يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

النهج الجراحي والتحديات والقرارات لزراعة الرحم في الفئران

2.2K مشاهدات

DOI:

10.3791/64757

أبريل 14, 2023

في هذه المقالة

ملخص

يصف هذا البروتوكول جميع الخطوات الأساسية لنجاح زرع الرحم (UTx) في الفئران. أثبت نموذج الفئران أنه مناسب لتعزيز التنفيذ السريري ل UTx. ومع ذلك ، فإن الفئران UTx هو إجراء معقد للغاية يتطلب تعليمات دقيقة.

الملخص

زرع الرحم (UTx) هو نهج جديد لعلاج النساء المصابات بالعقم الرحمي المطلق (AUFI). تشير التقديرات إلى أن 3٪ -5٪ من النساء يعانين من AUFI. حرمت هؤلاء النساء من خيار إنجاب الأطفال حتى ظهور UTx. كان التطبيق السريري ل UTx مدفوعا بالدراسات التجريبية على الحيوانات ، وتم تحقيق أول UTx ناجح في الفئران. نظرا لخصائصها الفسيولوجية والمناعية والجينية والإنجابية ، تعد الفئران نظاما نموذجيا مناسبا لعمليات الزرع هذه. على وجه الخصوص ، تعد فترة الحمل القصيرة ميزة واضحة ، حيث أن نقطة النهاية المعتادة ل UTx التجريبية هي الحمل الناجح مع الولادة الحية. يبقى التحدي الأكبر لنماذج الفئران هو التشريح الصغير ، الذي يتطلب مهارات وخبرات جراحية مجهرية متقدمة. على الرغم من أن UTx قد أدى إلى الحمل في العيادة ، إلا أن الإجراء لم يتم تأسيسه ويتطلب تحسينا تجريبيا مستمرا. هنا ، يتم تقديم بروتوكول مفصل ، بما في ذلك استكشاف الأخطاء وإصلاحها الأساسية ل rat UTx ، والتي من المتوقع أن تجعل الإجراء بأكمله أسهل في الفهم لأولئك الذين ليس لديهم خبرة في هذا النوع من الجراحة المجهرية.

المقدمة

زرع الرحم (UTx) هو علاج جديد لعقم عامل الرحم المطلق (AUFI). ينتج AUFI عن غياب (خلقي أو مكتسب) أو تشوه في الرحم ويؤثر على 3٪ -5٪ من النساء في جميع أنحاء العالم1. أسباب أخلاقية أو قانونية أو دينية تستبعد التبني أو تأجير الأرحام للعديد من النساء اللواتي لديهن رغبة في الأمومة ولكنهن يعانين من AUFI2. بالنسبة لهؤلاء النساء ، يظل UTx الخيار الوحيد لبدء أسرهن. تم تطبيق UTx في العيادة ، وإن كان ذلك بنجاح متفاوت. الإجراء صعب تقنيا ويتطلب تحسينا مطردا لإنشائه السريري.

في عام 2014 ، تم إجراء أول عملية زرع للرحم من متبرع حي (LD) - مما أدى إلى نجاح الحمل - من قبل المجموعة السويدية الرائدة Brännström3. تم الإبلاغ عن أول ولادة بعد UTx من متبرع متوفى (DD) في عام 2016 في البرازيل4. بحلول عام 2021 ، تم إجراء أكثر من 80 UTxs في جميع أنحاء العالم ، ولكن بمعدل نجاح يبلغ حوالي 50٪ ومع الطعوم القادمة من LD للغالبية1.

على الرغم من أنه ليس منقذا للحياة ، إلا أن UTx هو إجراء شائع بشكل متزايد لتلبية رغبات ذريتهم. على هذا النحو ، يتزايد الطلب على الطعوم ، مما يضع التبرع ب DD في التركيز المستقبلي. ومع ذلك ، فإن التبرع ب DD معقد بسبب التعرض لنقص تروية البرد لفترة أطول بكثير (وفي حالة الموت القلبي ، دافئ أيضا) ، مما يزيد من مخاطر اختلال الكسب غير المشروع والرفض 5,6. تظل التقنية الجراحية ، ومطابقة التوافق المطلوبة ، وكبت المناعة المرتبط بها من القضايا الحرجة فيما يتعلق بنتائج UTx7.

