مقالة منهجية

تصوير الرنين المغناطيسي ثلاثي الأبعاد السينمائي لحركة الجهاز التنفسي في الفئران والجرذان ذات التهوية الميكانيكية

1.6K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/67474

⸱

سبتمبر 19, 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Radiology and Nuclear Medicine, Amsterdam University Medical Center, 2Department of Intensive Care, Erasmus Medical Center, 3Department of Physiology, Amsterdam University Medical Center, 4Department of Biomedical Engineering & Physics, Amsterdam University Medical Center, 5MR Solutions, 6Department of Intensive Care, Radboud University Medical Center, 7BioMedical Engineering and Imaging Institute, Icahn School of Medicine at Mount Sinai

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

يسمح الإعداد المقترح بالتهوية الميكانيكية المتحكم فيها والتصوير بالرنين المغناطيسي لحركة الصدر ثلاثية الأبعاد في الفئران والفئران. لقد استخدمنا هذا الإعداد لدراسة الفيزيولوجيا المرضية الكامنة وراء الخلل الوظيفي لعضلات الجهاز التنفسي الناجم عن التهوية الميكانيكية.

الملخص

لم يتم بعد فهم الفيزيولوجيا المرضية لخلل الحجاب الحاجز في المرضى الذين يتم التهوية ميكانيكيا بشكل كامل ، وهناك حاجة إلى نماذج حيوانية مناسبة لاستيعاب المزيد من الأبحاث. تلعب إعدادات التهوية الميكانيكية ، مثل مستوى ضغط الزفير النهائي الإيجابي (PEEP) ، دورا حاسما. كان الهدف هو تطوير طريقة لتصوير حركة الصدر ثلاثية الأبعاد أثناء التهوية الميكانيكية للفئران والجرذان في إعدادات ضغط تنفسي مختلفة. تم تخدير الفئران (Wistar) والفئران (C57BL / 6) بمزيج من الكيتامين والأتروبين والديكسميديتوميدين. تم الحفاظ على التخدير عن طريق التسريب المستمر من خلال قسطرة بريتونية. بعد ذلك ، تم إجراء فغر القصبة الهوائية لتمكين التهوية الميكانيكية للحيوانات. تم وضع في نظام 7T MR أثناء التهوية باستخدام جهاز تنفس صناعي متوافق مع MR. تم إجراء التصوير السينمائي ثلاثي الأبعاد للصدر باستخدام تسلسل صدى متدرج ثلاثي الأبعاد مع ملء الفضاء k الحلزوني الزائف. تم تسجيل إشارة ملاح ، تم إنشاؤها بواسطة تدرج إعادة لف اختيار الشريحة ، كل TR. تم إجراء التجميع بأثر رجعي وإعادة بناء البيانات في 12 إطارا زمنيا سينمائيا تنفسيا باستخدام برنامج مطور داخليا. لقد نجحنا في تصور حركة الصدر في 3D في كلا النوعين أثناء التهوية الميكانيكية ، مما يتيح التحقيق في التغيرات في هندسة الصدر طوال الدورة التنفسية بمستويات متفاوتة من PEEP. وجدنا أن الربط بأثر رجعي لإطارات الجهاز التنفسي كان سهلا للغاية من خلال معدل التنفس الثابت. يمكن استخدام البروتوكول المقدم هنا لدراسة هندسة القلب والصدر والحركة في الفئران والجرذان ذات التهوية الميكانيكية.

المقدمة

التهوية الميكانيكية هي حجر الزاوية في علاج فشل الجهاز التنفسي الحاد في وحدة العناية المركزة. لسوء الحظ ، يمكن أن يسبب أيضا إصابة. تعد إصابة الرئة التي يسببها جهاز التنفس الصناعي ، وإصابات الدماغ المرتبطة بجهاز التنفس الصناعي ، والخلل الوظيفي في الحجاب الحاجز الناجم عن جهاز التنفس الصناعي أمثلة على المضاعفات علاجية المنشأ المرتبطة بالتهوية الميكانيكية الحادة1،2،3. لا تزال الفيزيولوجيا المرضية الكامنة وراء آليات الإصابة هذه غير مفهومة جيدا. حدد العمل التجريبي في آليات مهمة تكمن وراء مضاعفات التهوية الميكانيكية ، مما يسمح بالترجمة إلى الممارسة السريرية من خلال تطبيق استراتيجيات تهوية جديدة4. ومن الأمثلة الحديثة على ذلك البحث عن تأثير اختلالات التزامن في جهاز التنفس الصناعي على وظيفة الحجاب الحاجز في نماذج ARDS الخنازير5. مثل هذا البحث في النماذج الحيوانية ذات التهوية الميكانيكية أمر حيوي لتوضيح آليات الإصابة ، حتى مع الميل الحالي للابتعاد عن التجارب على. تتطلب الدراسات التي أجريت على تأثيرات التهوية الميكانيكية نظاما قلبيا رئويا سليما والقدرة على محاكاة الفيزيولوجيا المرضية الشائعة في وحدة العنايةالمركزة 4. تستخدم نماذج الكبيرة في كثير من الأحيان لأنها تحاكي فسيولوجيا الإنسان عن كثب من القوارض ويمكن تهويتها بالآلات المستخدمة في وحدة العنايةالمركزة 4. العيوب الرئيسية هي التكلفة الكبيرة المرتبطة باستخدام الكبيرة وعدم وجود نماذج حيوانية كبيرة معدلة وراثيا للتحقيق في الآليات الجزيئية للمرض6،7. لذلك ، لا مفر من التجارب على القوارض ذات التهوية الميكانيكية طالما أن البدائل ، مثل مزارع الأنسجة المتطورة أو نماذج الأعضاء على الرقاقة ، غير متوفرة.

التدخلات المختلفة التي حسنت النتائج في لم تترجم إلى البشر4،6 ، مما يؤكد أهمية فهم كيفية اختلاف النماذج الحيوانية الشائعة الاستخدام للتهوية الميكانيكية عن البشر. يتم تحديد تأثيرات إعدادات جهاز التنفس الصناعي على الجهاز التنفسي من خلال عدد كبير من العوامل التي قد تكون خاصة بالأنواع ، مثل مرونة الأنسجة ، وقوة العضلات ، والتباين في الاستجابة للتخدير شائع الاستخدام8،9،10،11. قد تؤدي هذه الاختلافات إلى تأثيرات متناقضة على حركة الصدر والرئة والهندسة التي قد تفسر التباين بين البشر. قد يوضح التحقيق في تأثير إعدادات التهوية على هندسة وحركة الجهاز القلبي الرئوي الاختلافات بين الأنواع وقد يساعد في ترجمة المفاهيم الفيزيولوجية المرضية المستمدة من الدراسات التي أجريت على إلى البيئة السريرية. مكن التقدم التقني للتصوير بالرنين المغناطيسي القلبي الوعائي الذي تم حله من خلال الحركة تصوير القلب النابض في نماذج القوارض ، مما يوفر نظرة ثاقبة للشكل والوظيفة والفيزيولوجيا المرضية في نماذج القوارض لأمراض القلب والأوعيةالدموية 12،13. هذه الطرق غير مستغلة بشكل كاف لتصوير الصدر والحركة أثناء الدورة التنفسية في ذات التهوية الميكانيكية.

