$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
وقد وافق مجلس المراجعة المؤسسية في مكغيل علي هذه الدراسة البحثية. وقدم جميع المرضي موافقه خطيه للمشاركة في الدراسة والحصول علي منتجات FFPE من الحمل (POCs) استردادها من أقسام الامراض المختلفة.
ملاحظه: في حين ان هناك العديد من الطرق لتحديد النظام الجيني واللوني بواسطة قياس التدفق الخلوي ، فان البروتوكولات المقدمة هنا تصف طريقه واحده للتحليل باستخدام منصة واحده لكل منهما.
1-التنميط الجيني
-
اختيار أفضل كتله FFPE
- لكل منتج ffpe من الحمل (المركز) ، واعداد المقاطع الملونة 4 μm-سميكه و يوزين (H & E) الملطخة كما هو موضح في الأقسام 1.2 و 1.3 ، واحد لكل كتله المتاحة ، للتقييم المورفولوجية عن طريق المجهر.
- باستخدام الشرائح H & E والمجهر الضوئي ، حدد كتله ffpe التي لديها أكبر كميه من الزغب المشيميه (cv) ، وإذا كان ذلك ممكنا ، الكتلة التي لديها CV منفصلة عن ، وليس المخلوطة مع ، انسجه الام.
-
اجتزاء
- ضع الكتلة المختارة علي الجليد لمده 15 دقيقه لتسهيل العملية.
- ضبط ميكروتومي لخفض المقاطع التي هي 4 ميكرون سميكه للتقييم المورفولوجية المجهرية و 10 ميكرون سميكه لاستخراج الحمض النووي.
- وضع كتله الباردة في ميكروتومي وقطع مقطع واحد من كل كتله ل H & E تلطيخ و 10 − 30 أقسام من الكتلة المختارة ، اعتمادا علي كميه السيرة الذاتية في كتله ، لاستخراج الحمض النووي.
ملاحظه: للكتل التي هي كامله من السيرة الذاتية ، 10 أقسام كافيه لاستخراج الحمض النووي. إذا كان حوالي 10 ٪ فقط من كتله يحتوي علي السيرة الذاتية بينما الباقي هي انسجه الام ، ثم 20 − 30 الأقسام مطلوبه لضمان كميات كافيه من الحمض النووي.
- باستخدام ملقط ، نقل كل قسم إلى 45 درجه مئوية حمام المياه. التقط القسم من حمام المياه مع شريحة مشحونة بشكل إيجابي (جدول المواد) التي سبق وسمها برقم تعريف العينة باستخدام قلم رصاص.
- ضع الشرائح التي تحتوي علي الأقسام في فرن عند 65 درجه مئوية للسماح للأقسام بالانضمام إلى الشرائح. الحفاظ علي الشرائح ل H & E في الفرن لمده 25 دقيقه. الحفاظ علي الشرائح لاستخراج الحمض النووي في الفرن لمده 20 دقيقه.
ملاحظه: وقت الحضانة أقصر يجعل الانسجه اقل قليلا ملتصقة الشرائح التالي يسهل أزاله انسجه الام.
-
H & تلطيخ
- السماح للشرائح لتبرد إلى درجه حرارة الغرفة (10 دقيقه).
- اعداد كاشف
- اعداد ايوسين Y حل العمل (0.25%) وفقا للجدول 1. يخلط جيدا ويخزن في درجه حرارة الغرفة.
- اعداد العمل الحل الهيلوكسيلين عن طريق تمييع حل الأسهم من هيتوكوكسيلين 5x في الماء (اي ، مزيج 80 mL من الماء مع 20 مل من الهيوكسيلين).
ملاحظه: التفاف حل الأسهم من الهيلوكسيلين في إحباط للتخزين.
- اعداد الجرار تلطيخ مع الكواشف الصحيحة تحت غطاء الدخان وفقا للجدول 2.
- قم باجراء تلطيخ H & E عن طريق دمج الشرائح في الجرار تلطيخ المناسبة للفترة الزمنيه الصحيحة وفقا للجدول 2.
- جبل الأقسام 4 μm للتحليل المورفولوجية مع تصاعد المتوسطة و كوفيرسليب مع الزجاج الشفتين (جدول المواد).
ملاحظه: لا ينبغي ان تكون الأقسام 10 μm لتنميط الجينات الشفاه.
- ترك المقاطع 10 μm تحت غطاء الدخان لمده لا تقل عن 3 ساعات من أجل الروائح السامة أكسلين لتبديد.
تحذير: جميع الخطوات تلطيخ تحتاج إلى ان يتم تنفيذها تحت غطاء الدخان. المنتجات اكسيلين تحتاج إلى ان تبقي تحت غطاء محرك السيارة في جميع الأوقات لان الروائح اكسيلين هي سامه. وعلاوة علي ذلك ، تحتاج إلى التخلص من اكسيلين و الهيلوكسيلين في حاويات خاصه. وبمجرد امتلاء هذه الحاويات ، فانها تحتاج إلى التخلص منها علي النحو الموصي به من قبل منظمه سلامه المختبر.
| كاشف | كميه |
| حل أسهم ايزين Y (1%) | 250 مل |
| 80 ٪ الايثانول | 750 مل |
| حمض الخليك الجليدي (مركز) | 5 مل |
الجدول 1: ايوسين Y حل العمل (0.25%) اعداد.
| الكاشف المستخدمة (100 mL لكل بن) | مده |
| 1) اكسيلين | 5 دقائق |
| 2) اكسيلين | 5 دقائق |
| 3) 100 ٪ الايثانول | 2 دقيقه |
| 4) 95 ٪ الايثانول | 2 دقيقه |
| 5) 70 ٪ الايثانول | 2 دقيقه |
| 6) 50 ٪ الايثانول | 2 دقيقه |
| 7) الماء المقطر | 5 دقائق |
| 8) الهيلوكسيلين | 4 دقائق |
| 9) الماء المقطر | 5 دقائق |
| 10) ايوسين | 1 دقيقه |
| 11) 95 ٪ الايثانول | 5 دقائق |
| 12) 100 ٪ الايثانول | 5 دقائق |
| 13) اكسيلين | 5 دقائق |
| 14) اكسيلين | 5 دقائق |
الجدول 2: الكواشف والمدد الخاصة ببروتوكول التلطيخ H & E.
-
عزل السيرة الذاتية
- تحت المجسم الفراغي الخفيف ، استخدم ملقط وقطع صغيره من مناديل مبلله بالماء (جدول المواد) لكشط الانسجه الاموميه غير المرغوب فيها من H & E-الملون 10 μm أقسام سميكه.
ملاحظه: الهدف النهائي هو الحفاظ علي اي شيء ولكن السيرة الذاتية أو اغشيه الجنين (عند الحاضر) علي الشرائح التالي لأزاله جميع الانسجه الأخرى. قد تحتاج هذه الخطوة الكثير من الوقت والصبر ، اعتمادا علي كتله ، كما انه يتطلب اهتماما دقيقا للتفاصيل.
- يجب علي الشخص الثاني التحقق من الشرائح بعد التنظيف للتاكد من خلوها من انسجه الام.
- التقاط صور للشرائح التي تم تنظيفها أو توثيق ما يلي للمساعدة في تفسير البيانات: 1) ما إذا كان من الصعب تنظيف الانسجه ، النزفية ، أو نظيفه جدا ، 2) عدد الأقسام المستخدمة ، و 3) الكمية التقريبية من الانسجه المنظفة.
ملاحظه: يقدم الشكل 1 مثالا علي شريحة سهله التنظيف. بالنسبة للكتلة التي تحتوي علي تقريبا هذا المبلغ من السيرة الذاتية ، 10 أقسام كافيه لاستخراج الحمض النووي. الشريحة في الشكل 2 لديها عدد قليل جدا من السيرة الذاتية التي تتداخل مع انسجه الام ، مما يجعل من الصعب جدا وتستغرق وقتا طويلا لتنظيف. بالنسبة للكتلة التي تحتوي علي تقريبا هذا المبلغ من السيرة الذاتية ، هناك حاجه إلى 30 قسما لاستخراج الحمض النووي.
- جمع السيرة الذاتية باستخدام قطعه مبلله صغيره من مناديل ورقيه. باستخدام ملقط ، المسيل للدموع قطعه صغيره من مناديل مبلله ورقه واستخدامها لجمع السيرة الذاتية.
- وضع قطعه من المناديل الورقية مع السيرة الذاتية المرفقة في أنبوب 1.5 مل الموسومة.
- تقليل كميه المناديل الورقية المستخدمة في هذه الخطوة لان الكثير قد تسد عمود استخراج الحمض النووي التالي تقليل الكمية النهائية من الحمض النووي الذي تم جمعه. في المتوسط ، وتهدف إلى استخدام اقل من سبع قطع صغيره من مناديل ورقيه لكل عينه. إذا لم يكن ذلك ممكنا بسبب وجود كميات كبيره من السيرة الذاتية ، وتقسيم العينة بين اثنين من أنابيب لتسهيل استخراج.

الشكل 1: الشريحة التمثيلية للنمط الجيني. الأعلى: الشريحة التي تحتاج إلى "تنظيف" لتصبح خاليه من انسجه الام. أسفل: نفس الشريحة المعروضة بعد ان تم تنظيفه والآن يحتوي علي اي شيء ولكن السيرة الذاتية لاستخراج الحمض النووي. يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.

الشكل 2: الشريحة التمثيلية للنمط الجيني. الأعلى: الشريحة التي تحتاج إلى "تنظيف" لتصبح خاليه من انسجه الام. أسفل: نفس الشريحة المعروضة بعد ان تم تنظيفه والآن يحتوي علي اي شيء ولكن السيرة الذاتية لاستخراج الحمض النووي. يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
- اتبع بروتوكول استخراج الحمض النووي من مجموعه FFPE (جدول المواد) لاجراء استخراج الحمض النووي.
ملاحظه: بعض مجموعات يوصي باستخدام 15 − 20 μL من العازلة التملص للهلاك النهائي. من الخبرة ، والتملص مع 15 μL من المخزن المؤقت الشطف يعمل بشكل جيد لمعظم العينات. قد يتم اعداد المخففات من الحمض النووي المخزون حسب الحاجة.
-
التحديد الكمي للحمض النووي
- باستخدام جهاز المختبر الطيفي ، وتحميل 1 μL من الحمض النووي وقياس الامتصاص في 260 نانومتر للقياس الكمي.
- تحميل 1 μL من الحمض النووي علي 2 ٪ هلام اجنشا وتشغيل الكهربائي هلام في الجهد من 80 − 100 V للتقييم النوعي.
- استنادا إلى نتائج الخطوات ال1.6.1ه وال1.6.2ه ، اختر حجم الحمض النووي الذي سيتم استخدامه في مكبر الصوت المتعدد التكرار القصير الترادفي (STR) لتفاعل البلمره المتسلسل (PCR). تهدف إلى استخدام الحد الأدنى من 1000 ng من الحمض النووي في التضخيم PCR الذي يلي.
ملاحظه: الشكل 3 يوضح أمثله تمثيليه من الهلام مع تركيزات الحمض النووي (استنادا إلى نتائج الطيف الطيفي) ، وحجم محلول الحمض النووي التي يوصي بها لمتعددة شارع PCR الذي يلي.

الشكل 3: هلام تمثيلي لتحديد كميه الحمض النووي. وتشمل تركيزات كل حمض نووي ، كما تقاس باستخدام مقياس طيفي ، والكميات المستخدمة لمتعدد PCR. يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
-
التضخيم PCR
- أداء التنميط الجيني الميكروي الفلوري باستخدام نظام متعددالاستعمالات (جدول المواد).
- استخدام الشروط PCR المبينة في الشكل 4 لتضخيم pcr باستخدام متعددة STR النظام (جدول المواد).
ملاحظه: وتستخدم الإشعال التالية في هذا النظام STR متعددة: D18S51 ، D21S11 ، TH01 ، D3S1358 ، بنتا E ، FGA ، TPOX ، D8S1179 ، vWA ، Amelogenin ، CSF1PO ، D16S539 ، D7S820 ، D13S317 ، D5S818 ، وبنتا د.

الشكل 4: شروط دوره PCR لنظام الإرسال المتعدد STR. يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
-
حل المنتجات PCR بالكهربي الشعرية.
- تعليق 1 μL من كل عينه تضخيمها في 0.5 μL من الممر القياسي الداخلي لنظام تعدد الإرسال و 9.5 μL من formamide عاليه الأيونات (جدول المواد).
- قم بتشغيل العينات من خلال أداه الكهربي الشعرية (جدول المواد) باستخدام مصفوفة فصل مناسبه (جدول المواد) للاداه ومجموعه صبغ نظام تعدد الإرسال.
- تحليل البيانات
- تحليل البيانات باستخدام برنامج تحليل جزء من الحمض النووي ومقارنه الاللات الخاصة بالجينات الابويه لتحديد أصلها.
- قم باعداد معيار الحجم.
ملاحظه: وهذا يسمح للبرنامج للتعرف علي السلم الذي يستخدم في متعددة STR النظام ، وتعيين باسيبيرس إلى الرموز علي أساس السلم. الخطوات التالية هي لبرنامج واحد محدد (جدول المواد) ولكن قد تكون مساعده لاعداد أنواع أخرى من البرامج أيضا.
- افتح البرنامج. انقر علي بدء مشروع جديد ثم علي معيار حجم جديد.
- إعطاء الحجم القياسي للاسم (علي سبيل المثال ، ABI_600).
- في المربع المسمي ادخل التعريف القياسي للحجم الجديد: ادخل ما يلي: 60 ، 80 ، 100 ، 120 ، 140 ، 160 ، 180 ، 200 ، 225 ، 250 ، 275 ، 300 ، 325 ، 350 ، 375 ، 400 ، 425 ، 450 ، 475 ، 500 ، 550 ، 600. ثم انقر علي أضافه حجم (s).
ملاحظه: ستظهر الأرقام التي تم إدخالها تحت المربع الموجود علي اليمين ، والذي يسمي " التعريف القياسي للحجم الحالي " (انظر الشكل 5).
- انقر علي حفظ.
- لاستيراد وتحليل ملف ، انقر فوق أضافه ملفات، واختر ملف fsa ليتم تحليلها. انقر علي أضافه الملفات المحددة ثم علي OK. ثم اتبع الخطوات التالية:
- حدد موقع العمود القياسي للحجم واختر ABI_600 (أو أيهما اعطي الاسم إلى معيار الحجم).
- تحت أسلوب التحليل، انقر علي تغيير الحجم الافتراضي-الحزب التقدمي الواحد ثم انقر علي زر تحليل الخضراء.
- الملف جاهز الآن للعرض. اضبط خيارات العرض لعرض البيانات حسب الرغبة.
- استكشاف الأعطال وإصلاحها-طريقه التحليل
ملاحظه: قد يفشل البرنامج في بعض الأحيان في تحديد القمم ومحاذاتها بشكل صحيح. يحدث هذا عندما تكون القمم اما منخفضه جدا أو مرتفعه جدا. يمكن تصحيح طريقتي التحليل التالية لهذا ويجب ان يحاكم قبل ان يتم أعاده اختبار العينة.
- طريقه التحليل 1 لقمم عاليه:
- انقر علي طريقه التحليل الجديدة واسمها قمم عاليه (أو اسم آخر وفقا لتفضيل شخصي).
- انقر علي نطاق ثم علي نطاق جزئي للتحليل والتحجيم. ثم اكتب في 100 لنقطه البداية وحجم البدء.
- بالنسبة لنقطه الإيقاف، ادخل 10,000. بالنسبة لحجم الإيقاف، ادخل 1000.
- ثم انقر علي مرتفعات الذروة الحد الأدنى وتغيير الأرقام بحيث عتبه الذروة للألوان كما يلي: الأزرق: 50. اللون الأخضر: 50. اصفر: 20; الأحمر: 100. البرتقالي: 5000.
- احفظ طريقه التحليل الجديدة.
- طريقه التحليل 2 لقمم منخفضه:
- انقر علي أسلوب تحليل جديد واسمه قمم منخفضه (أو اسم آخر وفقا لتفضيل شخصي).
- انقر علي نطاق ثم علي نطاق جزئي للتحليل والتحجيم. ثم اكتب في 100 لنقطه البداية وحجم البدء.
- بالنسبة لنقطه الإيقاف، ادخل 10,000. بالنسبة لحجم الإيقاف، ادخل 1000.
- ثم انقر علي علامات الجودة وتغيير نطاق التمرير بحيث يقرا من 0.5 إلى 1. تغيير نطاق جوده منخفضه بحيث يقرا من 0.0 إلى 0.0. تغيير تفترض خطيه إلى ما يلي: من (bp) 100.0 إلى (bp) 800.0.
- احفظ طريقه التحليل الجديدة.
ملاحظه: فمن الممكن الآن لأعاده تحليل ملف عن طريق اختيار قمم منخفضه أو قمم عاليه تحت أسلوب التحليل ومن ثم النقر علي زر تحليل الخضراء.

الشكل 5: لقطه شاشه تبين حجم محرر القياسية. يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
2. تدفق الخلوي
-
اختيار كتله FFPE المثالي
- باستخدام الشرائح H & E والمجهر الضوئي ، حدد كتله FFPE التي لديها حوالي 50 − 70 ٪ من الانسجه التي تتكون من السيرة الذاتية.
ملاحظه: الشكل 6 مثال تمثيلي لكتله مناسبه لتحليل التدفق الخلوي ، كما انه يتكون من تقريبا 50 ٪ CV (النصف الأيمن من القسم) و 50 ٪ انسجه الام (النصف الأيسر). ووجود انسجه الام أمر مهم لأنها تشكل مراقبه داخلية لذروه الديبلويد.
- للكتل التي لا تملك القدر المثالي من السيرة الذاتية ، إثراء لcv كما يتم تنفيذ العملية. للقيام بذلك ، وتحديد الجانب من المقاطع قطع حديثا يحتوي علي المزيد من السيرة الذاتية وفقا لشريحة H & E المقابلة. واستنادا إلى ذلك ، استخدم شفره لقطع النصف الآخر الذي يحتاج إلى التخلص منه من أجل إثراء السيرة الذاتية.
ملاحظه: يظهر الشكل 7 كتله ليس لديها السيرة الذاتية الكافية لتحليل تدفق الخلوي. لكتل مثل هذا واحد ، والأقسام تحتاج إلى ان تقطع بحيث يتم التخلص من النصف الذي يحتوي علي السيرة الذاتية اقل من أجل زيادة كميات السيرة الذاتية فيما يتعلق انسجه الام ، كما هو مبين في الشكل. تاكد من قطع المزيد من المقاطع لتعويض ما يتم تجاهله.

الشكل 6: القسم H &Amp; E الذي يمثل الكتلة التي تعتبر مثاليه لقياس التدفق الخلوي. يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.

الشكل 7: القسم H &Amp; E الذي يمثل كتله أكثر صعوبة لقياس التدفق الخلوي. يوضح هذا القسم H & E الممثل انه يجب استخدام النصف السفلي فقط من هذا القسم لتحليل التدفق الخلوي ، بهدف إثراء السيرة الذاتية. المنطقة المحددة ، المسمية "CV" ، تتكون في الغالب من السيرة الذاتية. الرجاء النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.
- اجتزاء
- ترك كتل علي الجليد لمده 15 دقيقه لتسهيل العملية.
- باستخدام أفضل كتله FFPE ممكن ، وقطع أربعه أقسام التي هي 50 μm سميكه (أو مقاطع سميكه 2 100 μm) باستخدام ميكروتومي.
ملاحظه: لقياس التدفق الخلوي فمن الأفضل ان يكون أكثر سمكا المقاطع.
- في حاله ان كتله FFPE مثاليه غير متوفرة ، تهدف إلى الحفاظ علي نسبه السيرة الذاتية إلى انسجه الام مع ذلك. علي سبيل المثال ، إذا كان 30 ٪ فقط من كتله تتكون من السيرة الذاتية في حين ان بقية لديها انسجه الام ، ثم أزاله ما لا يقل عن نصف القسم الذي يحتوي علي انسجه الام واستخدام المزيد من الأقسام للتعويض (انظر الشكل 7).
- وضع المقاطع في الموسومة 15 مل أنابيب.
ملاحظه: تاكد من الشريط علي التسميات لان الكواشف العضوية المستخدمة في الخطوة التالية يمكن حل وأزاله الحبر.
- تدفق الخلوية بروتوكول من الانسجه FFPE
- المغادرون والجفاف
- قم باجراء الغسيل التالي (الجدول 3) تحت غطاء الدخان.
- ملء أنبوب 15 مل مع 6 مل من كاشف المناسبة ، وفقا للترتيب المقدمة في الجدول 3 ، ترك الأقسام في الكواشف لمده كل منهما ، ثم أزاله الكاشف باستخدام شفط فراغ وماصه الزجاج باستور.
- بين كل خطوه ، تراجع ماصه باستور الاولي في 70 ٪ الايثانول ، ثم في الماء المقطر ، ومن ثم المضي قدما إلى الخطوة التالية.
- كن حذرا جدا لا لأزاله قطع من الانسجه جنبا إلى جنب مع كاشف. أماله أنبوب 15 مل إلى زاوية 60 درجه لتسهيل شفط كاشف السائل دون انسجه الرسم.
تحذير: تحتوي السوائل المهملة علي اكسيلين وينبغي التخلص منها في حاويات نفايات اكسيلين.
- اعداد الحلول
- اعداد الحل سيترات عن طريق حل 2 غرام من حمض الستريك في 1 لتر من الماء المقطر مزدوجة. جلب الأس الهيدروجيني إلى 6. يخزن عند درجه حرارة 4 درجات مئوية.
- اعداد البيبسين حل عن طريق تذويب 0.01 غرام من البيبسين في 2 مل من 9 أجزاء لكل الف كلوريد الصوديوم ، pH 1.64. هذا لعينه واحده.
تحذير: البيبسين سامه ويمكن بسهوله تفريق وتصبح المحمولة جوا. ارتداء قناع عند التعامل مع البيبسين في شكل مسحوق ويمسح كل منطقه العمل بعد استخدامه.
- بروبيديوم يوديد (PI)-ريبونكليوداز اعداد حل لعينه واحده.
- مزيج 50 μL من PI مع 450 μL من تلفزيوني (لتمييع 10x).
- أضافه 50 μL من ريبونكليوداز A (1 مغ/مل) إلى الخليط. تبقي ملفوفه في إحباط في جميع الأوقات.
- الهضم وتلطيخ
- أضافه محلول سيترات 4 درجه مئوية إلى أنابيب 15 مل ثم وضع في حمام مياه 80 درجه مئوية لمده 2 ساعة.
- دع المحلول يبرد إلى درجه حرارة الغرفة (15 دقيقه). أزاله الحل سيترات.
- أضافه 6 مل من 1x تلفزيوني, دوامه, والانتظار 1 − 2 دقيقه للسماح للانسجه ليستقر إلى أسفل. أزاله 1x تلفزيوني باستخدام شفط فراغ وماصه الزجاج باستور.
- أضافه 1 مل من محلول البيبسين (مسخن إلى 37 درجه مئوية) ومكان في 37 درجه مئوية حمام جاف لمده 30 دقيقه. دوامه كل 10 دقيقه. اعداد الحل في الدقيقة الاخيره 10 من هذه الحضانة.
- أضافه 6 مل من 1x تلفزيوني, دوامه, والانتظار 1 − 2 دقيقه للسماح للانسجه ليستقر إلى أسفل. أزاله 1x تلفزيوني باستخدام شفط فراغ وماصه الزجاج باستور.
- أضافه 550 μL من PI-ribonase حل ووضع العينات في حمام جاف 37 درجه مئوية لمده 30 دقيقه.
ملاحظه: عند هذه النقطة ، يمكن ان تكون ملفوفه العينات في إحباط وترك بين عشيه وضحيها في 4 درجه مئوية حتى صباح اليوم التالي.
- تصفيه الحل من خلال شبكه الترشيح 48 μm. جمع الترشيح في أنابيب البوليسترين جولة القاع ، والتي يمكن استخدامها مع تدفق المضخم. استخدام ملقط لوضع 5 سم بنسبه 5 سم قطعه من شبكه الترشيح في الجزء العلوي من الأنبوب ، بحيث يمكن ان يكون السائل الأنابيب من خلال شبكه والي الأنبوب.
ملاحظه: العينات جاهزه الآن ليتم تشغيلها باستخدام مقياس التدفق الخلوي. الاحتفاظ بها ملفوفه في إحباط حتى انهم مستعدون لتشغيل.
- تشغيل العينات باستخدام مقياس التدفق الخلوي بمساعده فني منصة التدفق الخلوي للمؤسسة.
ملاحظه: يتم استخدام قناه PE للكشف عن الحمض النووي الملون PI ويجب تعيين معدل التدفق لإبطاء اثناء الاستحواذ. تاكد من ان يتم اختيار الجهد من هذا القبيل ان ذروه مضاعف هو تقريبا في 200 علي طول PE-A x-محور لتسهيل التحليل والتفسير. تهدف إلى تسجيل الحد الأدنى من 20,000 الاحداث لكل عينه.
| الكاشف المستخدمة (6 مل لكل منهما) | مده |
| 1) اكسيلين | 2 × 10 دقيقه |
| 2) 100 ٪ الايثانول | 2 × 10 دقيقه |
| 3) 95 ٪ الايثانول | 10 دقائق |
| 4) 70 ٪ الايثانول | 10 دقائق |
| 5) 50 ٪ الايثانول | 10 دقائق |
| 6) الماء المقطر | 2 × 10 دقيقه |
الجدول 3: الكواشف وفترات المغادرين والجفاف.
-
تحليل بيانات التدفق الخلوي
- تحليل البيانات باستخدام برنامج تحليل التدفق الخلوي (جدول المواد).
ملاحظه: الخطوات التالية هي لبرنامج واحد محدد (جدول المواد) ولكن قد تكون مساعده لاعداد أنواع أخرى من البرامج أيضا.
- بعد تشغيل العينات علي مقياس التدفق الخلوي ، تحميل FCS 2.0 ملفات للتحليل.
- افتح برنامج تحليل التدفق الخلوي ، انقر علي الملف | مستند جديد.
- انقر فوق رمز الرسم البياني (
) ، ثم اسحب المؤشر لجعل مستطيل.
- استعرض للحصول علي ملف FCS ثم انقر فوق فتح. علي طول المحور س ، انقر علي FCS-a ثم حدد PE-a.
- انقر فوق رمز نقطه المؤامرة (
) ثم قم بسحب المؤشر لإنشاء مستطيل آخر تحت مخطط الرسم البياني. ثم استعرض للحصول علي نفس الملف FCS التي تم تحديدها للرسم البياني.
- تغيير المحور س من مؤامرة نقطه إلى pe-A ومحور ص إلى pe-W.
ملاحظه: يبين الشكل 8الف مظهر المؤامرات في هذه المرحلة.
- انقر علي أيقونه المنطقة (
) ورسم مربع علي مؤامرة نقطه التي تبدا قبل ذروه مضاعف (حوالي 100 علي المحور س في الشكل 8ب) والتي تنتهي حول 700 علي محور x ، كما هو مبين في مؤامرة نقطه في الشكل 8 باء-
ملاحظه: الذروة مضاعف في الشكل 8 تقريبا في 200 علي المحور س. يتم اختيار هذا تعسفا كما يتم تسجيل العينات من خلال تدفق الخلوي ، وذلك ببساطه لتسهيل تحليل وتفسير النتائج.
- انقر علي مؤامرة | حرر المناطق/البوابات، ثم اكتب R0 في الخلية المجاورة للخلية الG0ه ضمن الاستراتيجية. ثم انقر علي إغلاق.
- انقر في اي مكان علي الرسم البياني ، ثم علي مؤامرة | تنسيق الرسم/التراكب. تحت البوابة، حدد G0 = R0 ثم انقر علي OK.
ملاحظه: هذه هي الخطوة النابضة التي تسمح للمرء ان تصور أفضل القمم صيغه الصبغيه. يجب ان تبدو المدرج التكراري الآن مثل الرسم البياني في الشكل 8B. فمن الممكن ان تلعب حولها مع البوابة التي تم إنشاؤها (عن طريق تحريك مربع رسمها في الخطوة 2.4.1.7) من أجل التركيز علي مناطق محدده من مؤامرة نقطه.
- لتسميه المؤامرات ، انقر فوق رمز منطقه النص (
) ، ثم اسحب المؤشر لإنشاء مربع في اعلي المستند ، ثم اكتب في المعلومات التالية: معرف المريض ، معرف الاتصال الشخصي والكتلة المستخدمة (لأنه قد يكون هناك عده كتل لواحده منها) ، والنسبة المئوية السيرة الذاتية الموجودة علي كتله ، والجهد المستخدم لتشغيل العينة ، والتاريخ.

الشكل 8: لقطه شاشه تعرض رسما بيانيا ومؤامرة نقطية لعينه تمثيليه غير مسوره (a) ومسوره (B). يرجى النقر هنا لعرض نسخه أكبر من هذا الرقم.