Method Article

بروتوكول محسن لتوليد خلايا إفراز الأنسولين البنكرياسية الوظيفية من الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات

DOI:

10.3791/65530

⸱

February 2nd, 2024

 ,  ,  ,  , 
1Department of Metabolism, Digestion and Reproduction, Faculty of Medicine, Cell Biology and Functional Genomics, 2Departments of Pediatrics, Naomi Berrie Diabetes Center, Obstetrics and Gynecology, Columbia Stem Cell Initiative, Columbia University Irving Medical Center, Columbia University, 3Department of Diabetes, Imperial College Healthcare NHS Trust, 4Faculté de Médicine, Université de Montréal, 5Lee Kong Chian Imperial Medical School, Nanyang Technological University

In This Article

Summary

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تقدم هذه المقالة بروتوكولا للتمايز الموجه والتحليل الوظيفي للخلايا الشبيهة بالخلايا β. نحن نصف ظروف وممرات الثقافة المثلى للخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات قبل توليد خلايا البنكرياس المنتجة للأنسولين. يتطور التمايز المكون من ست مراحل من تكوين الأديم الباطن النهائي إلى خلايا وظيفية تشبه الخلايا β تفرز الأنسولين استجابة للجلوكوز.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يمكن أن تتمايز الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات (hPSCs) إلى أي نوع من الخلايا ، مما يجعلها مصدرا بديلا ممتازا لخلايا β البنكرياس البشرية. يمكن أن تكون hPSCs إما خلايا جذعية جنينية (hESCs) مشتقة من الكيسة الأريمية أو خلايا مستحثة متعددة القدرات (hiPSCs) متولدة مباشرة من الخلايا الجسدية باستخدام عملية إعادة البرمجة. هنا يتم تقديم بروتوكول قائم على الفيديو لتحديد الثقافة المثلى وظروف المرور ل hPSCs ، قبل تمايزها وتوليدها لاحقا لخلايا البنكرياس المنتجة للأنسولين. تتبع هذه المنهجية العملية المكونة من ست مراحل للتمايز الموجه للخلايا β ، حيث تتمايز hPSCs إلى الأديم الباطن النهائي (DE) ، وأنبوب الأمعاء البدائي ، ومصير الأمعاء الأمامية الخلفية ، وأسلاف البنكرياس ، وأسلاف الغدد الصماء في البنكرياس ، وفي النهاية خلايا β البنكرياس. من الجدير بالذكر أن منهجية التمايز هذه تستغرق فترة 27 يوما لتوليد خلايا β البنكرياس البشرية. تم تقييم إمكانات إفراز الأنسولين من خلال تجربتين ، والتي تضمنت التلوين المناعي وإفراز الأنسولين المحفز بالجلوكوز.

Introduction

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تتمتع الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات (hPSCs) بقدرة فريدة على التمايز إلى أنواع مختلفة من الخلايا ، مما يجعلها بديلا قابلا للتطبيق لخلايا β البنكرياس البشرية1. يتم تصنيف هذه hPSCs إلى نوعين: الخلايا الجذعية الجنينية (hESCs) ، المشتقة من الكيسة الأريمية2 ، والخلايا المستحثة متعددة القدرات (hiPSCs) ، الناتجة عن إعادة برمجة الخلايا الجسدية مباشرة3. إن تطوير تقنيات للتمييز بين hPSCs إلى خلايا β ، له آثار مهمة على كل من البحث الأساسي والممارسة السريرية 1,4. داء السكري هو مرض مزمن يصيب > 400 مليون شخص في جميع أنحاء العالم وينتج عن عدم قدرة الجسم على تنظيم نسبة السكر في الدم بسبب خلل أو فقدان خلايا β البنكرياس5. أدى التوافر المحدود لخلايا جزيرة البنكرياس للزراعة إلى إعاقة تطوير علاجات استبدال الخلايا لمرض السكري2،4،6،7. تعمل القدرة على توليد خلايا إفراز الأنسولين المستجيبة للجلوكوز باستخدام hPSCs كنموذج خلوي مفيد لدراسة تطور الجزر البشرية ووظيفتها. يمكن استخدامه أيضا لاختبار المرشحين العلاجيين المحتملين لعلاج مرض السكري في بيئة خاضعة للرقابة. علاوة على ذلك ، فإن hPSCs لديها القدرة على إنتاج خلايا جزيرة البنكرياس المتطابقة وراثيا للمريض ، مما يقلل من خطر الرفض المناعي بعد الزرع2،4،7.

في السنوات الأخيرة ، كانت هناك تطورات كبيرة في تحسين ثقافة hPSC وبروتوكولات التمايز ، مما أدى إلى زيادة الكفاءة وقابلية استنساخ عملية التمايز نحو توليد خلايا β البنكرياس 8,9.

يوضح البروتوكول التالي المراحل الأساسية للتمايز الموجه لخلايا β البنكرياس. وهو ينطوي على تنظيم مسارات إشارات خلية محددة في نقاط زمنية متميزة. يعتمد على البروتوكول الذي طوره Sui L. et al.10 (2018) لتوليد hPSCs في خلايا β البنكرياس. تم تعديل البروتوكول وفقا للتحديثات الأخيرة من Sui L. et al.11 (2021) ، حيث تؤكد أحدث الأبحاث على أهمية استخدام علاج aphidicolin (APH) لتعزيز تمايز الخلايا β. يتضمن البروتوكول الحالي إضافة APH إلى الوسيط خلال المراحل اللاحقة من العملية. وعلاوة على ذلك، أدخلت تعديلات على تكوين الوسط خلال المراحل المبكرة من التمايز مقارنة بالبروتوكول الأولي. التغيير الملحوظ هو إضافة عامل نمو الخلايا الكيراتينية (KGF) في اليوم 6 ويستمر حتى اليوم 8. يتم تقديم عامل نمو الخلايا الكيراتينية (KGF) من اليوم 6 إلى اليوم 8 ، والذي يختلف قليلا عن البروتوكول الأولي10 ، حيث لم يتم تضمين KGF في وسط المرحلة 4.

الخطوة الأولى والأساسية في توليد الخلايا الشبيهة بالخلايا β هي التمايز الموجه ل hPSCs إلى الأديم الباطن النهائي (DE) ، وهي طبقة جرثومية بدائية تؤدي إلى ظهور البطانة الظهارية للأعضاء المختلفة ، بما في ذلك البنكرياس. بعد تكوين DE ، تخضع الخلايا للتمايز في أنبوب الأمعاء البدائي ، والذي يتبعه تحديد مصير الأمعاء الأمامية الخلفية. تتطور الأمعاء الأمامية الخلفية بعد ذلك إلى خلايا سلف للبنكرياس ، والتي لديها القدرة على التمايز إلى جميع أنواع خلايا البنكرياس ، بما في ذلك خلايا الغدد الصماء وخلايا الإفراز الخارجية. تتضمن المرحلة اللاحقة من العملية أسلاف الغدد الصماء في البنكرياس مما يؤدي إلى ظهور الخلايا المفرزة للهرمونات الموجودة في جزر لانجرهانز. في النهاية ، تصل عملية التمايز إلى مرحلتها النهائية من خلال إنتاج خلايا تشبه خلايا البنكرياس β تعمل بكامل طاقتها 9,10. من المهم ملاحظة أن هذه العملية معقدة وغالبا ما تتطلب تحسين ظروف الثقافة ، مثل عوامل النمو المحددة ومكونات المصفوفة خارج الخلية ، لتحسين كفاءة وخصوصية التمايز 9,10. علاوة على ذلك ، لا يزال توليد خلايا وظيفية تشبه الخلايا β من hPSCs في المختبر يمثل تحديا كبيرا. تركز الأبحاث الجارية على تحسين بروتوكولات التمايز وتعزيز نضج ووظيفة الخلايا βالناتجة 9.