نقدم هنا طريقة لدراسة هندسة الصدر وحركاتها في القوارض ذات التهوية الميكانيكية باستخدام التصوير بالرنين المغناطيسي ثلاثي الأبعاد. يسمح هذا بدراسة الآثار الحادة للعديد من إعدادات جهاز التنفس الصناعي أو التدخلات الأخرى على هندسة الصدر والحركة في القوارض ذات التهوية الميكانيكية. قمنا بتطبيق الحصول على التصوير بالرنين المغناطيسي ثلاثي الأبعاد ثلاثي الأبعاد ثلاثي الأبعاد الحلزوني اللولب الزائف للحيوانات الصغيرة ذات التهوية13،14. في هذه الدراسة الأولية ، قمنا بالتحقيق في آثار ضغط الزفير الإيجابي (PEEP) ، ولكن يمكن أيضا استخدام هذه الطريقة لدراسة تأثير التدخلات الأخرى أو إعدادات الجهاز التنفسي ، مثل نسبة I: E وحجم المد والجزر ومعدل التنفس. ستفتح هذه الطريقة مجموعة من الاحتمالات للتصوير قبل السريري لنماذج القوارض التي تتطلب تهوية ميكانيكية في مجال أبحاث العناية المركزة وما بعدها.

البروتوكول

تم تنفيذ جميع الإجراءات الموصوفة وفقا لتوجيه الاتحاد الأوروبي للمفوضية الأوروبية 86/609. تمت الموافقة على التجارب من قبل مجلس أخلاقيات في أمستردام UMC ، والموقع VUmc و AMC. تم الحصول على فئران C57BL / N وفئران Wistar من مختبرات نهر تشارلز. تم استخدام الفئران من الذكور والإناث الذين تتراوح أعمارهم بين 3-6 أشهر بوزن 25-32 جم والفئران الذكور والإناث الذين تتراوح أعمارهم بين 3-6 أشهر بوزن يتراوح بين 200-400 جم في جميع التجارب. تم توفير الطعام والماء بشكل محرر. تم تأقلم جميع لمدة أسبوع واحد على الأقل قبل بدء التجارب.

1. إعداد الإعداد

  1. تحضير أدوية التخدير باتباع الجرعات المذكورة في الخطوة 2.
  2. قم بمعايرة جهاز التنفس الصناعي عن طريق التمرير عبر قائمة جهاز التنفس الصناعي والنقر فوق إعداد > المزيد من جهاز التنفس الصناعي > Calib & Tests. قم بإجراء جميع الاختبارات والمعايرة الأربعة المدرجة هناك: اختبار التسرب ، وأنابيب التطهير ، وقياس المساحة الميتة ، وأنابيب التطهير.
  3. ضع جهاز التنفس الصناعي المتوافق مع MR في غرفة MR واسحب الكابلات المتصلة بجهاز التنفس الصناعي المتوافق مع MR من خلال تجويف جهاز MR. يمكن للمرء استخدام رئة اختبار (على سبيل المثال ، بالون صغير) للتحقق من التهوية القادمة من جهاز التنفس الصناعي المتوافق مع التصوير بالرنين المغناطيسي.
  4. قم بتوصيل جهاز التنفس الصناعي المتوافق مع MR بالضاغط ومصدر تدفق الأكسجين.
  5. قم بإعداد عمود زقزقة عن طريق ملء عمود قياس 10 مل بالماء وتحديد عمق الماء بالسنتيمتر. ضع أنبوب الزفير الخاص بجهاز التنفس الصناعي المتوافق مع التصوير بالرنين المغناطيسي في عمود PEEP. تظهر نظرة عامة على الإعداد في الشكل 1.
  6. قم بلصق وسادة تنفسية بشكل غير محكم على مهد التصوير بالرنين المغناطيسي في الموقع الذي سيكون فيه صدر.

2. التخدير وبدء التهوية الميكانيكية

  1. ابدأ تخدير (الفأر أو الفئران) بوضعه في غرفة غاز مملوءة ب 4٪ إيزوفلوران في 100٪ O2.
  2. وزن لتحديد جرعة التخدير. حقن موقع الجراحة (منطقة الحنجرة) ب 3 مجم / كغ بوبيفاكائين ووضع مرهم للعين في كلتا العينين.
  3. ضع على وسادة تدفئة أثناء التنفس التلقائي 2٪ -4٪ من الأيزوفلوران في 100٪ من الأكسجين من خلال مخروط الأنف. تأكد من مراقبة معدل ضربات القلب وتشبع الأكسجين ودرجة الحرارة عن طريق وضع مقياس التأكسج النبضي على أحد أقدام وإدخال مسبار ميزان حرارة المستقيم.
  4. اختبار عدم وجود ردود فعل قبل الشق. ارفع الجلد الذي يغطي الحنجرة والقصبة الهوائية بملقط جراحي وقم بعمل شق باستخدام مقص مثني.
  5. قم بتشريح الغدد اللعابية والعضلات الأساسية بصراحة حتى تظهر القصبة الهوائية.
  6. باستخدام ملقط حاد ومثني ، قم بتشريح الجانب الظهري من القصبة الهوائية وضع ملقط أسفل القصبة الهوائية لسحب خياطة حريرية مضفرة غير قابلة للامتصاص (مقاس 6/0) حول القصبة الهوائية.
  7. أمسك القصبة الهوائية في حلقة غضروفية وافتح القصبة الهوائية مباشرة أسفل الحلقة باستخدام مقص زنبركي.
  8. قم بتدوير القصبة الهوائية باستخدام 20 جرام (فأر) أو 14 جرام (فأر) ، مقطوعة بطول 1-1.5 سم تقريبا. اربط الخيط حول القصبة الهوائية المقنية لضمان إحكام الإغلاق.
  9. ابدأ تهوية بحجم المد والجزر 7 مل / كجم ، وتردد 150 نبضة في الدقيقة للفئران و 80 نبضة في الدقيقة للفئران ، و 2 سم H2O PEEP مع 3٪ إيزوفلوران في 100٪ أكسجين.
  10. يتم إجراء الحقن داخل الصفاق للجرعة التحريضية للتخدير بالحقن (الفأر: كيتامين 126 ملغ/كغ، ديكسميديتوميدين 0.1 ملغ/كغ، أتروبين 0.5 ملغ/كغ؛ الفئران: كيتامين 90 ملغ/كغ، ديكسميديتوميدين 0.25 ملغ/كغ، أتروبين 0.05 ملغ/كغ) وبعد 5 دقائق، يتم إنقاص تدفق الأيزوفلوران تدريجيا (3٪ إلى 0٪ خلال 10 دقائق) للسماح بالانتقال السلس من التخدير بالغاز إلى التخدير.
  11. ضع 24G Abbocath داخل الصفاق وقم بتوصيله بالبرفوسور بمعدلات الفأر التالية: كيتامين 36 مجم / كغ / ساعة ، ديكسميديتوميدين 0.02 مجم / كجم / ساعة ، أتروبين 0.075 مجم / كجم / ساعة ؛ الفئران: كيتامين 30 مجم / كجم / ساعة ، ديكسميديتوميدين 0.015 مجم / كجم / ساعة ، أتروبين 0.075 مجم / كجم / ساعة.
    ملاحظة: أجرينا فغر القصبة الهوائية لتهوية بدلا من التنبيب الفموي لأن هذا مكننا من وضع خياطة حول القصبة الهوائية. كان هذا مطلوبا لمنع تسرب الهواء ، وهو أمر بالغ الأهمية للحفاظ على زقزقة كافية.