لإدارة المخاطر المذكورة أعلاه في العيادة ، هناك حاجة إلى نماذج حيوانية مناسبة لاستكشاف نقص التروية وكبت المناعة. تظل نقطة النهاية الأكثر صلة سريريا بالنماذج الحيوانية هي الولادة الناجحة. حتى الآن ، تم تحقيق حالات الحمل بعد UTx التجريبي في الفئران والجرذان والأغنام والأرانب cynomolgus8. في حين أن الحيوانات الكبيرة مقدرة مسبقا لاكتساب التقنيات الجراحية وتحسينها ، فإن القوارض تأتي مع ميزة واضحة تتمثل في فترات الحمل القصيرة. لذلك ، فإن نماذج القوارض متفوقة فيما يتعلق بالاعتبارات العملية والمالية والأخلاقية9. ومع ذلك ، فإن التحدي الرئيسي ل UTx في الفئران هو التشريح الصغير ، مع الجراحة الصعبة للغاية المرتبطة بانخفاض قابلية استنساخ الفئران UTx10. على النقيض من ذلك ، يمكن الوصول إلى الفئران جراحيا وتحتفظ بمزايا أوقات الحمل القصيرة. على هذا النحو ، أصبح الجرذ النموذج المفضل ل UTx9. قدم Wranning et al. نموذج الفئران من UTx orthotopic في عام 2008 ، وباستخدام هذا النموذج ، تم الإبلاغ عن أول ولادة حية بعد UTx والتزاوج الطبيعي11،12،13. كان للدراسات اللاحقة مساهمات حاسمة في تنفيذ UTx في البشر9.

ومع ذلك ، لا يزال UTx يمثل تحديا في الفئران ، ولم يتقن سوى عدد قليل من المجموعات حتى الآن هذه التقنية الجراحية. تتمثل إحدى العقبات ذات الصلة أمام انتشار UTx للفئران بين الباحثين في عدم وجود وصف دقيق لخطوات الجراحة المجهرية الفردية ، والمزالق ، والتدابير وفقا لاستكشاف الأخطاء وإصلاحها14. يهدف هذا البروتوكول إلى توفير دليل مفصل لهذا الإجراء الجراحي المجهري المعقد للغاية لتسهيل تنفيذ هذا النموذج الحيواني في الأبحاث المستقبلية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تم إجراء جميع التجارب على الحيوانات وفقا للوائح الحيوانات الفيدرالية السويسرية ووافق عليها المكتب البيطري في زيورخ (رقم 225/2019) ، مما يضمن رعاية الإنسان. تم استخدام إناث فئران لويس العذراء (وزن الجسم 170-200 جم) وإناث الفئران العذراء براون النرويج (170-200 جم) كمتبرعين / متلقين للرحم ، بينما تم استخدام ذكور فئران لويس (300-320 جم) للتزاوج. كانت الفئران تتراوح أعمارهم بين 12-15 شهرا. تم الحصول على الحيوانات من مصادر تجارية (انظر جدول المواد) وتم إيواؤها في ظروف خاضعة للرقابة وبيئة غنية مع حرية الوصول إلى المياه والغذاء القياسي.

1. استرجاع الرحم

ملاحظة: للحصول على تفاصيل حول الإجراء ، يرجى الاطلاع على التقارير المنشورة مسبقا12،13،15.

