$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
أجريت التجارب وفقا لدليل العناية واستخدام المخبرية الصادر عن المعاهد الوطنية للصحة (منشور NIH رقم 8023، معدل 1978). تمت الموافقة على البروتوكول من قبل لجنة الأخلاقيات في جامعة يانتاي (رقم الموافقة: YTDX20240526). تم التخلص من المواد الخطرة وفقا لبروتوكولات النفايات الكيميائية المؤسسية. يوضح الشكل 1 مخططا تخطيطيا لتصميم التجربة. المواد المستخدمة والمواد المستخدمة مدرجة في جدول المواد.
1. تفاصيل
تم وضع فئران CD-1 ذكور تزن 22-25 جرام في غرفة بدورة ضوء/ظلام مدتها 12/12 ساعة. كانت حرة في الحصول على الطعام والماء.
2. إعداد نموذج الفأر ICH
تم تأسيس نموذج الفأر ل ICH وفقا لتقرير سابق11. لفترة وجيزة، تم تخدير الفئران بالزيلازين (10 ملغ/كجم) والكيتامين (90 ملغ/كجم)، ثم وضعت في إطار ستيريوتاكسي. تم حفر ثقب صغير في الحافة الإكليلية اليمنى (2.2 مم جانبيا إلى خط المنتصف، 0.2 مم خلف البريغما). تم إدخال ميكروسينج في الدماغ الأيمن على عمق 3.5 مم من سطح الجمجمة. باستخدام مضخة تسريب دقيقة، تم حقن كولاجناز البكتيري (0.075 وحدة في محلول ملحي مخزن بالفوسفات بسعة 0.5 ميكرولتر [PBS]) بمعدل 0.15 ميكرولتر/دقيقة. تم سحب الإبرة بلطف بعد 5 دقائق. تلقت الفئران في مجموعة الوهم حجما مكاويا من PBS بدلا من الكولاجيناز. تم إغلاق فتحة الفتحة بشمع العظام، وتم خياطة شق فروة الرأس. تم الحفاظ على درجة حرارة جسم عند 37°م حتى الاستيقاظ.
3. التصميم التجريبي
تم توزيع ذكور فئران CD-1 عشوائيا إلى ثلاث مجموعات: الشام، والنموذج، واللانسوبرازول. تم تأسيس نموذج ICH كما هو موضح أعلاه. بعد ثلاثين دقيقة من تحفيز ال ICH، تلقت الفئران في مجموعة اللانزوبرازول لانسوبرازول بجرعة 30 ملغ/كجم (تم اختيار جرعة اللانزوبرازول وفقا لتقرير سابقرقم 12)، وتم إعطاؤها مرة واحدة يوميا لمدة ثلاثة أيام متتالية. تلقت الفئران في مجموعتي الوهم والنماذج حقن داخل الصفاق من متلازمة PBS. بعد 3 أيام من الفحص الداخلي الداخلي، تم تقييم الوظائف العصبية قصيرة المدى باستخدام اختبار غارسيا، واختبار وضع الأطراف الأمامية، واختبار الروتارود. في اليوم 29 بعد تحفيز ICH، أجريت اختبارات جديدة للتعرف على الأشياء ومتاهة الماء لتقييم الوظائف العصبية طويلة الأمد.
4. اختبار غارسيا
أجرى باحثان، كانا غير مدركين للمجموعة، اختبار غارسيا وفقا لبروتوكول13 المبلغ عنه سابقا. تم تقييم الوظائف العصبية باستخدام نظام تقييم يتراوح من 0 إلى 21. يتكون التقييم من سبعة اختبارات فرعية، كل اختبار يحصل على درجات من 0 إلى 3 (0 = الأسوأ، 3 = الأفضل).
5. اختبار وضع الأطراف الأمامية
بعد اختبار غارسيا، تم إجراء اختبار وضع الأطراف الأمامية وفقا للطريقةالموصوفة سابقا رقم 14. تم تثبيت الفئران في وضع عمودي، موازيا لسطح الطاولة، مما سمح لاهتزازاتها باللامس على السطح. تمت ملاحظة وضع الطرف الأمامي على مدى 10 تجارب متتالية. تم حساب نسبة وضع الطرف الأمامي الأيسر كالتالي: موضع الطرف الأمامي الأيسر / (وضع الطرف الأمامي الأيسر + وضع الطرف الأمامي الأيمن) × 100٪.
6. اختبار الروتارود
بعد اختبار وضع الطرف الأمامي، وضعت الفئران على قضيب دوار بسرعة 5 دورات في الدقيقة لمدة 3 دقائق للتدريب. تم تسريع القضيب من 5 دورات في الدقيقة إلى 30 دورة في الدقيقة خلال 4 دقائق. تم تسجيل مدة بقاء كل فأر على العصا خلال فترة 5 دقائق، وسجل زمن الهروب15 دقيقة.
7. نفاذية الأمعاء واختبار وذمة الدماغ
بعد اختبار الروتارود، تم اختيار ستة فئران من كل مجموعة بشكل عشوائي. وفقا للطريقةالسابقة 16، تم إعطاء FITC-dextran عن طريق المعدة بجرعة 300 ملغ/كغ. بعد ثلاث ساعات، تم تخدير الفئران بالإيزوفلوران، وجمع الدم من الضفيرة الوريدية الرجعية، وتم طرد مركزها عند 4 درجات مئوية و11,000 × جرام لمدة 5 دقائق. تم قياس محتوى FITC-dextran باستخدام قارئ لوحة فلورية عند إثارة 485 نانومتر وأطوال موجية انبعاث 528 نانومتر. ثم تم قطع رؤوس، وجمع نصف الكرة الأيمن من الدماغ ووزنها للحصول على الوزن الرطب. تم تجفيف الأنسجة على حرارة 100 درجة مئوية لمدة 24 ساعة لتحديد الوزن الجاف. تم حساب محتوى ماء الدماغ (٪) كالتالي: [(الوزن الرطب − الوزن الجاف) / الوزن الرطب] × 100٪.
8. تقييم نفاذية الحاجز الدموي الدماغي (BBB)
بعد اختبار الروتارود، تم اختيار ستة فئران من كل مجموعة عشوائيا لتقييم نفاذية BBB. تم إعطاء محلول إيفانز أزرق بنسبة 2٪ داخل الصفاق بجرعة 4 مل/كغ. بعد ثلاث ساعات، تم تخدير الفئران بالإيزوفلوران، وأجريت عملية تروية عبر القلب باستخدام PBS. تم تجانس نصف الكرة الأيمن من الدماغ في حمض ثلاثي كلورو أسيتيك بنسبة 3:1 (نسيج الدماغ: حمض ثلاثي كلورو أسيتيك). تم تطرد المركزي في الهوموجين عند 15,000 × جرام و4 درجات مئوية لمدة 20 دقيقة. ثم خلط 500 ميكرولتر من المادة الفائقة مع 500 ميكرولتر من الإيثانول بنسبة 70٪ وحضنته طوال الليل عند درجة حرارة 4 درجات مئوية في الظلام. تم قياس تركيز اللون الأزرق إيفانز عند 610 نانومتر وتم قياسه باستخدام منحنى قياسي. تعرض البيانات كميكروغرام من إيفانز بلو لكل ملغ من نسيج الدماغ.
9. الفحص النسيجي المرضي للأمعاء والدماغ
بعد اختبار الروتارود، تم اختيار ثلاثة فئران من كل مجموعة بشكل عشوائي. تم تخدير الفئران بالإيزوفلوران. تم جمع وتثبيت الجيجونوم واللفائفي والدماغ في 10٪ فورمالديهايد. تم تقسيم الأنسجة بسماكة 5 ميكرومتر، وتم إجراء تلوين بالهيماتوكسيلين-إيوزين (HE). تم إجراء فحص نسيجي مرض للأمعاء والدماغ باستخدام مجهر بواسطة اثنين من المجربين الذين كانا أعمى عن التعيينات الجماعية. تم احتساب عدد الخلايا الدبقية الصغيرة المحيطة بالورم الدموي في أقسام تمثيلية. تم إجراء عد الخلايا في خمسة مجالات بصرية عشوائية عبر ثلاثة أقسام لكل.
10. قياس LPS و IL-1β
بعد اختبار الروتارود، تم اختيار ستة فئران من كل مجموعة بشكل عشوائي. تم تخدير الفئران بالأيزوفلوران، وجمع الدم. تم طرد عينات الدم عند 5,000 جرام × و4 درجات مئوية لمدة 10 دقائق، وتم جمع المصل. تم استخراج نصف الكرة الأيمن من الدماغ، وتم تحضير التجانس الدماغي بنسبة 1:3 (وزن الدماغ بالغرامات إلى حجم PBS بالمليلتر). تم تطرد المركزي على الذرات المتجانسة بدرجة حرارة 12,000 × جرام و4 درجات مئوية لمدة 10 دقائق. تم تحديد تركيزات البروتين في المادة الفائقة باستخدام مجموعة BCA. تم قياس مستويات LPS وIL-1β في كل من المصل ومتجانس الدماغ باستخدام مجموعات ELISA، وفقا لتعليمات الشركة المصنعة.
11. المجهر الإلكتروني الناقل
لفحص المجهرية الإلكترونية، تم اختيار ثلاثة عشوائية من كل مجموعة بعد اختبار الروتارود. تم تخدير الفئران بالإيزوفلوران وخضعوا لتروية عبر القلب مع 2٪ جلوتارالديهايد و2.5٪ بارافورمالديهايد في 0.1 مليون PBS (وفقا لبروتوكولات معتمدة مؤسسيا). ثم تم جمع الدماغ، والجيجونوم، واللفائفي ووضعها في 2٪ جلوتارالديهايد في محلول كاكوديلات بعمق 0.1 متر (pH 7.4) عند 4 درجات مئوية خلال الليل. تم نقل العينات لاحقا إلى 1٪ رباعي أكسيد الأوزميوم لمدة ساعة واحدة في درجة حرارة الغرفة. تم قطع الأديل إلى أجزاء رفيعة جدا (50 نانومتر). بعد الجفاف، تم صبغ الأقسام بأسيتات اليورانيل وسيترات الرصاص للمراقبة تحت مجهر إلكتروني ناقل. تم تقييم جميع الأقسام بطريقة عمياء وتصويرها باستخدام مجهر إلكتروني ناقل.
12. التعرف الجديد على الأشياء
بعد 29 يوما من نمذجة ICH، تم إجراء اختبار جديد للتعرف على الأشياء لتقييم وظيفة التعلم والذاكرة لدى الفئران. في اليوم الأول، لم توضع أي أشياء في الجهاز (الطول: 40 سم، العرض: 40 سم، الارتفاع: 40 سم)، مما سمح للفئران بالاستكشاف بحرية لمدة 5 دقائق. في اليوم الثاني، تم وضع جسمين متطابقين في الجهاز، وسمح للفئران باستكشافهما لمدة 5 دقائق. بعد أربع وعشرين ساعة، تم استبدال أحد الأشياء بقطعة جديدة. استكشفت الفئران الجسمين لمدة 5 دقائق مرة أخرى. تم تسجيل وقت الاستكشاف عندما يلامس أنف الفأر جسما أو عندما يكون رأسه موجها نحو الجسم ضمن مسافة 1 سم. الوقت الذي قضى في استكشاف هذا الشيء الجديد كان مقيما ومحسوبا. وقت استكشاف الشيء الجديد الأطول يشير إلى قدرة أفضل على التعلم والذاكرة.
13. متاهة موريس المائية
بعد 32 يوما من نمذجة ICH، تم تقييم وظائف التعلم والذاكرة باستخدام متاهة موريس المائية. تكون الجهاز من بركة دائرية (القطر: 100 سم، الارتفاع: 40 سم) مملوءة بالماء (العمق: 25 سم) محفوظة عند 22 درجة مئوية ± 1 درجة مئوية. تم غمر منصة هروب (قطر: 9 سم) على عمق 1 سم تحت سطح الماء. في اختبار الملاحة، خضعت الفئران لأربع تجارب يوميا. تم تسجيل الوقت المستغرق للعثور على المنصة كزمن هروب. تم توجيه الفئران التي فشلت في تحديد موقع المنصة خلال 60 ثانية بلطف نحوها. في اليوم الخامس، أجري اختبار مسبار من الستين. تم تقييم وظيفة الذاكرة من خلال تسجيل زمن الاستجابة للهروب، وعدد عبورات المنصة، والوقت الذي يقضيه في الربع المستهدف. تم تحليل البيانات باستخدام برنامج تتبع الفيديو.
14. التحليل الإحصائي
تم تحليل البيانات باستخدام برنامج GraphPad Prism الإصدار 7.0. تعرض النتائج كمتوسط ± انحراف معياري. تم استخدام اختبار شابيرو-ويلك لتقييم ما إذا كانت بيانات كل مجموعة تتبع توزيعا طبيعيا. تم تحليل الفروقات بين المجموعات بواسطة تحليل أنوفاي أحادي الاتجاه تلاه اختبار توكي بعد الاختبار. للمقارنات غير المعلمية، تم استخدام اختبار كروسكال-واليس يليه اختبار دن. تم اعتبار قيمة p <0.05 ذات دلالة إحصائية.