منه ذلك، قم بتصحيح قيم الخلايا المملوءة بالبرتقال لأنها تشير إلى أخطاء أو وحدات تخزين لا يمكن معالجتها بواسطة nanodispenser.
  5. طباعة القالب (القوالب) من ورقة "لوحة المصدر". يشار إلى أسماء بلازميد والحد الأدنى من حجم لملء الآبار. وبالمثل، يشار إلى أحجام خليط كاشف الانف الكاشف التي سيتعين بعد ذلك ملؤها في الآبار التالية على أنها TR وإبرازها باللون الأخضر.

3. الحمض النووي إعداد لوحة مصدر باستخدام تطبيق دليل pipetting 384-well

  1. تخفيف بلازميد الحمض النووي المخزن من الخطوة 1.2.14 إلى 100 نانوغرام/ميكرولتر باستخدام الماء المقطر.
  2. معايرة الشبكة 384 جيدا لأبعاد لوحة: فتح 384 جيدا تطبيق دليلالأنابيب على قرص (الشكل 3). ضع لوحة المصدر على الشبكة على الشاشة السفلية، وفي قائمة المعايرة العلوية اليسرى، انقر فوق + أو - (أو استخدم المؤشر الأحمر) لتحسين أو تقليل حجم الشبكة والآبار من أجل ضبط الآبار الخضراء إلى الآبار الزاوية الأربعة للطبقة .

figure-protocol-2
الشكل 3 استخدام تطبيق دليل الأنابيب 384-well. (1) معايرة الشبكة 384 جيدا لحجم لوحة؛ (2) ) جبل من محول لوحة 3D المطبوعة العالمية إلى الكمبيوتر اللوحي باستخدام الشريط على الوجهين؛ (3) وضع لوحة على المحول؛ (4) إزاحة الشبكة لوسطها إلى لوحة شنت. (5) قفل خطوة المعايرة. (6) افتتاح 384 الآبار pipetting ملف guide.csv. (7) وبالنظر إلى قائمة الملفات، فإن التطبيق يشير إلى اسم لوحة المصدر المتوقع، الكاشف (الحمض النووي أو الكاشف عبر التغوط)، والتركيز، وحجم الاستغناء في الآبار المستهدفة، والتي سيتم مضيئة واحدا تلو الآخر. (8) أزرار الأسهم اليسرى واليسرى تسمح للمستخدم باتباع دليل الأنابيب لتوزيع الكواشف بسهولة وفقا لقالب (ق) لوحة مصدر جدول البيانات. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

  1. باستخدام الشريط على الوجهين، قم بتركيب محول اللوحة المطبوع ثلاثي الأبعاد على الشاشة لتجنب حركات اللوحة المصدر أثناء الاستغناء. إذا لزم الأمر، حرك الشبكة المعايرة باستخدام أسهم الدوران وأزرار لأعلى/لأسفل/لليمين/اليسار لضبط الشبكة على الشاشة إلى موضع اللوحة. بمجرد معايرة الشبكة وأحجام الآبار بشكل صحيح ومكانها، ضع علامة في مربع معايرة القفل.
  2. انقر على FILE وفتح 384 الآبار pipetting الملف guide.csv. اتبع تعليمات الشاشة لتوزيع الحجم المشار إليه يدوياً من البلازميد المشار إليه في التركيز المشار إليه في الأبيض أبرز جيدا ً المقابلة للوجهة المستهدفة المناسبة لللوحة المتوقعة. استخدام - أو + الأسهم للعودة أو أبعد من ذلك في عملية توزيع الحمض النووي. توقف عن الاستغناء عند الوصول إلى أول حل كاشف Transfection لتحميل.
  3. بمجرد الانتهاء من توزيعات الحمض النووي، قم بإزالة لوحة المصدر من المحول. إذا كان يجب ملء عدة لوحات المصدر، ثم وضع لوحة مصدر جديد على المحول واتبع تعليمات الاستغناء. وبمجرد الانتهاء من توزيع الحمض النووي، يقوم الطرد المركزي بالطرد المركزي للوحة (لوحات) المصدر المملوءة بالحمض النووي (عند 1500 × ز لمدة 2 دقيقة) لضمان التسوية السائلة المناسبة وإزالة الفقاعات التي تؤدي إلى عدم الدقة في عمليات النقل المستندة إلى ADE.

4. التمعجي السائل المعالج القائم على 1 μL الاستغناء في لوحة الوجهة

ملاحظة: تنفيذ الخطوات 4.1-4.5 في خزانة السلامة البيولوجية.

  1. تطهير 1 € L كاسيت الرأس عن طريق رشهبمطهر رذاذ (جدول المواد)، والسماح لهذا الحل لدخول حامل غيض. امتصاص مطهر بقايا على امتصاص الورق. قم بتركيب كاسيت 1 ميكرولتر على جهاز معالج السائل التمعجي. قم بتشغيل الجهاز وتأكد من صحة إعداد نوع الكاسيت (1 درجة مئوية)، بالإضافة إلى تنسيق اللوحة (384 بئرًا).
  2. تطهير التجويف بأكمله من الأنابيب: إدراج منظم أنبوب (عقد أنابيب ثمانية معا) في وعاء معقمة وملء مع 5 مل من الكحول 70٪. باستخدام وظيفة فتيلة من معالج السائل التمعجي، أولا دافق الكحول في الأنابيب ومن ثم شطفه عن طريق تمرير 5 مل من الماء المقطر و 5 مل من المصل خالية من المتوسطة (دولبكو تعديل النسر المتوسطة [DMEM] تستكمل مع 100 U / مل البنسلين العقدية. جدولالمواد)، وملء على التوالي في نفس السفينة. تأكد من عدم انسداد أي من الطرف عن طريق فحص تدفق السائل بصريا من كل منهم.
  3. قم بتعبئة الأنابيب بوسيلة خالية من المصل عن طريق ملء وعاء معقم جديد بـ 10 مل من الوسط الخالي من المصل المُسخن مسبقاً والغوص معمنظم الأنبوب فيه. اضغط على الزر الرئيسي للمعالج السائل التمعجي لمدة 10 ق تقريبًا. مرة أخرى، تأكد من عدم انسداد أي طرف عن طريق فحص بصريا تدفق السائل من كل منهم.
  4. ملء لوحة مع 1 ميكرولتر من مخفف. ضع لوحة ثقافة معقمة 384 بئر (الوجهة) على حامل لوحة معالج السائل التمعجي وإزالة غطاءه.
  5. تشغيل البرنامج معايرة مسبقا لتوزيع 1 € L في كل بئر من لوحة 384 جيدا. وقت الاستغناء هو ما يقرب من 8 s. ثم استبدال غطاء لوحة 384 جيدا.
    ملاحظة: بدلاً من ذلك، يمكن التعامل مع هذه الخطوة يدوياً، في خزانة أمان، باستخدام micropipette متعددة القنوات.

5 - إجراء دراسة استقصائية للتحكم في الكميات التي يتم توزيعها يدويا

ملاحظة: للحصول على التفاصيل، راجع الشكل 4.

  1. تشغيل برنامج nanodispenser، انتقل إلى علامة التبويب التشخيص، ووضع علامة على لوحة المصدر خارج مربع، وتحميل لوحة المصدر على حامل لوحة، ووضع علامة في لإدخال لوحة. عند المطالبة، حدد 384LDV_AQ_B2 لتعيين nanodispenser إلى وضع الاستغناء المخزن المؤقت المائي، واضغط على موافق.
  2. حدد استطلاع في القائمة المتنوعة وانقر على تشغيل. حدد الآبار المعبأة مسبقا لتحليل وانقر على زر الذهاب. تحقق من أن الأحجام المقاسة تتطابق مع الأحجام المتوقعة وضمان عدم تحميل أي آبار بأحجام تزيد عن 12 ميكرولتر لأن ذلك سيتجنب عمليات النقل.

figure-protocol-3
الشكل 4 تعريف معلمات برامج الاستطلاع. (1) بدء برنامج nanodispenser. (2) فتح علامة التبويب التشخيص. (3) إدراج لوحة المصدر عن طريق وضع علامة خارج للوحة المصدر ، ثم ، في. (4) تعريف نوع لوحة المصدر في القائمة عند المطالبة. (5) في المربع متنوع، حدد مسح في القائمة المنسدلة. (6) إطلاق برنامج المسح من خلال النقر على إطلاق. (7) حدد الآبار المعبأة مسبقا لقياس. (8) بدء التحليل عن طريق النقر على الذهاب. (9) بمجرد إجراء المسح، تتم كتابة المجلدات المقاسة في الآبار المختارة المقابلة. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