  1. قم بالتخدير باستخدام الأيزوفلوران والأكسجين داخل حاوية زجاجية مغلقة (14 سم × 25 سم × 13 سم) لمدة 1-2 دقيقة (5٪ إيزوفلوران في O2).
    1. تطبيق البوبرينورفين تحت الجلد (0.05 ملغ/كغ) وبوبيفاكايين (0.5٪، 8 ملغ/كغ) تحت الجلد في منطقة شق البطن المخطط له قبل 30 دقيقة من الجراحة.
    2. حلق كل جلد البطن من الفئران مع ماكينة حلاقة كهربائية.
    3. استخدم الأشرطة للحفاظ على الحيوان مثبتا على صفيحة تسخين أثناء الجراحة. ضع مرهم العين على كلتا العينين.
    4. الحفاظ على التخدير أثناء العملية مع 2-4 فول٪ إيزوفلوران في الأكسجين عن طريق الإدارة المستمرة من خلال مخروط الأنف الصغير.
    5. مراقبة عمق التخدير من خلال المعلمات السريرية دون أدوات متخصصة (معدل التنفس ~ 70-120 / دقيقة - انخفاض معدل بطيء بنسبة 50 ٪ مقبول أثناء التخدير ؛ التحقق من عمق التخدير مع قرصة إصبع القدم ؛ يجب أن يكون لون الأغشية المخاطية وردي ، وليس أزرق أو رمادي) 16 ، وضبط تركيز الأيزوفلوران وفقا لذلك.
      ملاحظة: اختياري: مراقبة التنفس المتكررة أثناء الجراحة ممكنة بمساعدة مساعد.
    6. تأكيد عمق التخدير عن طريق إجراء قرصة إصبع القدم.
    7. نظف جلد البطن بحركة دائرية بثلاث مسحات متناوبة من محلول مطهر وكحول 70٪. السماح ليجف.
    8. ضع ستارة معقمة (انظر جدول المواد) مع نافذة بطنية فوق الحيوان.
  2. أداء بضع البطن المتوسط.
    1. افتح البطن عن طريق شق بطول خط الوسط 6-8 سم ، بدءا من 0.5 سم أسفل xiphisternum باتجاه hypogastrium. استخدم مشرطا رقم 10 لشق الجلد ومقصا حادا صغيرا لشق خط ألبا. لا تضر الكبد أو المثانة.
    2. حرك الأمعاء خارج تجويف البطن باستخدام مسحات قطنية ، وقم بتغطيتها برفق بشاش مبلل بمحلول ملحي معقم ، وقم بحمايتها بكيس بلاستيكي معقم لعزل أفضل.
    3. أدخل مبعدات أو مشابك (انظر جدول المواد) في مجلدات جدار البطن الأيسر والأيمن للحفاظ على العضلة البريتونية جانبا والبطن مفتوحا ، للحصول على الوصول الأمثل ورؤية الرحم والأوعية المرتبطة به. إصلاح المشابك / المبعدات مع الأشرطة.
    4. ضع محلول ملحي مسخن مسبقا للحفاظ على رطوبة المنطقة الجراحية والأمعاء وتجنب جفاف الأحشاء.
  3. حصاد قرن الرحم الأيمن مع تجويف الرحم المشترك وعنق الرحم بالإضافة إلى عنيق الأوعية الدموية ، بما في ذلك الرحم الأيمن والأوعية الداخلية والحرقفية الشائعة.
    1. Ligate (4/0 polyglactin ؛ انظر جدول المواد) ، والكي ، وقطع قرن الرحم الأيسر المجاور للتفرع من تجويف الرحم المشترك.
    2. إزالة الدهون الزائدة المحيطة بالرحم والمهبل.
      ملاحظة: الحفاظ على الدهون حول نظام الرحم والأوعية الدموية.
    3. تشريح المثانة عند تعلقها بعنق الرحم مع الكي لجميع أوعية المثانة التصريف والتغذية. أثناء الكي ، حافظ على مسافة كافية بين عنق الرحم والمهبل لتجنب الكي غير الضروري على هذين الهيكلين. خلاف ذلك ، يزيد خطر نخر الكسب غير المشروع.
      ملاحظة: يجب أن تؤثر معظم عمليات التلاعب الجراحي على المثانة. اسحب المثانة أو اسحبها ذيليا بمشبك وعائي (انظر جدول المواد) للحصول على رؤية أفضل للحفر المذلي.