في هذا البروتوكول ، يعد استخدام تفكك الخلايا اللطيف أثناء زراعة ومرور hPSCs أمرا ضروريا للحفاظ على صلاحية الخلية وتعدد القدرات ، مما يحسن بشكل كبير من كفاءة التمايز في خلايا β البنكرياس. بالإضافة إلى ذلك ، تم تحسين كل وسيط خاص بالمرحلة بدقة وفقا للبروتوكول الذي طوره Sui L. et al.10 لتعزيز إنتاجية عالية من الخلايا التي تفرز الأنسولين في مجموعات تشبه إلى حد كبير الجزيرة البشرية.

Protocol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

قبل البدء في التمايز ، يوصى بتحديد العدد المطلوب من الكائنات العضوية الشبيهة بالجزر للأغراض التجريبية. في صفيحة 6 آبار ، يتكون البئر الواحد الذي يزيد عن 80٪ من التقاء 2-2.3 مليون hPSCs. في حين أن التنبؤ الدقيق يمثل تحديا بسبب الاختلافات في خطوط hPSC وكفاءة التمايز ، فإن التقدير التقريبي هو 1.5 ضعف عدد الآبار الأولية. عادة ما ينتج عن التمايز الموجه بشكل فعال 1.6 إلى 2 مليون خلية لكل بئر في ألواح من ستة آبار ، تشمل جميع الخلايا داخل المجموعات بدلا من الخلايا المنتجة للأنسولين حصريا. بالنسبة لمجموعة 50 ميكرومتر ، يمكن تقريبها لتحتوي على حوالي 10000 خلية. يقدم الجدول 1 ملخصا لتكوين الوسائط المستخدم لكل يوم / مرحلة من مراحل التمايز الموجه أعلى مصفوفة الخلايا الجذعية والوسط ، جنبا إلى جنب مع مخزن إفراز الأنسولين المحفز بالجلوكوز.

1. تمرير الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات قبل التمايز في 6 لوحات الآبار

ملاحظة: يعد المرور المناسب للخلايا الجذعية البشرية قبل التمايز إلى خلايا شبيهة بالخلايا β خطوة حاسمة في إنشاء العملية التجريبية. يمكن أن يؤدي تخفيف الممر غير الصحيح أو رقم خلية المرفق إلى الإضرار بكفاءة التمايز والدقة.

  1. تحضير وسط زراعة الخلايا الجذعية والطلاء ومحاليل التفكك (كما هو محدد في الجدول 1).
  2. 1-2 ساعة قبل المرور ، قم بتغطية صفيحة من ستة آبار بمحلول طلاء بارد (1 مل لكل بئر) واحتضانها عند 37 درجة مئوية ، 5٪ CO2.
  3. قم بتسخين حصة من وسط زراعة الخلايا الجذعية في درجة حرارة الغرفة (15-25 درجة مئوية) لمدة 20 دقيقة.
  4. نضح وسط الخلايا الجذعية وإضافة 1 مل من D-PBS الخالي من الكالسيوم / المغنيسيوم.
  5. كرر الخطوة 1.4. مرتين.
    ملاحظة: يضاف D-PBS لغسل الخلايا وإزالة الوسط والمركبات السابقة. من المهم ملاحظة أنه لا يلزم إطار زمني محدد لخطوات الغسيل ، لأن التعرض ل D-PBS لا يضر ب hPSCs ، مما يمنع تمزق الخلايا أو انكماشها الناجم عن التناضح.
  6. نضح D-PBS ، أضف 500 ميكرولتر من محلول التفكك لكل بئر ، واتركه لمدة 2-5 دقائق في درجة حرارة الغرفة (15 - 25 درجة مئوية).
  7. أثناء تفكك الخلايا ، قم باستنشاق محلول الطلاء للوحة البئر 6 الجديدة وأضف 1-2 مل من D-PBS الخالي من الكالسيوم / المغنيسيوم إلى كل بئر.
  8. تحقق بانتظام من عملية التفكك تحت المجهر المقلوب.
  9. نضح محلول التفكك عندما تكون 80 - 90٪ من الخلايا مستديرة ولكنها لا تزال ملتصقة.
  10. أضف 1 مل من وسط الخلايا الجذعية الذي يحتوي على مثبط 10 ميكرومتر ROCK.
  11. اجمع الخلايا المنفصلة في أنبوب مخروطي سعة 15 مل باستخدام أطراف ماصة معقمة مفلترة سعة 1000 ميكرولتر وماصة P1000.
  12. قم بسحن تعليق الخلية ببطء لأعلى ولأسفل في الماصة باستخدام طرف ماصة معقم سعة 1000 ميكرولتر مصفى لكسر المستعمرات ، لكن لا تتجاوز 10 مرات.
  13. أضف 1 مل من وسط الخلايا الجذعية الذي يحتوي على مثبط ROCK للمساعدة في فصل hPSCs المتبقية ونقل تعليق الخلية إلى نفس الأنبوب المخروطي 15 مل (1.10).
  14. قم بنضح D-PBS من اللوحة المطلية حديثا وأضف على الفور تعليق الخلية من الأنبوب المخروطي سعة 15 مل. لضمان النمو الأمثل للخلايا ، قم بزرع مجموعة من 2 × 105- 1 × 106 خلايا قابلة للحياة لكل بئر عند استخدام لوحة 6 آبار (1 في 10 إلى 1 في 50 انقساما).
    ملاحظة: لحساب الحجم ، يجب أن يحتوي كل بئر من صفيحة 6 آبار على 2 مل من وسط الخلايا الجذعية مع مثبط ROCK.
  15. حرك اللوحة بسرعة ذهابا وإيابا ، ومن جانب إلى آخر 5-10 مرات.
  16. ضع اللوحة عند 37 درجة مئوية ، حاضنة CO2 5٪ لمدة 24 ساعة.
  17. استبدل بوسط الخلايا الجذعية الطازجة بدون مثبط ROCK في اليوم التالي ، ثم كل يومين حتى يصل التقاء hPSCs إلى 80 - 95٪.

2. التمايز الموجه للخلايا β المشتقة من الخلايا الجذعية البشرية

ملاحظة: يمكن استخدام hPSCs لعملية التمايز المباشر في خلايا β البنكرياس عند تحقيق التقاء 80-95٪.

