يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

نموذج حيواني كبير لإصابة الكلى الحادة عن طريق انسداد الشريان الكلوي الثنائي المؤقت

4.4K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/62230

⸱

فبراير 2, 2021

في هذه المقالة

ملخص

تقدم هذه الدراسة نموذجا حيوانيا كبيرا قابلا للاستنساخ للغاية لإصابة نقص التروية الكلوية في الخنازير باستخدام انسداد ثنائي ثنائي مؤقت للقسطرة بالون عن طريق الجلد للشرايين الكلوية لمدة 60 دقيقة وإعادة التروية لمدة 24 ساعة.

الملخص

ترتبط الإصابات الكلوية الحادة بارتفاع خطر الإصابة بالمراضة والوفيات بعد الجراحة. إصابة الإسكيمية والتشويش (IRI) هي السبب الأكثر شيوعا ل AKI. لمحاكاة هذا السيناريو السريري، تقدم هذه الدراسة نموذجا حيواني كبير قابل للاستنساخ للغاية من IRI الكلوي في الخنازير باستخدام انسداد ثنائي ثنائي عن طريق الجلد مؤقت للقسطرة بالون من الشرايين الكلوية. يتم انسداد الشرايين الكلوية لمدة 60 دقيقة عن طريق إدخال قسطرات البالون عبر الشريان الفخذي وال السباتي ودفعها إلى الجزء القريب من الشرايين. يتم حقن التباين Iodinated في الشريان الأورطي لتقييم أي عتامة في الأوعية الكلوية وتأكيد نجاح انسداد الشريان. ويؤكد ذلك كذلك من خلال تسطيح شكل الموجات النبضية في طرف قسطرة البالون. يتم تفريغ البالونات وإزالتها بعد 60 دقيقة من انسداد الشريان الكلوي الثنائي ، ويسمح للحيوانات بالتعافي لمدة 24 ساعة. في نهاية الدراسة ، يزداد الكرياتينين البلازما ونيتروجين اليوريا في الدم بشكل كبير ، في حين ينخفض إنتاج eGFR والبول بشكل كبير. الحاجة إلى التباين iodinated هو الحد الأدنى ولا يؤثر على وظيفة الكلى. الانسداد الشريان الكلوي الثنائي يحاكي بشكل أفضل السيناريو السريري لنقص التروية الكلوية في العراء ، ويقلل النهج عن طريق الجلد من تأثير الاستجابة الالتهابية وخطر العدوى التي ينظر إليها بنهج مفتوح ، مثل استئصال البطن. القدرة على إنشاء وإعادة إنتاج هذا النموذج الخنازير ذات الصلة سريريا يخفف من الترجمة السريرية للبشر.

المقدمة

إصابة الكلى الحادة (AKI) هي حالة يتم تشخيصها عادة بين المرضى الجراحيين المرتبطين بالمراضة والوفيات الكبيرة1،2. وتظهر البيانات المتاحة أن AKI يمكن أن تؤثر حتى على نصف جميع المرضى في المستشفيات في جميع أنحاء العالم ويؤدي إلى 50٪ معدل الوفيات في المرضى في وحدة العناية المركزة1،3. على الرغم من انتشاره المرتفع، لا يزال العلاج الحالي ب AKI يقتصر على الاستراتيجيات الوقائية، مثل إدارة السوائل وغسيل الكلى. لذلك ، هناك اهتمام مستمر باستكشاف العلاجات البديلة ل AKI4و5و6.

AKI تصنف عادة إلى ما قبل الكلوي، الجوهرية، وبعد الكلوية على أساس المسبباتلها 4،5،6. ترتبط غالبية المرضى الجراحيين الذين يعانون من AKI بأسباب ما قبل الكلى بسبب نقص الدم ، مما يؤدي إلى إصابة نقص التروية -reperfusion (IRI) للكلى2. سريريا, انخفاض انتاج البول, وزيادة مستويات الكرياتينين بسبب انخفاض وظيفة الكلى. الكلى هي عضو عالي معدل الأيض وعرضة للكيمياء. نموذج حيواني كبير قابل للاستنساخ للغاية من IRI الكلوي ضروري للحصول على رؤية أفضل في الفيزيولوجيا المرضية ل AKI ونهجها العلاجية المحتملة5.