    4. كي وقطع الأوعية الرحمية الهابطة على مستوى الحالب بعيدا عن عنق الرحم قدر الإمكان.
      ملاحظة: الحفاظ على دوران الأوعية الدقيقة حول المهبل وعنق الرحم قدر الإمكان أثناء الانقسام.
    5. افصل الجزء العنقي / المهبلي من الكسب غير المشروع المستقبلي عن مرفق المستقيم والأربطة المجاورة للمهبل وعنق الرحم.
      ملاحظة: تجنب أي كي على مهبل الكسب غير المشروع.
    6. تشريح المهبل بعناية عن طريق الإنفاذ الحراري حول 2-3 مم الذيلية من عنق الرحم.
      ملاحظة: لا توجد زغابات (عنق الرحم) مرئية داخل تجويف المهبل.
    7. حدد موقع كل من الشريان الرحمي والوريد في أصولهما. Ligate (8/0 مادة البولي أميد ؛ انظر جدول المواد) ، والكي ، وقطع الأوعية الألوية وجميع الأوعية الذيلية للأوعية الرحمية.
      ملاحظة: عادة ما يكون الربط المباشر للوريد الحرقفي الذنبي المشترك بالوريد الرحمي ممكنا.
    8. عن طريق التشريح الحاد ، حرر الأوعية الحرقفية الشائعة من بعضها البعض ، من تشعب الشريان الأورطي والوريد الأجوف وصولا إلى تقسيم الأوعية الرحمية.
      ملاحظة: يمكن للمرء الحصول على وصول جراحي أفضل إلى المنطقة عن طريق إزالة واحدة أو اثنتين من العقد الليمفاوية المجاورة.
    9. استئصال قرن الرحم الأيمن 3 مم من قناة فالوب ، بعد كي عنيق الرحم والمبيض على نفس المستوى. وهذا يتيح مفاغرة قرن الرحم الكسب غير المشروع إلى الجزء العلوي من قرن الرحم المتلقي.
    10. ضع الحروف المركبة (8/0 بولي أميد) مباشرة حول الشريان الحرقفي المشترك الأيمن والوريد ، بالقرب من تشعبات الأبهر والأجوف. قم بعمل شق صغير (0.5-1 مم) في الشريان الحرقفي المشترك الأيمن المجاور للتشعب ، وأدخل إبرة 30 جم منحنية أو إبرة مستقيمة 25 جم في التجويف (للتنظيف). تأمينه مع الرباط (6/0 مادة البولي أميد).
      ملاحظة: هناك خيار آخر وهو تأمين إضافي بمشبك البلدغ لتجنب إزاحة الإبرة و / أو الوعاء.
    11. تشريح الوريد الحرقفي المشترك الذيلي للرباط في الوريد الحرقفي المشترك الأيمن لتمكين التدفق أثناء التنظيف.
  4. اغسل الكسب غير المشروع باتباع الخطوات أدناه.
    1. اغسل الرحم يدويا باستخدام محاقن سعة 3 مل مع حوالي 9 مل من محلول رينغر البارد (RHX: رينغر مكمل ب 50 وحدة دولية / مل من الهيبارين و 0.4 مجم / مل زيلازين) بمعدل تدفق 6 مل / دقيقة. اغسل مرة أخرى ب 6 مل من محلول حفظ الأعضاء المكمل بالهيبارين (50 وحدة دولية / مل) والزيلازين (0.4 مجم / مل) (انظر جدول المواد).
      ملاحظة: تجنب ارتفاع ضغط التنظيف وتأكد من وضع الإبرة بشكل صحيح.
    2. قم بإزالة عملية الزرع عندما يصبح لون أنسجة الرحم شاحبة. قطع الشريان الحرقفي المشترك ذيليا من الرباط عند تشعب الشريان الأورطي البطني.
  5. ضع عملية الزرع في محلول حفظ الأعضاء المبرد (4 درجات مئوية) لإعداد الطاولة الخلفية وتخزينها قبل الزرع.
  6. بعد إزالة الكسب غير المشروع ، قم بالقتل الرحيم للحيوان عن طريق تحويل إعداد isoflurane أولا إلى الحد الأقصى ثم تحفيز استرواح الصدر الثنائي متبوعا بالاستنزاف17.