6. ADE يحركها توزيع الحمض النووي في لوحة الوجهة

  1. تشغيل برنامج picklist، تعيين 384-جيدا المصدر وأنواع لوحة الوجهة إلى 384_LDV وGreiner 384PS_781096، على التوالي (الشكل5). تعيين الجهاز إلى وضع الاستغناء المخزن المؤقت المائي عن طريق تحديد 384LDV_AQ_B2ثم إلغاء تحديد "تحسين نقل الإنتاجية".

figure-protocol-4
الشكل 5 أداء الإعفاءات المستندة إلى قائمة الاختيار: (1) بدء تشغيل برنامج nanodispenser. في علامة التبويب بروتوكول، حدد (2) شكل لوحة عينة ، (3) نوع لوحة الوجهة و (4) الأمم المتحدة "تحسين نقل الإنتاجية". (5) حدد علامة التبويب قائمة الانتقاء. (6) انقر على استيراد وحدد ملف *.csv المناسب (DNA-PickList أو T.R.-Picklist). (7) بمجرد تحديده ، انقر على استيراد. (8) انقر على اللعب وحفظ البروتوكول. (9) إجراء محاكاة الاستغناء عن طريق النقر على محاكاة، أو (10) بدء الاستغناء المبرمج ة عن طريق النقر على تشغيل. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

  1. حدد علامة التبويب "اختيار قائمة"، انقر على استيراد، حدد ملف DNA-Picklist.csv. انقر على تشغيل وحفظ البروتوكول. انقر على محاكاة لإجراء محاكاة للالاستغناء المبرمج للتأكد من أن قائمة الاختيار يطابق التصميم التجريبي المتوقع. بمجرد الانتهاء، انقر على إغلاق.
  2. انقر على اللعب، ثم قم بتشغيل، لبدء برنامج الاستغناء: عندما يطلب منك، إدراج لوحة المصدر المطلوبة (حلول الحمض النووي شغلها يدويا) ولوحة الوجهة (المؤن شغلها) في nanodispenser.
    ملاحظة: وقت الاستغناء هو ما يقرب من 5-20 دقيقة للوحة كاملة 384 جيدا، اعتمادا على وحدات التخزين المحددة وإجمالي عدد الاستنات في التصميم التجريبي.
  3. بدلا من ذلك، وقفة البروتوكول هنا كما لوحات مخففة والحمض النووي مليئة يمكن التعامل مع التخزين الجاف أو المجمدة لمدة تصل إلى 7 أيام. للتخزين الجاف، والسماح لوحات تجف على مقاعد البدلاء في درجة حرارة الغرفة ومن ثم تخزينها بنفس الطريقة. ذوبان والطرد المركزي (في 1500 × ز لمدة 2 دقيقة) ألواح مخزنة المجمدة قبل استخدامها في خطوة التغوط (القسم 7).
     

7. ADE يحركها الكاشف التغوط الاستغناء

  1. في خزانة السلامة البيولوجية، تمييع بشكل مؤقت الكاشف الانفذي بالبولي بلفيلكفيلك في وسط خال ٍ من المصل إلى تركيز نهائي 1x. دوامة والاستغناء على الفور هذا المزيج الكاشف transfection وفقا للوحة (لوحات) مصدر محددة مسبقا مصممة من قبل الماكرو واستخدام تطبيق دليل pre2step 384 جيدا الأنابيب كما هو موضح في الخطوة 3.4.
    ملاحظة: لا تطرد لوحة المصدر بمجرد تحميلها بالكاشف حيث لا يلاحظ أي انتراب بعد الطرد المركزي.
  2. قم بتشغيل برنامج nanodispenser لإجراء "مسح" كما هو موضح في القسم 5، من أجل التحكم في أحجام جميع آبار TR المملوءة يدويًا للوحة (لوحات) المصدر لتجنب صرف الأخطاء بسبب أحجام تتجاوز 12 ميكرولتر.
  3. انقر فوق إعادة تعيين لمسح قائمة نموذج قائمة انتقاء الحمض النووي في برنامج picklist ثم تحقق من أن معلمات الجهاز لا يزال يتم تعيين إلى المخازن المؤقتة المائية وإلى أنواع لوحة المصدر والوجهة المستخدمة كما في الخطوة 6.1.
  4. انقر على استيراد واختر ملف TR-Picklist.csv. انقر على اللعب وحفظ البروتوكول إذا طُلب منك ذلك، و (هذا هو اختياريا ولكن ينصح بشدة) إجراء محاكاة للبرمجة الكاشف الكاشف الإعفاءات لضمان التصميم السليم للالاستنمسا عن طريق النقر على زر المحاكاة. بمجرد الانتهاء، انقر على إغلاق.
  5. انقر على اللعب ، ثم قم بتشغيل زر لبدء برنامج الاستغناء: كما هو مطلوب، ضع لوحة المصدر (TR-خليط مليئة) ولوحة الوجهة (مخفف- والحمض النووي مليئة) في nanodispenser.
    ملاحظة: وقت الاستغناء هو أقل من 20 دقيقة للوحة كاملة 384 جيدا عند الاستغناء عن 500 نل من خليط TR.
  6. احتضان 15-30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة بعد إضافة TR إلى الحمض النووي كما هو مبين في بروتوكول الشركة المصنعة.

