يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

تثبيت الخصية الملتوية: نموذج الجرذ لإصابة نقص تروية الخصية

649 مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/67181

⸱

نوفمبر 14, 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Physiology, Ladoke Akintola University of Technology, 2Department of Anaesthesia, Afe Babalola University, 3Department of Pharmacology, Bowen University, 4Reproductive Biology and Toxicology Research Laboratory, Oasis of Grace Hospital

في هذه المقالة

ملخص

تصف هذه المقالة إجراء خطوة بخطوة لإنشاء نموذج لنقص تروية الخصية / إعادة التروية لإنتاج نموذج قابل للتكرار من التواء الخصية في دراسة الآليات المرضية لإصابة نقص تروية التروية في الخصية.

الملخص

ترتبط إصابات نقص تروية التروية (IR) بالعديد من الأمراض ، بما في ذلك إصابة الخصية. النماذج الحيوانية السابقة للأشعة تحت الحمراء للخصية ، والتي تتضمن التواء الحبل المنوي لتحقيق نقص التروية ، محفوفة بالعديد من الصعوبات التقنية التي تؤدي إلى عدم القدرة على إعادة إنتاج النموذج باستمرار. ومن ثم ، نقدم طريقة بسيطة لتحفيز الأشعة تحت الحمراء للخصية في نموذج الفئران الذي يمكن تكراره بسهولة.

تتضمن هذه الطريقة فصل الحوصية عن الخصية ، وإنشاء كيس الصفن ، والتواء الخصية 720 درجة في اتجاه عقارب الساعة في قطبها السفلي ، وتثبيت الخصية على قاعدة كيس الصفن. هذا النموذج يضيق بشكل فعال أوعية الخصية ويسبب نقص تروية الخصية. بعد 1 ساعة من نقص التروية ، تتم إزالة غرزة التثبيت والخصية غير ملتوية. يتم فحص الحبل والأوعية المصاحبة له للتأكد من المباحة. بعد الأشعة تحت الحمراء ، يتم جمع الخصية وتقسيمها للتقييم النسيجي المرضي.

تم فحص أنسجة الخصية بحثا عن الآفات النزفية البؤرية ، واحتقان الأوعية الدموية ، واتساع المساحة الخلالية ، وتسلل الخلايا الالتهابية. علاوة على ذلك ، تم فحص علامات الإجهاد التأكسدي (مالونديالديهايد ، وانخفاض الجلوتاثيون ، والكاتلاز ، وديسموتاز فائق) ، والالتهاب (MPO ، TNF-α ، IL-1β) ، وموت الخلايا المبرمج (تعبير الكاسباز 3). توفر هذه الطريقة نموذجا أبسط وسهل التكرار لدراسة الفيزيولوجيا المرضية لإصابة الخصية بالأشعة تحت الحمراء. أكثر من ذلك ، يفتح هذا النموذج نافذة لاستكشاف العوامل العلاجية المحتملة في إدارة إصابة الأشعة تحت الحمراء في الخصية.

المقدمة

التواء الخصية (TT) هو حالة طوارئ حادة في المسالك البولية حيث يلتف الحبل المنوي ، إلى جانب الأوعية المصاحبة له ، مما يؤدي إلى نقص تروية الخصية. يتميز بألم شديد في البطن والغثيان والقيء1. نقص التروية ، إذا لم يتم حله عن طريق التواء في الوقت المناسب ، يؤدي إلى نخر وفقدان الخصية المعنية2. ومع ذلك ، فإن التدخل الجراحي في الوقت المناسب عن طريق فك واستعادة تدفق الدم إلى الخصية يؤدي إلى إصابة نقص تروية وإعادة التروية (IRI) ، مما يؤدي إلى اضطراب نسيجي وكيميائي حيوي للخصية ووظائفها3،4.