2. زرع الرحم الاصطناعي

ملاحظة: للحصول على تفاصيل حول الإجراء ، يرجى الاطلاع على التقارير المنشورة مسبقا12،13،15.

  1. حث التخدير وإعداد الحيوان كما هو مذكور في الخطوة 1.1.
    1. تطبيق تسكين فعال (كما هو موضح في الخطوة 1.1.1) و200 وحدة دولية/كغ من الهيبارين عالي الوزن الجزيئي قبل 30 دقيقة من الجراحة.
  2. أداء بضع البطن المتوسط.
    1. افتح البطن عن طريق شق خط الوسط بطول 6-8 سم يبدأ من 0.5 سم تحت xiphisternum باتجاه hypogastrium. استخدم مشرطا رقم 10 لشق الجلد ومقصا حادا صغيرا لشق خط ألبا. لا تضر الكبد والمثانة.
    2. انقل الأمعاء الدقيقة خارج تجويف البطن باستخدام مسحات قطنية ، ولفها بشاش مبلل معقم ، وقم بتغطيتها بكيس بلاستيكي معقم لعزل أفضل.
    3. أدخل مبعدات أو مشابك في مجلدات جدار البطن الأيسر والأيمن لإبقاء العضلات البريتونية جانبا والبطن مفتوحا ، للحصول على الوصول الأمثل ورؤية الرحم والأوعية المرتبطة به. إصلاح المشابك / المبعدات مع الأشرطة.
    4. ضع محلول ملحي مسخن مسبقا للحفاظ على رطوبة المنطقة الجراحية والأمعاء وتجنب جفاف الأحشاء.
  3. إجراء استئصال الرحم مع تشريح وتعبئة الثلث العلوي من المهبل من المستقيم والمثانة.
    1. كي الأوعية الدموية الدقيقة حول الرحم وعنق الرحم والمهبل. قطع وفصل الرحم عن الهياكل المحيطة القريبة من العضو لحماية دوران الأوعية الدقيقة في الرحم شريرة.
    2. إزالة الأنسجة الدهنية من المناطق المحيطة.
    3. بتر القرن الأيسر عن طريق الكي. على الجانب الأيمن ، الحفاظ على جزء 7-8 ملم من الجزء العلوي من الرحم لمفاغرة في وقت لاحق إلى الكسب غير المشروع الرحم.
  4. إجراء زرع الرحم.
    1. تعبئة وفصل الأوعية الحرقفية المشتركة اليمنى ، من أصل الأوعية الرحمية حتى تشعب الأبهر / الأجوف.
    2. ضع الكسب غير المشروع في تجويف البطن. لف الكسب غير المشروع في شاش غارق في محلول الحفاظ على الأعضاء الباردة.
      ملاحظة: يجب أن يبقى الكسب غير المشروع باردا أثناء مفاغرة.
    3. ضع مشابك الأوعية الدموية غير الرضحية على الوريد الحرقفي المشترك الأيمن على كل جانب ، مع تأطير موقع المفاغرة في المستقبل.
      ملاحظة: خفض التخدير إلى 1-1.5 فول٪ إيزوفلوران للتكيف مع الانخفاض المفاجئ في التحميل المسبق للقلب وانخفاض ضغط الدم الناتج.
    4. قطع شق أكبر قليلا من فتحة الوريد الكسب غير المشروع في الوريد الحرقفي المشترك.
    5. ضع الوريد الكسب غير المشروع.
    6. ضع خيطا واحدا (10/0 بولي أميد ؛ انظر جدول المواد) في كل ركن من أركان الشق الموجود على الوريد الحرقفي المشترك الأيمن.
      ملاحظة: حافظ على عقدة الخياطة في الزاوية الذيلية مفكوكة لضبط أفضل ولمنع تأثيرات سلسلة المحفظة.
    7. اغسل منطقة المفاغرة بانتظام باستخدام RHX المبرد أثناء الإجراء لمنع تجلط الدم.
    8. مفاغرة جانب واحد من الوريد الكسب غير المشروع إلى الوريد المتلقي مع ستة إلى ثمانية حلقات من خياطة مستمرة (الشكل 1).
      ملاحظة: ابدأ بخياطة البقاء في الجمجمة (10/0 بولي أميد) وقم أولا بمفاغرة الجزء الداخلي من الأوعية.
    9. مفاغرة الجانب الآخر من السفينة بنفس الطريقة ، هذه المرة تبدأ من الخارج.
    10. اربط عقدة عند خياطة البقاء في الجمجمة ، ثم عقدة عند خياطة البقاء الذيلية (10/0 بولي أميد) ، بعد الانتهاء من المفاغرة على كلا الجانبين.
      ملاحظة: شد الغرز المستمرة فقط بقدر ما هو ضروري لمنع تأثيرات سلسلة المحفظة.
    11. ضع المشابك الوعائية الرضحية على الشريان الحرقفي المشترك الأيمن في كل جانب ، مما يؤطر موقع المفاغرة في المستقبل.
    12. إجراء مفاغرة الشرايين (الشريان الحرقفي المشترك الأيمن [RCIA] عبر 8-10 حلقات باستخدام الغرز المتقطعة (10/0 بولي أميد).
      ملاحظة: من السهل التحكم في الغرز المتقطعة مقارنة بالخيوط المستمرة (اختياري باستخدام تقنية "فم السمكة")18. يساعد التنظيف المستمر لمنطقة المفاغرة مع RHX المبرد أثناء العملية على منع تجلط الدم. عند استخدام الغرز المستمرة ، قم بإجراء هذه الخطوة المشابهة للمفاغرة الوريدية.
  5. إجراء نضح الكسب غير المشروع.
    1. عندما يظهر كلا موقعي المفاغرة بشكل واضح ويتم إيقاف أي نزيف ، حرر المشابك الوعائية على أوعية الكسب غير المشروع (الشكل 2).
    2. افحص الطعم بحثا عن علامات إعادة التروية ، مثل الاحمرار أو ملء الوريد أو النبض في شريان الكسب غير المشروع.
    3. قم بتوصيل الكفة المهبلية لعملية الزرع بالقبو المهبلي للمتلقي باستخدام ستة إلى سبعة خيوط متقطعة داخل اللمعة (6/0 polyglactin).
      ملاحظة: ابدأ بخياطة واحدة في موضع الساعة 12 أولا ، وضع الخيوط التالية في مواضع الساعة 10 و 1. يجب ربط الغرز في مواضع الساعة 9 و 3 بعد الغرز في الصف الأمامي19,20.
    4. مفاغرة قرن الرحم الكسب غير المشروع من طرف إلى طرف إلى الجزء الرحمي القحفي المتبقي من الرحم المتلقي باستخدام خمسة إلى سبعة خيوط متقطعة (7/0 بولي أميد).
      ملاحظة: لا تقم بخياطة التجويف.
  6. أغلق البطن بخياطة مستمرة. استخدم 4/0 بولي جلاكتين لخياطة طبقة العضلات ، و 6/0 بولي أميد أو مشابك جرح جراحية للجلد.
  7. دع الحيوان يتعافى في قفص دافئ بمجرد اكتمال عملية الزرع. البقاء مع الحيوان حتى يستعيد القدرة على الاستلقاء القصي ، والحفاظ على السكن الفردي حتى الشفاء التام. يجب توفير علاج التسكين البسودوبيرتايفي عن طريق إعطاء البوبرينورفين تحت الجلد (0.05 ملغ/كغ) ومضادات الالتهاب غير الستيروئيدية المناسبة، ولكن ليس قبل 4-8 ساعات من الجرعة الأولى من التخدير. توفير مستمر مع البوبرينورفين عن طريق مياه الشرب (1 ملغ / كغ ، عن طريق الفم ، 5 مل من البوبرينورفين في 160 مل من مياه الشرب (0.3 ملغ / مل)) لمدة ثلاثة أيام بعد الجراحة.
  8. تتم إزالة خياطة الجلد بعد 10-14 يوما من الضمان.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