  1. اليوم -1: مرور الخلايا اليوم -1 من التمايز:
    1. 1-2 ساعة قبل المرور ، قم بتغطية صفيحة بئر 6 بمحلول طلاء بارد في حاضنة 37 درجة مئوية ، 5٪ CO2 لمدة 1 ساعة.
    2. اتبع الخطوات من 1.1 إلى 1.10 وانتقل إلى عد الخلايا.
    3. قم بتحميل 10 ميكرولتر من خليط الخلية ، وأضف حجما متساويا من Trypan Blue ، واخلطه برفق.
    4. احسب تركيز الخلية. استخدم 0.8 × 106 خلايا / مل - 1.0 × 106 خلايا / مل من وسط الخلايا الجذعية يحتوي على مثبط 10 ميكرومتر ROCK للوحة لوحة البئر 6 المطلية ب 2 مل من الوسائط لكل بئر.
    5. حرك اللوحة بسرعة ذهابا وإيابا ، من جانب إلى آخر ثلاث مرات.
    6. ضع اللوحة في حاضنة 37 درجة مئوية ، 5٪ CO2 . حرك اللوحة بسرعة ذهابا وإيابا ، ومن جانب إلى آخر مرة أخرى 10 مرات. ثم احتضان اللوحة لمدة 4 ساعات.
      ملاحظة: تأكد من أن الحد الأقصى للربط والتوزيع المتساوي للخلايا لا يزعج الخلايا عن طريق تحريك اللوحة بمجرد وضعها في الحاضنة. افتح وأغلق الحاضنة بعناية فائقة.
    7. ضع زجاجة الوسط القاعدي للأيام من 0 إلى 4 عند 4 درجات مئوية لإذابتها طوال الليل.
  2. اليوم 0
    ملاحظة: يجب أن تكون hPSCs متقاربة بنسبة 80 - 95٪ ، ولا تبدأ عملية التمايز إلى الأديم الباطن النهائي تحت هذا التقارب.
    1. على الجليد ، قم بإذابة كل من الوسط القاعدي للأيام من 0 إلى 4 والمكملات الغذائية (انظر جدول المواد).
    2. قم بإعداد الحجم اللازم فقط في أنبوبين مخروطيين لاستخدامه في اليوم الأول (2 مل لكل بئر من صفيحة 6 آبار) ، وفي أنبوب منفصل ، ضاعف الحجم لليوم 2.5 إلى 4 (2 × 2 مل لكل بئر من لوحة 6 آبار). يخزن اليوم 2.5 إلى اليوم 4 في درجة مئوية.
    3. قم بتسخين حصة من الحجم الضروري لوسط اليوم الأول ووسط الغسيل 1 في حمام مائي بدرجة حرارة 37 درجة مئوية لمدة 5 دقائق.
    4. نضح وسط الخلايا الجذعية وإضافة 2 مل من وسط الغسيل 1.
      ملاحظة: يتكون وسط الغسيل المستخدم في البروتوكول من الوسط القاعدي الخاص بكل يوم / مرحلة ، مع استكمال المضادات الحيوية بنسبة 1٪. تتضمن خطوات الغسيل لبروتوكول التمايز المباشر فقط إضافة وسيط الغسيل المعين (المشار إليه باسم "وسيط الغسيل 1 أو 2" ، جدول المواد) والشفط اللاحق ، باتباع الإجراء الموصوف 2.2.4. من المهم الإشارة إلى أنه لا يوجد إطار زمني محدد محدد لخطوات الغسيل هذه.
    5. نضح وسط الغسيل 1 وأضف على الفور 2 مل من وسط اليوم 1 إلى جانب البئر.
    6. احتضان الخلايا عند 37 درجة مئوية و 5٪ CO2 لمدة 24 ساعة.
  3. اليوم 1
    1. قم بتسخين حصة من الحجم الضروري من الأيام 2.5 إلى 4 متوسطة في حمام مائي 37 درجة مئوية لمدة 5 دقائق.
    2. نضح وسط اليوم 1 وأضف على الفور 2 مل من اليوم 2.5 إلى 4 وسط إلى جانب البئر. لا تغسل الخلايا.
    3. ضع اللوحة مرة أخرى عند 37 درجة مئوية و 5٪ CO2 لمدة 36 ساعة.
  4. أيام 2.5 إلى 4
    1. قم بتسخين حصة من الحجم المتبقي من اليوم 2.5 إلى 4 متوسطة في حمام مائي 37 درجة مئوية لمدة 5 دقائق.
    2. نضح الوسط وأضف على الفور 2 مل من الأيام الطازجة 2.5 إلى 4 متوسطة إلى جانب البئر.
    3. ضع اللوحة مرة أخرى عند 37 درجة مئوية و 5٪ CO2 لمدة 36 ساعة.
  5. اليوم 4
    ملاحظة: في هذه المرحلة ، يكون التعبير عن علامات الأديم الباطن النهائية في أقصى حد له ، ويمكن للخلايا أن تبدأ تمايز أنبوب الأمعاء البدائي.
    1. قم بإعداد حصة من الحجم اللازم لوسط مرحلة الأمعاء البدائية لليوم 4 (2 مل لكل بئر من صفيحة من ستة آبار) وقم بتسخينها في درجة حرارة الغرفة (15 درجة مئوية -25 درجة مئوية) لمدة 20 دقيقة.
    2. نضح الأيام 2.5 إلى 4 متوسطة وإضافة 2 مل من وسط الغسيل 1.
    3. نضح وسط الغسيل 1 ، وأضف على الفور 2 مل من مرحلة الأمعاء البدائية لليوم 4 إلى جانب البئر.
    4. ضع اللوحة مرة أخرى عند 37 درجة مئوية و 5٪ CO2 لمدة 48 ساعة.
  6. الأيام من 6 إلى 8
    ملاحظة: في هذه المرحلة ، تبدأ الخلايا في مزيد من التمايز على مصير الأمعاء الأمامية الخلفية.
    1. قم بإعداد الحجم اللازم من الأيام 6 إلى 8 وسط الأمعاء الأمامية الخلفية (2 مل لكل بئر من 6 صفيحة بئر) وقم بتسخين الوسط في درجة حرارة الغرفة (15 درجة مئوية -25 درجة مئوية) لمدة 20 دقيقة.
    2. نضح وسط اليوم 4 وأضف على الفور 2 مل من الأيام 6 إلى 8 وسط أمامي خلفي إلى جانب البئر.
    3. ضع اللوحة في حاضنة 37 درجة مئوية تحتوي على 5٪ CO2 لمدة 48 ساعة.
  7. الأيام من 8 إلى 12
    ملاحظة: الخلايا جاهزة للخضوع لتمايز أسلاف البنكرياس.
    1. قم بإعداد الحجم اللازم من الأيام 8 إلى 12 من أسلاف البنكرياس المتوسطة (2 مل لكل بئر من 6 صفيحة بئر) وقم بتسخين الوسط في درجة حرارة الغرفة (15 درجة مئوية -25 درجة مئوية) لمدة 20 دقيقة.
    2. نضح الأيام من 6 إلى 8 متوسطة وأضف على الفور 2 مل من الأيام 6 إلى 8 وسط أمامي خلفي إلى جانب البئر.
    3. ضع اللوحة في حاضنة عند 37 درجة مئوية تحتوي على 5٪ CO2 لمدة 48 ساعة.
  8. اليوم 12: تنفيذ خطوة التجميع
    ملاحظة: في هذه المرحلة ، تشكل الخلايا طبقة أحادية كثيفة ، وسيتم نقلها إلى ثقافة الخلايا 3D لتشكيل مجموعات. هذه الخطوة ضرورية للتمايز لتعزيز التشابه الهيكلي للخلايا الشبيهة ب β بالجزر البشرية الأصلية ولكن أيضا يحسن تشابهها الوظيفي على المستويين الخلويوالعنقودي 11 (الشكل 1).
    1. عالج صفيحة 6 آبار تحتوي على آبار دقيقة 400 ميكرومتر (كما هو محدد في جدول المواد: التمايز الموجه للخلايا β المشتقة من الخلايا الجذعية البشرية ، اليوم 12) ب 2 مل من محلول الشطف المضاد للالتصاق في درجة حرارة الغرفة (15 درجة مئوية - 25 درجة مئوية).
      ملاحظة: يمنع microwell الخلايا من الالتصاق بقاع البئر ويسهل التكوين الميكانيكي لمجموعات 3D.
    2. لوحة الطرد المركزي عند 1300 × جم لمدة 5 دقائق.
    3. تحقق من وجود أي فقاعات تحت المجهر المقلوب. إذا لم تلاحظ أي فقاعات ، قم بنضح محلول الشطف المضاد للالتصاق وأضف على الفور 2 مل من وسط الغسيل 2 (جدول المواد).
    4. كرر الخطوة 1.8.3. مرتين.
    5. قم بإعداد الحجم اللازم للوسط العنقودي وقم بتسخينه في درجة حرارة الغرفة (15-25 درجة مئوية) لمدة 20 دقيقة. تأكد من أن بئرين من صفيحة بئر 6 تدخل في بئر واحد من صفيحة بئر 6 ميكرو بطول 400 ميكرومتر مع 4 مل من وسط الكتلة.
    6. نضح البنكرياس السلف المتوسطة وإضافة عازلة التفكك (0.5 مل لكل بئر).
    7. احتضان في درجة حرارة الغرفة (15 درجة مئوية - 25 درجة مئوية) لمدة 2-5 دقائق. تحقق بانتظام من عملية التفكك تحت المجهر المقلوب ونضح المخزن المؤقت للتفكك عندما تكون معظم الخلايا مستديرة ولكنها لا تزال ملتصقة.
    8. نضح المخزن المؤقت للتفكك وأضف على الفور 1 مل من الوسط العنقودي إلى كل بئر.
    9. قم بفصل الخلايا عن طريق السحب برفق لأعلى ولأسفل ست مرات باستخدام ماصة P1000 وأطراف مرشح 1000 ميكرولتر.
    10. انقل الخلايا والمزيج العنقودي المتوسط إلى أنبوب مخروطي سعة 50 mL.
    11. أضف 1 مل من الوسط العنقودي لجمع كل الخلايا المتبقية.
    12. أضف الوسط العنقودي إلى الحجم الكلي المطلوب بحيث يحتوي كل بئر من صفيحة الآبار الدقيقة على 4 مل من وسط / خلايا خليط العنقود.
    13. نضح وسط الغسيل 2 من لوحة microwells 6 آبار ونقل تعليق الخلية. احتضان اللوحة عند 37 درجة مئوية لمدة 24 ساعة.
  9. اليوم 13: التعامل مع الخلايا بعد التجميع وتغيير وسائطها من اليوم 13 فصاعدا.
    ملاحظة: المجموعات حساسة للغاية وتتطلب معالجة دقيقة لضمان سلامتها وصلاحيتها في الأيام التالية. لذلك ، من الأهمية بمكان مراقبة المجموعات عن كثب خلال فترة ما بعد التجميع بعد اليوم 12. التقييم والتعديلات المنتظمة ضرورية لتعزيز النتائج الناجحة في العملية التجريبية.
    1. قم بإعداد الحجم اللازم من الأيام 13 المتوسطة (2 مل لكل بئر من صفيحة 6 آبار) ، وفي أنبوب مخروطي منفصل من 50 مل لليوم 15 إلى 20 وسط سلف الغدد الصماء البنكرياس.
    2. اجمع العناقيد ببطء من لوحة بئر microwells 6 في أنبوب مخروطي سعة 50 مل باستخدام ماصة p1000 وأطراف مصفاة 1000 ميكرولتر.
    3. أضف 1 مل من وسط اليوم 13 لجمع المجموعات المتبقية ونقل المجموعات إلى الأنبوب.
    4. دع الخلايا توضع بشكل طبيعي تحت الجاذبية في قاع الأنبوب المخروطي لمدة 5 دقائق.
    5. نضح أكبر قدر ممكن من المواد الطافية من الأنبوب دون إزعاج مجموعات الخلايا. يجب ألا تلمس أطراف الماصة أو تنقطح المجموعات ولكن المادة الطافية فقط.
    6. أضف الحجم اللازم من وسط اليوم 13 وفقا لما يلي: 1 بئر من الآبار الدقيقة 6 صفيحة بئر تذهب إلى ثلاثة آبار من صفيحة بئر 6 منخفضة التعلق (2 مل من الوسائط لكل بئر).
    7. ماصة بلطف صعودا وهبوطا ، وتجنب مجموعات الاستنشاق.
    8. انقل التعليق إلى لوحة بئر 6 منخفضة الالتصاق.
    9. حرك اللوحة بسرعة ذهابا وإيابا ، من جانب إلى آخر ست مرات.
    10. احتضان اللوحة على حرارة 37 درجة مئوية لمدة 48 ساعة.
    11. قم بإجراء التغييرات المتوسطة في جميع الخطوات التالية حتى نهاية التمايز كما هو موضح في هذا القسم 2.9.
  10. الأيام 15 إلى 20
    1. التغيير إلى وسط المرحلة السلفية للغدد الصماء البنكرياس كل 48 ساعة حتى اليوم 21 من التمايز عن طريق جمع معلق الخلية في أنبوب مخروطي سعة 50 مل واتباع الخطوات من 2.9.4 إلى 2.9.10 لليوم 13.
  11. الأيام 21 إلى 27
    ملاحظة: في هذه المرحلة ، تتمايز المجموعات إلى خلايا β البنكرياس.
    1. تحضير البنكرياس β خلية المرحلة المتوسطة.
    2. قم بتغيير الوسيط كل يومين كما هو موضح للأيام من 15 إلى 21.
      ملاحظة: بعد اليوم 25 ، يمكن أن تخضع الكائنات العضوية الشبيهة بالجزيرة للتحليل للتأكد من أنها تعمل بكامل طاقتها.

3. تلطيخ مجموعات خلايا β البنكرياس

ملاحظة: نفذ هذه الخطوة لدراسة التقييم الوظيفي للمجموعات بعد التمايز

  1. اجمع من خمس إلى عشر مجموعات في أنبوب طرد مركزي دقيق سعة 1.5 مل في نهاية التمايز.
  2. ثبت مجموعات الخلايا ب 200 ميكرولتر من 4٪ PFA لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
  3. أضف 1 مل من PBS إلى المجموعات وقم بإزالة PBS بطرف ماصة 1,000 ميكرولتر دون إزعاج المجموعات.
  4. أضف 200 ميكرولتر من السكروز 30٪ إلى المجموعات واحتضانها طوال الليل عند 4 درجات مئوية.
  5. انقل المجموعات إلى قالب التبريد ، وقم بإزالة السكروز الزائد ، وأضف قطرة من وسط O.C.T. ، وامزج المجموعات مع وسط O.C.T. .
  6. تجمد الكريومولد على الثلج الجاف وتخزن في درجة حرارة -80 درجة مئوية.
  7. قطع مقاطع 5 ميكرومتر من الكتلة المجمدة على شرائح المجهر باستخدام ميكروتوم / أو كريوستات.
  8. قم بتخزين الشرائح في الفريزر على حرارة -80 درجة مئوية حتى تلطيخها.
  9. في يوم التلوين ، أخرج الشرائح من الفريزر -80 درجة مئوية.
  10. قم بإزالة الثلج بعناية حول أقسام cryomold.
  11. ضع دائرة حول مجموعات الخلايا على الشرائح باستخدام قلم كاره للماء.
  12. أعد ترطيب الشرائح في وعاء تلطيخ الشرائح الذي يحتوي على برنامج تلفزيوني لمدة 15 دقيقة.
  13. أضف الميثانول البارد إلى برطمان تلطيخ الشريحة وضع البرطمان مع الشرائح على حرارة -20 درجة مئوية لمدة 10 دقائق.
  14. اغمر الشرائح في جرة PBS.
  15. كرر الخطوة 3.14 ثلاث مرات.
    ملاحظة: استخدم هذه الطريقة لجميع خطوات الغسيل التالية.
  16. قم بإزالة PBS من الشرائح وقم بتغطيتها على الفور ب 100 ميكرولتر من محلول الحجب مع 2-5٪ BSA في PBS-T.
  17. أضف محلول حظر لكل شريحة وقم بتغطيته بفيلم البارافين.
  18. احتضان لمدة 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة (15-25 درجة مئوية).
  19. قم بتخفيف الأجسام المضادة الأولية في محلول الحجب باستخدام النسب المتوفرة في قسم الكواشف والمحاليل.
  20. قم بإزالة حل الحظر من الشرائح.
  21. أضف على الفور الأجسام المضادة المخففة وقم بتغطية الشرائح باستخدام parafilm لمنع جفاف الشريحة.
  22. احتضان بين عشية وضحاها في 4 درجة مئوية.
  23. في اليوم التالي ، اغسل الشرائح 3-5 مرات باستخدام PBS-T.
  24. تحضير الأجسام المضادة الثانوية المخففة وبقع الحمض النووي.
  25. قم بإزالة PBS-T الزائد من الشرائح.
  26. أضف الأجسام المضادة الثانوية المخففة وبقع الحمض النووي. احتضان لمدة 45 دقيقة في درجة حرارة الغرفة (15-25 درجة مئوية).
  27. اغسل الشرائح 3-5 مرات باستخدام PBS-T.
  28. قم بإزالة أي سائل من الشرائح.
  29. أضف قطرة من وسيط تركيب الأنسجة إلى كل قسم.
  30. قم بتغطية الشريحة بغطاء زجاجي.
  31. التقط صورا للشرائح الملطخة باستخدام مجهر الفلورسنت.