لمحاكاة السيناريو السريري لنقص التروية الكلوية في الفترة المحيطة بال المنطوق ، يعتبر نموذج انسداد الشريان الكلوي الثنائي مناسبا. النماذج الموصوفة سابقا التي تنطوي على انسداد الشريان الكلوي من جانب واحد مع أو بدون استئصال الكلى الكونترالاتال لا توفر ما يكفي من التطبيق السريري7،8. على الرغم من أن هذه النماذج كافية للتسبب في AKI، فإنها لا تشبه سيناريوهات الحياة الحقيقية السريرية لا من حيث نوع ولا مدة الإصابة.

الهدف من هذه الورقة هو تقديم نموذج porcine من انسداد مؤقت ثنائي عن طريق الجلد من الشرايين الكلوية عن طريق انسداد بالون القسطرة تحت تصوير الأوعية. انسداد الشريان الكلوي الثنائي يحاكي السيناريو السريري لنقص التروية الكلوية ، يليه الإزالة اللاحقة للبالون لإعادة التروية9،10. يتم وصف الخطوات التقنية، بما في ذلك القسطرة، وتوجيه القسطرة، وتصوير الأوعية، ورصد الدورة الدموية. هذا الأسلوب لا يسمح فقط لانسداد الشرايين الكلوية التي تسيطر عليها للغاية ويمكن تكرارها، ولكن النهج عن طريق الجلد يقلل من تأثير الاستجابة الالتهابية عن طريق الحد من كمية من إهانة للجسم مقارنة بنهج مفتوح.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

أجريت جميع الدراسات الحية وفقا للمبادئ التوجيهية للمعاهد الوطنية للصحة بشأن رعاية الحيوانات واستخدامها ووافقت عليها لجنة رعاية الحيوانات واستخدامها في مستشفى بوسطن للأطفال (البروتوكول 18-06-3715). وتلقى جميع الحيوانات رعاية إنسانية امتثالا لدليل رعاية واستخدام المختبر. يوضح الشكل 1 الجدول الزمني بما في ذلك التخدير والتحضير الجراحي والنقاط الزمنية لقياسات النتائج الأولية لهذه الدراسة.

1. الحث والتخدير والتنبيب

  1. لمنع الإجهاد وعدم الراحة لا لزوم لها، وتخدير الخنازير عن طريق الحقن العضلي من خليط من tiletamine / zolazepam 4-6 ملغ / كغ وxylazine 1.1-2.2 ملغ / كغ، فضلا عن isoflurane 3٪ باستخدام قناع الوجه.
  2. كانول الوريد الأذن للحصول على الوصول الوريدي مع قنية 20 G IV بعد تطهير المنطقة مع الإيثانول 95٪. بدء ضخ الصيانة (0.9٪ NaCl في 5 مل / كجم / ساعة).
  3. قم بتنبيب الخنزير بأنبوب القصبة الهوائية (مقاس 7 للخنازير التي تزن 40-50 كجم) بمجرد التأكد من كفاية التخدير. أداء بالون التهوية مع تردد 12 نفسا / دقيقة ونقل الخنزير إلى غرفة العمليات.
  4. ضع الحيوان على طاولة العمليات في وضعية النهم. ابدأ فورا تهوية الضغط الإيجابي الميكانيكية مع FiO2 0.50، 10 مل/كجم حجم المد والجزر، وتردد 12 نفسا / دقيقة تحت capnography المستمر.
  5. ضع مقياس أكسدة النبض على الأذن أو الشفة السفلية لمراقبة مستمرة.
  6. الحفاظ على normothermia (37 درجة مئوية) باستخدام وسادة الهواء ساخنة.
  7. للحفاظ على التخدير العام، حافظ على إدارة الأيزوفلوران عند 0.5-4٪ من خلال أنبوب القصبة الهوائية. طوال العملية، مراقبة تخطيط القلب باستمرار، ضغط الدم الشرياني، درجة الحرارة، والكابنوغرافيا لقياس عمق التخدير.
  8. أدخل قسطرة فولي للتحقق من حالة السائل للحيوان ومراقبة إخراج البول عن طريق جمع البول في كيس الصرف الصحي.
    ملاحظة: يفضل الخنازير الإناث على الذكور بسبب السمات التشريحية لمجرى البول الذي يسمح أسهل القسطرة.