يتم عرض نتائج من مجموعتين من الفئران. تم تنفيذ UTx قبل (المجموعة 1 ، n = 8) وبعد (المجموعة 2 ، n = 8) تعديل البروتوكول (الجدول 1) لتوضيح آثار تعديلاتنا (يرجى الاطلاع على المناقشة للحصول على شرح لتعديلاتنا)12،15،21.

ترتبط نتيجة الفئران UTx بثلاث مراحل رئيسية. المرحلة الأولى هي الانتعاش الناجح من UTx. عادة ، يجب على المستلمين التعافي خلال أول 2 أيام بعد الجراحة. تتعلق ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

يقدم البروتوكول المقدم هنا تعليمات مفصلة للنهج الجراحي وراء زرع الرحم في الفئران. تم تحسين البروتوكول لزيادة احتمالات الولادات الحية بعد UTx والتزاوج اللاحق. تم أخذ البروتوكول الأصلي من مجموعة Brännström 12،13 ، مستوحى من عمل الماوس ل Akouri et al.10 ، وتم تعديله بناء على تجارب المؤلفين على مدار السنوات الماضية. على هذا النحو ، كانت التعديلات مدفوعة بمنحنيات التعلم الحقيقية التي تعكس التطور من عمليات الزرع الفاشلة إلى النتائج القابلة للتكر...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يعلن أصحاب البلاغ أنه ليس لديهم مصالح متنافسة.