4. GSIS (فحص إفراز الأنسولين المحفز بالجلوكوز)

  1. قم بإعداد ثلاثة حلول مختلفة: محلول KREBS منخفض الجلوكوز ، ومحلول KREBS عالي الجلوكوز ، ومحلول KREBS منخفض الجلوكوز مع KCl.
  2. قم بتسخين جميع المحاليل في حمام مائي بدرجة حرارة 37 درجة مئوية.
  3. اختر بعناية حوالي 10 - 15 مجموعة من نفس الحجم باستخدام طرف ماصة 1000 ميكرولتر وانقلها إلى أنبوب سعة 1.5 مل مع كمية صغيرة من الوسط المتمايز لتجنب جفاف المجموعات.
    ملاحظة: يجب أن تكون المجموعات مرئية للعين المجردة ، ولكن إذا لم يكن الأمر كذلك ، فضع اللوحة التي تحتوي على مجموعات متمايزة تحت مجهر مقلوب لتحديد المجموعات ونقلها إلى أنبوب سعة 1.5 مل.
  4. ضع الأنبوب مع مجموعات ووسط على رف أنبوب وانتظر حتى تغرق المجموعات في قاع الأنبوب.
  5. قم بشفط المادة الطافية ببطء باستخدام ماصة سعة 200 ميكرولتر وأضف 200 ميكرولتر من محلول KREBS منخفض الجلوكوز.
  6. احتضان الجزر في محلول منخفض الجلوكوز لمدة 1 ساعة عند 37 درجة مئوية.
    ملاحظة: لضمان التقييم الدقيق لأرقام المجموعات والاتساق في التجارب ، ينصح بالتحقق من وجود جميع المجموعات في المحلول أثناء النقل ، لأنها تميل إلى الالتصاق بالأنبوب.
  7. قم بإزالة الأنبوب من الحاضنة ونضح ببطء 200 ميكرولتر من محلول KREBS دون استنشاق أي مجموعات.
  8. أضف 200 ميكرولتر من محلول KREBS منخفض الجلوكوز واحتضانه لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية.
  9. نضح حجم 200 ميكرولتر من محلول KREBS منخفض الجلوكوز في أنبوب 500 ميكرولتر وتخزينه على الفور عند -80 درجة مئوية لقياسات الأنسولين. كرر لعلاجات منفصلة.
  10. لغسل المجموعات ، أضف 200 ميكرولتر من محلول KREBS بدون جلوكوز إلى الأنبوب الذي يحتوي على المجموعات. اسمح للمجموعات بالاستقرار في قاع الأنبوب ، وقم بإزالة المادة الطافية بعناية دون إزعاج المجموعات.
  11. أضف 200 ميكرولتر من محلول KREBS عالي الجلوكوز واحتضانه لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية.
  12. نضح 200 ميكرولتر من KREBS عالي الجلوكوز في أنبوب 500 ميكرولتر وتخزينه على الفور عند -80 درجة مئوية لقياس الأنسولين. كرر لعلاجات منفصلة.
  13. لغسل المجموعات ، أضف 200 ميكرولتر من محلول KREBS بدون جلوكوز إلى الأنبوب الذي يحتوي على المجموعات. اسمح للمجموعات بالاستقرار في قاع الأنبوب ، وقم بإزالة المادة الطافية بعناية دون إزعاج المجموعات.
  14. أضف 200 ميكرولتر من محلول KCl KREBS وكرر ذلك للعلاجات المنفصلة.
  15. احتضان لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية.
  16. قم بنضح 200 ميكرولتر من محلول KCl KREBS في أنبوب سعة 500 ميكرولتر وقم بتخزينه على الفور عند -80 درجة مئوية لقياسات الأنسولين. كرر للعلاجات الأخرى.
  17. أضف 50 ميكرولتر من الماء عالي النقاء واستمر في قياس إجمالي محتوى الأنسولين.
  18. أضف 150 ميكرولتر من محلول الإيثانول الحمضي إلى الأنبوب مع الجزر الصغيرة والماء عالي النقاء.
  19. قم بتخزين العينات في درجة حرارة 4 درجات مئوية طوال الليل (12 - 15 ساعة).
  20. في اليوم التالي ، دوامة كل عينة.
  21. أداء صوتنة مع صوتنة الكهربائية تعيين إلى 20٪ الطاقة لمدة 1 ثانية لضمان تحلل كامل من الأنسجة الجزيرة.
    ملاحظة: كرر الخطوة 4.21 حتى لا تكون هناك مجموعات متبقية مرئية.
  22. أجهزة الطرد المركزي جميع العينات في 10000 × غرام لمدة 10 دقائق والحفاظ على طاف.
  23. قم بقياس تركيز الحمض النووي باستخدام مقياس الطيف الضوئي النانوي ، والذي يمكن استخدامه بعد ذلك لتطبيع قياسات الأنسولين.

Results

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يقدم البروتوكول الموصوف في هذه الورقة نهجا عالي الكفاءة للتمييز بين الخلايا الشبيهة ب β من hPSCs10. تستخدم هذه العملية نظام ثقافة 2D قابل للتطوير بسهولة ، مما يتيح استخدامه في بيئات تجريبية مختلفة ، مثل تمايز التعلم ، والمشاريع الصغيرة والمختبرات ، والاختبارات التجريبية لتقييم إمكانات خط iPSC للتمايز.

من الضروري وصف الخواص الوظيفية للخلايا β المتمايزة في الجزر الصغيرة لتكوين نظرة ثاقبة على الاتزان الداخلي للجلوكوز. يتم تحقيق ذلك عادة من خلال تجارب مختلفة مثل التلوين المناعي لعلامات الخلايا β وتعبير الأنسولين ، بالإضافة إلى فحوصات إفراز الأنسولين المحفز بالجلوكوز (GSIS) ، والتي تختبر وظيفة الجزيرة استجابة لتركيزات الجلوكوز المنخفضة والعالية12,13. تمتلك الخلايا β جينات مميزة ، بما في ذلك Nkx2-2 و Pdx1 و Nkx6-1 و Neurod1 ، والتي تعتبر ضروريةلإنشاء هوية الخلايا β 9 والحفاظ عليها. تعتبر تقنيات التلوين المناعي ذات قيمة للتحقيق في تعبير البروتين وتوطينه داخل أقسام الأنسجة. يمكن أن يقيم التلوين المناعي لعلامات الخلايا β مستويات التعبير لعلامات نسب البنكرياس الرئيسية ، مما يوفر نظرة ثاقبة حول دقة عملية التمايز وتحسينها لتطبيقات محددة 9,12.

في هذه الدراسة ، تم استخدام خط مراسل Mel1 InsGFP / w (Mel1 INS-GFP) 14 hESC للتمييز بين المجموعات التي تضم أنواعا مختلفة من الخلايا ، بما في ذلك الخلايا β تشبه تلك الموجودة في الجزر الأصلية البشرية. يقدم الشكل 2 في هذه الورقة نتائج مهمة فيما يتعلق بكفاءة ودقة عملية التمايز. تظهر النتائج إثراء عاليا للخلايا المعبرة عن الأنسولين داخل سلالة البنكرياس ، وتظهر هذه الخلايا إفراز الأنسولين المحفز بالجلوكوز. يشير هذا إلى التوليد الناجح للخلايا الوظيفية الشبيهة β من خلال عملية التمايز.

تم تحفيز الخلايا المتمايزة بتركيزات منخفضة وعالية من الجلوكوز ، وأظهرت نتائج GSIS أن المجموعات المشتقة من خلايا Mel1 تعمل بشكل مشابه للجزر في استجابة إفراز الأنسولين للجلوكوز. تم العثور على المجموعات المشتقة من Mel1 لإفراز الأنسولين أكثر 100 مرة استجابة لتركيزات الجلوكوز العالية مقارنة بتركيزات الجلوكوز المنخفضة. على وجه التحديد ، كان محتوى الأنسولين 0.003 ± 0.002٪ عند 3.3 مللي مول منخفض الجلوكوز و 0.236 ± 0.197٪ عند 16.7 مللي مول جلوكوز مرتفع.

وخضعت المجموعات المستمدة من اختبارات Mel1 INS-GFP hESCs لمزيد من التحليلات لتحديد تكوينها ووظائفها، بالإضافة إلى مقايسة نظام المعلومات الجغرافية (GSIS). على وجه التحديد ، تم التحقيق في التعبير عن جينات توقيع الخلايا β ووجود أنواع مختلفة من الخلايا داخل المجموعات. أظهرت النتائج أن سلالة البنكرياس التي تم الحصول عليها من هذه العملية غنية للغاية في الخلايا الإيجابية للأنسولين ، مما يشير إلى مستوى عال من النجاح في عملية تمايز hESCs إلى خلايا شبيهة بالخلايا β. علاوة على ذلك ، تم فحص التعبير عن جينات التوقيع ، مثل Nkx6.1 و Pdx1 ، المهمة لإنشاء وصيانة هويات الخلايا β. كشف التحليل أن ما يقرب من 25٪ و 40٪ من الخلايا عبرت عن Nkx6.1 و Pdx1 ، على التوالي ، مما يوفر دليلا إضافيا على أن المجموعات تحتوي على خلايا متمايزة تشبه β (متوسط خلايا Nkx6.1 + لكل مجموعة 24.9٪ ± 6.2٪ ، n = 9 مجموعات ، خلايا Pdx1 + 40.2٪ ± 6.2٪ ، n = 9 ، SEM ، الشكل 2). بالإضافة إلى ذلك ، احتوت المجموعات على أنواع أخرى من الخلايا ، مثل الخلايا الإيجابية للجلوكاجون ، والتي تمثل حوالي 15٪ من إجمالي عدد الخلايا. توجد هذه الخلايا عادة في خلايا ألفا في جزر لانجرهانز الأصلية ، مما يشير إلى أن المجموعات تشبه إلى حد كبير الجزر البشرية من حيث تكوين الخلايا.

figure-results-1
الشكل 1: تمايز hPSCs نحو خلايا β البنكرياس. (أ) التمثيل التخطيطي للتمايز الموجه في المختبر ل hPSCs إلى خلايا β البنكرياس، والذي يتضمن ست مراحل متتالية: تحريض الأديم الباطن النهائي، وتكوين أنبوب الأمعاء البدائي، ومواصفات مصير الأمعاء الأمامية الخلفية، وتوليد السلف البنكرياسي، وتكوين السلف للغدد الصماء البنكرياسية، وفي النهاية، تمايز خلايا β البنكرياس. يستخدم تمايز خلايا β البنكرياس المراحل الرئيسية لتطور الجزر البشرية ، مع تنظيم مسارات إشارات خلية محددة في أوقات محددة. B27: ملحق B-27 ؛ Ri: مثبط كيناز البروتين المرتبط بالرو أو مثبط ROCK ؛ T3: هرمون الغدة الدرقية. KGF: بروتين KGF / FGF-7 البشري ؛ RepSox: مثبط مسار أكتيفين / عقدي / TGF-β ؛ يمنع ALK5 ؛ RA: حمض الريتينويك. ZS: كبريتات الزنك. UFH: الهيبارين غير المجزأ. XX: مثبط جاما سكريتيز XX ؛ APH: المنديكولين. EGF: عامل نمو البشرة. LDN: مثبط BMP III ، LDN-212854 ؛ سيكلو: سيكلوبامين- KAAD. ب: صور التشكل الخلوي الملتقطة في مراحل مختلفة من التمايز من الخلايا الجذعية متعددة القدرات إلى خلايا β البنكرياس. تظهر الصورة الأولى الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات في اليوم الأول من التمايز (أحادية الطبقة من HPSCs). ج: في اليوم 11، تكون الخلايا في المرحلة السلفية البنكرياسية. شريط مقياس 100 ميكرومتر. (د) في اليوم 12 ، تتشكل مجموعات في الآبار الدقيقة للوحة 6 آبار بعد تفكك الخلايا في مرحلة السلف البنكرياس. (ه) في اليوم 13، توجد العناقيد في صفيحة منخفضة التعلق مكونة من 6 آبار. شريط مقياس 100 ميكرومتر. الرجاء الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

figure-results-2
الشكل 2: تم تقييم المجموعات التي تم الحصول عليها من خط مراسل Mel1 InsGFP / w hESCالمتمايز 14 لوجود خلايا منتجة للأنسولين تعبر عن علامات نضج الخلايا β. (أ) تم التقاط صور التألق المناعي للمجموعات من مقاطع cryomold (5 ميكرومتر) باستخدام المجهر البؤري للقرص الدوار ، والذي كشف عن غلبة الخلايا المنتجة للأنسولين (حوالي 60٪) مقارنة بالخلايا المنتجة للجلوكاجون (حوالي 15٪) (n = 9 مجموعات ، ما يقرب من 18000 خلية ، SEM). (ب) تم الحصول على صور التألق المناعي للمجموعات من مقاطع cryomold (5 ميكرومتر) باستخدام المجهر البؤري للقرص الدوار ، والذي أظهر غلبة الخلايا المنتجة للأنسولين التي تعبر بشكل مشترك عن علامات خلايا β البنكرياس Nkx6.1 (n = 9 مجموعات ، حوالي 18000 خلية). (ج) تم استخدام ماكرو عداد الخلايا ImageJ ، المصمم خصيصا للتلطيخ المناعي للعلامات ، لتحديد النسبة المئوية للخلايا الإيجابية للأنسولين والجلوكاجون الإيجابية والخلايا β Nkx6.1 ، وعلامات الخلايا β Pdx1 الخلايا الإيجابية. (د) تم تقييم إفراز الأنسولين المحفز بالجلوكوز للمجموعات المشتقة من Mel1 InsGFP / w hESC ، والتي أظهرت زيادة قدرها 100 ضعف استجابة لتحفيز الجلوكوز العالي (16.7mM الجلوكوز) في المجموعات المتمايزة (n = 9 ، SEM). يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الجدول 1: ملخص تكوين الوسائط للتمايز الموجه. يقدم هذا الجدول ملخصا لتكوين الوسائط المستخدم لكل يوم / مرحلة من مراحل التمايز الموجه أعلى مصفوفة الخلايا الجذعية والوسط ، جنبا إلى جنب مع مخزن إفراز الأنسولين المحفز بالجلوكوز. الرجاء الضغط هنا لتنزيل هذا الجدول.

Discussion

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعتمد التمايز الناجح ل hPSCs إلى خلايا β البنكرياس على تحسين جميع جوانب الزراعة الروتينية ومرور hPSCs المختارة. وهذا يشمل التأكد من أن خط الخلية لديه نمط نووي طبيعي ، وسلبي لعدوى الميكوبلازما ، وخالي من جينومات البلازميد أو الناقل الفيروسي. علاوة على ذلك ، عند استخدام hiPSCs ، من المهم تجنب استخدام المقطع الأقدم الذي لا يزال يخضع لإعادة البرمجة ، للتجارب التجريبية. يجب إجراء هذه التجارب على نطاق صغير لتحديد خط hPSC بأفضل إمكانات التمايز والعدد الأمثل للمقاطع.

تشمل المعلمات الأخرى التي يمكن أن تؤثر على كفاءة التمايز جودة وسط الخلايا الجذعية المستخدم ، وكثافة الطلاء ، وعدد الممرات10,12. تم تحسين هذا البروتوكول لزيادة كفاءة التمايز إلى أقصى حد من خلال ضمان تحسين جميع المعلمات ذات الصلة10.

يتم استخدام وسائط التمايز ذات التركيبات المحددة في كل مرحلة لدعم تمايز hPSCs إلى خلايا β. يتم استخدام Activin A و Wnt ناهض في وسط التمايز لبدء الانتقال إلى خلايا الأديم الباطن النهائية. خلال مرحلة أنبوب الأمعاء البدائي ، تتم إضافة KGF إلى الوسط لتعزيز المزيد من التمايز إلى خلايا β15 ، ويتم الحفاظ على هذا التضمين ل KGF من اليوم 6 إلى 8 ، يختلف عن البروتوكول الأصلي بواسطة Sui و Egli و al.10. خلال مرحلة السلف البنكرياس ، يتم تحسين تكوين الوسائط المحدد لتعزيز التعبير عن عامل النسخ Pdx1. يتم تحقيق ذلك باستخدام تركيز عال من حمض الريتينويك (RA) و KGF و LDN193189 ، مما يثبط مسار البروتين المورفولوجي العظمي (BMP)8. مع تقدم التمايز إلى مرحلة الغدد الصماء ، يتم تعديل وسيط الاستزراع لتقليل تنظيم إشارات الشق. يتم تحقيق ذلك من خلال دمج XXI ، وهو مثبط γ-secretase ، جنبا إلى جنب مع T3 (هرمون الغدة الدرقية) ، و RA ، و RepSox ، وهو مثبط لمسار Activin / BMP / TGF-β8. يستخدم هذا المزيج المحدد من المركبات لتعزيز تمايز أسلاف البنكرياس إلى أسلاف الغدد الصماء. أخيرا ، لتحسين عملية التمايز المباشر ، يتم إدخال aphidicolin (APH) أثناء التمايز من أسلاف البنكرياس إلى أسلاف الغدد الصماء. تهدف هذه الإضافة إلى APH إلى زيادة تعزيز تمايز الخلايا β ، وهي تمثل تعديلا متميزا عن البروتوكول الأولي الذي اقترحه Sui، Egli، et al.10،11.

أثناء عملية التمايز ، من الضروري مراقبة كثافة الخلايا ومنع الإفراط في الالتقاء ، لأن هذا يمكن أن يعيق التمايز المناسب. يمكن للمزارع عالية الكثافة الحفاظ على تعبير Oct4 العالي ، مما يمنع التمايز إلى الأديم الباطن النهائي. تعد إزالة مثبط ROCK أثناء خطوة الغسيل الأولى أمرا ضروريا لبدء التمايز والسماح بتغيير الحالة متعددة القدرات ل hPSCs. إن استخدام علامة مضان ، مثل Mel1 INS-GFP مع GFP مدمج في موضع الأنسولين ، يسهل تقييم تقدم التمايز في مراحل السلف البنكرياسي والخلايا β ، مما يساعد التجارب النهائية14.

أظهر البروتوكول الحالي للتمييز بين الخلايا الجذعية البشرية متعددة القدرات إلى خلايا شبيهة بالبنكرياس β تباينا في الكفاءة بين خطوط hPSC المختلفة10. بالإضافة إلى ذلك ، تظهر الخلايا الشبيهة ب β الناتجة عدم نضج وظيفي مقارنة بجزر البنكرياس البشرية ، مما يدل على انخفاض إفراز الأنسولين لكل خلية. لمعالجة هذا القيد بشكل أكبر ، يمكن تحقيق النضج في الجسم الحي للخلايا الشبيهة β عن طريق زرع عضويات جزرية في نماذج حيوانية خلال المراحل النهائية من التمايز 6,7.

على الرغم من هذه القيود ، فإن تمايز hPSCs إلى خلايا β البنكرياس له إمكانات كبيرة فيما يتعلق بالطرق الحالية8،9،10. تسمح هذه التقنية بإنتاج أعداد كبيرة من الخلايا الشبيهة بالخلايا β التي تستجيب للجلوكوز وتعبر عن علامات الخلايا β (Pdx1 و Nkx6.1 ، انظر الشكل 2). يتم ذلك دون قيود أخلاقية وتقنية ومصدرية مرتبطة باستخدام جزر البنكرياس البشرية. بالإضافة إلى ذلك ، فإن هذه التقنية لديها القدرة على تطبيقها على الطب الشخصي ، حيث يمكن إنشاء خلايا β خاصة بالمريض لاختبار الأدوية ونمذجة الأمراض4،6،7. قد يكون لهذه التقنية أيضا تطبيقات مستقبلية في علاج مرض السكري تنطوي على فقدان أو خلل وظيفي في خلايا β البنكرياس4،6،7.

Acknowledgements

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم دعم إيناس الشرقاوي من قبل منحة دراسية لمرض السكري في المملكة المتحدة (BDA 18/0005934) إلى GAR ، التي تشكر أيضا Wellcome Trust لجائزة الباحث (212625 / Z / 18 / Z) ، UKRI MRC لمنحة البرنامج (MR / R022259 / 1) ، Diabetes UK لمنحة المشروع (BDA16 / 0005485) ، CRCHUM لصناديق بدء التشغيل ، Innovation Canada لجائزة John R. Evans Leader (CFI 42649) ، NIH-NIDDK (R01DK135268) للحصول على منحة مشروع، ومركز القاهرة لحقوق الإنسان، JDRF للحصول على منحة الفريق (CIHR-IRSC:0682002550; JDRF 4-SRA-2023-1182-S-N). كاميل ديون والدكتور هاري ليتش لمساعدتهما في توليد وثقافة hiPSCs البشرية ، منشأة NIHR Imperial BRC (مركز البحوث الطبية الحيوية) العضوية ، لندن.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
1.5 مل TubeOne أنبوب الطرد المركزيالدقيق StarlabsS1615-5500
6 آبار لوحة ثقافة الخلاياThermoFisher Scientific165218
AggreWell 400 6-well plate STEMCELL Technologies34425
Anti-Glucagon سيجما ألدريتشG2654-100UL
مضاد للأنسولين   ؛داكوA0564
Anti-NKX6.1Novus BiologicalsNBP1-49672SS
Anti-PDX1 Abcamab84987
AphidicolinSigma-AldrichA4487
B-27 Supplement (50X) ، مصل مجاني   ؛ثيرمو فيشر 17504044
ألبومين مصل الأبقار ، خالي من الأحماض الدهنيةسيجما ألدريتشA3803-100G
ثنائي هيدرات كلوريد الكالسيومسيجما ألدريتشC3306
خالي من الكالسيوم / المغنيسيوم D-PBSثيرمو فيشر14190144
سيكلوبامين - KAADكالبيوكيم239804
D- (+) - جلوكوز ، BioXtraSigma-AldrichG7528
فوسفات الهيدروجين ثنائي الصوديوم ، اللامائيSigma-Aldrich94046-100ML-DMEM
بالإضافة إلى GlutaMAXThermo FisherScientific 10566016للغسيل المتوسط 2: DMEM plus GlutaMAX 1٪ PS.   ؛
DMEM / F-12 (Dulbecco's Modified Eagle Medium / Nutent Blend F-12)Thermo Fisher Scientific10565-018
Epredi SuperFrost Plus شرائح التصاقThermo Fisher Scientific10149870
الإيثانولVWR20821.33
مصل الأبقارالجنيني Thermo Fisher Scientific10270098
Gamma-Secretase Inhibitor XXThermo Fisher ScientificJ64904
Geltrex LDEV خال من عامل النمو المنخفض الطابق السفليThermo Fisher ScientificA1413302Geltrex 1: 1 في وسط DMEM / F-12 البارد لتوفير تخفيف نهائي بنسبة 1: 100.
خنزير الماعز المضاد لغينيا ، Alexa Fluor 555Thermo Fisher ScientificA-21435
خنزير الماعز المضاد لغينيا ، Alexa Fluor 647Abcamab150187
الجسم المضاد الثانوي للماعز المضاد للفأر ، Alexa Fluor 633Thermo Fisher ScientificA-21052
الماعز المضاد للأرانب IgG الثانوي ، Alexa Fluor 568Thermo Fisher ScientificA-11011
الهيبارينسيجما ألدريتشH3149
HEPES عازلةسيجما-ألدريتشH3375-500G
Hoechst 33342 ، ثلاثي هيدروكلوريدثيرمو فيشر العلميH1399
الإنسان FGF-7 (KGF) بروتين مؤتلفحراري فيشر PHG0094
كلوريد الهيدروجينسيجما ألدريتش295426
ImmEdge حاجز مسعور PAP PenAgar ScientificAGG4582
LDN193189Sigma-AldrichSML0559-5MG
سداسي هيدرات كلوريد المغنيسيومSigma-AldrichM9272-500G
مركب OCT 118 ملأقراص Agar ScientificAGR1180
PBS ، محلول ملحي مخزن بالفوسفات ، كواشف فيشر الحيويةالحرارية فيشر العلمية7647-14-5
البنسلين الستربتومايسين (PS)ثيرمو فيشر العلمي ،15070-063
كلوريد البوتاسيومسيجما ألدريتش7447-40-7
بروتين EGF البشريالمؤتلف R & D Systems236-EG-200
زجاج غطاء مستطيل ، 22 مرة. 50 ممVWR631-0137
RepSox (هيدروكلوريد) STEMCELLTechnologies72394
RPMI 1640 متوسط ، مكمل GlutaMAX   ؛  Thermo Fisher Scientificللغسيل المتوسط 1: RPMI 1640 بالإضافة إلى GlutaMAX 1٪ PS.
شاندون إيمو ماونتثيرمو فيشر العلمي9990402
بيكربونات الصوديومسيجما-ألدريتشS6014-500G
كلوريد الصوديومسيجما-ألدريتشS3014
فوسفات ثنائي هيدروجين الصوديوم اللامائيسيجما ألدريتش7558-80-7
STEMdiff Endoderm  STEMCELL Technologies5110
StemFlex MediumThermo FisherScientific A3349401قم بإذابة مكمل StemFlex بين عشية وضحاها عند 4 درجات ؛ C ، انقل أي سائل متبقي من زجاجة المكملات الغذائية إلى StemFlex Basal Medium.
ستيجزيء حمض الريتينويك المتعدد العبورReprocell04-0021 
محلول الغدة الدرقية Tormone 3 (T3)Sigma-AldrichT6397
Trypan Blue Solution ، 0.4٪ThermoFisher Scientific15250061
TrypL Express Enzyme (1X)Thermo Fisher Scientific12604013
TWEEN 20Sigma-AldrichP2287-500ML
لوحة شديدة الالتصاق لثقافة التعليقThermo Fisher Scientific38071
مقطر فائق النقاء خال من DNase / RNaseThermo Fisher Scientific10977015
Y-27632 (ثنائي هيدروكلوريد)   ؛STEMCELL Technologies72302
كبريتات الزنكسيجما-ألدريتش  Z4750
العلمي61870036 ماء

References

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kolios, G., Moodley, Y. Introduction to stem cells and regenerative medicine. Respiration. 85 (1), 3-10 (2013).
  2. Thomson, J. A., et al. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282 (5391), 1145-1147 (1998).
  3. Martin, G. R. Isolation of a pluripotent cell line from early mouse embryos cultured in medium conditioned by teratocarcinoma stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences. 78 (12), 7634-7638 (1981).
  4. Nair, G. G., Tzanakakis, E. S., Hebrok, M. Emerging routes to the generation of functional β-cells for diabetes mellitus cell therapy. Nature Reviews Endocrinology. 16 (9), 506-518 (2020).
  5. Diagnosis and classification of diabetes mellitus. American Diabetes Association. Diabetes Care. 32 (Supplement_1), S62-S67 (2009).
  6. Sui, L., et al. β-Cell Replacement in mice using human Type 1 diabetes nuclear transfer embryonic stem cells. Diabetes. 67 (1), 26-35 (2018).
  7. Rezania, A., et al. Reversal of diabetes with insulin-producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells. Nature Biotechnology. 32 (11), 1121-1133 (2014).
  8. Hogrebe, N. J., Maxwell, K. G., Augsornworawat, P., Millman, J. R. Generation of insulin-producing pancreatic β-cells from multiple human stem cell lines. Nature Protocols. 16 (9), 4109-4143 (2021).
  9. Jiang, J., et al. Generation of insulin-producing islet-like clusters from human embryonic stem cells. Stem Cells. 25 (8), 1940-1953 (2007).
  10. Sui, L., Leibel, R. L., Egli, D. Pancreatic β-cell differentiation from human pluripotent stem cells. Current Protocols in Human Genetics. 99 (1), e68(2018).
  11. Sui, L., et al. Reduced replication fork speed promotes pancreatic endocrine differentiation and controls graft size. JCI Insight. 6 (5), 141553(2021).
  12. Veres, A., et al. Charting cellular identity during human in vitro β-cell differentiation. Nature. 569 (7756), 368-373 (2019).
  13. Rutter, G. A., Georgiadou, E., Martinez-Sanchez, A., Pullen, T. J. Metabolic and functional specialisations of the pancreatic β-cell: gene disallowance, mitochondrial metabolism and intercellular connectivity. Diabetologia. 63 (10), 1990-1998 (2020).
  14. Micallef, S. J., et al. INS(GFP/w) human embryonic stem cells facilitate isolation of in vitro derived insulin-producing cells. Diabetologia. 55 (3), 694-706 (2012).
  15. Finch, P. W., Rubin, J. S., Miki, T., Ron, D., Aaronson, S. A. Human KGF is FGF-related with properties of a paracrine effector of epithelial cell growth. Science. 245 (4919), 752-755 (1989).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Human Pluripotent Stem CellsPancreatic Beta CellsBeta Cell DifferentiationInsulin Secreting CellsDefinitive EndodermPancreatic ProgenitorsGlucose Stimulated Insulin SecretionImmunofluorescence ImagingCell PassageROCK Inhibitor

Related Articles