يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

نموذج الخنازير ذي الصلة سريريا لنقص تروية عضلة القلب المزمن عن طريق وضع مضيق الشمردي مع رسم خرائط التروية المتزامن

371 مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/68490

⸱

أكتوبر 10, 2025

 ,  ,  ,  , 
1Department of Surgery, Division of Cardiothoracic Surgery, Warren Alpert Medical School, Brown University, 2Cardiovascular Research Center, Rhode Island Hospital

في هذه المقالة

ملخص

الهدف من هذا المشروع هو تفصيل بروتوكول مدقق بدقة للوضع الجراحي لمضيق الشمردي حول الشريان التاجي المحيط الأيسر القريب (LCx) ، وبالتالي إحداث مرض الشريان التاجي المزمن ورسم خرائط دقيقة للمنطقة الإقفارية باستخدام الكريات المجهرية المسماة بالنظير.

الملخص

على الرغم من الاختراقات في العلاجات الطبية والإجرائية لعلاج أمراض القلب والأوعية الدموية ، استمرت الحاجة إلى نماذج حيوانية كبيرة متعدية للتحقيق في أدوات التشخيص واستراتيجيات العلاج. تمثل الخنازير نموذجا دقيقا ومناسبا بدقة لا تشوبها شائبة لأمراض القلب والأوعية الدموية البشرية ، حيث يشبه تشريح القلب وعلم وظائف الأعضاء إلى حد كبير تشريح البشر ، فضلا عن مظهرهم الأيضي والبروتيني. إن تحريض نقص تروية عضلة القلب المزمن إلى منطقة من عضلة القلب باستخدام مضيق شمردي يحاكي بدقة وسهولة العملية الفيزيولوجية المرضية الشائعة لتطور تصلب الشرايين لدى البشر واستجابة عضلة القلب اللاحقة. تمت دراسة مضيقات الزمردية على نطاق واسع على مدى السنوات ال 50 الماضية مما يوفر أدلة صارمة على استخدامه. علاوة على ذلك ، لدينا أكثر من عقدين من الخبرة في إجراء هذا الإجراء بكفاءة وموحدة. تتمثل إحدى الخطوات المهمة في هذا البروتوكول في إجراء رسم خرائط لتدفق الدم التاجي لتحديد المنطقة التي تعاني من نقص تروية أكبر والمناطق التي لا يوجد بها نقص تروية عن طريق حقن الكرات المجهرية المسماة بالنظير. القدرة على إجراء رسم خرائط تدفق الدم التاجي تمنع الاستخدام الضروري والمكثف للتصوير بالرنين المغناطيسي للقلب أو التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني لدراسات التروية وتحديد المنطقة الإقفارية. الهدف من هذا المنشور هو تفصيل الموضع الصحيح لمضيق الشمردي على LCx القريب ورسم خرائط التروية التاجية اللاحقة.

المقدمة

على الصعيد العالمي ، نمت أمراض القلب الإقفارية (IHD) فقط في وفياتها وعبئها على المرضى ونظام الرعاية الصحية. وفقا لجمعية القلب الأمريكية ، زاد عدد الوفيات المنسوبة إلى IHD من عام 1990 إلى عام 2021 بنسبة 74٪ في جميع أنحاء العالم1. هذا صحيح أيضا داخل الولايات المتحدة ، حيث يشير مركز السيطرة على الأمراض إلى أن واحدا من كل عشرين بالغا قد تم تشخيصه بمرض الشريان التاجي (CAD) ، وحوالي واحد من كل خمس وفيات ناتجة عن أمراض القلب والأوعية الدموية ، وهو ما يعادل وفاة شخص من أمراض القلب والأوعية الدموية كل 33 ثانية2. يضغط عبء المرض هذا على نظام الرعاية الصحية ، حيث تم إنفاق أكثر من 250 مليار دولار على المرضى الذين يعانون من أمراض القلب والأوعية الدموية من عام 2019 إلى عام 20202. نظرا للطبيعة المنتشرة لأمراض القلب والأوعية الدموية في كل مكان والعبء الشديد على كل من المريض ومقدم الرعاية ، من الضروري مواصلة التحقيقات في العلاجات المبتكرة والجديدة.