شكر وتقدير

تم دعم هذه الدراسة من قبل المؤسسة الوطنية السويسرية للعلوم (منحة المشروع رقم 310030_192736). نود أن نشكر الدكتورة فراوك سيهوسن من معهد علم الأمراض البيطرية بجامعة زيورخ على دعمها النسيجي المرضي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
مقص بزاوية إلى الجانب 5 ممFST15008-08
مشبك ورق كبيرلا يستخدممحددا كضام
إبرة بانحناء حادة G30Unimed SA
بوبيفاكين 0.5٪سينتيتيكا
بوبرينورفين 0.3 مجم / ملتيمجيسيك
دوسيرنادل G25H.SIGRIST & الشريك AG
Dumont #5SF ملقطFST11252-00
Ethilon 10/0Ethicon2810G
Ethilon 6/0Ethicon667H
Ethilon 7/0EthiconEH7446H
Ethilon 8/0Ethicon2808G
Femal Brown Norway Rats (150-170 g)Janvier
فطائر لويس الفخذ (150-170 جم)تشارلز ريفر دويتشلاند
فاين - شاربFST14060-09أي مقص صغير آخر يعمل أيضا
إبرة هالسي مايكروFST12500-12أي حاجز صغير آخر يعمل أيضا
Heparin Natrium 25000 IE / 5 ملB. Braun
Institute Georges Lopez Perfusion Solution ( IGL)معهد جورج لوبيزلحل الحفاظ على الأعضاء   
ذكور لويس جرذان (300-320 جم)تشارلز ريفر دويتشلاند
مايكرو سيريفين 13 ممFST18055-04   
Micro Serrefines 16 مم gebogenFST18055-06
قضيب مشبك Micro-Serrefine مع قفل   ؛  ف.س.ت18056-14   
م & أومل; lnlyncke منشفة OpM & ouml; lnlyncke800300معقمة
كلوريد الصوديوم 0.9٪B.Braun
OcteniseptSch ü lke
ورقة الشريطTesaلإصلاح
Philips Avent Schneller Flaschenw & auml; rmer SCF358 / 02Philips12824216
RingerfundinB.Braun
Rompun 2٪بايرزيلازين
حاملات إبرة ذات مقبض دائريFST12075-12
حاملات إبرة ذات مقبض دائريFST12075-12
S & ملقط توسيع الوعاء T - بزاوية 45 درجة ؛FST00276-13
Sacryl NahtKRUUSE152575
Scapel No 10Swann Morton201
حاوية هيستوتعمل بشكل جيد للتخزين البارد للكسب غير
أكياسأي أكياس بلاستيكية شفافة ناعمة
مسحة قطنية معقمةLohmann-Rauscherأي قطعة قطن معقمة ناعمة
شاش معقمLohmann-Rauscherأي شاش معقم جيد
مقص مستقيم 8 ممFST15024-10
مجهر جراحي & ndash ؛ SZX9أوليمبوسأولي-SZX9-B
مزرع غير لاصق GLISS 0.4 ممSutter78 01 69 SLS
خياطة ربط ملقط  FST00272-13
حصيرة الاحترار ThermoLuxThermoLux
للجلدأي ملقط نسيجي ناعم
ملقط السفينةFST00125-11
Vicryl  بالإضافة إلى 4/0EthiconVCP292H
مقص حامل ستارة صغيرة المشروع بلاستيكية صغيرة ملقط الأنسجة