تم استخدام النماذج الحيوانية ل TT على نطاق واسع للتحقيق في آليات IRI ، والتي تنتج دائما عن محاولات منع TT من التقدم إلى النخر5،6. هناك نوعان من TT ، لقط الحبل المنوي والتواء الحبل. يتم إجراء كلاهما في ظروف معقمة وتخدير كاف. تشمل عوامل التخدير الشائعة المستخدمة الكيتامين بمفرده أو بالاشتراك مع الزيلازين7. عوامل التخدير الأخرى شائعة الاستخدام هي اليوريثان والصوديوم الثيوبنتال ، وعادة ما يتم تناوله داخل الصفاق7. ومع ذلك ، فإن كلا النموذجين لهما حدودهما.

في حين أن التثبيت المباشر لشريان الخصية باستخدام مقاطع الأوعية الدموية الدقيقة8،9 قد تم استخدامه كوسيلة لإحداث نقص تروية لفترة زمنية محددة (عادة 1 ساعة) قبل تحريض إعادة التروية عن طريق إزالة المشابك ، فإن الطريقة لا تحاكي بدقة المظهر السريري للتواء الخصية10. علاوة على ذلك ، على الرغم من أن الالتواء الجراحي للحبل المنوي لتحقيق نقص التروية11،12 هو أكثر تمثيلا للعرض السريري ، إلا أنه محفوف بالعديد من الصعوبات الفنية التي لم يتم تناولها من خلال الأوصاف المختصرة التي تمت مواجهتها في قسم الطرق في المقالات حول هذا الموضوع.

كانت الصعوبة التقنية الواضحة التي غالبا ما تتم مواجهتها هي إعادة الخصية وتثبيتها على أرضية كيس الصفن لمنع فك الالتواء خلال فترة نقص التروية. في حين أن بعض المحققين لا يذكرون تثبيت الخصية على جدار كيس الصفن13،14 ، يصف آخرون تثبيت الخصية على جدار كيس الصفن عن طريق خياطة الغلالة البيضاء بها15،16،17. كانت أوصاف عملية تثبيت الخصية على جدار كيس الصفن ، إلى حد كبير ، موجزة جدا وغير صريحة7،18. وهكذا قوبلت محاولات تكرار الإجراءات الموصوفة في أقسام الطرق من المقالات السابقة بصعوبات عملية خطيرة ، مثل إصابة الخصية عن طريق ثقب الغلالة البيضاء وعدم القدرة على إعادة الخصية إلى كيس الصفن دون ممارسة ضغط لا داعي له. علاوة على ذلك ، من الناحية العملية ، كانت عودة الخصية إلى كيس الصفن بعد إحداث الالتواء تحديا كبيرا في محاولاتنا للحث جراحيا على TT التجريبي. وهكذا أدت هذه الصعوبات التقنية إلى عدم القدرة على إعادة إنتاج النموذج باستمرار بين مختلف المحققين.

ومن ثم ، فإن الإجراء الموصوف في هذه الدراسة لإنشاء نموذج ل TT في الفئران يحدد الصعوبات التقنية التي تمت مواجهتها في النماذج السابقة ويقدم حلولا لها. يوفر هذا النموذج تقنية بسيطة يمكن استنساخها بسهولة وتحاكي التجربة الإنسانية. لذلك ، يعد النموذج نقطة انطلاق موثوقة وقابلة للتكرار في دراسة الآليات المرضية الناشئة عن IRI.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على الدراسة من قبل لجنة مراجعة الأخلاقيات التابعة لكلية العلوم الطبية الأساسية ، جامعة لادوك أكينتولا للتكنولوجيا ، أوغبوموسو ، ولاية أويو ، نيجيريا (ERCFBMSLAUTECH: 033/05/2024). تم استخدام عشرين من ذكر فئران ويستار المهق ، تتراوح أعمارهم بين 10-12 أسبوعا ، ووزنها 180 ± 10 جم في هذه الدراسة. لقد تأقلموا لمدة أسبوعين ، وبعد ذلك ، تم تخصيصهم عشوائيا إما في المجموعة التي يتم تشغيلها بشكل صوري (SO) أو مجموعة الالتواء / التواء (T / D) (ن = 10 فئران لكل مجموعة). خضعت فئران SO لعملية جراحية مماثلة ، تماما مثل فئران T / D ، لكن الخصيتين لم تكن ملتوية أو مثبتة للحث على T / D.

1. التحضير قبل الجراحة والتخدير

  1. تعريض (مجموعات SO و T / D) لصيام 12 ساعة طوال الليل قبل الجراحة.
  2. في يوم الجراحة ، قم بتخدير (مجموعات SO و T / D) بمزيج من الكيتامين 50 مجم / كجم وإكسيلازين 10 مجم / كجم داخل الصفاق ، وتأكد من كفاية وعمق التخدير من خلال ملاحظة عدم استجابة لضغط وسادة المخلب والتحفيز الخفيف للشعيرات.
  3. احلق مناطق كيس الصفن والعجان والإربية اليسرى للحيوانات (مجموعات SO و T / D) ثم نظفها بروح ميثيل ومحلول مطهر بوفيدون.

2. تحريض نقص تروية الخصية

  1. تعبئة الخصية
    1. مارس ضغطا لأسفل برفق على البطن لدفع الخصية اليسرى (لكل من مجموعتي SO و T / D) إلى كيس الصفن.
    2. أمسك الخصية اليسرى بقوة (لكل من مجموعتي SO و T / D) وقم بعمل شق كيس الصفن العالي ، بطول ~ 1.5 سم ، لفضح الخصية الأساسية داخل الغلالة المهبلية (TV).
    3. حدد موقع القطب السفلي للخصية (لكل من مجموعتي SO و T / D) ، وتحديدا البربخ الذيلية ، وقم بعمل شق في التلفزيون المغطى بمقص تشريح صغير.
    4. ضع المقص أسفل التلفزيون وقم بتوسيعه قليلا لإظهار حافتي التلفزيون ، ثم أمسك الحواف على كلا الجانبين بملقط شريان البعوض المنحني. ينطبق هذا على كل من مجموعتي SO و T / D.
      ملاحظة: هذه الخطوة مهمة جدا لأنها تنشئ مستوى نسيجيا يتيح عودة الخصية بسهولة إلى كيس الصفن بعد تحريض الالتواء.
    5. قم بتمديد الشق (لكل من مجموعتي SO و T / D) في التلفزيون بالقرب من ~ 0.5 سم.
    6. مارس ضغطا لطيفا على أسفل البطن لإخراج الخصية (لكل من مجموعتي SO و T / D).
    7. بالنسبة لمجموعة T / D فقط ، قم بتعبئة الخصية وتحديد خصية الحوم ، ثم قم بقصها لفصل الخصية عن أرضية كيس الصفن.
      ملاحظة: هذه الخطوة مهمة لأنها تسمح بالتواء الخصية. يتم تحديد gubernaculum على أنه الرباط الذي يمتد من الطرف الذيلي للخصية إلى القناة الإربية وينتهي بتوسع يشبه المقبض19,20.
    8. أمسك الخصية (لحيوانات T / D) في قطبها السفلي (حيث يوجد تلخيص البربخ) ، وقم بلفها بزاوية 720 درجة في اتجاه عقارب الساعة وسجل الوقت (بمناسبة ظهور نقص التروية).
  2. تثبيت الخصية الإقفارية
    1. قم بإنشاء كيس الصفن عن طريق تثبيت الخصية الملتوية (لحيوانات T / D) في مكانها ودفع مقص تشريح طويل لأسفل على طول مستوى الأنسجة أسفل التلفزيون في كيس الصفن لتشكيل كيس الصفن.
    2. بالنسبة لحيوانات T / D فقط ، أدخل غرزة التثبيت عن طريق تثبيت المقص في مكانه وإدخال غرزة تثبيت باستخدام خياطة كروم 2-0 من الخارج من أدنى نقطة في كيس الصفن التي تم إنشاؤها مسبقا. أدخل الغرزة في النسيج الضام في القطب السفلي للخصية وأعيدها إلى الحقيبة وخارجها بجوار نقطة الدخول الأولية.
    3. قم بتثبيت الخصية على قاعدة كيس الصفن عن طريق سحب الخصية الملتوية (لحيوانات T / D) إلى كيس الصفن وممارسة الجر الهابط برفق على طرفي الخيط ، ثم اربط طرفي الخيط بإحكام على جلد كيس الصفن.
    4. أغلق شق كيس الصفن (لحيوانات SO و T / D) بخياطة سلسلة محفظة مستمرة باستخدام الكروم 2-0.
      ملاحظة: يوصى بذلك لسهولة الإزالة عند إجراء إعادة التروية.

3. التحقيقات البيوكيميائية والنسيجية المرضية

ملاحظة: تأكد من أن الباحثين الذين يجرون المقايسات الكيميائية الحيوية والفحوصات النسيجية المرضية قد أعموا عن بروتوكول الدراسة.

  1. في نهاية الفترة التجريبية ، اجعل تخضع لصيام 12 ساعة طوال الليل وقم بالقتل الرحيم لها (50 مجم / كجم من الكيتامين و 10 مجم / كجم من زيلازين IP).
  2. قم بإزالة وفصل الخصيتين الأيسر عن الهياكل الملتصقة.
  3. قم بتجانس خمسة من أصل 10 أنسجة خصية من كل مجموعة في مخزن مؤقت للتجانس (0.25 M سكروز ، 0.5 ملي مولار EDTA ، 5 ملي مولار هيستيدين ، و PI مذاب في PBS ، درجة الحموضة 7.4) ، وقم بتثبيت أنسجة الخصية الخمسة المتبقية في محلول بوين للتقييم النسيجي.
  4. قم بتدوير المتجانسات عند 10,000 × جم لمدة 15 دقيقة عند 4 درجات مئوية في جهاز طرد مركزي بارد للحصول على المادة الطافية للتحليلات الكيميائية الحيوية.
  5. تحديد نشاط أوكسيديز الزانثين (XO) في الخصية عن طريق مقايسة الألوان الأنزيمي باستخدام مجموعات المختبر القياسية باتباع إرشادات الشركة المصنعة.
  6. فحص محتوى مالون ديالديهايد الخصية (MDA) عن طريق قياس الألوان21.
    1. تحديد تركيز بيروكسيد الدهون باستخدام المواد التفاعلية لحمض الثيوباربيتوريك (TBARS) التي يتم إنتاجها أثناء بيروكسيد الدهون
      ملاحظة: تعتمد هذه الطريقة على التفاعل بين حمض 2-ثيوباربيتوريك (TBA) والمالونديالديهايد ، وهو منتج نهائي لبيروكسيد الدهون. يعطي التسخين عند درجة الحموضة الحمضية مركب كروموجين وردي ([TBS] 2-malondialdehyde adaustrat) يتم قياس امتصاصه عند 532 نانومتر.
      1. قم بإزالة البروتين 200 ميكرولتر من العينة باستخدام 500 ميكرولتر من حمض ثلاثي كلورو أسيتيك (TCA) وجهاز طرد مركزي عند 3,000 دورة في الدقيقة لمدة 10 دقائق.
      2. أضف 1 مل من 0.75٪ TBA إلى 0.1 مل من المادة الطافية ، واتركها تغلي في حمام مائي لمدة 20 دقيقة عند 100 درجة مئوية ، واتركها تبرد بالماء المثلج.
      3. اقرأ امتصاص العينة / المعيار عند 532 نانومتر باستخدام مقياس الطيف الضوئي مقابل الفراغ. تحديد تركيز TBARS الناتج عن الاستقراء من المنحنى القياسي.
  7. فحص أنشطة الخصية من ديسموتاز الفائق (SOD) 22 ، والكاتلاز23 ، والجلوتاثيون بيروكسيداز (GPx) 24 باستخدام البروتوكولات المعمول بها كما ورد سابقا.
    1. تحديد SOD
      1. خفف 1 مل من العينة في 9 مل من الماء المقطر لعمل تخفيف 1 في 10. أضف 0.2 مل من هذه العينة المخففة إلى 2.5 مل من محلول كربونات 0.05 M (الرقم الهيدروجيني 10.2) لموازنة مقياس الطيف الضوئي.
      2. ابدأ التفاعل بإضافة 0.3 مل من 0.3 ملي مولار من الأدرينالين الطازج إلى الخليط واخلطه بسرعة عن طريق الانعكاس.
      3. إلى الكوفيت المرجعي ، أضف 2.5 مل من المخزن المؤقت ، و 0.3 مل من الركيزة (الأدرينالين) ، و 0.2 مل من الماء.
      4. راقب الزيادة في الامتصاص كل 30 ثانية لمدة 150 ثانية عند 480 نانومتر.
    2. تحديد الكاتالاز
      1. امزج 1 مل من المادة الطافية لمتجانس الخصية مع 19 مل من الماء المخفف لإعطاء تخفيف 1:29 للعينة.
      2. خذ 4 مل من محلول H2O2 (800 ميكرومول) و 5 مل من محلول الفوسفات في قارورة مسطحة القاع سعة 10 مل.
      3. امزج 1 مل من مستحضر الإنزيم المخفف بشكل صحيح (الخطوة 4.6.3.1) مع خليط التفاعل (الخطوة 4.6.3.2) باستخدام حركة دوامة لطيفة عند 37 درجة مئوية. اسحب 1 مل من خليط التفاعل وأضفه إلى 2 مل من كاشف ثنائي الكرومات / حمض الخليك على فترات 60 ثانية.
      4. حدد مستويات الكاتلاز في العينة من خلال مقارنة الامتصاص عند 653 نانومتر بمعيار الكاتلاز المعتمد.
    3. اختبار GPx
      1. احتضان خليط التفاعل الذي يحتوي على العينة عند 37 درجة مئوية لمدة 3 دقائق ، أضف 0.5 مل من حمض ثلاثي كلورو أسيتيك (TCA) بنسبة 10٪ ، وجهاز طرد مركزي عند 3,000 دورة في الدقيقة لمدة 5 دقائق.
      2. إلى 1 مل من المادة الطافية ، أضف 2 مل من محلول الفوسفات و 1 مل من محلول 5'-5'- ديثيوبيس (2-حمض ثنائي نيتروبنزويك (DTNB) ، واقرأ الامتصاص عند 412 نانومتر مقابل فراغ.
      3. تحديد نشاط الجلوتاثيون بيروكسيداز عن طريق رسم المنحنى القياسي واستقراء تركيز GSH المتبقي من المنحنى.
  8. مقايسة MPO وعامل نخر الورم - ألفا (TNFα)
    ملاحظة: يتضمن هذا الفحص أكسدة guaiacol إلى guaiacol المؤكسد في وجود بيروكسيد الهيدروجين. Guaiacol في شكله المؤكسد له لون بني ، والذي يقاس ضوئيا عند 470 نانومتر.
    1. استخدم مجموعات ELISA القياسية لتحديد نشاط نخاع النخاع في الخصية (MPO)21،25 ومستويات عامل نخر الورم ألفا (TNF-α).
  9. الفحص النسيجي المرضي باستخدام صبغة الهيماتوكسيلين والإيوزين (H & E)26،27 والكيمياء المناعية لتعبير الكاسبيز 3
    1. الحفاظ على أنسجة الخصية في سائل بوين; اغسل المنديل بالتولوين ، واغمره في شمع البارافين ، واحتضنه عند 60 درجة مئوية طوال الليل.
    2. خذ أقساما بسمك ~ 5 ميكرومتر ، وقم بإزالة البارافين منها وإعادة ترطيبها ، واسترجع المستضد باستخدام مخزن سيترات مسخن مسبقا ، واتركه ليبرد لمدة 30 دقيقة.
    3. نظف الشرائح بمناديل مختبرية ، وحدد مناطق القسم بقلم كاره للماء ، ورتب الشرائح في غرفة مرطبة.
    4. احتضان الشرائح لمدة 10 دقائق بعد حصار نشاط البيروكسيديز الداخلي باستخدام بيروكسيد الهيدروجين. اشطف الشرائح باستخدام PBS مرة واحدة ، ضع كتلة البروتين ، واحتضن لمدة 10 دقائق.
    5. اشطف الشرائح باستخدام PBS 2x ، وقم بتطبيق الأجسام المضادة الأولية المقابلة (caspase 3) ، واحتضن الشرائح لمدة 45 دقيقة ، واشطفها 2x باستخدام PBS.
    6. ضعي الجسم المضاد الثانوي ، واحتضنه لمدة 25 دقيقة ، واشطفه ب PBS 2x ، وأضف بوليمر HRP. كرر دورة الحضانة لمدة 25 دقيقة وشطفها 2x باستخدام PBS.
    7. احتضان الأقسام لمدة 5 دقائق في ركيزة ديامينوبنزيدين (DAB) ، اشطفها 2x باستخدام PBS ، وصطفها بالهيماتوكسيلين ، واشطفها بالماء المقطر.
    8. ضع محلول الأزرق على الأقسام ، واشطفه ، وجففه ، ونظفه ، ورفعه للفحص النوعي.
    9. افحص الأنسجة تحت المجهر الضوئي والتقط الصور المجهرية الضوئية بتكبير 100x و 400x باستخدام كاميرا رقمية متصلة بالمجهر.

4. التحليل الإحصائي

  1. قم بإجراء التحليل الإحصائي باستخدام البرنامج الذي تختاره. قم بإجراء اختبار أندرسون دارلينج واختبار داجوستينو وبيرسون واختبار شابيرو ويلك لاختبار الحالة الطبيعية.
  2. قم بإجراء اختبار t غير مقترن لاختبار الفرق الكبير بين كلتا المجموعتين: SO و T / D.
  3. قدم البيانات كمتوسط ± الخطأ القياسي للمتوسط. اضبط مستوى الأهمية عند p < 0.05 و p < 0.01 و p < 0.001 (كما هو مذكور في وسائل إيضاح الشكل).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تم استخدام نشاط XO ومستوى MDA وأنشطة SOD و catalase و GPx في الخصية كعلامات على الإجهاد التأكسدي. أدى الالتواء / الالتواء (T / D) إلى زيادة نشاط XO ومستويات MDA بشكل ملحوظ وتقليل أنشطة الخصية ل SOD و catalase و GPx في فئران T / D مقارنة بالفئران التي تعمل بالوهم (الشكل 1) ، مما يصور دور الإجهاد التأكسدي في الإصابة التي يسببها T / D.

علاوة على ذلك ، تم استخدام TNF-α ، وسيط الالتهاب ، و MPO ، وهو مؤشر...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تقدم هذه الورقة والفيديو المصاحب وصفا مفصلا خطوة بخطوة للتحريض الجراحي ل TT لدراسة IRI للخصية باستخدام نهج التثبيت. هذه الطريقة مفيدة بشكل خاص من حيث أنها تتجنب الإخراج المطول للخصية الناجمة عن تقنيات التثبيت7 وفي نفس الوقت ، تمثل عن كثب العرض السريري ل TT في البشر10،12.

عندما يتم تحديد نقص التروية للفترة الزمنية المحددة ، يتم إجراء إعادة التروية عن طريق إزالة غرزة خيط المحفظة ل...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى أصحاب البلاغ تضارب في المصالح للإعلان.

شكر وتقدير

ونعرب عن تقديرنا لمساعدة السيد أوجينيران، رئيس وحدة السمعية والبصرية في كلية العلوم الصحية، الذي ساعد في تصوير وتحرير الإجراء.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

```html
قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
1 cc syringesغير مطبقغير مطبقللتخدير
2-0 chromic sutureغير مطبقغير مطبقللجراح
Bard Parker knife handleغير مطبقغير مطبقللجراح
Curved Mosquito artery forcepsغير مطبقغير مطبقللجراح
Dissecting scissorsغير مطبقغير مطبقللجراح
GraphPad Prism (version 8.0.2)
Ketamine injectionSwiss Parenterals LTD Gujarat India2321154التخدير
Paracetamol injectionShanxi Zhongbao Pharmaceuticals, China220637مسكّن
PovidoneJAWA International limited Nigeria 135Sمنظف مطهر
Procaine penicillin powderAnhui Chengshi Pharmaceutical Co Ltd China201906للجراح
Surgical bladeغير مطبقغير مطبقللجراح
Surgical glovesZhenjiang huayang latex products China210325
Stitch scissorsغير مطبقغير مطبقللجراح
Toothed dissecting forcepsغير مطبقغير مطبقللجراح
Xylazine injectionBioveta Czech Republic396228Aالتخدير
Light MicroscopeNovel Microscope, Chinaغير مطبقللتقييم النسيجي المرضي
Digital CameraHayear, Chinaغير مطبقللتقييم النسيجي المرضي
TNF-α kitElabscience, USAE-EL-H0109للاختبار
Thermo Fischer kit (anti-mouse caspase 3 monoclonal for caspase 3 expression )Thermo Fischer Scientific Inc., USAغير مطبقللمناعة المجهرية (caspase 3)
```

المراجع

  1. Obi, A. O., Okeke, C. J., Ugwuidu, E. I. Acute testicular torsion: A critical analysis of presentation, management, and outcome in southeast Nigeria. Niger J Clin Pract. 23 (11), 1536-1541 (2020).
  2. Yang, C., Song, B., Tan, J., Liu, X., Wei, G. H. Testicular torsion in children: a 20-year retrospective study in a single institution. Sci World J. 14 (11), 362-368 (2011).
  3. Ganjiani, V., Ahmadi, N., RaayatJahromi, A. Protective effects of Stevia rebaudiana aqueous extract on experimental unilateral testicular ischaemia/reperfusion injury in rats. Andrologia. 52 (2), e13469(2020).
  4. Afolabi, O., Alabi, B., Omobowale, T., Oluranti, O., Iwalewa, O. Cysteamine mitigates torsion/detorsion-induced reperfusion injury via inhibition of apoptosis, oxidative stress and inflammatory responses in experimental rat model. Andrologia. 54 (1), e14243(2022).
  5. Taskinen, S., Taskinen, M., Rintala, R. Testicular torsion: orchiectomy or orchiopexy. J Ped Urol. 4 (3), 210-213 (2008).
  6. Cost, N. G., Bush, N. C., Barber, T. D., Huang, R., Baker, L. A. Pediatric testicular torsion: demographics of national orchiopexy versus orchiectomy rates. J Urol. 185 (6S), 2459-2463 (2011).
  7. Akhigbe, R. E., Odetayo, A. F., Akhigbe, T. M., Hamed, M. A., Ashonibare, P. J. Pathophysiology and management of testicular ischemia/reperfusion injury: Lessons from animal models. Heliyon. 10, e27760(2024).
  8. Kehinde, E. O., et al. Significance of determining the point of reperfusion failure in experimental torsion of testis. Int J Urol. 12 (1), 81-89 (2005).
  9. Dokmeci, D., et al. Protective effect of L-carnitine on testicular ischaemia-reperfusion injury in rats: Cellular biochemistry and its modulation by active agents or disease. Cell Biochem Funct. 25 (6), 611-618 (2007).
  10. Ellati, R. T., Kavoussi, P. K., Turner, T. T., Lysiak, J. J. Twist and shout: a clinical and experimental review of testicular torsion. Kor J Urol. 50 (12), 1159-1167 (2009).
  11. Ranade, A. V., et al. Effect of vitamin E administration on histopathological changes in rat testes following torsion and detorsion. Sing Med J. 52 (10), 742-746 (2011).
  12. Jafari, A., Ghasemnejad-Berenji, H., Nemati, M., Ghasemnejad-Berenji, M. Topiramate: A novel protective agent against ischemia reperfusion-induced oxidative injury after testicular torsion/detorsion. Am J Em Med. 44, 257-261 (2021).
  13. Turner, T. T. Acute experimental testicular torsion: no effect on the contralateral testis. J Androl. 6 (1), 65-72 (1985).
  14. Baker, L. A., Turner, T. T. Leydig cell function after experimental testicular torsion despite loss of spermatogenesis. J Androl. 16 (1), 12-17 (1995).
  15. Salmasi, A. H., et al. Effect of morphine on ischemia-reperfusion injury: experimental study in testicular torsion rat model. Urology. 66 (6), 1338-1342 (2005).
  16. Karakaya, E., Ateş, O., Akgür, F. M., Olguner, M. Rosuvastatin protects tissue perfusion in the experimental testicular torsion model. Int Urol Nephrol. 42 (2), 357-360 (2010).
  17. Ikebuaso, A. D., Yama, O. E., Duru, F. I., Oyebadejo, S. A. Experimental testicular torsion in a rat model: effects of treatment with Pausinystalia macroceras on testis functions. J Repro Infertil. 13 (4), 218(2012).
  18. Esmaeilsani, Z., Barati, F., Mohammadi, R., Shams-Esfandabadai, N., Karimi, I. Effects of curcumin nanoparticles on the tissue oxidative stress following testicular torsion and detorsion in rat model. Iran J Vet Surg. 14 (2), 97-104 (2019).
  19. Samy, A., et al. The potential protective and therapeutic effects of platelet-rich plasma on ischemia/reperfusion injury following experimental torsion/detorsion of testis in the Albino rat model. Life Sci. 256, 117982(2020).
  20. Schumacher, J. Testis. Equine Surgery. Auer,, Stick, J. A., Saunders, J. A. W. B. , 775-810 (2006).
  21. Desser, R. K., et al. Guinea pig heterophil and eosinophil peroxidase. Arch Biochem Biophys. 148 (2), 452-465 (1972).
  22. Hp, M. The role of superoxide anion in the autoxidation of epinephrine and a simple assay for superoxide dismutase. J Biol Chem. 247, 3170-3175 (1972).
  23. Euler, H. V., Josephson, K. Uber catalase. IS European. J Org Chem. 452, 158-181 (1972).
  24. Rotruck, J. T., et al. Selenium: biochemical role as a component of glutathione peroxidase. Science. 179 (4073), 588-590 (1973).
  25. Akhigbe, R. E., et al. Testicular toxicity in cisplatin-treated Wistar rats is mitigated by Daflon and associated with modulation of Nrf2/HO-1 and TLR4/NF-kB signaling. J Trace Elem Med Biol. 85, 127489(2024).
  26. Ricken, A. M., Hamed, M. A., Akhigbe, R. E. Histopathological evaluation of infertility: Lessons from laboratory rodents. Histol Histopathol. 39, 671-690 (2024).
  27. Ajayi, A. F., Akhigbe, R. E. In vivo exposure to codeine induces reproductive toxicity: role of HER2 and p53/Bcl-2 signaling pathway. Heliyon. 6 (11), e05589(2020).
  28. Ricken, A. M., Hamed, M. A., Akhigbe, R. E. Histopathological evaluation of infertility: Lessons from laboratory rodents. Histol Histopathol. 39, 671-690 (2024).
  29. Aldhabaan, S., Hudise, J. Y., ALqarny, M., Alarfaj, A. Catgut versus polypropylene sutures for transcolumellar incision closure in open rhinoplasty: a retrospective cohort study. Cureus. 8, e9769(2020).
  30. Afolabi, O. A., et al. Atorvastatin-mediated downregulation of VCAM-1 and XO/UA/caspase 3 signaling averts oxidative damage and apoptosis induced by ovarian ischaemia/reperfusion injury. Redox Rep. 27 (1), 212-220 (2022).
  31. Akhigbe, R. E., et al. Omega-3 fatty acid rescues ischaemia/perfusion-induced testicular and sperm damage via modulation of lactate transport and xanthine oxidase/uric acid signaling. Biomed Pharmacother. 142, 111975(2021).
  32. Wei, S. M., Yan, Z. Z., Zhou, J. Curcumin attenuate ischemia-reperfusion injury in rat testis. Fertil Steril. 91, 271-277 (2009).
  33. Ritchey, M. L., Bloom, D. A. Modified dartos pouch orchiopexy. Urology. 45 (1), 136-138 (1995).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

نقص تروية الخصيةالتواء الحبل المنوينسيج الخصيةمؤشرات الإجهاد التأكسديمؤشرات الالتهابمؤشرات الموت الخلوي المبرمجالكيس الصفنيالتقييم النسيجي المرضي
تثبيت الخصية الملتوية: نموذج الجرذ لإصابة نقص تروية الخصية
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.