لتحقيق هذه الأهداف ، يجب استخدام النماذج الحيوانية ذات الصلة سريريا مع فحصها لتلبية معايير البحوث القابلة للتكرار والترجمة. تم التشكيك في النماذج الحيوانية لأسباب عديدة ، بما في ذلك الأنواع الحيوانية المتباينة ذات الحركية الدوائية المتغيرة ، والبروتوكولات المختلفة للحث على حالة المرض المرغوبة ، والاختلافات في جرعات الأدوية والجداول الزمنية ، وسوء التوحيد القياسي للحيوانات العشوائية ، ومدة المتابعة ، وتعمية المحققين ، وأخيرا ، المجموعات التجريبية الصغيرة3. لقد قمنا بتنقيح وتوحيد البروتوكول تجريبيا ليس فقط للنموذج الحيواني العام لتمثيل IHD ولكن أيضا البروتوكول الجراحي ، والتوزيع العشوائي للحيوانات ، وتوصيل الأدوية ومدتها ، والنتائج اللاحقة. فيما يتعلق ب IHD ، تمثل الخنازير نموذجا حيوانيا مثاليا نظرا لأوجه التشابه الكبيرة بينهما في تشريح القلب وعلم وظائف الأعضاء مع البشر. الأهم من ذلك ، أن الخنازير لها توزيع مماثل للشرايين التاجية مثل البشر والحد الأدنى من الدورة الدموية الجانبية ، مما يجعل تحريض نقص تروية تمثيلا موثوقا به لتطور تصلب الشرايين لدى البشر. بالإضافة إلى ذلك ، فإن الخنازير لها عملية التمثيل الغذائي ، والمظهر البروتيني ، والجهاز المناعي المماثل للإنسان ، مما يجعل تحليل التأثير الجزيئي للعلاجات أكثر أهمية4. مع وضع ذلك في الاعتبار ، فإن النموذج الحيواني المستخدم في هذا البروتوكول هو الأنسب لتمثيل الفيزيولوجيا المرضية القلبية الوعائية البشرية بشكل متكرر.

يستخدم مختبرنا الوضع الجراحي لمضيق الشمردية على LCx ، مما يسمح بالحث المزمن لنقص تروية عضلة القلب. إن استخدام هذه التقنية للحث على نقص التروية المزمن ينتج عنه مزايا فريدة على الربط الحاد. أحدهما هو الأدبيات البحثية المكثفة من عدة عقود تستخدم هذا الجهاز5. بالإضافة إلى ذلك ، فإنه يسمح بمحاكاة سريرية موثوقة للتضيق التدريجي للشريان التاجي بسبب تطور تصلب الشرايين لدى البشر ، وأخيرا ، تحسن وفيات عن طريق تجنيب عضلة القلب التي كان من الممكن أن توقف تدفق الدم بالكامل6. يتكون مضيق الشمردي من جزأين: حلقة خارجية من التيتانيوم وطبقة بلاستيكية استرطابية داخلية. عند وضعها حول الشريان التاجي ، ستمتص الحلقة الداخلية لاحقا سوائل الجسم وتنتفخ إلى الداخل بسبب الغلاف الفولاذي المقيد على مدى أسبوعين إلى أربعة أسابيع7. تمنح استراتيجية التنسيب حول LCx فوائد الوفيات لأن هذا هو الأصغر من بين الشرايين التاجية الرئيسية الثلاثة ويؤثر على ما يقرب من 20٪ من عضلة القلب7. لإنتاج المنطقة الإقفارية بشكل موحد ، يجب وضع الشمردي عند إقلاع LCx قبل تفرع الشرايين الهامشية المنفرجة.