3. التصوير بالرنين المغناطيسي تحت التهوية الميكانيكية

  1. ضع في مهد التصوير بالرنين المغناطيسي المخصص في وضع ضعيف ، وضع ملف التصوير بالرنين المغناطيسي المناسب للفئران أو الفئران فوقه مع مراقبة أنبوب بضع القصبة الهوائية.
  2. أوقف وافصل جهاز التنفس الصناعي المستخدم في 1.2 ومضخة التخدير وانقل إلى غرفة التصوير بالرنين المغناطيسي. أعد توصيل بجهاز التنفس الصناعي المتوافق مع التصوير بالرنين المغناطيسي وابدأ التهوية بحجم مد 10 مل / كجم وتردد 150 نبضة في الدقيقة للفئران و 80 نبضة في الدقيقة للفئران. حجم المد والجزر أكبر من جهاز التنفس الصناعي المستخدم في 1.2 لتجنيد أنسجة الرئة التي ربما تكون قد انهارت أثناء النقل.
  3. أعد توصيل مضخة التخدير بالمعدلات المذكورة أعلاه للحفاظ على عمق التخدير. اعتمادا على نظام التصوير بالرنين المغناطيسي ، ضع خطوط التخدير داخل أو خارج تجويف التصوير بالرنين المغناطيسي.
  4. ضع مستشعر جهاز مراقبة التشبع ومعدل ضربات القلب على الطرف الخلفي للحيوان وأدخل مسبار مقياس حرارة المستقيم. قم بتوصيل نظام مراقبة الجهاز التنفسي بوسادة الجهاز التنفسي. تحقق من جميع الإشارات وتأكد من أن معدل ضربات القلب وتشبع الأكسجين ودرجة الحرارة في النطاق الفسيولوجي.
    ملاحظة: يجب أن تشير مراقبة الجهاز التنفسي إلى ضبط تردد الجهاز التنفسي على جهاز التنفس الصناعي المتوافق مع التصوير بالرنين المغناطيسي ويستخدم فقط للكشف عن جهد التنفس من. في حالة بذل جهد تنفسي من ، يظهر منحنى الجهاز التنفسي قمم إضافية. وهذا يتطلب إعطاء جرعة إضافية من التخدير (1/3 من جرعة الحث الأولية).
  5. ضع في الماسح الضوئي بالرنين المغناطيسي بحيث يكون الملف متمركزا فوق الصدر وقم بتوصيل كبلات الترددات الراديوية بالملف. يوجد ملف ومهد منفصلان لاستيعاب اختلاف الحجم بين الفئران والجرذان (لفائف الفئران والمهد لها قطر أكبر مقارنة بملف الماوس). اغمر أنبوب الزفير 6 سم في عمود الماء ، مع إعطاء 6 سم H2O PEEP.
  6. قم بمعايرة حجم المد والجزر إلى 7-9 مل / كجم اعتمادا على تشبع الأكسجين (اختر أقل حجم مد ممكن مع تشبع 100٪).

4. اكتساب المسح الضوئي

ملاحظة: يوفر الجدول 1 نظرة عامة على إعدادات الفحص.

  1. استخدم طرقا محددة من قبل البائع لإجراء معايرة التردد اللاسلكي والحشوة.
  2. احصل على كشافة بخمس صور في الاتجاه الإكليلي والمحوري وتأكد من أن الصدر الكامل في مجال الرؤية (FOV). الكشافة هو مسح سريع يستخدم لتخطيط مستويات التصوير الأخرى وعادة ما يغطي مجال رؤية أكبر من الصور الأخرى. إذا لزم الأمر ، أعد ضبط موضع في المهد وأعد الكشافة.
  3. خطط لعمليات المسح ثنائي الأبعاد (انظر الجدول 1 والشكل 2) على صور الكشافة. تأكد من أن المستوى الإكليلي والسهمي يغطي الصدر بالكامل.
    ملاحظة: يتم وضع المستوى السهمي في الجزء العلوي من النصف الأيمن للحد من جزء القلب داخل مجال الرؤية. من خلال الحصول على SCOUT عند 6 سمH 2O PEEP ، نتأكد من تصوير الحجاب الحاجز في الموضع الذيلي.
  4. احصل على عمليات المسح 2D عند 6 سم H2O PEEP وأعد بناء الصور على الفور للتحقق من وضع وضمان جودة الصورة (اتبع الخطوة 6). إذا لزم الأمر ، أعد ضبط موضع مجال الرؤية أو وأعد عمليات الفحص.
  5. خطط للفحص ثلاثي الأبعاد (الشكل 2) عن طريق وضع مجال الرؤية حول الصدر الكامل وتغطية عمليات المسح ثنائية الأبعاد. تأكد من أن حوالي 20٪ من مجال الرؤية في اتجاه الشريحة خارج لمنع طي القطع الأثرية.
    ملاحظة: تتم إضافة عمليات المسح ثنائي الأبعاد إلى البروتوكول لأن وقت الاستحواذ أقصر من عمليات المسح ثلاثية الأبعاد، مما يجعلها مناسبة لاختبار تأثير التدخلات بسرعة.
  6. احصل على المسح ثلاثي الأبعاد باستخدام مخطط أخذ عينات الفضاء k الحلزوني الزائف المطلوب (الشكل 3) ، مما يسمح بتجميع البيانات بأثر رجعي قوي وتصور حركة الجهاز التنفسي14.
  7. كرر عمليات المسح 2D و 3D عند 3 و 0 سم H2O Peep. كان إجمالي وقت المسح 2.5 دقيقة لكل مسح ثنائي الأبعاد و 15 دقيقة لكل مسح ثلاثي الأبعاد.
    ملاحظة: في هذه الحالة ، قمنا بتكييف PEEP أثناء التجارب. اخترنا 0 و 3 و 6 سمH 2O PEEP لأننا نعلم من التجارب (الأبحاث السابقة والدراسات الجارية) مع ذات التهوية طويلة المدى أن مستويات PEEP هذه تؤدي إلى تغييرات ذات صلة في هندسة الحجاب الحاجز والصدر15. بالإضافة إلى ذلك ، اخترنا استخدام صفر ومستوى متوسط ومستوى عال من PEEP في هذا العمل لإظهار تأثير PEEP. اعتمادا على سؤال البحث ، يمكن إجراء تدخلات أخرى. على سبيل المثال ، يمكن دراسة آثار مرخيات العضلات أو الأدوية الأخرى على هندسة الصدر. يسمح لنا البروتوكول بدراسة التأثيرات داخل الموضوع للتدخل.

figure-protocol-1
الشكل 1: نظرة عامة على الإعداد. (أ) نظرة عامة تخطيطية على الإعداد ، (ب) إعداد الملف للماوس ، (ج) إعداد الملف للفأر ، مع تجويف أكبر من ملف الماوس ، (د) إعداد الملف فيما يتعلق بالماسح الضوئي بالرنين المغناطيسي ، (ه) عمود PEEP مع أنبوب الزفير الموضوع عند 3 سمH 2O PEEP و (F) لقطة مقربة للصمام الذي ينظم التهوية ، تشير إلى الأنابيب التي يجب وضعها في عمود PEEP. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-protocol-2
الشكل 2: تخطيط صور التصوير بالرنين المغناطيسي للعروض ثنائية الأبعاد وثلاثية الأبعاد. الشكل يوضح كيف تم تعيين مجال الرؤية للمسح ثنائي الأبعاد في الاتجاه السهمي والإكليلي (الصف العلوي والأوسط) والمسح ثلاثي الأبعاد في الاتجاه السهمي (الصف السفلي). يمثل العمود الأيسر إحدى شرائح الكشافة في الاتجاه المحوري على مستوى القلب ، ويظهر العمود الأوسط شريحة من الكشافة في الاتجاه الإكليلي ، ويظهر العمود الأيمن شريحة في الاتجاه المحوري على مستوى الكبد. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-protocol-3
الشكل 3: نمط أخذ العينات الحلزوني الزائف MR. يكون نمط أخذ العينات في اتجاه تشفير طور ky / kz مع حجم المصفوفة 80 × 80 محسن لتجميع حركة الجهاز التنفسي بأثر رجعي. يتم إنشاء اللوالب عن طريق البدء في مركز k-space ثم الخروج والعودة مرة أخرى ، وبالتالي تكرار كل دوامة. يتم تنفيذ نمط أخذ العينات بالكامل مع 25 تكرارا لتوليد بيانات كافية داخل كل إطار تنفسي. كل لولب له لون مختلف. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

5. نهاية التجربة

  1. بعد الانتهاء من جميع عمليات المسح ، أخرج من الماسح الضوئي. لا تستطيع البقاء على قيد الحياة من التجربة بسبب فغر القصبة الهوائية. القتل الرحيم للفئران المصابة بخلع عنق الرحم والفئران عن طريق الخروج من الفئران.
  2. احفظ جميع ملفات MR الأولية والمعاد بناؤها.
نوع المسح الضوئيكشاف صدى التدرجصدى التدرج 2Dالتدرج صدى 3D
اتجاهالإكليل والسهميةالإكليل والسهميةالسهمي
مخطط أخذ العينات في المساحةالديكارتيالديكارتيدوامة زائفة
عدد الشرائح10180
سمك الشريحة (مم)1 (فأر)1 (فأر)0.38 (الماوس)
1 (فأر)1 (فأر)0.81 (فأر)
فجوة الشريحة (مم)2 (ماوس)0 (ماوس)0 (ماوس)
5 (فأر)0 (فأر)0 (فأر)
أخذ عينات من الشرائح*0.80.80.8
مجال الرؤية (قراءة × المرحلة × الشريحة ؛ مم)35 × 35 (ماوس)30 × 23 (ماوس)30 × 23 × 30 (ماوس)
80 × 80 (فأر)65 × 49 (فأر)65 × 49 × 65 (فأر)
حجم المصفوفة (التردد × المرحلة)256 س 192256 س 192211 س 80 س 80
TR / TE (مللي ثانية)453284533045328
زاوية الوجه (°)151510
عدد التكرارات807025
تحفيز الجهاز التنفسيلانعم ، بأثر رجعينعم ، بأثر رجعي
وقت التصوير (دقيقة: ثانية)2:022:2316:00
مستويات زقزقة (cmH2O)66, 3, 06, 3, 0

الجدول 1: معلمات الاكتساب لجميع عمليات المسح. * يشير أخذ عينات الشريحة إلى النسبة المئوية لنبض اختيار الشريحة المستخدمة للتصوير

6. إعادة بناء الصورة

  1. لإجراء إعادة بناء الصورة ، استخدم البرنامج المطور داخليا المتاح على GitHub16. قم بتنفيذ هذه الخطوات لجميع عمليات الفحص باستخدام ملاح يتطلب بوابات تنفسية بأثر رجعي.
    ملاحظة: تم وصفه سابقا من قبل Daal et al. ، لكن هذا العمل ركز على تصوير القلب13. هنا ، نصف طريقة لإعادة بناء صور الجهاز التنفسي المسورة للصدر بأكمله.
  2. قم بتحميل ملف البيانات الأولية بالنقر فوق تحميل MRD. يصور هذا إشارة المتصفح الأولية والطيفها في اللوحة العلوية اليسرى. إذا كانت إشارة الجهاز التنفسي غير مرئية بوضوح، فقم بتكييف المتصفح الأساسي في علامة التبويب الإعدادات.
  3. في مرشحات القلب / التنفس ، املأ معدل التنفس المحدد على جهاز التنفس الصناعي المتوافق مع التصوير بالرنين المغناطيسي واضبط العرض على 15. الإعدادات الموجودة في المربعات الأخرى ليست ذات صلة بهذا النوع من إعادة الإعمار. اضغط على عامل التصفية لتطبيق الإعدادات ، مما ينتج عنه إشارة متصفح مسورة ، كما هو موضح في الشكل 4. تأكد من أن الإشارة الحمراء في المربع متصفح التنفس ومعدل التنفس يتبعان إشارة الملاح الخام الزرقاء.
  4. في Cine، حدد فيلم الجهاز التنفسي واضبط عدد الإطارات على 12 وعدد الديناميكيات على 1. في علامة التبويب الهندسة ، قم بتشغيل PCA (المستوى 8) ومرشح الرنين. اضغط على فرز k-space لتطبيق الإعدادات.
  5. في معلمات CS reco ، قم بتطبيق الإعدادات التالية: WVxyz 0.0010 ، TVxyz 0.0000 ، LLRxyz 0.0050 ، TVcine 0.015 ، TVdyn 0.000. اضغط على Reco Movies لبدء إعادة البناء.
  6. افحص إعادة البناء في اللوحة اليمنى السفلية عن طريق التمرير عبر الإطارات والشرائح (إن أمكن). قم بتصدير الصور المعاد بناؤها بالضغط على Export DCM و / أو Export GIF.

7. تحليل الصور

ملاحظة: اعتمادا على سؤال البحث ، يمكن حساب العديد من معلمات النتائج من الصور السينمائية. هنا ، نركز على المعلمات التي تحدد هندسة الصدر وحجم الرئة والرحلة.

  1. افتح عارض DICOM مناسبا ، على سبيل المثال ، البرنامج المذكور في جدول المواد وقم بتحميل سينما ثنائية الأبعاد بالنقر فوق ملف > فتح وتحديد ملفات 2D cinema. حدد الإطار ذو أعلى موضع للحجاب الحاجز (إطار زفير نهاية الشعر). حدد الإطار وافتحه في عارض DICOM.
  2. قم بقياس أبعاد الرئة الأمامية والخلفية والقحفية (الشكل 5) في السينما السهمية ثنائية الأبعاد والبعد الأيسر واليمين في السينما ثنائية الأبعاد الموجهة نحو الإكليل يدويا باستخدام زر القياس في microdicom. كرر هذه القياسات لجميع مستويات PEEP أو التدخلات الأخرى. يمكن أيضا إجراء هذه القياسات في إطار واحد من السينما ثلاثية الأبعاد ، اعتمادا على اختيار عمليات المسح.
  3. قم بتحميل السينما ثلاثية الأبعاد في برنامج تحليل الصور ثلاثية الأبعاد وضع الصورة في الاتجاه الصحيح بالنقر فوق أدوات > إعادة توجيه الصورة. املأ SPL كرمز RAI. حدد إطار انتهاء الصلاحية عن طريق التمرير عبر الديناميكيات في Tools > Layer Inspector ثم قم بزيادة رقم المكون.
  4. قم بتهيئة التجزئة عن طريق تحديد الجزء الأوسط من الرئتين يدويا في شريحتين لكل اتجاه (الشكل 6). استخدم وضع فرشاة الرسم واضبط حجم الفرشاة إذا لزم الأمر.
  5. ابدأ التجزئة ثلاثية الأبعاد بالضغط على Active Contour في شريط الأدوات الرئيسي. تأكد من أن الصندوق الأحمر (ROI) يغطي الصدر بالكامل. قم بتشغيل التهيئة باستخدام التجزئة الحالية واضغط على Segment 3D.
  6. حدد الحد كوضع ما قبل التقسيم واستخدم الحد الأعلى فقط عن طريق تحديد وضع الحد الأيمن. اضغط على التالي. ثم تخطي خطوة إضافة الفقاعات بالضغط مرة أخرى على التالي. نظرا لأن التجزئة قد تمت تهيئتها بالفعل في الخطوة 7.5، فلا داعي لإضافة أي فقاعات.
  7. ابدأ الكنتور النشط بالضغط على زر التشغيل وأوقفه مؤقتا بمجرد وصول التجزئة إلى حواف الرئة. قم بالتمرير عبر الصور للتحقق من التجزئة. اضغط على إنهاء لإنهاء التجزئة.
  8. اضغط على تحديث لتصور التجزئة ثلاثية الأبعاد في اللوحة اليسرى السفلية وفحصه وتدويره.
  9. احفظ التجزئة بتنسيق NiFTI بالنقر فوق التجزئة > حفظ صورة التجزئة وملف شبكة STL بالنقر فوق التجزئة > شبكة تجزئة التصدير.
  10. اكتب حجم الرئة الذي يمكن العثور عليه في التجزئة والحجم والإحصائيات.
  11. سجل صور حالات الجهاز التنفسي الأخرى في ديناميكية انتهاء الصلاحية باستخدام البرنامج النصي الموجود في ملف الترميز التكميلي 1. قم بتطبيق التحويلات المحسوبة على التجزئة ، مما يؤدي إلى تجزئة لكل ديناميكية. استخدم هذه التقسيمات لحساب معلمات النتائج، مثل الرحلات في جميع الاتجاهات.

النتائج

باستخدام البروتوكول الموصوف في هذه الدراسة ، قمنا بمسح مجموعة من 8 فئران C57BL / 6 WT صحية و 8 فئران Wistar WT بنجاح باستخدام ماسح ضوئي للتصوير بالرنين المغناطيسي 7 تسلا. تمكنا من تهوية ميكانيكيا على مستويات مختلفة من PEEP ومراقبة المعلمات الفسيولوجية الأساسية أثناء المسح (الشكل 7).

في الشكل 5 ، يظهر مثال على ثلاثة عمليات مسح ثنائية الأبعاد في إطار الزفير النهائي لفأر وفأر في اتجاه سهمي. كما يتضح ، يقدم PEEP إزاحة ذيلية للحجاب الحاجز في كلا الحيوانين ، ولكن في الفئران ، يصاحب ذلك اتساع الصدر أيضا ، يشار إليه بزيادة في القطر الأمامي الخلفي.

تظهر هذه الفحوصات عالية الجودة أنه باستخدام هذه التقنية ، يمكننا قياس حجم الأجزاء المختلفة من الصدر وإظهار تأثيرات إعدادات التهوية المختلفة على حركة الصدر والحجاب الحاجز. يسمح وقت الفحص القصير بمقارنة داخل الأشخاص لمعلمات النتائج التي يهتم بها المرء ، مما يقلل من العدد المطلوب من. يوضح الجدول 2 معلمات النتائج لجميع.

يوضح الشكل 8 تجزئة الرئة لديناميكية الزفير النهائي عند ثلاثة مستويات زقزقة مع حجم الرئة المقابل. كما هو متوقع ، أدت زيادة PEEP إلى زيادة حجم الرئة. يتم عرض السينما ثلاثية الأبعاد أيضا كفيلم في الفيديو التكميلي 1 والفيديو التكميلي 2.

figure-results-1
الشكل 4: لقطة شاشة للبرنامج المستخدم لإعادة بناء الصور مع بوابات البيانات بأثر رجعي. يعتمد باب البيانات على إشارة الملاح. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-2
الشكل 5: نتائج تمثيلية للصور ثنائية الأبعاد في فأر وفأر عند ثلاثة مستويات زقزقة ، مع أبعاد الرئة الأمامية والخلفية والقحفية الذيلية. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

figure-results-3
الشكل 6: لقطة شاشة للبرنامج المستخدم لتقسيم الرئتين في العنواب ثلاثية الأبعاد. في اللوحة العلوية اليسرى ، يظهر منظر محوري للسينما ثلاثية الأبعاد مع تقسيم الرئة باللون الأحمر. في اللوحة العلوية اليمنى ، يظهر منظر سهمي مع تقسيم الرئة باللون الأحمر. في اللوحة السفلية اليسرى ، يظهر عرض ثلاثي الأبعاد للرئة المجزأة. في اللوحة اليمنى واليسرى ، يظهر منظر إكليلي مع تقسيم الرئة باللون الأحمر. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-4
الشكل 7: المعلمات الحيوية للحيوانات أثناء التجارب. N = 8 فئران (أزرق) ، N = 8 فئران (برتقالي). تظهر البيانات على أنها متوسطة مع SD. لاحظ انخفاض معدل ضربات القلب عندما تدخل إلى مستوى التخدير الجراحي. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-5
الشكل 8: تجزئة ثلاثية الأبعاد للرئتين عند ثلاثة مستويات زقزقة مع أحجام الرئة المقابلة. تجزئة رئة الفئران عند PEEP 0 (العمود الأيسر) ، PEEP 3 (العمود الأوسط) ، و PEEP 6 (العمود الأيمن). في الصف العلوي ، يظهر الجانب الخلفي من الرئتين. في الصف الأوسط يظهر الجانب الأمامي من الرئتين. يتم قياس الأحجام الموضحة في الصف السفلي داخل الرئتين ثلاثية الأبعاد المرئية في هذا الشكل. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

فيديو تكميلي 1: سينمائي ثلاثي الأبعاد للفأر. الرجاء النقر هنا لتنزيل هذا الفيديو.

فيديو تكميلي 2: سينمائي ثلاثي الأبعاد لجرذ. الرجاء النقر هنا لتنزيل هذا الفيديو.

ملف الترميز التكميلي 1: برنامج نصي لتسجيل التجزئة إلى عمليات اقتناء أخرى. الرجاء النقر هنا لتنزيل هذا الملف.

المناقشة

تظهر هذه الدراسة أن التصوير بالرنين المغناطيسي ثلاثي الأبعاد مع بوابات بأثر رجعي يسمح بقياس حركة الصدر في نموذجين حيوانيين أثناء التهوية الميكانيكية. هذه التقنيات لديها القدرة على استخدامها في الأبحاث المستقبلية التي تتضمن تصوير القلب والصدر في الفئران والفئران ذات التهوية الميكانيكية. وجدنا أنه نظرا لتردد التنفس الثابت ، كان التجميع بأثر رجعي قويا للغاية.

تتمثل إحدى الخطوات الحاسمة في البروتوكول في إعداد الوضع الصحيح للحيوانات داخل ملفات التصوير بالرنين المغناطيسي. أثناء المسح ، لا يمكن إعادة وضع. بالإضافة إلى ذلك ، فإن الحفاظ على الحرارة الطبيعية أمر مهم جدا لضمان إجراء القياسات في ظل ظروف فسيولوجية ، حيث يمكن أن تسبب التخدير انخفاض حرارة الجسم من خلال توسع الأوعية الطرفية ، ويمكن أن تسبب نبضات الترددات الراديوية لبروتوكول التصوير بالرنين المغناطيسي هذا ارتفاع حرارةالجسم 17،18. في الشكل 7 ، يمكن رؤية تقلبات درجة حرارة الجسم خلال الفترة القصيرة حول نقل إلى الماسح الضوئي (حوالي علامة 1 ساعة) حيث لا يتم تطبيق أي حرارة من مصدر خارجي. خطوة حاسمة أخرى هي معايرة التخدير ، خاصة في الفئران. مستوى التخدير حيث لا تظهر الفئران جهدا تنفسيا ولكنها تحافظ على معايير حيوية مستقرة ضيق ويتطلب مراقبة دقيقة لإشارة الجهاز التنفسي وتعديل معدلات ضخ التخدير. في الفئران ، لم نواجه مثل هذه المشكلات في نطاق التخدير المستخدم. ستتأثر جودة الصورة سلبا إذا كانت هناك جهود تنفسية للحيوان بسبب إعادة بناء الصور بأثر رجعي بناء على تردد الجهاز التنفسي المحدد. من الممكن استخدام نظام تخدير مختلف ، مثل التخدير الاستنشاق مع الأيزوفلوران أو التخدير بالحقن البديل الذي يسبب المزيد من قمع جهد الجهاز التنفسي. جهاز التنفس الصناعي للحيوانات الصغيرة CWE-MRI-1 المستخدم في هذا البروتوكول متوافق مع التخدير الاستنشاقي19.

هناك ثلاث خطوات حاسمة لإعادة إنتاج طريقة التصوير بالرنين المغناطيسي المقترحة في هذه الدراسة. أولا ، يجب استخدام نفس تسلسل التصوير بالرنين المغناطيسي الأساسي (أي 3D FLASH). مثل هذا التسلسل متاح بشكل أساسي في جميع أنظمة التصوير بالرنين المغناطيسي. ثانيا ، قد يتطلب مسار k-space المذكور في هذا العمل (الحلزوني الزائف) تصحيحا برمجيا يمكنه تنفيذ مسارات k-space المحددة من قبل المستخدم. ندعو القراء للتواصل مع المؤلف المقابل إذا كانوا يرغبون في تكرار عملية الاستحواذ. هناك خبرة في تنفيذ هذا النوع من الاستحواذ على أنظمة من بائعين آخرين. أخيرا ، فإن خط أنابيب إعادة الإعمار الذي نشاركه كبرنامج مفتوح المصدر محايد من البائع ، وبالتالي فهو قابل للتطبيق على جميع أنظمة ما قبل السريرية.

اخترنا التحفيز بأثر رجعي والتقطيع على التحفيز المحتمل لعدة أسباب. في المقام الأول ، يوفر التشغيل بأثر رجعي وتجميع بيانات k-space المرونة الكاملة في عدد إطارات CINE التنفسية المعاد بناؤها ، مما يسمح لنا بتحسين الدقة الزمنية والدقة المكانية ونسبة الإشارة إلى الضوضاء. بالإضافة إلى ذلك ، يقدم التحفيز المحتمل وقتا ميتا في نهاية كل دورة تنفسية حيث ينتظر الماسح الضوئي الزناد التالي ، والذي يمكن أن يعطل الحالة المستقرة ويؤدي إلى دورة غير مكتملة. مع التهوية الميكانيكية ، يكون هذا الوقت الميت ضئيلا ولكنه لا يزال موجودا.

القيد الرئيسي لهذا البروتوكول هو عدم القدرة على قياس ضغط مجرى الهواء أو المريء. على حد علمنا ، لا توجد مستشعرات ضغط الرئة أو المريء المتوافقة مع التصوير بالرنين المغناطيسي للحيوانات الصغيرة في السوق. قيد آخر هو عدم وجود قياسات مستمرة لضغط الدم داخل التصوير بالرنين المغناطيسي. استند بروتوكول التخدير إلى بحث مؤسسي سابق. تمت إضافة الأتروبين بسبب ارتفاع معدل انتشار بطء القلب وانخفاض ضغط الدم الذي لوحظ سابقا. على الرغم من أن المراقبة المستمرة لضغط الدم لم تكن ممكنة بسبب قيود بيئة التصوير بالرنين المغناطيسي ، إلا أن ارتفاع ضغط الدم غير مرجح ، حيث لم يلاحظ عدم انتظام دقات القلب (الشكل 7). تألفت المراقبة المستخدمة في هذا البروتوكول من معدل ضربات القلب وتشبع الأكسجين ودرجة الحرارة وإشارة الجهاز التنفسي بناء على حركة جدار الصدر. باستخدام هذه القياسات ، يمكن أن توجه نظرة عامة على المعلمات الحيوية للحيوانات إدارة التخدير ، لكن قراءة ضغط الدم يمكن أن تمنع تناول جرعات زائدة من من إظهار جهد تنفسي. لم يتم نشر أي دراسات أخرى للتصوير بالرنين المغناطيسي تتعلق بفسيولوجيا الجهاز التنفسي للقوارض ذات التهوية الميكانيكية ، ولكن يمكن استخدام هذه الطريقة لمجموعة واسعة من الأسئلة البحثية خارج أبحاث الجهاز التنفسي. يمكن أيضا استخدام برنامج إعادة الإعمار المذكور في المخطوطة (بأثر رجعي) لإعادة بناء الصور طوال الدورة القلبية ، مما يسمح للباحث بالحصول على صور عالية الدقة للقلب والأوعية الدموية بدون قطع أثرية متحركة. يمكن تطبيق هذا البروتوكول في كل مشروع يتطلب تهوية ميكانيكية للفئران أو الفئران أثناء المسح. يمكن للمرء ، على سبيل المثال ، التفكير في دراسة العلاقة بين إعدادات التهوية الميكانيكية ووظيفة القلب. تشمل الخيارات الأخرى تصوير ذات الصدر المفتوح أو بعد العمليات الجراحية التي تتطلب تهوية ميكانيكية.

الإفصاحات

رسلان غاريبوف موظف في MR Solutions Ltd. ، جيلدفورد ، المملكة المتحدة.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل ZonMW Grant 09120011910004 (GS ، CO ، LH) ومنحة المعاهد الوطنية للصحة 5R01HL121500 (CO).

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
<قوية>معدات< / قوية>
  11 Plus مضخة حقنة رقمية مزدوجةجهاز هارفارد (الولايات المتحدة الأمريكية)229193-2مضخة حقنة مزدوجة مع ميزات قابلة للبرمجة للمختبرات
مكيف إشارة أحادي ومتعدد القنوات AccuSensشركة Opsens solutions Inc. (كندا)معطر ACS-P4-N-62SCتستخدم مع مستشعر درجة حرارة الألياف البصرية لمراقبة درجة حرارة الجسم
مستشعر درجة حرارة الألياف البصرية   ؛شركة Opsens solutions Inc. (كندا)OTP-M
مهد الفأرÉ quipment V & eacute; ر é رينير مينيفر (فرنسا)
موسستات جونيور كينت ساينتفيك (الولايات المتحدة الأمريكية)MSTAT-JRيوفر MouseSTAT Jr.   قياس التأكسج النبضي الدقيق في كل من الفئران والجرذان.
الماسح الضوئي MRإم آر سوليوشنز (المملكة المتحدة)MRS-7024
المراقبة المتوافقة مع MR & نظام البوابات للحيوانات الصغيرةشركة SA Instruments، Inc. (الولايات المتحدة الأمريكية)1030وحدة RT (وحدة واجهة الجهاز التنفسي) ، وحدة التحكم / البوابات ERT ، حزمة البطارية
جهاز التنفس الصناعي المتوافق مع التصوير بالرنين المغناطيسي 1CWE (الولايات المتحدة الأمريكية)12-07000جهاز تهوية ميكانيكي مناسب لتهوية الصغيرة في بيئات الرنين المغناطيسي. إنه يعمل بالتهوية بمبدأ يعتمد على التدفق × الوقت الذي يتم التحكم فيه في الحجم باستخدام الصمامات الهوائية.
وحدة التحكم في درجة الحرارة متعددة المحطات و PCA عالي التدفقÉ quipment V & eacute; ر é رينير مينيفر (فرنسا)
عمود زقزقةعمود قياس السوائل المعاد توجيهه
جهاز التنفس الصناعي الميكانيكي Physiosuiteكينت ساينتفيك (الولايات المتحدة الأمريكية)جهاز التنفس الصناعي الميكانيكي مناسب لتهوية الصغيرة. إنه يهوى بمبدأ يتم التحكم في الحجم والتحكم في الضغط.
مستشعرات مخلب مقياس التأكسج النبضي ، متوافقة مع التصوير بالرنين المغناطيسيكينت ساينتفيك (الولايات المتحدة الأمريكية)SPO2-MSE-التصوير بالرنين المغناطيسيمستشعر مخلب متوافق مع التصوير بالرنين المغناطيسي ل Mousestat Jr.
مهد الفئرانÉ quipment V & eacute; ر é رينير مينيفر (فرنسا)
ملف RF ، الماوسإم آر سوليوشنز (المملكة المتحدة)ملف RF بحجم الماوس 38 مم لدراسات جسم الفأر
ملف RF ، الجرذإم آر سوليوشنز (المملكة المتحدة)65 مم   ملف RF حجم الفئران لدراسات جسم الفئران
<أدوات قوية> جراحية< / قوية>
أبوكاث 14 جرام ، 20 جرام ، 22 جرام ، 24 جرامأبوكاث14 جرام ، 20 جرام ، 22 جرام للاستخدام كأنبوب رغامي ، 24 جرام لتسريب التخدير داخل الصفاق
إثيلون 3-0   ؛ خياطة FD-1 بإبرةإيثيكون (الولايات المتحدة الأمريكية)663 ح
ملقط # 55دومون (سويسرا)55
مقص ميتزنباومأدوات العلوم الجميلة (ألمانيا)14017-14
حامل إبرةأدوات العلوم الجميلة (ألمانيا)12005-15
خياطة حريرية مضفرة غير قابلة للامتصاص 6/0أدوات العلوم الجميلة (ألمانيا)18020-60
مقص الربيعأدوات العلوم الجميلة (ألمانيا)15033-09
ستيفنز مقص بضع الوترأدوات العلوم الجميلة (ألمانيا)14064-11
خياطة ربط الملقطأدوات العلوم الجميلة (ألمانيا)18025-10
شريط ميديبور3M (الولايات المتحدة الأمريكية)
<قوي>دواء
أتروبين 0.25 مجم / مل
ديكسميديتوميدين 0.5 مجم / مل ديكسدورميتورأوريون فارما (فنلندا)
مرهم العين DuratearsAlcon Nederland BV (هولندا)
إيزوفلورانAST فارما (فرنسا)
كيتامين 100 مجم / مل كيتكسكسألفسان (هولندا)
الفازلين الفازلين الفازلينيونيليفر (هولندا)
<قوي>برمجيات
المرونةمعهد علوم الصور ، UMC أوتريخت (هولندا)
ايتكسنابجامعة بنسلفانيا (الولايات المتحدة الأمريكية)
ماتلاب 2019 أشركة ولفرام للأبحاث (الولايات المتحدة الأمريكية)
ميكروديكومMicrodicom (بلغاريا)
الاستوائيةأمستردام UMC (هولندا)

المراجع

  1. Bassi, T., Taran, S., Girard, T. D., Robba, C., Goligher, E. C. Ventilator-associated brain injury: A new priority for research in mechanical ventilation. Am J Respir Crit Care Med. 209 (10), 1186-1188 (2024).
  2. Slutsky, A. S., Ranieri, V. M. Ventilator-induced lung injury. N Engl J Med. 369 (22), 2126-2136 (2013).
  3. Levine, S., et al. Rapid disuse atrophy of diaphragm fibers in mechanically ventilated humans. N Engl J Med. 358 (13), 1327-1335 (2008).
  4. Silva, P. L., Scharffenberg, M., Rocco, P. R. M. Understanding the mechanisms of ventilator-induced lung injury using animal models. Intensive Care Med Exp. 11 (1), 82(2023).
  5. Damiani, L. F., et al. Impact of reverse triggering dyssynchrony during lung-protective ventilation on diaphragm function: An experimental model. Am J Respir Crit Care Med. 205 (6), 663-673 (2022).
  6. Guillon, A., et al. Preclinical septic shock research: why we need an animal ICU. Ann Intensive Care. 9 (1), 66(2019).
  7. Larsson, L. Experimental animal models of muscle wasting in intensive care unit patients. Crit Care Med. 35 (9), S484-S487 (2007).
  8. Schwarte, L. A., Zuurbier, C. J., Ince, C. Mechanical ventilation of mice. Basic Res Cardiol. 95 (6), 510-520 (2000).
  9. Leith, D. E. Comparative mammalian respiratory mechanics. Am Rev Respir Dis. 128 (2 Pt 2), S77-S82 (1983).
  10. Vinegar, A., Sinnett, E. E., Leith, D. E. Dynamic mechanisms determine functional residual capacity in mice, Mus musculus. J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. 46 (5), 867-871 (1979).
  11. Oh, S. S., Narver, H. L. Mouse and rat anesthesia and analgesia. Curr Protoc. 4 (2), e995(2024).
  12. Li, H., et al. Technical aspects of small animal CMR imaging. Front Phys. 8, ARTN 183(2020).
  13. Daal, M. R. R., et al. Quantification of mouse heart left ventricular function, myocardial strain, and hemodynamic forces by cardiovascular magnetic resonance imaging. J Vis Exp. (171), e62595(2021).
  14. Gottwald, L. M., et al. Pseudo-spiral sampling and compressed sensing reconstruction provides flexibility of temporal resolution in accelerated aortic 4D flow MRI: A comparison with k-t principal component analysis. NMR Biomed. 33 (4), e4255(2020).
  15. Sudy, R., et al. Different contributions from lungs and chest wall to respiratory mechanics in mice, rats, and rabbits. J Appl Physiol (1985). 127 (1), 198-204 (2019).
  16. Strijkers, G. J. Retrospective-v9.7: Self-gated cine MRI reconstruction. , Available from: https://github.com/Moby1971/Retrospective-v9.8 (2023).
  17. Caro, A. C., Hankenson, F. C., Marx, J. O. Comparison of thermoregulatory devices used during anesthesia of C57BL/6 mice and correlations between body temperature and physiologic parameters. J Am Assoc Lab Anim Sci. 52 (5), 577-583 (2013).
  18. Tang, M., Yamamoto, T. Progress in Understanding Radiofrequency Heating and Burn Injuries for Safer MR Imaging. Magn Reson Med Sci. 22 (1), 7-25 (2023).
  19. Munting, L. P., et al. Influence of different isoflurane anesthesia protocols on murine cerebral hemodynamics measured with pseudo-continuous arterial spin labeling. NMR Biomed. 32 (8), e4105(2019).

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

التصوير بالرنين المغناطيسي السينمائي ثلاثي الأبعادتصوير الحركة التنفسيةالتهوية الميكانيكيةضغط نهاية الزفير الإيجابيحركة الصدرتقسيم الرئةخلل وظيفة الحجاب الحاجزجهاز تهوية متوافق مع الرنين المغناطيسيتصوير القوارضهندسة الصدر
تصوير الرنين المغناطيسي ثلاثي الأبعاد السينمائي لحركة الجهاز التنفسي في الفئران والجرذان ذات التهوية الميكانيكية
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.