8. التمعجي السائل السائل القائم على معالج الخلية الاستغناء

  1. إعداد معالج السائل التمعجي لتوزيع الخلايا. تطهير 10 ميكرولتر كاسيت الرأس عن طريق رشه مع Aniospray تصفح 29 مطهر وامتصاص بقايا على الورق. قم بتركيب الكاسيت على جهاز معالج السائل التمعجي، وتغيير إعداد نوع الكاسيت إلى 10 ميكرولتر، وتأكد من تعيين تنسيق اللوحة إلى 384 بئرًا.
  2. تطهير أنابيب كاسيت 10 درجة مئوية كما هو موضح سابقا في الخطوة 4.2. الغوص منظم أنبوب في وعاء معقمة ودافق الأنابيب مع 5 مل من الكحول 70٪، ثم مع 5 مل من الماء المقطر، وأخيرا، مع 5 مل من المصل خالية من المتوسطة، شغلها على التوالي في نفس السفينة وحتى كل أنبوب فارغ.
  3. إعداد تعليق الخلية للصرف. من طبق خلية HeLa B10-culture، اغسل الخلايا 1x بمحلول ملحي 1x بالفوسفات المخزن (PBS)، ثم فصل الخلايا باستخدام التربسين/إدتا لمدة 5 دقائق عند 37 درجة مئوية.
  4. تحقق من تفكك الخلية تحت المجهر ووقف عمل التربسين / EDTA عن طريق إضافة 10 مل من المتوسط الكامل (DMEM تستكمل مع 10٪ مصل البقر الجنيني و 100 U / مل البنسلين-ستريبتوميسين؛ انظر جدولالمواد) في طبق الثقافة. حصاد الخلايا في أنبوب 50 مل وعد الخلايا تحت المجهر، وذلك باستخدام خلية Malassez أو عداد الخلية التلقائي.
  5. إعداد ما لا يقل عن 25 مل من تعليق خلية HeLa بتركيز 37,500 خلية/مل في وسط كامل (أي 1,500 خلية/40 درجة مئوية) للوحة كاملة 384 بئر, لضمان فتيلة أنبوب و 40 درجة مئوية / جيدا الاستغناء.
  6. لتوزيع الخلايا، ملء وعاء معقم جديد مع تعليق الخلية المعدة وتحريكها لتجنب الترسيب مما يؤدي إلى عدم دقة في كثافة الخلية من الاستغناء. أدخل منظم الأنبوب في هذا الحل واضغط على زر Prime حتى يبدأ تعليق الخلية في التدفق من رأس التوزيع. تأكد من عدم انسداد أي من البقشيش عن طريق فحص تدفق السائل بصريا من كل منهم، وضمان تحميل كل أنبوب مع تعليق الخلية.
  7. قم بتحميل الحمض النووي ولوحة الوجهة 384-well المليئة بـ TR على حامل لوحة معالج السائل التمعجي وإزالة غطاءه. قم بتشغيل البرنامج المعاير مسبقًا لتوزيع 40 ميكرولتر من تعليق الخلية على اللوحة الكاملة التي تبلغ مساحتها 384 بئرًا (أي 1500 خلية/بئر). وقت الاستغناء حوالي 8 s. استبدال غطاء لوحة 384 جيدا.
    ملاحظة: بدلاً من ذلك، يمكن الاستغناء عن تعليق الخلية 40 درجة مئوية يدويًا باستخدام ميكرومازيت متعدد القنوات.

9. العرف التحقيق البيولوجي (خلية رصد كفاءة التغوط)

ملاحظة: بعد الإعدادات التجريبية والغرض من التجربة، استخدم الطرق المطلوبة للإنارة، والفلورة، وفحص المحتوى العالي، والنسخ العكسي تفاعل سلسلة بوليميراز كمي (RT-qPCR). في هذا القسم من البروتوكول، يتم تقييم كفاءة نقل الخلايا عن طريق الفحص المجهري المؤتمت وتحليل الصورة.

  1. احتضان لوحة في 37 درجة مئوية مع 5٪ CO2 في جو مشبعة بالماء وحتى التعبير البروتين السليم.
    ملاحظة: هنا، يتم استخدام وقت حضانة 48 ساعة لخلايا HeLa لمراقبة كفاءة التغوط، وذلك باستخدام tdTomato- وmVenus-expressing plasmids.
  2. إزالة وسط الثقافة 48 ساعة بعد trans-transfection عن طريق عكس لوحة، إضافة 30 درجة مئوية / جيدا من 10٪ فورمالين باستخدام معالج السائل التمعجي (10 × كاسيت)، وحضانة لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
  3. إزالة formalin عن طريق عكس لوحة. ثم، حضانة الخلايا لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة مع 0.1 نانوغرام / مل Hoechst المخففة في 1X PBS الحل.
  4. اغسل الخلايا 3x لمدة 15 دقيقة مع 80 ميكرولتر من 1x PBS المعدلة إلى درجة الحموضة = 8 من أجل استعادة إشارة الفلورة العالية المفقودة من قبل 6.9 درجة الحموضة من الخطوة الحضانة الحل formalin.
  5. باستخدام مجهر الفلورسنت الآلي، والحصول على صور من اثنين أو ثلاثة قنوات الفلورسنت (Hoechst، tdTomato، وmVenus) بالتتابع مع أهداف 10X ومجموعة تصفية الانبعاثات المناسبة (4′، 6-دياميدينو-2-فينيليندول [DAPI]، dsRed، وfluorescein إيزوثيوسيانات [FITC]، على التوالي).
  6. لتقييم كفاءة التغوط، استخدم برنامج تحليل الصور لتحديد كفاءة التغوط باستخدام تحليل البرنامج النصي استنادًا إلى تلطيخ النوى.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

fIn لتحديد ما إذا كان يمكن استخدام تكنولوجيا ADE لبروتوكول الانقباة العكسية الآلي، رصدنا كفاءة الانفذيب الخلوي عن طريق الفحص المجهري الفلوري، وذلك باستخدام tdTomato الفلورسنت الأحمر التعبير عن بلازميد. تهدف أولاً إلى تحديد أفضل معلمات التغوط، وأحجام مخففة مختلفة وكميات إجمالية من الحمض النووي تم اختبارها عبر. وقد استخدم حجم مخفف للسماح لقطرات الحمض النووي، بمجرد الاستغناء عنها، بالانتشار في جميع أنحاء الآبار للتحايل على الانفذيب غير المتجانس الذي لوحظ في التجارب الأولية (أي فقط في وسط الآ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يتطلب إنشاء وتحسين طريقة نقل عالية الإنتاجية دقيقة لخط خلية معين من العلماء اتباع بعض المعلمات الرئيسية الموضحة في هذا القسم. ونحن نشجع بقوة بدءا من القيم الموصى بها في جميع أنحاء البروتوكول كما أثبتت هذه الإعدادات الأمثل لخلايا HeLa أيضا أن تكون فعالة لخلايا HEK. ومع ذلك، كما أن أفضل المعلمات قد تعتمد على خطوط الخلايا والكواشف transfection، يمكن تحديد الظروف المثلى عن طريق تغيير عدد الخلايا، وحجم مخفف، وكمية الحمض النووي الإجمالي، وطبيعة الكاشف transfection، والتركيز، أو حتى حجم المستخدمة كما كان حالة خلال التحسين من هذ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وليس لدى أصحاب البلاغ ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

كشف المؤلفون عن تلقي الدعم المالي التالي للبحث و/أو التأليف و/أو نشر هذه المقالة: Inserm, Lille University, Lille Pasteur Institute, Council Régional du Nord, and PRIM-HCV1 and 2 (Pôle de Recherche Interdisciplinaire sur le Médicament), Agence Nationale de la Recherche (ANR-10-EQPX-04-01), the Feder (12001407 (D-AL) Equipex Imaginex BioMed) and the European Community (ERC-STG INTRACELLTB n° 260901). ويود المؤلفان أن يشكرا الدكتور س. موريو، والدكتور ب. فيلماغني، والدكتور ر. فيرو - كليمنت، والدكتور ه. غرولت على استعراضهم النقدي للمخطوطة وتصحيحاتهم لها.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
384LDVMicroplate LabcyteLP-0200
384 جيدا Microplate & mu ؛ Clear BlackGreiner781906
AmpicilinSigmaA9393-5Gاختيار مضاد حيوي للبكتيريا المحولة مع الأمبيسيلين الذي يعبر عن ناقل
Android TabletSamsungGalaxy Note 8يستخدم لتوجيه المستخدم بينما يقوم دليل لوحة المصدر بتوزيع
Aniospray Surf 29Anios2421073مطهر لتنظيف رأس MicroFlo
كولومبوس برنامجPerkin Elmerلتحليل الصور
برنامج Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) ، ارتفاع نسبة الجلوكوز ، مكمل GlutaMAX ، البيروفاتThermo Fisher Scientific10566032وسط زراعة
الخلايا Echo Cherry Pick 1.5.3 برنامجLabcyteSoftware الذي يتيح التوزيعات المستندة إلى ADE بواسطة جهاز Echo550 من ملف * .csv ؛ برنامج الموزع النانوي
Echo550Labcyteموزع القائم على ADE
مصل الأبقار الجنينيThermo FisherScientific 16000044لإضافة محلول فورمالين متوسط زراعة الخلايا
، مخزن محايد ، 10٪Sigma-AldrichHT501128-4Lلإصلاح خلايا
الخلية HeLaATCCHeLa (ATCC & reg ؛ CCL-2 ™)
Hoechst 33342 ، ثلاثي هيدروكلوريد ، ثلاثي الهيدراتالحرارية فيشر ScientificH357010 مجم / مل محلول في الماء
INCell Analyzer 6000GE Healthcare29043323منصة تصوير متحد البؤر الآلية القائمة على الليزر
LB متوسطةThermoischer Scientific
LB Broth Base (Lennox L Broth Base) & reg ؛ مسحوق		12780052وسط ثقافة لنمو
البكتيرياعازلة التحلل (A2)  Macherey-Nagel740912.1عازلة من مجموعة NucleoSpin Plasmid المستخدمة لإعداد البلازميد من الثقافة البكتيرية
MicroFlo 10 & micro ؛ L كاسيتBiotek Instruments Inc7170013للاستخدام مع موزع Microflo
MicroFlo 1 & mu ؛ L كاسيتBiotek Instruments Inc7170012للاستخدام مع موزع Microflo
موزع MicroFloBiotek Instruments Inc7171000جهاز معالج السوائل القائم على المضخة التمعجية
الطيفDenovixDS-11الحمض النووي للعينات
mVenus البلازميدتم استنساخ mVenus cDNA عن طريق الهضم والربط الأنزيمي في مواقع Age1 / BsrG1 من نوع ناقل البلازميدtdTomato-N1: تعبير الثدييات ، بروتين الاندماج: mVenus
Neutralization Buffer (A3)   ؛Macherey-Nagel740913.1عازلة من مجموعة NucleoSpin Plasmid المستخدمة لتحضير البلازميد من الثقافة
البكتيرية مجموعة البلازميد NucleoSpinMacherey-Nagel740588.50المستخدمة لتحضير البلازميد من الثقافة البكتيرية
متوسط النسر الأمثل المعدل (Opti-MEM) متوسطThermo Fisher Scientific31985070
Wash buffer اختياري Wash Buffer (A4)Macherey-Nagel740914.1عازلة من مجموعة NucleoSpin Plasmid المستخدمة لتحضير البلازميد من
شاكر مداري الثقافة البكتيرية شاكر سعة كبيرة محتضن444-7084يستخدم لزراعة البكتيريا تحت التحريض اللطيف و 37 درجة ؛ C
Penicillin-StreptomycinThermo FisherScientific 1514012210,000 U / mL
BufferedPhosphate-Blender Thermo Fisher Scientific10010001
Plasmid mini-columnsMacherey-Nagel740499.250غشاء السيليكا عمود صغير لتحضير البلازميد من الثقافة البكتيرية
Resuspension Buffer (A1)   ؛Macherey-Nagel740911.1عازلة من مجموعة NucleoSpin Plasmid المستخدمة لتحضير البلازميد من الثقافة البكتيرية
RNAse AMacherey-Nagel740505 إنزيم من مجموعة NucleoSpin Plasmid المستخدمة لتحضير البلازميد من الثقافة البكتيرية
tdTomato-N1 البلازميدAddgenePlasmid # 54642نوع المتجه: تعبير الثدييات ، بروتين الانصهار: tdTomato 
نظام التوصيل الديناميكي TransIT-X2Mirus BioMIR 6000
Wash Buffer (AW)Macherey-Nagel740916.1Buffer من مجموعة NucleoSpin Plasmid المستخدمة لإعداد البلازميد من طابعة ثلاثية الأبعاد للثقافة البكتيرية
CrealityCR10Sالمستخدمة لطباعة محول اللوحة
Blender Software   https://www.blender.org/
البرمجيات الحرة بموجب رخصة جنو العمومية العامة (GPL).		الإصدار 2.79bيستخدم لتصميم محول اللوحة
مقياس الضوئي قياس تركيز

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Colin, B., Deprez, B., Couturier, C. High-Throughput DNA Plasmid Transfection Using Acoustic Droplet Ejection Technology. SLAS Discovery: Advancing Life Sciences R & D. , 2472555218803064(2018).
  2. Mirus Bio. Optimising Transfection Performance. , (2019).
  3. Thermo Fisher Scientific. Factors Influencing Transfection Efficiency | Thermo Fisher Scientific - FR. , https://www.thermofisher.com/fr/fr/home/references/gibco-cell-culture-basics/transfection-basics/factors-influencing-transfection-efficiency.html (2019).
  4. Boussif, O., et al. A versatile vector for gene and oligonucleotide transfer into cells in culture and in vivo: polyethylenimine. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 92 (16), 7297-7301 (1995).
  5. Figueroa, E., et al. A mechanistic investigation exploring the differential transfection efficiencies between the easy-to-transfect SK-BR3 and difficult-to-transfect CT26 cell lines. Journal of Nanobiotechnology. 15 (1), 36(2017).
  6. Kirchenbuechler, I., Kirchenbuechler, D., Elbaum, M. Correlation between cationic lipid-based transfection and cell division. Experimental Cell Research. 345 (1), 1-5 (2016).
  7. Zhang, Z., Qiu, S., Zhang, X., Chen, W. Optimized DNA electroporation for primary human T cell engineering. BMC Biotechnology. 18 (1), 4(2018).
  8. Cao, D., et al. Transfection activity and the mechanism of pDNA-complexes based on the hybrid of low-generation PAMAM and branched PEI-1.8k. Molecular bioSystems. 9 (12), 3175-3186 (2013).
  9. Bos, A. B., et al. Development of a semi-automated high throughput transient transfection system. Journal of Biotechnology. 180, 10-16 (2014).
  10. Colosimo, A., et al. Transfer and expression of foreign genes in mammalian cells. BioTechniques. 29 (2), 314-318 (2000).
  11. Villa-Diaz, L. G., Garcia-Perez, J. L., Krebsbach, P. H. Enhanced transfection efficiency of human embryonic stem cells by the incorporation of DNA liposomes in extracellular matrix. Stem Cells and Development. 19 (12), 1949-1957 (2010).
  12. Sabatini, D. M. Reverse transfection method. , WO2001020015A1(2001).
  13. Raymond, C., et al. A simplified polyethylenimine-mediated transfection process for large-scale and high-throughput applications. Methods (San Diego, CA). 55 (1), 44-51 (2011).
  14. Junquera, E., Aicart, E. Recent progress in gene therapy to deliver nucleic acids with multivalent cationic vectors. Advances in Colloid and Interface Science. 233, 161-175 (2016).
  15. Woodruff, K., Maerkl, S. J. A High-Throughput Microfluidic Platform for Mammalian Cell Transfection and Culturing. Scientific Reports. 6, 23937(2016).
  16. Vasileiou, T., Foresti, D., Bayram, A., Poulikakos, D., Ferrari, A. Toward Contactless Biology: Acoustophoretic DNA Transfection. Scientific Reports. 6, 20023(2016).
  17. Hadimioglu, B., Stearns, R., Ellson, R. Moving Liquids with Sound: The Physics of Acoustic Droplet Ejection for Robust Laboratory Automation in Life Sciences. Journal of Laboratory Automation. 21 (1), 4-18 (2016).
  18. Grant, R. J., et al. Achieving accurate compound concentration in cell-based screening: validation of acoustic droplet ejection technology. Journal of Biomolecular Screening. 14 (5), 452-459 (2009).
  19. Sackmann, E. K., et al. Technologies That Enable Accurate and Precise Nano- to Milliliter-Scale Liquid Dispensing of Aqueous Reagents Using Acoustic Droplet Ejection. Journal of Laboratory Automation. 21 (1), 166-177 (2016).
  20. Day, R. N., Davidson, M. W. The fluorescent protein palette: tools for cellular imaging. Chemical Society Reviews. 38 (10), 2887-2921 (2009).
  21. Zielinski, D., Gordon, A., Zaks, B. L., Erlich, Y. iPipet: sample handling using a tablet. Nature Methods. 11 (8), 784-785 (2014).
  22. Brunner, S., et al. Cell cycle dependence of gene transfer by lipoplex, polyplex and recombinant adenovirus. Gene Therapy. 7 (5), 401-407 (2000).
  23. Nii, T., et al. Single-Cell-State Culture of Human Pluripotent Stem Cells Increases Transfection Efficiency. BioResearch Open Access. 5 (1), 127-136 (2016).
  24. Noonan, D. J., Henry, K., Twaroski, M. L. A High-Throughput Mammalian Cell-Based Transient Transfection Assay. Signal Transduction Protocols. 284, 051-066 (2004).
  25. Transfection | TransIT Transfection Reagents | Mirus Bio. , https://www.mirusbio.com/products/transfection (2015).
  26. American Type Culture Collection. General protocol for transfection of stem cells, primary cells, and continuous cell lines with ATCC TransfeX Transfection Reagent. , https://www.atcc.org/~/media/Transfection%20protocols/TransfeX/TransfeX%20General%20Protocol%20on%20letterhead.ashx (2017).
  27. American Type Culture Collection. Transfection Reagents for Nucleic Acid Transfer into ATCC Cells. , http://www.lgcstandards-atcc.org/~/media/PDFs/Marketing%20Material/Cell%20Biology/Transfection%20reagents%20for%20nucleic%20acid.ashx (2017).
  28. de Los Milagros Bassani Molinas, M., Beer, C., Hesse, F., Wirth, M., Wagner, R. Optimizing the transient transfection process of HEK-293 suspension cells for protein production by nucleotide ratio monitoring. Cytotechnology. 66 (3), 493-514 (2014).
  29. Promega. FuGENE® 6 Transfection Reagent. , https://www.promega.com/-/media/files/resources/protocols/technical-manuals/101/fugene-6-transfection-reagent-protocol.pdf (2019).
  30. Olden, B. R., Cheng, Y., Yu, J. L., Pun, S. H. Cationic polymers for non-viral gene delivery to human T cells. Journal of Controlled Release: Official Journal of the Controlled Release Society. 282, 140-147 (2018).
  31. Park, E., Cho, H. B., Takimoto, K. Effective gene delivery into adipose-derived stem cells: transfection of cells in suspension with the use of a nuclear localization signal peptide-conjugated polyethylenimine. Cytotherapy. 17 (5), 536-542 (2015).
  32. Wood, R. W., Loomis, A. L. The physical and biological effects of high-frequency sound-waves of great intensity. The London, Edinburgh, and Dublin Philosophical Magazine and Journal of Science. 4 (22), 417-436 (1927).
  33. Eliminating Endotoxin at the Source - A Novel Competent Cell Line with Modified Lipopolysaccharide for Low-Endotoxin Plasmid Production. Mamat, U., et al. 28th Annual Symposium of the Protein Society, San Diego, CA, , (2014).
  34. Ivanova, N. V., Kuzmina, M. L. Protocols for dry DNA storage and shipment at room temperature. Molecular Ecology Resources. 13 (5), 890-898 (2013).
  35. Lesnick, J., Lejeune-Dodge, A., Ruppert, N., Jarman, C. High-Precision Cell Dispensing with the Labcyte Echo® Liquid Handler. , https://www.labcyte.com/content/applications/high-precision-cell-dispensing-with-the-labcyte-echo-liquid-handler (2017).
  36. Yang, X., et al. A public genome-scale lentiviral expression library of human ORFs. Nature Methods. 8 (8), 659-661 (2011).
  37. Peng, J., Zhou, Y., Zhu, S., Wei, W. High-throughput screens in mammalian cells using the CRISPR-Cas9 system. The FEBS journal. 282 (11), 2089-2096 (2015).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

ADE 384

مقالات ذات صلة