2. التحضير الجراحي والوصول إلى الأوعية الدموية

  1. ستارة الحيوان بطريقة عقيمة.
  2. تطهير المنطقة الجانبية اليمنى من الرقبة عن طريق تطبيق بيتادين ثم 95٪ الإيثانول لمدة 3 مرات.
  3. إجراء خفض القسطرة الشريان السباتي الأيمن والوريد الوداجي الأيمن. تراجع عن العضلة القصية الجانبية وتشريحها وصولا إلى الشريان السباتي الأيمن والوريد الوداجي الأيمن.
  4. أدخل غمد تصوير الأوعية 5F في كل من الشريان والوريد. تأمينه مع خياطة الحرير 2-0.
  5. أدخل غمد تصوير الأوعية 5F باستخدام تقنية Seldinger في الشريان الفخذي الأيسر.
    1. لإجراء تقنية Seldinger ثقب الشريان الفخذي باستخدام إبرة جوفاء. أدخل سلكا إرشاديا ناعما من خلال التجويف وتقدمه إلى الشريان الفخذي.
    2. عقد الدليل آمنة مع اليد أثناء إزالة الإبرة. تمرير غمد تصوير الأوعية عبر الدليل في الشريان الفخذي وسحب الدليل. استخدام التوجيه بالموجات فوق الصوتية، إذا لزم الأمر.

3. تحريض إصابة نقص التروية الكلوية

  1. إعطاء 200 وحدة IU/kg هيبارين الصوديوم عن طريق الوريد لتحقيق تخثر الجهازية (الهدف تنشيط وقت التخثر (ACT) > 300 ثانية).
  2. إجراء تصوير الأوعية عن طريق حقن عامل تباين يوديناتيد تحت تنظير الفلور لتحديد الشرايين الكلوية.
    ملاحظة:لتقليل خطر السمية الكلوية الناجمة عن التباين، قم بتخفيف عامل التباين iodinated في محلول 1:1 مع المالحة العادية. جدولة الجرعة لجميع الحيوانات لضمان الجرعات المكافئة.
  3. تحديد الشرايين الكلوية، وتقدم يدويا في الدليل القسطرة التوجيهية.
  4. ضع القسطرة التوجيهية 5F JL4 في الشريان الكلوي الأيسر عبر الشريان السباتي الأيمن (الشكل 1A).
  5. وضع القسطرة التوجيهية الثانية 5F JL4 في الشريان الكلوي الأيمن من خلال الشريان الفخذي الأيسر (الشكل 1A).
  6. استخدم الأسلاك الإرشادية لتوجيه قسطرة تزلطية 5F عن طريق الجلد (PTA) في كل شريان كلوي.
    ملاحظة: من الأفضل وضع البالون في الشريان الكلوي القريب بحيث لا تترك فروع أو ضمانات الشريان الكلوي براءة اختراع بعد تضخم البالون.
  7. ضع كل قسطرة بالون في مكانها وربط خط ضغط بكل قسطرة.
  8. تحقق من وجود أشكال موجية للنبض الشرياني في شاشة الضغط لضمان تحديد الموضع الصحيح للقسطرة.
  9. تضخيم كل بالون وتهدف لضغط ما يقرب من 2.5 أجهزة الصراف الآلي داخل البالون(الشكل 1B).
  10. لتأكيد توقف تدفق الدم إلى الكلى مراقبة تسطيح الموجي نبض في غيض من قسطرة البالون.
  11. حقن المتوسطة التباين iodinated (1:1 التخفيف) والتحقق من أي عتامة الأوعية الكلوية.
    ملاحظة: من الممكن أيضا ملء البالون بعامل تباين iodinated لتصور البالون المتضخم. ومع ذلك، هذه الطريقة ليست حساسة مثل تسطيح شكل الموجات النبضية لتأكيد انسداد الشرايين الكلوية.
  12. بعد 60 دقيقة من انسداد، تفريغ بعناية وإزالة القسطرة بالون من الشرايين الكلوية.
  13. إجراء تصوير الأوعية (باستخدام 1:1 المتوسطة النقيض المخفف) لتأكيد الشبع الشريان الكلوي وإنشاء التروية الكلوية(الشكل 1C).
  14. إزالة غمد تصوير الأوعية 5F من الشريان الفخذي الأيسر.
  15. تطبيق ضغط ثابت في موقع القسطرة لمدة 30 دقيقة.
  16. عكس تأثير الهيبارين عن طريق إدارة البروتامين (3 ملغم / كغ) حتى تطبيع ACT.
  17. لعينة البول خلال فترة ما بعد الجراحة، قم بتأمين أنبوب إلى قسطرة فولي مع خياطة حريرية 2-0 باستخدام غرزة متقطعة على الجلد.
  18. اترك أغماد تصوير الأوعية في الشريان السباتي الأيمن والوريد الوداجي الأيمن في مكانه وآمنها بخياطة حريرية 2-0 باستخدام غرزة متقطعة للسماح بأخذ عينات الدم طوال الدراسة.
  19. أغلق شق الرقبة بخياطة حرير 2-0 باستخدام غرزة مستمرة في طبقتين.
  20. قم بإعطاء bupivacaine (3 ملغم/كغ) في موقع الشق لتقليل الألم.
  21. استمر في ترطيب الحيوان بنسبة 0.9٪ من NaCl بمعدل 5 مل/كجم/ساعة لما مجموعه 2 ساعة بعد نهاية الإقفارية.
  22. ضع رقعة الفنتانيل (25-50 ميكروغرام / ساعة) على الجزء الخلفي من الحيوان لتقليل الألم بعد الجراحة.
  23. إعطاء حقنة عضلية من البوبرينورفين (0.005-0.1 ملغم /كغ) لتقليل الألم بعد العملية الجراحية.
  24. مراقبة الحيوان والحفاظ عليه على التهوية الميكانيكية حتى الاستيقاظ.

4. استعادة الحيوان

  1. بعد الاستيقاظ، استيعاب الحيوان في غرفة التحكم في درجة الحرارة.
  2. الاستمرار في تحويل الحيوان من جانب جانبي واحد إلى آخر حتى يستعيد وعيه الكامل والقدرة على الالتهاب.
  3. توفير المياه والغذاء الإعلانية libitum.

5. التقييم الوظيفي

  1. جمع عينات الدم والبول وفقا للبروتوكول المطلوب.
    ملاحظة:في هذه الدراسة، تم تعيين النقاط الزمنية التالية: خط الأساس (1 ساعة بعد بدء بروتوكول الترطيب وقبل انسداد الشرايين الكلوية)، ونهاية نقص التروية، والتشويش (2 ساعة، 6 ح، 24 ساعة).
  2. جمع عينات الدم الشرياني وال وريدي. تخزينها في الهيبارين الليثيوم أو EDTA vacutainers المغلفة للتحليل اللاحق.
    ملاحظة:ارسم الدم مباشرة من القسطرة في الشريان السباتي والوريد الوداجي.
  3. جمع عينات البول من القسطرة فولي وتخزينها في أنابيب 15 مل للتحليل.
    ملاحظة:جمع البول من كيس الصرف الصحي متصلة القسطرة فولي.
  4. لتحديد إخراج البول، إفراغ كيس الصرف وجمع البول لمدة ساعة واحدة.
    ملاحظة:بالنسبة للنقطة الزمنية 6 ساعة التي لا يتم فيها توصيل كيس الصرف بقسطرة فولي، أغلق الأنبوب المتصل بقسطرة فولي لمدة 30 دقيقة ثم اجمع البول بحقنة سعة 60 مل لتحديد إخراج البول.

6. القتل الرحيم

  1. بعد نهاية فترة التروية، قم بإجراء التخدير والمراقبة كما هو موضح أعلاه.
  2. استمر في الترطيب بنسبة 0.9٪ من الناقل عند 5 مل/كغ/ساعة.
  3. استخدم القسطرة الشريانية وال وريدية لأخذ عينات الدم وقسطرة فولي لتحديد إخراج البول. جمع عينات الدم والبول النهائي وحساب انتاج البول.
  4. إجراء شق استئصال البطن خط الوسط 15 سم باستخدام حجم 10 شفرة من xiphoid وصولا الى الحوض منتصف.
  5. استخدم متراجعا الجانبي المستقيم لسحب جلد البطن.
  6. تشريح المرفقات الصفاق الجانبية لجدار البطن لفضح الرجعية اليمنى واليسارية.
  7. تحديد وتشريح بصراحة كل من الشرايين الكلوية والأوردة.
  8. Ligate كل من الشرايين الكلوية والأوردة مع خياطة الحرير 2-0 وإجراء استئصال الكلية الثنائية لجمع عينات الأنسجة الكاملة للتحليل النسيجي والأيضي.
  9. قتل الحيوان باستخدام الطريقة المفضلة للقتل الرحيم (على سبيل المثال، الإستئصال، البنتوباربيتال)

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

التحليل الوظيفي
النتائج التمثيلية لهذه الدراسة تنشأ من 6 والبيانات المعروضة هي متوسط ± خطأ قياسي في المتوسط. يتم تقييم وظيفة الكلى عن طريق تحديد إخراج البول، ومعدل الترشيح الكبيبي المقدر (eGFR)، والكرياتين البلازما، ونيتروجين اليوريا في الدم (BUN). يتم تقييم المؤشرات الحيوية للوظيفة الكلوية باستخدام محلل كيمياء محمول. يتم حساب eGFR وفقا للصيغة التالية: eGFR = 1.879 × BW1.092/ PCr0.6 (BW: وزن الجسم بالكيلوغرام؛ PCr: الكرياتينين البلازما في ملغم / ديسيلت)

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

AKI هو اضطراب سريري شائع يؤثر على ما يصل إلى 50٪ من المرضى البالغين في المستشفى في جميع أنحاء العالم6،12. وهناك حاجة إلى نموذج حيواني ذي صلة سريريا لمواصلة التحقيق في الفيزيولوجيا المرضية للمرض والأهداف العلاجية المحتملة. على الرغم من أن هناك العديد من نماذج مورين تكرار AKI، وهذه لا تحاكي تماما سيناريوهات السريرية الخاصة بهم وتشريح الكلى البشرية. تقترح هذه الدراسة نموذج الخنازير ذات الصلة سريريا للسماح للترجمة إلى البشر13.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ولا يعلن صاحبا البلاغ عن وجود مصالح مالية متنافسة.

شكر وتقدير

ونود أن نشكر الدكتور آرثر نيدر على مساعدته وتوجيهاته. وقد دعم هذا العمل جائزة ريتشارد أ. وسوزان ف. سميث للابتكار، ومايكل ب. كلاين والأسرة، ومؤسسة سيدمان العائلية، ومؤسسة مايكل ب. روكين الخيرية، وصندوق كينيث غريفين للبحوث الخيرية، ومجلس الاستثمار في بوسطن.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
0.9٪ حقن كلوريد الصوديوم ، USP ، حاوية بلاستيكية 100 مل viaflexBaxter2B1302لترطيب الحيوان
تباين العامل 100.0 مل وسائط الحقن btl ioversal 74٪CARDINAL HEALTH133311لتصور الأوعية
Bard Bardia حقيبة تصريف البول ذات النظام المغلقBARD Inc802001لجمع البول
BD Vacutainer K2 EDTABD BD367841لتخزين عينات الدم
BD Vacutainer ليثيوم الهيبارينBD366667لتخزين عينات
الدم BetadineHenry Schein6906950لتطهير الجلد
ضام BookwalkerCodmanلتراجع الجلد
Bupivacaine 0.25٪Hospiraتدار في موقع الشق للتسكين
بوبرينورفين SRZoo Pharmزجاجة 10 مجم / مل ، الجرعة: 0.2 مجم / كجم SC
القسطرة الوعي 5.0 Fr x100.0 سم 0.038 في JR4MERIT MEDICAL SYSTEM INC7523-21لتحديد الشرايين الكلوية أنبوب
القصبة الهوائية المقيدEmdamedلإنشاء مجرى هوائي آمن طوال مدة العملية
EKG Medtronics- Physiocontrol LifePak 20 جهاز مراقبة تشبع الأكسجينGE Healthcare Madison WIلمراقبة تشبع الأكسجين
Encore 26 منفاخبوسطن العلمي710113لتضخيم قسطرة البالون
الإيثانول 95٪ (كحول إيثيلي)هنري شاينلتطهير الجلد
رقعة الفنتانيلمايلانالجرعة: 25-50 ميكروغرام / ساعة ، TD
الذهب المغلفة بالسيليكونفولي TELEFLEX MEDICAL INCللبول مجموعة
هيبارين الصوديومLEO Pharma A / Sالجرعة: 200 وحدة دولية / كجم
IV i33 آلة الموجات فوق الصوتيةفيليبساستخدم إرشادات الموجات فوق الصوتية لكسطرة الفخذ إذا لزم الأمر
سلك دليل التشخيص Inqwire - 0.035 بوصة (0.89 مم) - 260 سم (102 بوصة) - 1.5 مم J-tipMERIT MEDICAL SYSTEM INC6609-33لتوجيه قسطرة البالون إلى الشرايين
الكلويةقسطرة وريدية ، مقاس 20مقياس سانتا كروز للتكنولوجيا الحيويةSC-360097لإدارة السوائل
IsofluranePatterson Veterinary Supply، Inc.جرعة 21283620: 3٪ ، INH
Metzenbaum حادة منحنية 14.5 سم - 5 (3/4) "رودولف ميديكالRU-1311-14Mلتشريح الأنسجة وقطعها
مجموعة محول الطاقة القابل للتصرف لحديثي الولادة مع جهاز تدفق 30 مل / ساعة ومحبس مزدوج رباعي الاتجاهات للمراقبة المستمرةArgon Medical041588505Aلقياس الضغط
قسطرة التوسع Powerflex pro PTA 6 × 20 مم - طول العمود (135 سم)CARDINAL HEALTH4400602Xلانسداد الشرايين الكلوية
خطوط مراقبة الضغط mll / mll - 12 بوصة واضحة ، mll / mllSmiths MedicalB1571 / MX571لقياس الضغط
حزمة الإجراءMolnlycke HealthCare 97027809الستارة الجراحية ، وسادات الشاش ، والمحاقن ، والدورق ، إلخ
البروتامينهنري شاين1044148لعكس الهيبارين
شفرة مشرط - مقاس # 10صحة الكاردينال (الولاء)32295-010لشقوق الجلد
محبس الرابع 4 اتجاهات lrg تجويف rotg ذكر ll adptr strlPeoplesoft1550لتوصيل الأنابيب
ضام جانبي مستقيمCodmanلسحب الجلد
خياطة perma hnd 18in 2-0 جديلة الحرير blkCARDINAL HEALTH 1A185Hلخياطة موقع الشق وتأمينها القسطرة
حقنة حقنة التباين 10 مل ثابت ذكر لور أحمرMERIT MEDICAL SYSTEM INCMSS111-Rلإدارة عامل التباين
حقنة طبية 60 مل ll plst strl ltx disp freeCARDINAL HEALTH 1BF309653لجمع البول وتنظيف الأوعية
Tilzolan (تيلتامين / زولازيبام) شركةباترسون للإمدادات البيطرية، إنك.07-893-1467الجرعة: 4-6 مجم / كجم ، IM
XylazinePutney ، INCالجرعة: 1.1-2.2 مجم / كجم ، IM
الدموية 180730160 الدموية