المراجع

  1. Richards, E. G., et al. Uterus transplantation: state of the art in 2021. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 38 (9), 2251-2259 (2021).
  2. Jones, B. P., et al. Options for acquiring motherhood in absolute uterine factor infertility; adoption, surrogacy and uterine transplantation. The Obstetrician & Gynaecologist. 23 (2), 138-147 (2021).
  3. Brannstrom, M., et al. The first clinical trial of uterus transplantation: surgical technique and outcome. American Journal of Transplantation. 14, 44(2014).
  4. Ejzenberg, D., et al. Livebirth after uterus transplantation from a deceased donor in a recipient with uterine infertility. Lancet. 392 (10165), 2697-2704 (2018).
  5. Lavoue, V., et al. Which donor for uterus transplants: brain-dead donor or living donor? A systematic review. Transplantation. 101 (2), 267-273 (2017).
  6. O'Donovan, L., Williams, N. J., Wilkinson, S. Ethical and policy issues raised by uterus transplants. British Medical Bulletin. 131 (1), 19-28 (2019).
  7. Kisu, I., et al. Long-term outcome and rejection after allogeneic uterus transplantation in cynomolgus macaques. Journal of Clinical Medicine. 8 (10), 1572(2019).
  8. Ozkan, O., et al. Uterus transplantation: From animal models through the first heart beating pregnancy to the first human live birth. Womens Health. 12 (4), 442-449 (2016).
  9. Favre-Inhofer, A., et al. Involving animal models in uterine transplantation. Frontiers in Surgery. 9, 830826(2022).
  10. El-Akouri, R. R., Wranning, C. A., Molne, J., Kurlberg, G., Brannstrom, M. Pregnancy in transplanted mouse uterus after long-term cold ischaemic preservation. Human Reproduction. 18 (10), 2024-2030 (2003).
  11. Sahin, S., Selcuk, S., Eroglu, M., Karateke, A. Uterus transplantation: Experimental animal models and recent experience in humans. Turkish Journal of Obstetrics and Gynecology. 12 (1), 38-42 (2015).
  12. Wranning, C. A., Akhi, S. N., Diaz-Garcia, C., Brannstrom, M. Pregnancy after syngeneic uterus transplantation and spontaneous mating in the rat. Human Reproduction. 26 (3), 553-558 (2011).
  13. Wranning, C. A., Akhi, S. N., Kurlberg, G., Brannstrom, M. Uterus transplantation in the rat: Model development, surgical learning and morphological evaluation of healing. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 87 (11), 1239-1247 (2008).
  14. Brannstrom, M., Wranning, C. A., Altchek, A. Experimental uterus transplantation. Human Reproduction Update. 16 (3), 329-345 (2010).
  15. Diaz-Garcia, C., Akhi, S. N., Wallin, A., Pellicer, A., Brannstrom, M. First report on fertility after allogeneic uterus transplantation. Acta Obstetricia et Gynecologica Scandinavica. 89 (11), 1491-1494 (2010).
  16. R, E., Brown, M. J., Karas, A. Z. Anesthesia and Analgesia in Laboratory Animals. 2nd edn. , Elsevier. (2008).
  17. Donovan, J., Brown, P. Euthanasia. Current Protocols. , Chapter 1, Unit 1 8(2006).
  18. Rutledge, C., Raper, D. M. S., Abla, A. A. How I do it: superficial temporal artery-middle cerebral artery bypass for flow augmentation and replacement. Acta Neurochirurgica. 162 (8), 1847-1851 (2020).
  19. Kuo, S. C. -H., et al. The multiple-U technique: a novel microvascular anastomosis technique that guarantees everted anastomosis sites with solid intima-to-intima contact. Plastic and Reconstructive Surgery. 149 (5), 981(2022).
  20. Magee, D. J., Manske, R. C. Pathology and Intervention in Musculoskeletal Rehabilitation. 2nd edn. , Elsevier. 25-62 (2016).
  21. Diaz-Garcia, C., Johannesson, L., Shao, R. J., Bilig, H., Brannstrom, M. Pregnancy after allogeneic uterus transplantation in the rat: perinatal outcome and growth trajectory. Fertility and Sterility. 102 (6), 1545-1552 (2014).
  22. Canovai, E., et al. IGL-1 as a preservation solution in intestinal transplantation: a multicenter experience. Transplant International. 33 (8), 963-965 (2020).
  23. Habran, M., De Beule, J., Jochmans, I. IGL-1 preservation solution in kidney and pancreas transplantation: A systematic review. PLoS One. 15 (4), 0231019(2020).
  24. Mosbah, I. B., et al. IGL-1 solution reduces endoplasmic reticulum stress and apoptosis in rat liver transplantation. Cell Death & Disease. 3 (3), 279(2012).
  25. Wiederkehr, J. C., et al. Use of IGL-1 preservation solution in liver transplantation. Transplantation Proceedings. 46 (6), 1809-1811 (2014).
  26. Tilney, N. L., Guttmann, R. D. Effects of initial ischemia/reperfusion injury on the transplanted kidney. Transplantation. 64 (7), 945-947 (1997).
  27. de Rougemont, O., Dutkowski, P., Clavien, P. A. Biological modulation of liver ischemia-reperfusion injury. Current Opinion in Organ Transplantation. 15 (2), 183-189 (2010).
  28. Jakubauskiene, L., et al. Relaxin and erythropoietin significantly reduce uterine tissue damage during experimental ischemia-reperfusion injury. International Journal of Molecular Sciences. 23 (13), 7120(2022).
  29. Wang, Y., Wu, Y., Peng, S. Resveratrol inhibits the inflammatory response and oxidative stress induced by uterine ischemia reperfusion injury by activating PI3K-AKT pathway. PLoS One. 17 (6), 0266961(2022).
  30. Kisu, I., et al. Risks for donors in uterus transplantation. Reproductive Sciences. 20 (12), 1406-1415 (2013).
  31. Jones, B. P., et al. Uterine transplantation in transgender women. BJOG: an International Journal of Obstetrics and Gynaecology. 126 (2), 152-156 (2019).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم