مقالة منهجية

التطبيق المشترك للغماء الكبريتية Tecnetium-99m والصبغة الزرقاء للكشف عن العقد اللمفاوية الحارسة في سرطان الثدي في المراحل المبكرة

429 مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/69027

⸱

ديسمبر 19, 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Nuclear Medicine, The First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine, 2Department of Breast Surgery, The First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine

في هذه المقالة

ملخص

تصف هذه المقالة بالتفصيل بروتوكول رسم خرائط العقد اللمفاوية الحارسة (SLN) مع التطبيق المشترك لكولويد الكبريت تكنيتيوم-99m (99mTc-SC) والميثيلين الأزرق، بما في ذلك تحضير 99mTc-SC، وحقن الأدوية، واكتساب الصورة وإعادة بنائها، ورسم خرائط الميثيلين الأزرق، وتحديد موقع الخلايا اللينفية السليمة أثناء العمليات.

الملخص

خزعة العقد اللمفاوية الحارسة (SLNB) هي الإجراء القياسي لمرحلة العقد اللمفاوية الإبطية لدى مرضى سرطان الثدي، وقد منع تطبيقها استئصال العقد اللمفاوية الإبطية غير الضروري (ALND) في سرطان الثدي في المراحل المبكرة خلال العقود الماضية. يساعد تحديد موقع العقد اللمفاوية الحارسة (SLNs) الدقيق في تحسين معدل نجاح العقد اللمفاوية الحراسة. تقنية التتبع المزدوج (الغدة المشعة مع الصبغة الزرقاء) لرسم خرائط SLN تحسن بشكل كبير معدل التعرف مقارنة بطرق التتبع الفردي. أكثر الغروات المشعة استخداما هي 99mTc-SC، ويستخدم الميثيلين الأزرق على نطاق واسع في رسم الخرائط البصرية. ومع ذلك، وجدت دراسات سابقة أن معدل التعرف على تصوير SLN يختلف بشكل كبير، وقد يكون ذلك مرتبطا ارتباطا وثيقا بعملية التحضير وتجربة المشغل. يعد توحيد بروتوكول رسم خرائط SLN أمرا بالغ الأهمية لتعظيم معدل التعرف وتقليل النتائج السلبية الكاذبة. تقدم هذه المقالة عملية مفصلة باستخدام 99mTc - SC مع الميثيلين الأزرق لرسم خرائط SLN في سرطان الثدي المبكر، بما في ذلك إجراءات تحضير 99mTc-SC، والحقن، والتقاط صور SLN، ورسم خرائط الميثيلين الأزرق، وتحديد الموقع أثناء العمليات.

المقدمة

في سرطان الثدي في المراحل المبكرة، تظهر حالة قليلة فقط من الحالات مع انتشار العقد اللمفاوية الإبطية. بالنسبة لهؤلاء المرضى، لا يوفر تشريح العقد اللمفاوية الإبطية (ALND) فوائد إضافية للبقاء وقد يؤدي إلى مضاعفات خطيرة مثل وذمة الطرف العلوي 1,2. تعرف العقدة اللمفاوية الحارسة (SLN) بأنها العقدة اللمفاوية "المحطة الأولى" التي تستقبل التصريف اللمفاوي من ورم الثدي3. إذا لم تظهر الصبغة اللينولية اللينولية أي نقائل، فإن احتمال انتشار العقد اللمفاوية في الأسفل منخفض جدا4. وفقا لإرشادات عام 2021 المعنونة بعنوان إدارة الإبط في سرطان الثدي في المراحل المبكرة: صحة أونتاريو (رعاية السرطان في أونتاريو) وإرشادات ASCO1، يمكن إعفاء المرضى الذين لديهم نتائج سلبية من خزعة العقد اللمفاوية الحارسة (SLNB)، بينما يمكن لمن لديهم 1-2 خزعة من العقد اللمفاوية النقائلية تجنب ALND في ظروف محددة. أظهرت الدراسات أن SLNB يوفر حوالي 70٪ من مرضى سرطان الثدي في المراحل المبكرة من ALNDغير الضروري 5,6,7. لذلك، يلعب اكتشاف SLN دورا حيويا في تحديد ضرورة ALND، مما يحسن بشكل كبير جودة الحياة بعد العملية1.

استكشفت دراسات مختلفة خزعة العقد اللمفاوية الموجهة بالموجات فوق الصوتية لتحديد انتشار العقد لدى مرضى سرطان الثدي، لكن هذه الطريقة تعطي معدل سلبي كاذب مرتفع (FNR) يتراوح بين 6.4٪-40.8٪. علاوة على ذلك، يتطلب وجود فني تصوير بالموجات فوق الصوتية ذو الخبرة أثناء العملية يشكل تحديات كبيرة أمام التطبيق السريري الواسع. تتوفر مجموعة متنوعة من أجهزة التتبع لرسم خرائط SLN في سرطان الثدي 8,9,10، والصبغات المشعة و/أو الزرقاء، والفلوريسين، والأخضر الإندوسياني، وحقن ميتوكسانترون هيدروكلوريد. أفاد تاوش وآخرون بمعدل تحديد (IR) بنسبة 82٪ باستخدام الصبغة الزرقاء فقط، و85٪ باستخدام الصبغة المشعة فقط، و94٪ عند استخدام الجرعات المزدوجة (الصبغة المشعة مع الصبغة الزرقاء)11. كشف تحليل تلوي ل 13 دراسة عن وجود مقاومة تحت صلبة للغروية المشعة (96٪) والصبغة الزرقاء (96٪)، بينما حقق المزيج 97٪12. يقلل الاستخدام المشترك من معدلات السلبية الكاذبة (FNR) بشكل كبير، حيث أظهرت الطرق التي تعتمد على الغرويات المشعة فقط معدلات FNR تتراوح بين 16٪-20.3٪ مقابل 5.2٪-10.8٪ للمتتبعينالمزدوج 13,14,15,16,17. الفلوريسيين ليس أقل جودة من 99mTc-SC وهو أكثر فعالية من حيث التكلفة. ومع ذلك، فإن ضعف اختراقها للأنسجة يحد من تطبيقه في اكتشاف SLNs الأعمق18. يظهر ICG فعالية تشخيصية مماثلة ل 99mTc-SC، مما يجعله مناسبا بشكل خاص للمؤسسات التي تفتقر إلى موارد الطب النووي19,20. ومع ذلك، فإن فعاليته منخفضة لدى المرضى الذين لديهم مؤشر كتلة جسم > 30 أو الأورام المركزية21. أكدت بعض الدراسات أن الأداء التشخيصي لحقن هيدروكلوريد الميتوكسانترون مشابه ل99mTc-SC لرسم خرائط SLN 8,10. ومع ذلك، فإن العدد المحدود من الدراسات يتطلب المزيد من التحقق السريري.

على الرغم من توفر العديد من عوامل التصوير للكشف عن الخلايا النرجحية في العقود الأخيرة، إلا أن الإرشادات لا تزال توصي بدمج الصبغة المشعة والصبغة الزرقاء لتحديد موقع الخلايا العصبية في سرطان الثدي، نظرا لفعاليتها التشخيصية العالية، ودعمها الطبي الكبير المبني على الأدلة، وقلة ردود الفعل السلبية الشديدة 1,20,22. العوامل البديلة هي الفلوريسين أو ICG بدون دعم من قسم الطب النووي. 99 متريعد TC-SC أكثر الكولويدات المشعة استخداما. مقارنة بالأصباغ الزرقاء الأخرى، يستخدم الميثيلين الأزرق بشكل أكثر شيوعا في معظم المراكز في آسيا23، لأنه يظهر فعالية مشابهة في تحديد موقع SLN مع الأزرق الإيزوسلفاني أو الأزرق اللامع، لكنه أكثر فعالية من حيث التكلفة.

تختلف الفروقات المعروفة بالتهاب القلاع السلوكي مع وجود صبغة مشعة أو زرقاء فقط بشكل ملحوظ (من 69.8٪ إلى 90.8٪) بين الدراسات وتعتمد بشكل كبير على البروتوكولات الإجرائية وخبرة المشغلين 9,12,13,24. لذلك، تعد الإجراءات التشغيلية الموحدة ضرورية لضمان اتساق الأشعة تحت الضراء. تتوفر حاليا عدة بروتوكولات مختلفة، مما يعقد جهود التوحيد القياسي. الأول هو وقت التسخين أثناء تحضير 99 مترTc-SC. أظهرت الدراسات أن تقليل التسخين لمدة 3 دقائق يمكن أن يحسن كفاءة التخليق ل99 مترTc-SC25. 99 متركان Tc-SC المحضر بتسخين مخفض لمدة 3 دقائق يتمتع بنقاء كيميائي مشع مماثل للتسخين القياسي لمدة 5 دقائق (كلاهما >92٪) عند 0 ساعة و6 ساعات26. علاوة على ذلك، كان لدى 99 مترTc-SC بتسخين لمدة 3 دقائق احتفاظ أكبر للعقد اللمفاوية عند 24 ساعةو27 دقيقة. لذلك، نعتبر أن بروتوكول التسخين لمدة 3 دقائق هو الأفضل. ثانيا، يوصى بحقن حول الأريولين وحول الورم لإعطاء 99 دقيقةمن Tc-SC. تظهر الدراسات أن حقن الحلبة المحيطة بالحانة كان له مقاومة مقاومة أعلى للسلبول الإبطي مقارنة بالحقن المحيط بالورم (99.3٪ مقابل 91.1٪، P < .001)28. تقنية ما قبل الهالة أبسط تقنيا وتظهر مزايا خاصة للأورام أو الآفات غير الملموسة في الربع العلوي الخارجي، خاصة من خلال منع ظاهرة "اللمعان من خلاله"29. بالإضافة إلى ذلك، يغطي الحقن المحيط بالهلالية بشكل طبيعي تصريف اللمفاوم من جميع أرباع الثدي، مما قد يقلل من معدل الكشف المفقود للنتيجات السليمة ويثبت فائدته بشكل خاص في الأورام متعددة البؤر30،31. لذا، نعتبر الحقن حول الحانة أكثر فائدة.