المراجع

  1. Ali Pour, P., Kenney, M. C., Kheradvar, A. Bioenergetics consequences of mitochondrial transplantation in cardiomyocytes. Journal of the American Heart Association. 9 (7), 014501(2020).
  2. Giraud, S., Favreau, F., Chatauret, N., Thuillier, R., Maiga, S., Hauet, T. Contribution of large pig for renal ischemia-reperfusion and transplantation studies: The Preclinical Model. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 14(2011).
  3. Amdisen, C., et al. Testing Danegaptide effects on kidney function after ischemia/reperfusion injury in a new porcine two week model. PLoS ONE. 11 (10), 1-13 (2016).
  4. Bhargava, P., Schnellmann, R. G. Mitochondrial energetics in the kidney. Nature Reviews Nephrology. 13 (10), 629-646 (2017).
  5. Bonventre, J. V., Weinberg, J. M. Recent advances in the pathophysiology of ischemic acute renal failure. Journal of the American Society of Nephrology. 14 (8), 2199-2210 (2003).
  6. Case, J., Khan, S., Khalid, R., Khan, A. Epidemiology of Acute Kidney Injury in the Intensive Care Unit. Critical Care Research and Practice. 2013, 9(2013).
  7. Jabbari, H., et al. Mitochondrial transplantation ameliorates ischemia/reperfusion-induced kidney injury in rat. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Molecular Basis of Disease. 1866 (8), 165809(2020).
  8. Malagrino, P. A., et al. Catheter-based induction of renal ischemia/reperfusion in swine: Description of an experimental model. Physiological Reports. 2 (9), 1-13 (2014).
  9. Freeman, R. V., et al. Nephropathy requiring dialysis after percutaneous coronary intervention and the critical role of an adjusted contrast dose. American Journal of Cardiology. 90 (10), 1068-1073 (2002).
  10. Gasthuys, E., et al. Postnatal maturation of the glomerular filtration rate in conventional growing piglets as potential juvenile animal model for preclinical pharmaceutical research. Frontiers in Pharmacology. 8 (431), 1-7 (2017).
  11. Doulamis, I. P., et al. Mitochondrial transplantation by intra-arterial injection for acute kidney injury. American Journal of Physiology - Renal Physiology. 319 (3), 403-413 (2020).
  12. Rewa, O., Bagshaw, S. M. Acute kidney injury-epidemiology, outcomes and economics. Nature Reviews Nephrology. 10 (4), 193-207 (2014).
  13. Grossini, E., et al. Levosimendan Protection against Kidney Ischemia/Reperfusion Injuries in Anesthetized Pigs. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics. 342 (2), 376-388 (2012).
  14. Laskey, W. K., et al. Volume-to-creatinine clearance ratio. A pharmacokinetically based risk factor for prediction of early creatinine increase after percutaneous coronary intervention. Journal of the American College of Cardiology. 50 (7), 584-590 (2007).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

نقص تروية الكلىإصابة نقص التروية وإعادة الترويةنموذج الخنازيرانسداد القسطرة البالونيةتقييم وظائف الكلىاستئصال الكليتين الثنائيالنخر الأنبوبي الحاد