مزيد من الاعتبارات التي يستخدمها هذا البروتوكول هو رسم خرائط تدفق الدم التاجي التأكيدية لتحديد تحريض نقص التروية واستخدام المنطقة الصحيحة في التحقيق في آثار عضلة القلب للعلاجات. لهذا الغرض ، نستخدم حقن الغلاف المجهري من BioPhysics Assay Laboratory، Inc. في وقت وضع الزمروي عندما يكون LCx مسدودا تماما. سيمثل القسم الذي يحتوي على أقل تقدير كمي للكريات المجهرية الذهبية منطقة البطين الأيسر الأكثر إقفارية. لا يمكن المبالغة في أهمية رسم الخرائط عند تحديد التعديلات الجزيئية الناتجة عن المعالجة التجريبية. بالإضافة إلى ذلك ، يوفر استخدام الكريات المجهرية المسماة بالنظائر طريقة فعالة من حيث التكلفة مقارنة بالتصوير بالمقاومة المغناطيسية للقلب لتحديد نضح عضلة القلب8.

أخيرا ، يأخذ النموذج الموصوف هنا في الاعتبار التباين المعروف بين الجنسين في تطور أمراض القلب والأوعية الدموية والاستجابة العلاجية اللاحقة. في كثير من الأحيان ، تفشل النماذج الحيوانية قبل السريرية في تمثيل الاختلافات في البشر بأمانة. وبالتالي ، فإننا نطابق جنس الخنازير المستخدمة في المجموعات الضابطة والتجريبية بين الخنازير الإناث والذكور السليمة. لقد استخدمنا هذا سابقا لتحديد الاستجابات القائمة على الجنس للعلاجات الجديدة9. إضافة إضافية إلى قابلية ترجمة هذا البروتوكول هو استخدام التوزيع العشوائي لمجموعات العلاج وتعمية الباحث الذي يحلل معلمات نضح عضلة القلب الوظيفية وعضلة القلب لكل خنزير.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على الإجراء الجراحي المفصل أدناه من قبل لجنة رعاية واستخدام المؤسسي في مستشفى رود آيلاند وجامعة براون.

1. نموذج

  1. استخدم كلا من خنازير يوركشاير اليافعة والذكور السليمة ، والتي يبلغ عمرها حوالي 11 أسبوعا ، وتزن عادة حوالي 15 كجم.

2. إجراءات ما قبل الجراحة

  1. يجب التأكد من حصول الخنازير يوميا على الأسبرين قبل وبعد الجراحة (10 ملغ/كغ) بدءا من يوم واحد قبل الجراحة وحتى 5 أيام بعد الجراحة.
  2. تأكد من أن الخنازير بدون طعام في صباح يوم الجراحة.
  3. في يوم الجراحة يتم تحفيز التخدير باستخدام الحقن العضلي من التيلازول (4.4 ملغ/كغ) وإكسيلازين (2.2 ملغ/كغ).
  4. قم بتنبيب الخنازير بأنبوب رغامي مقبل بحجم مناسب (عادة 7-0).
  5. في الوقت نفسه ، قم بتحقيق التسكين عن طريق إعطاء البوبرينورفين بمعدل 0.03 مجم / كجم ووضع رقعة فنتانيل (4 ميكروغرام / كجم).
  6. ضع قسطرة وريدية (IV) 20-22 جم في الوريد الأذني الكبير.
  7. ابدأ السوائل الوريدية (0.9٪ محلول ملحي) بمعدل 5 مل / كجم / ساعة.
  8. تطبيق سيفتوفور وهو مضاد حيوي واسع الطيف من السيفالوسبورين. يتم ذلك عادة في غضون 30 دقيقة من الشق كحقن عضلي بجرعة واحدة.
  9. احلق الخنزير في موقع الجراحة (من الكتف الأيسر إلى السرة) وكذلك في مخطط كهربية القلب (ECG) لمراقبة أوضاع الرصاص.
  10. انقل الخنزير إلى غرفة العمليات وحافظ على التخدير بنسبة 0.75-3.0٪ من الأيزوفلوران.
  11. قم بتوصيل الخنازير بشاشة تخطيط القلب وقم بتطبيق وسادات تأريض الكي الكهربائي.
  12. ضع الخنازير بشكل صحيح على طاولة العمليات: الجانب الأيمن لأسفل ، والطرف الأمامي الأيسر ممتد ومربوط بالطاولة ، والجانب الأيمن من الطاولة مائل لأعلى.
  13. تحضير موقع الجراحة بمقشر كلوروهيكسيدين بنسبة 2٪.
  14. ثنى موقع الشق بأربع ستائر صغيرة لاصقة وستنى كبيرة بشق البطن.

3. الإجراء الجراحي

  1. ابدأ بحقن 2٪ ليدوكائين تحت الجلد في موقع الشق المتوقع.
  2. ثم, استخدام مشرط #10 لجعل ما يقرب من 5 سم شق بدءا من غير مباشر بالقرب من طية الجلد الإبطي والمضي قدما بشكل جانبي; هذا حول2 إلى 3 المساحة الوربية.
  3. استخدم المشرط # 10 لمواصلة هذا الشق لأسفل عبر الطبقة العضلية حتى يتم الوصول إلى الطبقة اللفافية.
  4. في هذا الوقت ، استخدم الكي الكهربائي لتحقيق الإرقاء في الجلد والعضلات.
  5. افتح المكان اللفافي بصراحة بشكل متفوق حتى يمكن ملامسة الترقوة.
  6. بمجرد تحقيق ذلك ، قم بملامسة مساحات الضلع ، مما يضمن تحديدمساحة الضلع 2.
    ملاحظة: عادة, 2الفضاء الوربي يحقق رؤية متفوقة قليلا من المجال, مما يسمح لوضع أقرب أسهل من مضيق الشمرد. في بعض الأحيان ، بسبب تشريح الخنازير ، يجب إدخال المساحةالوربية 3.
  7. قم بتسجيل العضلة الوربية باستخدام الكي الكهربائي وادخل الفراغ الجنبي باستخدام مشبك كيلي كبير.
  8. قم بتمديد هذه الفتحة وسطيا وجانبيا باستخدام الكي الكهربائي مع حماية الرئة والتامور باستخدام مشبك كيلي الكبير كتوجيه.
  9. أدخل ضام Finochietto صغير لنشر الضلوع.
  10. ضع شاشا مبللا لدفع الرئة للخلف إلى الفراغ الجنبي الأيسر. هذا يوسع رؤية التامور.
  11. استخدم ملقط Debakey لخيمة التامور وعمل قطع صغير بمقص Metzenbaum. قم بتمديد هذا وسطيا وجانبيا لفضح الزائدة الأذينية اليسرى. عند التمدد بشكل جانبي نحو الرئة ، حدد وقم بحماية الرئة والعصب الحجابي.
  12. قم بتثبيت التامور حسب الضرورة باستخدام خياطة حريرية 3-0.
  13. باستخدام مشبك ساتينسكي صغير ، أمسك بجزء بعيد من الزائدة الأذينية اليسرى واربط هذا الجزء باستخدام ربطة عنق حريرية 0. باستخدام مرقئ صغير ، اسحب الزائدة لفضح LCx و LAD (الشكل 1 أ).
  14. بمجرد أن تتعرض الأوعية ، قم بالتبديل إلى ملقط جيرالد وقم بعمل شق صغير بمقص Metzenbaum في الدهون النخابية التي تغطي LCx بالقرب من إقلاعها من الشريان التاجي الرئيسي الأيسر.
  15. باستخدام زاوية قائمة صغيرة وإسفنج الفول السوداني على مشابك أليس ، قم بتشريح LCx بعناية. بمجرد الالتفاف حول الشريان بالزاوية اليمنى ، ضع حلقة وعاء وعائي لعزله تماما. ضع مرقئ صغير على الطرفين.
  16. في هذا الوقت ، قم بمعالجة الخنازير بشكل منهجي ب 80 وحدة دولية / كجم لمنع تكون الجلطة.
  17. قم بإجراء رسم خرائط تروية عضلة القلب.
    ملاحظة: يتطلب هذا الإجراء مساعدين. تأكد من أن أحدهم فني غرفة عمليات سيستمر لمدة دقيقتين. يجب أن يكون الآخر مساعدا جراحيا.
    1. اطلب من المساعدين سحب حلقة الوعاء برفق لسد LCx بالكامل. قم بتأكيد الانسداد من خلال عرض مقطع ST و / أو تغييرات الموجة T على شاشة تخطيط القلب.
    2. خلال أول 30 ثانية من الانسداد ، قم بحقن 5 مل من الكريات المجهرية الذهبية ، باستخدام إبرة 28 جم ، في الزائدة الأذينية اليسرى (الشكل 1 ب). اسحب المحقنة مرة أخرى في منتصف الطريق من الحقن لتصور الدم. هذا أمر بالغ الأهمية لضمان الوضع الصحيح للإبرة داخل الأذين الأيسر ورسم الخرائط الدقيقة اللاحقة.
    3. بعد الانتهاء من الحقن ، استخدم إسفنجة الفول السوداني للضغط على موقع الحقن حتى يتحقق الإرقاء. إذا تعذر تحقيق الإرقاء بالضغط ، فضع رقما صغيرا من ثمانية خياطة مع خياطة بولي بروبلين 6-0.
    4. اطلب من المساعد الجراحي الاستمرار في سحب حلقة الوعاء لمدة دقيقتين بالكامل أثناء تصور تغييرات مخطط كهربية القلب ، مما يضمن انسداد LCx.
  18. بعد 2 دقيقة وبمجرد أن يهدأ تغيير مخطط كهربية القلب ، ضع مضيق شمردي حول وعاء LCx القريب. يعتمد التحجيم على الفحص البصري ، والذي يتراوح عادة من 2.0 مم إلى 2.75 مم. يسمح إمساك الأميرويد إما على مشبك أليس أو مشبك كيلي بتطبيق أسهل (الشكل 1 ج). تأكد من تشحيم الشمرد جيدا.
  19. اطلب من المساعد الجراحي سحب الجيب الناتج عن التشريح إما بملقط جيرالد و / أو إسفنجة الفول السوداني لفتح المساحة. قم بتوجيه الزمرد برفق إلى الشريان من خلال ثقب المفتاح ، وتأكد من تدوير ثقب المفتاح للخارج (الشكل 1 د).
  20. تحقق من أن الزمردي قريب قدر الإمكان في موضعه. هذا يساعد في الحفاظ على التوحيد في التنسيب والمنطقة الإقفارية اللاحقة.
  21. قم بإزالة حلقة الوعاء الدموية ورش النتروجليسرين الموضعي (~ 2 مل) على الشريان لمنع المزيد من التشنج الوعائي.
  22. اقطع ربطة العنق على الزائدة الأذينية واتركها تعود إلى موضعها.
  23. أغلق التامور باستخدام خياطة قابلة للامتصاص 3-0 على إبرة شطبة عكسية (RB).
  24. تذكر إخراج الشاش المبلل ، وسحب الرئة ، وفحص أي إصابة.
  25. أعد تقريب مساحة الضلع باستخدام 0 خياطة بولي ديوكسانون (PDS) على إبرة طرف حادة.
  26. أغلق الطبقة العضلية بخياطة قابلة للامتصاص 3-0 ، وعندما تغلق تقريبا ، أدخل قسطرة مطاطية حمراء صغيرة متصلة بالشفط في الفضاء الجنبي. عندما يقوم الجراح الأساسي بربط الخيط النهائي ، احصل على حبس النفس واطلب من المساعد سحب المطاط الأحمر من التجويف. هذا يضمن إخلاء أي هواء داخل التجويف الجنبي.
  27. أغلق الطبقة تحت الجلد بخيطة قابلة للامتصاص 3-0 والجلد بخيطة 4-0 أحادية الكريل تحت الجلد.
  28. ضع ضمادة معقمة فوق موقع الشق.

4. رعاية ما بعد الجراحة والتعافي

  1. ابدأ في فطام الأيزوفلوران.
  2. أثناء انتظار استيقاظ الخنازير ، قم بتأمين الضمادة الشقية بشاش ولفافة مرنة.
  3. بمجرد أن يتنفس الخنازير من تلقاء نفسه ، قم بإزالة الأنبوب الرغامي.
  4. اسمح للخنازير بالتعافي تحت إشراف الفريق البيطري في قفص استرداد مبطن مع دعم حراري.
  5. مرة أخرى ، يستمر الأسبرين حتى اليوم 5 بعد الجراحة للتخفيف من مخاطر التخثر. تحقيق تسكين الألم مع لصقة الفنتانيل الموضوعة قبل الجراحة ، والتي تبقى في مكانها لمدة 3 أيام.
  6. أكمل فحوصات ما بعد الجراحة مرتين يوميا على الخنازير لمدة 3 أيام. عادة ، لا تعاني الخنازير من عدم انتظام ضربات القلب أو احتشاء خلال هذه الفترة.
    ملاحظة: ضع في اعتبارك أنه في اليوم 14 بعد الجراحة ، من المرجح أن يحدث إغلاق الشمرد المبكر و / أو عدم انتظام ضربات القلب البطيني التلقائي. قد تستكشف المجموعات هذه الفترة الزمنية وإصلاحها باستخدام الأدوية الوقائية المضادة لاضطراب النظم ، مثل أميودارون أو ليدوكائين ، والتي تتم مراجعتها في المناقشة. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن استخدام المراقبة المستمرة لتخطيط القلب. ومع ذلك ، فهي كثيفة العمالة ويصعب الحفاظ عليها على الخنازير.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

على مدار عقدين من إجراء الإجراء أعلاه ، يبلغ معدل البقاء على قيد الحياة حوالي 80٪ 10،11. تحدث غالبية الوفيات بعد حوالي أسبوعين من الجراحة ، وغالبا ما يكون ذلك بسبب عدم انتظام ضربات القلب البطيني الذي لا رجعة فيه والتلقائي في وقت إغلاق الزمرويد. في العديد من عمليات التشريح السابقة ، تظهر النتائج النموذجية وجود زمرد في وضع صحيح مع الحد الأدنى من تكوين الندبة الحادة للبطين الأيسر ، مما يؤكد تشخيص عدم انتظام ضربات القلب البطيني. يؤدي عدم انتظام ضربات القلب إلى موت قل...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

الميزة الرئيسية لاستخدام مضيق الزمردي هي بساطة الجهاز ؛ ومع ذلك ، فإن هذا يمثل قيودا في عدم القدرة على التحكم في معدلات الإغلاق أو درجة التضيق حول الشريان التاجي. هذا يمكن أن يؤدي إلى تباين في تحريض نقص تروية عضلة القلب. تشمل بدائل استخدام مضيقات الزمردية استخدام روابط حريرية أو حواجز هيدروليكية أو وضع تسلسلي لمجسات التدفق12،13،14،15،

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى أصحاب البلاغ أي إفصاحات أو تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

تم تمويل البحث من قبل المعاهد الوطنية للصحة بأرقام المنح التالية: T32HL16051703 (K.C.M. ، C. S. ، D.D.H ، M.K.) ، R01HL46716 (F.W.S) ، و R01HL128831 (F.W.S). نود أن نشكر الطاقم البيطري في مستشفى رود آيلاند وجامعة براون على عملهم الاستثنائي ودعمهم في العديد من مشاريعنا.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
# 10 مشرطميدلاينMDS15310
0.9٪ محلول ملحيديشرا / فيتيفكس17033-492-50المعدل: 5 مل / كجم أثناء العلبة
0-ربطات عنق حريريةإيثيكونSA76Gربط الزائدة الأذينية اليسرى
1-0 PDS II على طرف حاد CTإيثيكونZ359Tإغلاق مساحة الضلع
2٪ ليدوكائينفينكسالجرعات: 2– 5 مجم / كجم
2-0 خياطة حريرية على SH تفتقإيثيكونك 833 حتمسك التامور
إبرة 28 مقياسباترسون البيطرية78032728لحقن الكرة المجهرية
3 إبر 18 جرامباترسون البيطرية78032793لرسم الدواء
3-0 Vicryl على RB المستدقإيثيكونVCP215Hإغلاق التامور
3-0 القطع العكسي VicrylإيثيكونVCP442Hإغلاق طبقات الجلد العضلية والعميقة
4-0 مونوكريلإيثيكونMCP496Gإغلاق الجلد
6-0 خياطة البولي بروبلينSharePointJS617Nللإصلاح الطارئ للأذين
جميع الأدوات الجراحيةستيريس وميدلاينيتطلب مندوب مبيعاتكلها شائعة في غرف العمليات في المستشفيات
مضيقات الزمرديةأدوات البحث SW، Inc. CS-2.00-TIالنوع: تيتانيوم (2.0 سم إلى 3.0 سم)
المسكن: بوبرينورفينهوسبيرااسم العلامة التجارية: بوبريدينالجرعات: 0.03 مجم / كجم
مسكن: رقعة الفنتانيلكوفيتروس77870الجرعات: 4 مجم / كجم
التخدير: تيلازولزويتيس(تيليتامين وزولازيبام)الجرعات: 4.4 مجم / كجم
التخدير: زيلازين (رومبون)دشرةغير متاحالجرعات: 2.2 مجم / كجم
كلورهيكسيدين 4٪بي دي إي زي سكراب371073الإعدادية الجراحية
أنبوب القصبة الهوائية مكبلروش7-0 عادةقد تحتاج إلى أحجام مختلفة حسب حجم الخنازير ووزنها
نظام مراقبة تخطيط القلبميدماركغير متاحمراقب متعدد المعلمات
الكي الكهربائيBovie المتخصص برو1250 ثانية
التفوق (سيفتوفور)كوفيتروس23814الحقن العضلي بجرعة واحدة
الكرة الذهبية شركة BioPALسي -15 ح20الكمية: 5 سم مكعب لكل عملية جراحية
إيزوفلوران ، USPدشرةالجرعات: 0.75٪ – 3.0%
حلقات وعاء بيضاء صغيرة (يمكن اكتشافها بالأشعة السينية)دي رويال30-711لعزل LCx
محاقن متعددة 5ccميدلاينTMOSS05Lللحقن المتعددة
النتروجليسرينباكسترالنتروجليسرين في حقن سكر العنب بنسبة 5٪ (200 ميكروغرام / مل)رذاذ 2 &ndash ؛ 3 سم مكعب موضعيا
قسطرة مطاطية حمراءصحة الكاردينال888766008ضعه في الصدر لاستخراج الهواء
قفازات معقمةوسيم820955
نظام الشفطجومكو4042أفضل إذا كان شفط الجدار للمنشأة الخاصة
نصيحة الشفط: يانكورميدلاينDYND50130
الستائر الجراحيةحزمة باترسون للجراحة العامة البيطرية789294364 ستائر لاصقة صغيرة وستنى كبيرة لقطع البطن
زيوت التشحيم الجراحيةالجراحية0281-0205-43يجب أن تكون معقمة
الهيبارين الجهازيكوفيتروس82496الجرعة: 80 وحدة دولية / كجم
يوركشاير سويفشركة CBSET ، Inc.غير متاحمن الناحية المثالية حوالي 11 أسبوعا

المراجع

  1. Martin, S. S., Aday, A. W., Almarzooq, Z. I., et al. heart disease and stroke statistics: a report of US and global data from the American Heart Association. Circulation. 149 (8), e347-e913 (2024).
  2. Tsao, C. W., Aday, A. W., Almarzooq, Z. I., et al. heart disease and stroke statistics-2023 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 147 (8), e93-e621 (2023).
  3. Pound, P., Ebrahim, S., Sandercock, P., Bracken, M. B., Roberts, I. Where is the evidence that animal research benefits humans. BMJ. 328 (7438), 514-517 (2004).
  4. Jia, H., Chang, Y., Song, J. The pig as an optimal animal model for cardiovascular research. Lab Anim (NY). 53 (6), 136-147 (2024).
  5. Litvak, J., Siderides, L. E., Vineberg, A. M. The experimental production of coronary artery insufficiency and occlusion. Am Heart J. 53 (4), 505-518 (1957).
  6. Keeran, K. J., et al. A chronic cardiac ischemia model in swine using an ameroid constrictor. J Vis Exp. (128), e56190(2017).
  7. Hughes, G. C., Post, M. J., Simons, M., Annex, B. H. Translational physiology: porcine models of human coronary artery disease: implications for preclinical trials of therapeutic angiogenesis. J Appl Physiol. 94 (5), 1689-1701 (2003).
  8. Reinhardt, C. P., Dalhberg, S., Tries, M. A., Marcel, R., Leppo, J. A. Stable labeled microspheres to measure perfusion: validation of a neutron activation assay technique. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 280 (1), H108-H116 (2001).
  9. Harris, D. D., et al. Proteomic analysis and sex-specific changes in chronically ischemic swine myocardium treated with sodium-glucose cotransporter-2 inhibitor canagliflozin. J Am Coll Surg. 238 (6), 1045-1055 (2024).
  10. Sabe, S. A., et al. Sitagliptin therapy improves myocardial perfusion and arteriolar collateralization in chronically ischemic myocardium: a pilot study. Physiol Rep. 11 (11), e15744(2023).
  11. Stone, C. R., et al. Crafting a rigorous, clinically relevant large animal model of chronic myocardial ischemia: what have we learned in 20 years. Methods Protoc. 7 (1), 17(2024).
  12. Chen, C., et al. Functional and structural alterations with 24-hour myocardial hibernation and recovery after reperfusion: a pig model of myocardial hibernation. Circulation. 94 (3), 507-516 (1996).
  13. Chen, C., et al. Impact of delayed reperfusion of myocardial hibernation on myocardial ultrastructure and function and their recoveries after reperfusion in a pig model of myocardial hibernation. Cardiovasc Pathol. 9 (2), 67-84 (2000).
  14. Fallavollita, J. A., Perry, B. J., Canty, J. M. Jr 18F-2-deoxyglucose deposition and regional flow in pigs with chronically dysfunctional myocardium: evidence for transmural variations in chronic hibernating myocardium. Circulation. 95 (7), 1900-1909 (1997).
  15. Liedtke, A. J., Renstrom, B., Nellis, S. H., Hall, J. L., Stanley, W. C. Mechanical and metabolic functions in pig hearts after 4 days of chronic coronary stenosis. J Am Coll Cardiol. 26 (3), 815-825 (1995).
  16. Young, L. H., Renfu, Y., Russell, R., et al. Low-flow ischemia leads to translocation of canine heart GLUT-4 and GLUT-1 glucose transporters to the sarcolemma in vivo. Circulation. 95 (2), 415-422 (1997).
  17. Bolukoglu, H., et al. An animal model of chronic coronary stenosis resulting in hibernating myocardium. Am J Physiol. 263 (1 Pt 2), H20-H29 (1992).
  18. Radke, P. W., et al. Evaluation of the porcine ameroid constrictor model of myocardial ischemia for therapeutic angiogenesis studies. Endothelium. 13 (1), 25-33 (2006).
  19. Remme, W. J., et al. Acute hemodynamic and antiischemic effects of intravenous amiodarone. Am J Cardiol. 55 (6), 639-644 (1985).
  20. Nawada, T., et al. Evaluation of negative inotropic and antiarrhythmic effects of class 1 antiarrhythmic drugs. Int J Clin Pharmacol Ther. 32 (7), 347-355 (1994).
  21. Paslawska, U., et al. Normal electrocardiographic and echocardiographic (M-mode and two-dimensional) values in Polish Landrace pigs. Acta Vet Scand. 56 (1), 54(2014).
  22. Robich, M. P., et al. Anti-angiogenic effect of high-dose resveratrol in a swine model of metabolic syndrome. Surgery. 148 (2), 453-462 (2010).
  23. Salerno, M., Beller, G. A. Noninvasive assessment of myocardial perfusion. Circ Cardiovasc Imaging. 2 (5), 412-424 (2009).
  24. Qayyum, A. A., Kastrup, J. Measuring myocardial perfusion: the role of PET MRI and CT. Clin Radiol. 70 (6), 576-584 (2015).
  25. Sirajuddin, A., et al. Ischemic heart disease: noninvasive imaging techniques and findings. Radiographics. 41 (4), 990-1021 (2021).
  26. Hecht, S., Adams, W. H., Narak, J., Thomas, W. B. Magnetic resonance imaging susceptibility artifacts due to metallic foreign bodies. Vet Radiol Ultrasound. 52 (4), 409-414 (2011).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

تم نشر هذه المقالة

الفيديو قريباً

تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.