في هذا المقال، اعتمدنا بروتوكول التتبع المزدوج لحقن 99mTc-SC قبل العملية (حقن حول الهلية) مع حقن الميثيلين الأزرق أثناء العملية (حقن حول الهالة). 99 مترتم تجهيز Tc-SC باستخدام بروتوكول تسخين مخفضة مدته 3 دقائق.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على هذه الدراسة من قبل لجنة الموافقة على البحث السريري في أول مستشفى منتسب، كلية الطب بجامعة تشجيانغ [2025B] من الموافقة الأخلاقية للمعهد الدولي للتكنولوجيا رقم 0125. تم الحصول على موافقة مكتوبة ومستنيرة من جميع المشاركين. يجب أن تجرى عملية التخليق بالكامل داخل غطاء البخار. يوفر لوح زجاج الرصاص في غطاء المحرك حماية من الإشعاع، بينما يمنع تصميمه لتدفق الهواء بالضغط السالب انتشار الهباء الجوي أو المواد المتطايرة المشعة، وبالتالي يمنع استنشاق الأفراد. التخلص من القوارير والحقن والإبر في حاوية نفايات مشعة بطول 99 مترمكعب وفقا للوائح ذات الصلة. يجب التعامل مع المواد الأخرى كنفايات طبية عادية. حافظ على الحماية من الإشعاع وخصوصية المريض طوال العملية.

1. اختيار المرضى

ملاحظة: وفقا لإرشادات عام 2021 المعنونة إدارة الإبط في سرطان الثدي في المراحل المبكرة: صحة أونتاريو (رعاية السرطان في أونتاريو) وإرشادات ASCO، يتم تحديد مرضى سرطان الثدي في المراحل المبكرة الذين يحتاجون إلى تحديد موقع SLN من قبل الجراح1. تم إجراء رسم خرائط SLN لمسافة 99 مترTc-SC قبل 3-18 ساعة من الجراحة.

  1. حدد معايير الإدراج التالية: (1) سرطان الثدي في مراحله المبكرة مع العقد اللمفاوية الإبطية السريرية (ALNs) سلبية (cN0). يعرف cN0 بأنه نتائج سلبية في الفحص السريري والتصوير، أو أن ALN كان سلبيا مرضيا من خلال خزعة الإبرة الموجهة بالموجات فوق الصوتية. (2) نتائج ALN سلبية بعد العلاج المساعد الجديد لدى مرضى cN0. (3) تم تأكيد انتشار ALN بالخزعة لدى مرضى cN1، وسلبي سريريا بعد العلاج المساعد الجديد.
  2. حدد معايير الاستبعاد التالية: (1) سرطان الثدي الالتهابي. (2) المرضى الذين تم تأكيد ALN المنتشر بالخزعة دون علاج مساعد جديد. (3) المرضى الذين لديهم نقائل ALN إيجابية وما زالوا إيجابيين بعد العلاج المساعد الجديد.

2. تجهيز 99مTc-SC

  1. التحضيرات المطلوبة قبل وضع علامة على 99mTc-SC
    1. اطلب مسبقا مجموعة البرودورين التي تتكون من ثلاث قوارير: القارورة A تحتوي على 2.0 مل من حمض الهيدروكلوريك 0.15 مول/لتر (HCl)؛ قارورة B تحتوي على 2.0 مل من محلول عازل مكون من 49.2 ملغ من فوسفات ثنائي هيدروجين الصوديوم (NaH2PO4) و15.8 ملغ من هيدروكسيد الصوديوم (NaOH); القارورة C، منتج متحرب بالليوفيل يحتوي على مسحوق أبيض قابل للذوبان في الماء يتكون من 2.0 ملغ من ثيوسلفات الصوديوم (Na2S2O3)، و2.3 ملغ من ثنائي الصوديوم المدمع (Na2EDTA)، و18.1 ملغ من الجيلاتين. احتفظ بالمجموعة في ثلاجة بدرجة حرارة 4 درجات مئوية.
    2. إذابة المجموعة: أزلها قبل ساعة من تحضير الدواء لتصل إلى درجة حرارة الغرفة.
    3. طلب تيكنيتيوم-99م في يوم التصوير: تأكد من أن حقن التكنيشيوم-99م يتم إخراجه من مولد Mo-TC خلال 24 ساعة وأنه خال من عوامل مؤكسدة.
    4. تحضير حمام الماء: املأ الحمام بكمية كافية من الماء وسخنه حتى 100 درجة مئوية، مع الحفاظ على حالة الغليان.
      ملاحظة: يتطلب بيرتكنيتات الصوديوم المرتب [99 مليونترك مكعب] نشاطا كافيا لتعويض فقدان التخليق، وينصح بنشاط 185 ميجابت كعم لكل مريض عند الطلب، بحجم إجمالي بين 0.5-1 مل. عند التحضير لعدة مرضى، يجب زيادة الجرعة الإجمالية البالغة 99 مليونتريك (Tc) وفقا لعدد المرضى، بحيث لا يتجاوز الحجم الكلي 1 مل وتركيز إشعاعي لا يتجاوز 18.5 جيجابايت قطر/مل.
  2. عملية وضع العلامات
    1. جهز حقنة Tc-SC بطول 99 مترتحت ظروف الحماية من الإشعاع، عادة في غطاء بخاري. في ظروف معهرة، حقن بيرتكنيتات الصوديوم [99 مليونتراكم] في القارورة C. اهز جيدا لإذابة المسحوق المحمر واتركه واقفا لمدة 5 دقائق.
      ملاحظة: قم بجميع العمليات في ظروف معقمة وتعقيم قبل كل سحب للمحلول. إذا كانت مسحات المطهرات ملوثة بالنظائر المشعة، يجب التخلص منها كنفايات مشعة. تأكد من طرد الهواء بشكل صارم عند حقن 99 مترتراك في قوارير المجموعة. حافظ على الضغط السلبي في القوارير حتى الخطوة النهائية لسحب المحلول.
    2. اسحب 1.5 مل من المحلول من القارورة A وحقنها في قارورة التفاعل. اخلط جيدا واتركه واقفا لمدة 5 دقائق أخرى للحصول على خليط D.
    3. حمام ماء مغلي: ضع القارورة التي تحتوي على خليط D في حمام الماء وسخنها لمدة 3 دقائق (الشكل 1A).
      ملاحظة: يجب ألا يتجاوز وقت التسخين 3 دقائق، حيث أن التسخين المطول قد يقلل بشكل كبير من نسبة الجسيمات < 0.2 ميكرومتر 99 متر Tc-SC 25,26,27. استخدم الملقط للتعامل مع القوارير بعد الغليان لمنع الحروق.
    4. تحضير الخليط ه: أزل الخليط الذي يحتوي على القارورة D واتركه ليبرد لمدة 2-5 دقائق. ثم اسحب 1.5 مل من المحلول من القارورة B وحقنها في الخليط الذي يحتوي على القارورة D. اخلط جيدا للحصول على الخليط E. استخدم حقنة 5 مل لسحب الخليط E بالكامل.
    5. الترشيح: قم بتثبيت فلتر مخصص على المحقنة. استبدل الإبرة وأدخلها في زجاجة تفريغ. قم بترشيح خليط E ببطء دون تطبيق ضغط للحصول على محلول Tc-SC بقطر 99m(الشكل 1B).
  3. تحضير الحقنة النهائية:
    1. استخدم حقنة 2 مل لسحب محلول Tc-SC بطول 99 متر. تأكد من أن كل مريض يتلقى 37-55.5 ميغابات في حجم إجمالي يتراوح بين 0.4-1.0 مل، ويفضل أن يكون قريبا من 0.1 مل لكل موقع لتقليل انزعاج الحقن. بعد سحب المحلول، استبدل الإبرة بإبرة قياس 4.5 (26 G) للاستخدام.
      ملاحظة: الجرعة الكلية المحقونة 37 ميغابات كالرق تعتبر عادة كافية32.

3. مراقبة الجودة في 99mTc-SC

ملاحظة: يتم استنشاق جزء صغير من المادة الإشعاعية في حقنة لاختبار مراقبة الجودة قبل الاستخدام.

  1. الخصائص الفيزيائية والكيميائية
    1. تأكد من أن الحقن المحضر هو تعليق غروي مثبت بالجيلاتين، معقم وخال من البيروجين، مناسب للإعطاء الوريدي. وفقا لمتطلبات الأدوية الأمريكية (USP)33، تأكد من أن درجة الحموضة تتراوح بين 4.5 و7.5.
      ملاحظة: كانت قيمة الحموضة ل 99mTc-SC المركب في هذه الدراسة ~6.0.
  2. النقاء الكيميائي الإشعاعي (RCP)
    1. إجراء تحديد النقاء الكيميائي الإشعاعي (RCP) بعينات 0 ساعة و6 ساعات من بروتوكولات التسخين لمدة 3 دقائق و5 دقائق وفقا لمتطلبات USP33.
      1. سحب حقن Tc-SC بسعة 0.1 مل 99 مترمن التسخين لمدة 3 دقائق وتسخين 5 دقائق عند 0 ساعة و6 ساعات بعد التحضير، ثم تخفيفه بشكل مناسب (حوالي 1:10).
      2. ضع الحقن المخففة باستخدام أنبوب شعري بسعة 10 ميكرولتر على شريط ورقي كروماتوغرافي (25 مم × 300 مم)، عند نقطة تبعد حوالي 20 مم من أحد الطرفين، ثم اتركه ليجف.
      3. باستخدام 85٪ ميثانول كطور متحرك، يتم تطوير الكروماتوجرام باستخدام تقنية الكروماتوغرافيا الصاعدة خلال فترة مناسبة ويصبح جافا.
      4. تحديد التوزيع الإشعاعي على الكروماتوجرام عن طريق المسح باستخدام جهاز مسح مشع. احسب RCP باستخدام الصيغة: RCP = 100٪ - (٪ بيرتشنيت حر).
        ملاحظة: تم اعتبار قيمة RCP التي تزيد عن 92٪ مقبولة (الشكل 2). إذا كان معدل RCP أقل من 92٪ أو فشل أي معيار آخر لمراقبة الجودة في الامتثال للمعايير، يجب إعادة تحضير الحقن دون شروط وخضوعه لاختبار إعادة التأهيل حتى يتم استيفاء جميع المواصفات.

4. إعداد المرضى وإعطاء 99mTc-SC

  1. تأكيد هوية المريض، رقم السجل الطبي، التشخيص، وتحديد موقع ورم الثدي قبل العملية (عادة ما يتم تحديده من قبل الجراح).
  2. أطلع المريض على إجراء رسم خرائط العقد اللمفاوية الحارسة (SLN)، بما في ذلك ألم الحقن المحتمل، مواقع الحقن، والجدول الزمني للتصوير.
  3. قس الجرعة المشعة 99mTc-SC قبل الحقن لكل مريض (الشكل 3A) لضمان جرعة معقولة، وذلك لتحقيق تصوير ممتاز وأقل ضرر ممكن للإشعاع للمريض. تأكد من حصول كل مريض على جرعة حقنية إجمالية تبلغ 37 ميغابيتلون في حجم إجمالي 0.4 مل. عقم الجلد بمسحات باليود، ثم أعط 99 مترTc-SC عن طريق الحقن تحت الجلد في المنطقة حول الحلبة (في مواضع الساعة 3، 6، 9، و12) من الثدي المصاب (الشكل 3B).
  4. اضغط على موقع الحقن باستخدام مسحة قطنية معقمة لمدة 5 دقائق. بعد التخميم، طلب من المريض إجراء تدليك للثدي بلطف لتحسين تصريف الجهاز اللمفاوي والانتظار في منطقة الانتظار للتصوير التالي32.
    ملاحظة: أثناء حقن 99 مترTc-SC، استخدم دروع رصاصية لتقليل التعرض للإشعاع.

5. اقتناء الصورة وإعادة بنائها

  1. لالتقاط الصورة32، ابدأ التصوير ~30 دقيقة بعد الحقن (عادة بين 20 و40 دقيقة) باستخدام SPECT/CT.
    1. اطلب من المريض أن يتبنى وضعية الاستلقاء والجانب الجانبي (الجانب المحقون بجانب الكاشف)، مع اختطاف الذراعين واليدين بالقرب من الرأس.
    2. استخدم معلمات التصوير المستوي التالية: وضع H، موصل منخفض الطاقة عالي الدقة (LEHR)، ذروة ضوئية 140 keV مع نافذة ±10٪، مصفوفة 256 × 256، ZOOM 1.0، عد 300K، مجال رؤية يمتد من المنطقة فوق الترقوة إلى الحجاب الحاجز.
    3. قم بإجراء تصوير الاندماج التوموسيكي فورا إذا تم رؤية النورنوروتات السليمة على التصوير المستوي. إذا لم يكن كذلك، قم بإجراء تصوير متأخر بعد ساعة واحدة من الحقن باستخدام معايير تصوير الاندماج التومو التالية: موصل LEHR، ذروة ضوئية 140 keV، نافذة ±10٪، مصفوفة 128 × 128، ZOOM 1.0، 60 إسقاطا (فواصل 6°، 16 ثانية/إطار). معايير التصوير المقطعي: 120 كيلو فولت، 150 مللي أمبير، سمك شريحة 2.5 مم.
  2. لإعادة بناء الصور، قم بمعالجة الصور على محطة العمل لتوليد مجموعات بيانات SPECT/CT المستوية والمدمجة. حدد مواقع شبكات SLN على الصور المدمجة، وقياس أبعاد العقد ذات المحور الطويل.
  3. إذا لم يتم رؤية النورنورات السريرية في تصوير 99mTc-SC، أولا استبعد العوامل القابلة للتصحيح32.
    1. أكد مع طاقم التمريض أن الحقن تم إعطاؤه تحت الجلد في المنطقة المحيطة بالهلاء وليس عميقا داخل نسيج الغدة (إذا كان غير صحيح، حقن 99mTc-SC مرة أخرى).
    2. افحص وجود أي ضغط موضعي في موقع الحقن، قد يؤثر على تصريف الجهاز اللمفاوي. إذا كان موجودا، اترك الضغط فورا، ووجه المرضى لتدليك الثدي بلطف لتعزيز تدفق الجهاز اللمفاوي.
    3. في بعض المرضى الذين يعانون من بطء التصريف اللمفاوي، قم بتمديد مدة التصوير إلى ساعتين، وإذا كانت النتائج سلبية، قم بإجراء تصوير إضافي قبل العملية قبل ساعتين من الجراحة، وخلال 24 ساعة بعد الحقن34.35 ساعة. إذا استمر SLN سلبي بعد هذه الخطوات، استخدم ميثيلين بلو36.

6. رسم خرائط الميثيلين الأزرق أثناء العملية وتحديد SLN

  1. في يوم الجراحة (خلال 24 ساعة من إعطاء الأدوية الإشعاعية): حقن 1 مل من الميثيلين الأزرق في النسيج تحت الجلد عند وضعية 3، 6، 9، 12 ساعة حول الهاليون20 و29.
  2. بعد 10-15 دقيقة، تتبع القنوات اللمفاوية الملطخة بالزرق لتحديد مواقع القنوات اللمفاوية الملونة.
  3. تأكيد شبكات SLN باستخدام نظام كشف غاما (إشارة إيجابية: العقدة الأكثر حرارة وأي عقد ساخنة أخرى تحتوي على أكثر من 10٪ من عدد العقدة الأكثر حرارة).
  4. استئصال القنوات العصبية لتحليل المقطع المجمد وضمان أن الإدارة الجراحية النهائية تتم بتوجيهها بنتائج مرضية للخدعة العصبية الدماغية.
    ملاحظة: إذا لم تستطع طريقة التتبع المزدوج تحديد مواقع شبكات SLN، يمكن محاولة تتبع ثالث، مثل ICG. ومع ذلك، في معظم الحالات، قد يكون سبب فشل التصوير هو عوامل مثل انتشار العقد اللمفاوية، أو انسداد اللمفاوية، أو اضطراب تصريف الجهاز اللمفاوي بسبب جراحة سابقة14,37. لذلك، قد تفشل طرق تتبع SLN الإضافية أيضا. وبالتالي، في معظم الحالات، توصي الإرشادات الحالية بالمضي قدما في ALND20,38، حيث تقع المسؤولية النهائية عن هذا القرار الجراحي على عاتق الجراح العامل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

نجحنا في تصنيع 99mTc-SC مع RCP > 92٪، ويظهر منحنى RCP في الشكل 2. حصلنا على رسم خرائط عالية الجودة ل SLN ل 99mTc-SC للكشف عن ال SLN لدى مرضى سرطان الثدي في المراحل المبكرة (الشكل 4). كان رسم خرائط الميثيلين الأزرق مفيدا في تحديد موقع الخلايا السريعة للشبكات المنخفضة المنخفضة أثناء التشغيل (الشكل 5). تم تحديد ال SLNs أخيرا بواسطة كاشف أشعة γ، مما تجنب حذف SLNs في منطقة الإبط من ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

في هذه الدراسة، حقق الاستخدام المشترك ل99mTc-SC قبل العملية وميثيلين بلو أثناء العملية معدل تحديد 99.8٪ من SLN، بينما أظهر الكولويد المشع وحده معدل مرتفع مماثل بلغ 99.1٪. وبذلك، يمكن للجراحين تحقيق معدل كشف شبه مثالي لمرض SLN باستخدام الغروية المشعة فقط. ومع ذلك، في الحالات التي فشل فيها رسم خرائط الغرويات المشعة، ساعد الميثيلين الأزرق في اكتشاف SLN، وهو ما يتماشى مع الدراسات السابقة لرسم خرائط SLN 9,18,23

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

لا يوجد لدى المؤلفين تضارب مصالح للكشف عنها.

شكر وتقدير

تم تمويل هذا العمل من قبل مؤسسة تشجيانغ للعلوم الطبيعية (رقم المنحة: LTGY23H180014); برنامج العلوم الطبية والتكنولوجيا في تشجيانغ (رقم المنحة 2023KY694).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
0.9٪ محلول ملحيشركة الصين أوتسوكا للأدوية المحدودة.24a75B3محلول التخفيف
فلتر حقنة أكروديسكبالPN46120.2 μ غشاء سوبر
ورق الكروماتوغرافياسيتيفا09927854لتحليل النقاء الكيميائي الإشعاعي
غطاء البخارشركة تشينغداو تشينغدون للتكنولوجيا الطبية، المحدودة.20150710الحماية الإشعاعية في تخليق الأدوية
الشعيرات الدموية الزجاجية المتبقعةشركة سينوفارم للكاشف الكيميائي المحدودة20250510أخذ عينات من الحقن لتحليل النقاء الكيميائي الإشعاعي
درع الرصاصشركة سوتشو هينغكانغ للأجهزة الطبية المحدودة5 مم Pbالحماية من الإشعاع في الحقن
قفازات مطاطية معقمة طبية تستخدم لمرة واحدةشركة سري ترانغ غلوف (تايلاند) العامة المحدودة F840يحمي اليدين من التلوث.
الميثانولشركة هوتشو شوانغلين للتكنولوجيا الكيميائية المحدودة20251021لتحليل النقاء الكيميائي الإشعاعي
ميثيلين بلوشركة جمبكان للأدوية المحدودة.240812رسم خرائط الميثيلين الأزرق أثناء العملية وتحديد ال SLN
ماسح MiniGita Radioactive TLC للطبقة الرقيقةشركة سيبيت تكنولوجي المحدودةTLC للنقاء الكيميائي الإشعاعي
  إبرةشركة جيانغسو كانغباو للمعدات الطبية المحدودة202407224.5 قياس (26 جيجاب)
نظام كشف غاما نيوبروب (GDS)الماموتوم2331609الكشف عن العقد اللمفاوية أثناء الجراحة سينتينل&nb;
ورقة اختبار PHسينوفارم كيميكال ريجنت  شركة محدودة72002361المسافة: 1-14
SPECT/CTGE للرعاية الصحيةديسكفري NM/CT 670الحصول على الصور
  حقنةشركة تشجيانغ لونغده للأدوية المحدودة؛202404004, 2024120141 مل، 5 مل
تكنتيوم-99Mشركة بكين ذرة التقنية العالية المحدودة241020-111  يجب أن يتم إخراجه من مولد Mo-Tc خلال 24 ساعة، ويجب أن يكون خاليا من عوامل مؤكسدة.
القارورة Aشركة بكين شيهونغ للأدوية المحدودة.2410202.0 مل من حمض الهيدروكلوريك 0.15 مول/لتر (HCl)
القارورة Bشركة بكين شيهونغ للأدوية المحدودة.2410202.0 مل من محلول عازل مكون من 49.2 ملغ من فوسفات ثنائي هيدروجين الصوديوم (NaH2PO4) و15.8 ملغ من هيدروكسيد الصوديوم (NaOH).
قارورة Cشركة بكين شيهونغ للأدوية المحدودة.241020منتج مبلل بالليوفيل يحتوي على مسحوق أبيض قابل للذوبان في الماء يتكون من 2.0 ملغ من ثيوسلفات الصوديوم (Na2S2O3)، و2.3 ملغ من ثنائي الصوديوم إيديتات (Na2EDTA)، و18.1 ملغ من الجيلاتين
محطة عمل XelerisGE للرعاية الصحيةبرامج التصويرمعالجة الصور لتوليد مجموعات بيانات SPECT/CT المستوية والمدمجة، توطين شبكات SLN ؛

المراجع

  1. Brackstone, M., et al. Management of the axilla in early-stage breast cancer: Ontario Health (Cancer Care Ontario) and ASCO guideline. J Clin Oncol. 39 (27), 3056-3082 (2021).
  2. Donker, M., et al. Radiotherapy or surgery of the axilla after a positive sentinel node in breast cancer (EORTC 10981-22023 AMAROS): a randomised, multicentre, open-label, phase 3 non-inferiority trial. Lancet Oncol. 15 (12), 1303-1310 (2014).
  3. Jansen, L., et al. Clinical relevance of sentinel lymph nodes outside the axilla in patients with breast cancer. Br J Surg. 87 (7), 920-925 (2000).
  4. Amin, M. B., et al. The eighth edition AJCC cancer staging manual: continuing to build a bridge from a population-based to a more "personalized" approach to cancer staging. CA Cancer J Clin. 67 (2), 93-99 (2017).
  5. Krag, D. N., et al. Technical outcomes of sentinel-lymph-node resection and conventional axillary-lymph-node dissection in patients with clinically node-negative breast cancer: results from the NSABP B-32 randomised phase III trial. Lancet Oncol. 8 (10), 881-888 (2007).
  6. Krag, D. N., et al. Sentinel-lymph-node resection compared with conventional axillary-lymph-node dissection in clinically node-negative patients with breast cancer: overall survival findings from the NSABP B-32 randomised phase 3 trial. Lancet Oncol. 11 (10), 927-933 (2010).
  7. Veronesi, U., et al. A randomized comparison of sentinel-node biopsy with routine axillary dissection in breast cancer. N Engl J Med. 349 (6), 546-553 (2003).
  8. Yang, B., et al. A single-center, self-controlled, phase I clinical trial of mitoxantrone hydrochloride injection for lymph tracing for sentinel lymph node identification of breast cancer. Gland Surg. 10 (3), 992-1001 (2021).
  9. Swerdlow, M., et al. Determining accurate dye combinations for sentinel lymph node detection: a systematic review. Plast Reconstr Surg Glob Open. 12 (2), e5598(2024).
  10. Jiao, D., et al. Efficacy and safety of mitoxantrone hydrochloride injection for tracing axillary sentinel nodes in breast cancer: a self-controlled clinical trial. Front Oncol. 12 (1), 914057(2022).
  11. Tausch, C., et al. Sentinel node biopsy after primary chemotherapy in breast cancer: a note of caution from results of ABCSG-14. Breast J. 17 (3), 230-238 (2011).
  12. Geng, C., Chen, X., Pan, X., Li, J. The feasibility and accuracy of sentinel lymph node biopsy in initially clinically node-negative breast cancer after neoadjuvant chemotherapy: a systematic review and meta-analysis. PLoS One. 11 (9), e0162605(2016).
  13. Nathanson, S. D., Grogan, J. K., Debruyn, D., Kapke, A., Karvelis, K. Breast cancer sentinel lymph node identification rates: the influence of radiocolloid mapping, case volume, and the place of the procedure. Ann Surg Oncol. 14 (5), 1629-1637 (2007).
  14. Boughey, J. C., et al. Sentinel lymph node surgery after neoadjuvant chemotherapy in patients with node-positive breast cancer: the ACOSOG Z1071 (Alliance) clinical trial. JAMA. 310 (14), 1455-1461 (2013).
  15. Hunt, K. K., et al. Sentinel lymph node surgery after neoadjuvant chemotherapy is accurate and reduces the need for axillary dissection in breast cancer patients. Ann Surg. 250 (4), 558-566 (2009).
  16. Berrocal, J., et al. Intraoperative injection of technetium-99m sulfur colloid for sentinel lymph node biopsy in breast cancer patients: a single institution experience. Surg Res Pract. 2017 (1), 5924802(2017).
  17. Boileau, J. F., et al. Sentinel node biopsy after neoadjuvant chemotherapy in biopsy-proven node-positive breast cancer the SN FNAC study. J Clin Oncol. 33 (3), 258-264 (2015).
  18. Valiveru, R. C., et al. Low-cost fluorescein as an alternative to radiocolloid for sentinel lymph node biopsy-a prospective validation study in early breast cancer. World J Surg. 44 (10), 3417-3422 (2020).
  19. Zhang, X., et al. Diagnostic performance of indocyanine green-guided sentinel lymph node biopsy in breast cancer: a meta-analysis. PLoS One. 11 (6), e0155597(2016).
  20. Zaveri, S., et al. Operative standards for sentinel lymph node biopsy and axillary lymphadenectomy for breast cancer: review of the American College of Surgeons Commission on Cancer Standards 5.3 and 5.4. Surgery. 174 (3), 717-721 (2023).
  21. Kolbow, M., et al. The use of indocyanine green and technetium-99 for dual-tracer sentinel lymph node biopsy in breast cancer. Breast Cancer Res Treat. 213 (1), 151-159 (2025).
  22. Schmidt, M., et al. [Nuclear medicine procedure guideline for sentinel lymph node localization]. Nuklearmedizin. 63 (4), 233-246 (2024).
  23. Khadka, S., et al. Sentinel node mapping in early breast cancer: a randomized comparison of fluorescein-guided All India Institute of Medical Sciences, Anurag's technique with technetium-99m sulfur colloid plus methylene blue. Indian J Nucl Med. 37 (3), 236-244 (2022).
  24. Clarke, D., Newcombe, R. G., Mansel, R. E., Group, A. T. The learning curve in sentinel node biopsy: the ALMANAC experience. Ann Surg Oncol. 11 (3 Suppl), 211S-215S (2004).
  25. Eshima, D., et al. Technetium-99m-sulfur colloid for lymphoscintigraphy: effects of preparation parameters. J Nucl Med. 37 (9), 1575-1578 (1996).
  26. Michenfelder, M. M., Bartlett, L. J., Mahoney, D. W., Herold, T. J., Hung, J. C. Particle-size and radiochemical purity evaluations of filtered 99mTc-sulfur colloid prepared with different heating times. J Nucl Med Technol. 42 (4), 283-288 (2014).
  27. Phillips, W. T., et al. Evaluation of [(99m)Tc] liposomes as lymphoscintigraphic agents: comparison with [(99m)Tc] sulfur colloid and [(99m)Tc] human serum albumin. Nucl Med Biol. 28 (4), 435-444 (2001).
  28. Chagpar, A., et al. Validation of subareolar and periareolar injection techniques for breast sentinel lymph node biopsy. Arch Surg. 139 (6), 614-618 (2004).
  29. Malhotra, C., et al. Efficacy of periareolar versus peritumoral injection of Tc99-labelled sulphur colloid and methylene blue dye for detection of sentinel lymph node in patients with early breast cancer: a comparative study. Indian J Surg Oncol. 12 (1), 119-123 (2021).
  30. Mertz, L., et al. [Subareolar injection of 99m-Tc sulfur colloid for sentinel nodes identification in multifocal invasive breast cancer]. Bull Cancer. 86 (11), 939-945 (1999).
  31. Blanco Saiz, I., et al. [Sentinel node biopsy in patients with multifocal and multicentric breast cancer: a 5-year follow-up]. Rev Esp Med Nucl Imagen Mol. 33 (4), 199-204 (2014).
  32. Giammarile, F., et al. The EANM and SNMMI practice guideline for lymphoscintigraphy and sentinel node localization in breast cancer. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 40 (12), 1932-1947 (2013).
  33. United States Pharmacopeia-National Formulary (USP 29-NF 24). , United States Pharmacopeial Convention. (2005).
  34. Yeung, H. W., et al. Lymphoscintigraphy and sentinel node localization in breast cancer patients: a comparison between 1-day and 2-day protocols. J Nucl Med. 42 (3), 420-423 (2001).
  35. Wang, H. Y., Tsai, C. C., Hung, G. U., Lin, W. Y. Effectiveness of delayed 2-day lymphoscintigraphy on sentinel lymph node detection in patients with breast cancer with negative early lymphoscintigraphy. Clin Nucl Med. 31 (9), 523-526 (2006).
  36. Park, K. U., et al. Sentinel lymph node biopsy in early-stage breast cancer: ASCO guideline update. J Clin Oncol. 43 (14), 1720-1741 (2025).
  37. Kohl Schwartz, A. S., et al. Does increased tumor burden of sentinel nodes in breast cancer affect detection procedure. Eur J Surg Oncol. 39 (3), 266-272 (2013).
  38. Lyman, G. H., et al. Sentinel lymph node biopsy for patients with early-stage breast cancer: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline update. J Clin Oncol. 35 (5), 561-564 (2017).
  39. Ratnagiri, R., et al. Performing sentinel lymph node biopsy without a hand-held gamma probe-overcoming hurdles through teamwork: an analysis of our learning curve over five years. World J Surg Oncol. 23 (1), 285(2025).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة