مقالة منهجية

في الحياة القياس عن بعد لتسجيل معلمات القلب والأوعية الدموية طويلة الأمد، ودرجة الحرارة، والنشاط في نماذج فئران إصابات الحبل الشوكي

744 مشاهدات

DOI:

10.3791/69714

يناير 2, 2026

في هذه المقالة

ملخص

تقدم هذه المقالة بروتوكولا خطوة بخطوة لوضع زرع تليمتري داخل الجسم في الشريان الأورطي النازل للفئران، مما يسمح بمراقبة مستمرة وطويلة الأمد لمعايير القلب والأوعية الدموية، ودرجة حرارة الجسم الأساسية، ونشاط قبل وبعد إصابة الحبل الشوكي العالي الشديد في الصدر.

الملخص

إصابة الحبل الشوكي الأعلى المستوى (SCI) فوق المستوى 6 (T6) تعطل الوظيفة الذاتية وتساهم في مضاعفات ثانوية، بما في ذلك تقلبات ضغط الدم ومعدل ضربات القلب ودرجة الحرارة. في الفئران، يوفر وضع الزرعات التليمترية في الشريان الأبهر النازل منهجية قوية لتقييم معايير القلب والأوعية الدموية المختلفة، مثل الضغط الانقباضي والانبساطي، ومتوسط ضغط الشريان، ومعدل ضربات القلب. يمكن أيضا تسجيل درجة حرارة الجسم الأساسية ونشاط بعد وضع الزرعات عن بعد. يتم الاحتفاظ بجرذ مزود بزرع تليمتري على لوحة الاستقبال متصلة بنظام حاسوبي لتسجيل معايير مختلفة. تسمح التسجيلات المستمرة طويلة الأمد عند فترات زمنية محددة بقياس الاضطرابات الفسيولوجية الناتجة عن الإصابة، بما في ذلك التغيرات الليلية والنهارية في وظائف القلب والأوعية الدموية. تمكن مقارنة التسجيلات قبل الإصابة (القاعدة الصحيحة) وما بعدها للباحثين من تقييم تأثير إصابات الحبل الشوكي على هذه المقاييس الفسيولوجية. توضح هذه الورقة المنهجية إجراء تفصيليا خطوة بخطوة لوضع الزرع عن بعد في الشريان الأورطي الهابط (باستخدام انسداد أحادي الشريان) للفأر، بالإضافة إلى تسجيل التليمترية المستمر بعد التصوير الحيني الصدري العالي الشديد (T3). نناقش التحديات التي نواجهها عادة أثناء تنفيذ هذه الإجراءات، بالإضافة إلى قسم مخصص لاستكشاف المشاكل. كما تناقش عملية جمع البيانات باستخدام برنامج بونيماه وتطبيقاته المختلفة. تظهر الفئران اضطرابات قلبية وعائية ودرجة حرارة ونشاط مرتبطة بالعصب الشوكي الشوكي، وتعد الزرعات التليمترية أجهزة فعالة لدراسة هذه المضاعفات بعد الإصابة وتقييم العلاجات المحتملة.

المقدمة

إصابة الحبل الشوكي الرضحية (SCI) تعيق الوظائف الحسية والحركية وتعطل تنظيم القلب والأوعية الدموية والحرارية1،2،3،4. الإصابات عند مستوى T6 أو أعلى تعطل التحكم فوق الشوكي في الوظائف الذاتية، مما يؤدي إلى تغيرات شديدة في استجابات القلب والأوعية الدموية، بما في ذلك ضعف ردود فعل مستقبلات الباروري، اضطراب تنظيم ضغط الدم، تباين معدل ضربات القلب (بطء القلب أو تسرع القلب)، اضطراب في التنظيم الحراري، وانخفاض النشاط الحركي 3,5,6,7,8,9,10 . تلاحظ هذه الشذوذات خلال المرحلتين الحادة والمزمنة من الإصابة2،3. بسبب التغيرات الديموغرافية المرتبطة بالعمر على مر السنين، أصبح خلل القلب والأوعية الدموية أحد الأسباب الرئيسية للوفيات والمرض طويل الأمد لدى الأفراد المصابين ب SCI 9,11. المرحلة الحادة من الإصابة تسبب صدمة عصبية، والتي غالبا ما تتميز بانخفاض ضغط الدم وبطء القلب بسبب اضطراب الودي9، لكنها قد تؤدي أيضا إلى ارتفاع ضغط الدم لدى الأفراد الذين يعانون من إصابة أعلى من مستوى T612,13. خلال المرحلة المزمنة، غالبا ما يعاني هؤلاء الأشخاص من خلل الانعكاس التلقائي (AD) وانخفاض ضغط الدم الانتصابي (OH)5. يعد مرض الزهايمر حالة تهدد الحياة يعرف بأنه ارتفاع مفاجئ متقطع في ضغط الدم الانقباضي (SBP) بمقدار 20-40 ملم زئبق فوق الأساس14,15. قد يعاني الأفراد من مجموعة من الأعراض، بما في ذلك صداع شديد، احمرار الجلد، التعرق، احتقان الأنف، الانتصاب الشعري، القلق، ورؤية ضبابية 13,14,16. إذا لم يعالج، يمكن أن يرفع الزهايمر SBP إلى 300 ملم زئبق، مما قد يؤدي إلى نوبات صرع، وسكتة دماغية، واحتشاء عضلة القلب، أو الموت المفاجئ17,18. يتميز التهاب الدم الخارجي بانخفاض مفاجئ في ضغط الدم عند الانتقال من وضعية الاستلقاء أو الجلوس إلى الوقوف، مما قد يؤدي إلى الدوار أو الدوار أو الإغماء. يعرف سريريا بأنه انخفاض مستمر في ضغط الدم الانقباضي لا يقل عن 20 ملم زئبق أو ضغط الدم الانبساطي (DBP) لا يقل عن 10 ملم زئبق خلال 3 دقائق من الوقوف19,20. لذا، تتميز المرحلة المزمنة بنوبات ارتفاع ضغط الدم وانخفاض ضغط الدم لدى الأفراد الذين يعانون من ارتفاع الحبل الشوكي الصدري الشديد. يعد الفهم التفصيلي لفسيولوجيا القلب والأوعية الدموية، وتقلبات درجة حرارة الجسم الأساسية، والنشاط في نماذج أمرا ضروريا لتصميم تدخلات مستهدفة لمعالجة خلل الجهاز العصبي الذاتي خلال المراحل الحادة والمزمنة بعد الإصابة الشوكية.

يتيح وضع زرعة تليمترية في الشريان الأورطي الهابط تسجيل فعال لتأثير الحبل الشوكي على ضغط الدم الانقباضي والانبساطي، ومتوسط ضغط الشريان (MAP)، ومعدل ضربات القلب، ودرجة حرارة الجسم الأساسية، والنشاط في نماذج القوارض التجريبية للعصب الشوكي الشوقي. فهم المنهجية القوية والحساسة لوضع الزرع عن بعد أمر بالغ الأهمية للحصول على بيانات فسيولوجية موثوقة بعد الحبل الشوكي. تقدم تقنيات تسجيل ضغط الدم عن بعد عدة مزايا على التقنيات غير التليمترية (مثل تقنية الكفة الخلفية). تشمل المزايا المراقبة المستمرة والفورية، تقليل التشويشات الناتجة عن التوتر، تحسين دقة البيانات وقابلية التكرار، تحسين رفاهية، وملاءمة النماذج الصغيرة أو الحساسة مثل نماذج الأمراض، الحوامل، والولادة21، 22، 23. بفضل هذه الفوائد، تسهل تقنيات التليمترية قابلية إعادة الإنتاج التجريبية وتعزز الصلة الانتقالية في أبحاث الحبل الشوكي من خلال تمكين نمذجة الاستجابات الذاتية والعصبية الشبيهة بالبشر في غير المقيدة والحرة الحرة.

تقدم المخطوطة الحالية منهجية مفصلة خطوة بخطوة لوضع الزرعات عن بعد في الشريان الأورطي الهابط24، تليها إجراء كدمة شديدة في الصدر العالي في الحبل الشوكي 25,26. يوضح كيف يمكن تسجيل معايير القلب والأوعية الدموية، ودرجة حرارة الجسم الأساسية، والسلوك باستخدام برنامج بونيماه. كما توضح المخطوطة التحديات المرتبطة بالإجراء وتقدم حلولا محتملة. بالإضافة إلى ذلك، يسلط الضوء على التطبيقات المختلفة للقياس عن بعد في الجسم الحي في أبحاث الشوكي الشوكي.

البروتوكول

تم الحصول على موافقة أخلاقية من لجنة رعاية واستخدام المؤسسية بجامعة كنتاكي، وتم اتباع الإجراءات بدقة، مع الالتزام بإرشادات البروتوكول. تم إيواء إناث الجرذان البالغة من فئران ويستار (11-13 أسبوعا، 250-300 جرام، عدد = 3) في منشأة قسم أبحاث المختبرية (جامعة كنتاكي، الولايات المتحدة الأمريكية) تحت ظروف سكن قياسية (12/12 ضوء في دورة مظلمة، رطوبة 30٪-70٪، درجة حرارة 22 ± 2 درجة مئوية) مع الطعام والماء بحرية مفرغة. المواد المستخدمة والمواد المستخدمة مدرجة في جدول المواد.

1. إجراء جراحي لوضع الزرع عن بعد

ملاحظة: تم تعديل وضع الزرع التليمتري من رابشيفسكي وآخرين وتم تحسينه أكثر لتقليل المضاعفات والوفاة24. مدة التخدير والرعاية قبل الجراحة حوالي 10 دقائق. تتراوح عملية الزرع الجراحي عن بعد بين 15 إلى 30 دقيقة. إغلاق شق البطن والجلد والعناية بعد الجراحة يستغرق من 15 إلى 20 دقيقة. مدة العملية الجراحية لتركيب الزرع عن بعد هي 40-60 دقيقة. المواد المستخدمة في جراحة الزرع عن بعد مدرجة في جدول المواد.

  1. تحضيرات الطاولة قبل الجراحة والجراحة
    1. أدوات جراحية من الأوتوكلاف، إسفنجات شاش ذات 16 طبقة، مطبقات ذات رأس قطني، وخيوط إغلاق. املأ طرف القسطرة الضغطية في الزرعة التليمترية بالجل باستخدام حقنة.
    2. قم بتعقيم الزرعات عن طريق غمرها بشكل متسلسل لمدة 24 ساعة لكل منها في مسحوق النظافة، ومعقم بارد، وكلوريد الصوديوم بنسبة 0.9٪.
    3. أبق الزرعة مغمورة في كلوريد الصوديوم 0.9٪ في أنبوب يحمل رقم الزرعة.
    4. ضع وسادة تدفئة على طاولة الجراحة واضبطها على 37-38 درجة مئوية. غط وسادة التدفئة بوسادات جراحية داخلية، تليها مناشف معقمة للحفاظ على مجال معقم أثناء الإجراء.
  2. التخدير والرعاية قبل الجراحة
    1. قم بتخدير الجرذ بالإيزوفلوران (3٪-4٪) والحفاظ على نسبة التخدير عند 2٪ باستخدام جهاز تبخير إلكتروني منخفض التدفق.
    2. أعط البوبرينورفين (0.02 ملغ/كغ؛ مسكن)، وميلوكسيكام (1 ملغ/كغ؛ مضاد للالتهاب)، و5 مل من محلول ملحي طبيعي 0.9٪ تحت الجلد قبل الجراحة. ضع جل التزييت على كلتا العينين لمنع جفاف القرنية.
  3. تجهيز موقع الجراحة، والشق، والتعرض النزولي للأبهر الأورطي
    1. احلق منطقة البطن من 1 سم فوق فتحة الإحليل إلى منتصف البطن باستخدام ماكينة حلاقة كهربائية. نظف الجلد المكشوف ثلاث مرات باستخدام فوط تحضير الكحول، ثم وضع مطهر بوفيدون-يودين. ضع حاجز ضغط وختم على واقطع فتحة صغيرة لكشف موقع الجراحة.
    2. قم بعمل شق جلدي بطول 4.5-5 سم في منتصف البداية من 1-1.5 سم فوق فتحة الإحليل، ثم قم بإجراء شق في البطن. ثبت الأعضاء الحشوية بإسفنجات شاش معقمة ومشبعة بمحلول ملحي مكون من 16 طبقة. استخدم منشطات معدنية لتثبيت الأعضاء بشكل أكبر والحفاظ على رؤية المنطقة التي سيتم تشغيلها.
    3. استخدم ملقطين دقيقين (ملقط دقيق وملقط بنهاية مرآة) لفصل أجسام الدهون بلطف وكشف الشريان الأبهر النازل والوريد الأجوف. حافظ على ملقط واحد مستقرا لتثبيت الأجسام الدهنة، واستخدم الآخر للتشريح.
  4. التشريح العريض والإغلاق
    1. قم بإجراء تشريح حاد باستخدام الملقط المذكور أعلاه، على بعد حوالي 0.5 سم أسفل الشريان الكلوي (المستخدم كعلامة تاريخية) لفصل الشريان الأبهر النازل عن الوريد الأجوف. بالإضافة إلى ذلك، افصل الشريان الأبهر النازل عن الأجسام الدهنية تحتها لخلق مساحة لإدخال الملقط المائل.
    2. أدخل ملقط مائل تحت الشريان الأبهر النازل عبر الفراغ المفكك بين الشريان الأبهر والوريد الأجوف لضمان مرور خيط الانسداد من خلالها.
    3. مرر خيطا حريريا معقما 4-0 تحت الشريان الأبهر النازل عبر الفراغ المقطوع، وثبت طرفي الخيط باستخدام جهاز هيموستات.
    4. اطلب من خبير آخر أن يمسك الهيموستات بزاوية تقارب 45 درجة، ويجري تعديلات زاوية لتقليل أو إلغاء ارتداد تدفق الدم.
    5. قم بإغلاق مؤقت للشريان الأبهر النازل القريب من نقطة إدخال القسطرة، عند نقطة انفصال الشريان الأبهر النازل والوريد الأجوف
  5. إدخال وتثبيت الزرعة
    1. أخرج الزرعة من كلوريد الصوديوم 0.9٪، وافحص طرف القسطرة الضغطية بحثا عن فقاعات أو فجوات هواء، وأضف الجل إذا كان هناك أي منها قبل الإدخال.
    2. يخترق الجدار العلوي للشريان الأبهر النازل باستخدام إبرة ملتوية بطول 21 جيلون، كما هو موضح في الفيديو، ثم يدخل طرف القسطرة الضغطية (قطر الطرف 0.74 مم) في الزرعة التليمترية. إذا لم يدخل طرف القسطرة الضغطية الشريان الأبهري، وجهه باستخدام أداة الوريد في موقع الثقب.
    3. أدخل طرف القسطرة بمقدار 1.5-2 سم في الشريان الأبهر النازل. نظف أي دم حول مكان الإدخال ووضع بضع قطرات من لاصق النسيج لتثبيت الزرعة ومنع النزيف. افحص أي تسرب دم قبل المضي قدما.
    4. ثبت جسم الزرعة على جدار البطن تحت الجلد، بعيدا قليلا عن موقع الشق، عن طريق خياطة ضلع الغرز بغرز غير قابلة للامتصاص لضمان الاستقرار طوال فترة التجربة.
  6. إغلاق جدار البطن والشق
    1. أغلق جدار البطن باستخدام غرز قابلة للامتصاص بنمط متقطع مع عقد مربعة. أغلق الجلد باستخدام تقنية خياطة داخلية مستمرة.
    2. نظف منطقة الجرح ببيروكسيد الهيدروجين لإزالة أي بقايا دم. تابع ذلك بتطبيق محلول بوفيدون-يود، ثم ضع كريم مضاد حيوي ثلاثي يحتوي على بولي ميكسين B سلفات، والزنك الباسيتراسين، وكبريتات النيوميسين لتسهيل الشفاء.
  7. الرعاية بعد الجراحة
    1. مباشرة بعد الجراحة، حقن المضاد الحيوي إنروفلوكساسين (5 ملغ/كجم) تحت الجلد. ضع الفأر في قفص منزلي مع وسادة تدفئة تحته، موضوعا على ظهر القلب، حتى يتعافى من التخدير.
      ملاحظة: معظم تتعافى من التخدير فورا، لكن بعضها قد يستغرق من 5 إلى 10 دقائق.
    2. بمجرد استيقاظ الجرذ، ضع طوقا إلكترونيا حول رقبته لمدة 3 أيام لمنع عض الغرز البطنية.
    3. لتنظيم الحرارة، احتفظ بالحيوان على وسادات ألفا في قفص استرجاع مع وسادة تسخين مياه على حرارة 37-38 درجة مئوية تحته لمدة لا تقل عن 24-72 ساعة. ضع نصف القفص على وسادة التدفئة، مما يسمح للحيوانات بالابتعاد عن الحرارة إذا لزم الأمر.
    4. أعط الأدوية بعد العملية تحت الجلد: بوبرينورفين وميلوكسيكام (مرتين يوميا لمدة 3 أيام)، وإنروفلوكساسين (مرة واحدة يوميا لمدة 5 أيام) لإدارة الألم والالتهاب والعدوى. وفر الطعام والماء بإرادته.

2. إجراء جراحي لإصابة الكدمة الصدرية (T3)

ملاحظة: تم تكييف إجراء الكدمة T3 من Squair وآخرون 26. المدة الإجمالية لإجراء إصابة الكدمة T3 هي حوالي 40-45 دقيقة. المواد المطلوبة لفحص شوكي الكدمات T3 مدرجة في جدول المواد. قم بإجراء كدمة T3 بعد أسبوعين على الأقل من وضع الزرع عن بعد. تم تحسين نافذة الأسبوعين بناء على الملاحظات التي تفيد بأن معظم تتعافى من الضيق الجراحي وتعود إلى ضغط الدم الأساسي خلال 7-10 أيام. ومع ذلك، قد تستغرق بعض وقتا أطول قليلا.

  1. التحضيرات قبل الجراحة
    1. قم بتخدير الجرذ بالكيتامين داخل الصفاق (80 ملغ/كغ) وزيلازين (7 ملغ/كغ). أعط البوبرينورفين (0.02 ملغ/كغ)، وميلوكسيكام (1 ملغ/كغ)، و5 مل من محلول ملحي طبيعي بنسبة 0.9٪ تحت الجلد قبل الجراحة.
    2. احلق السطح الظهري من منطقة عنق الرحم إلى منتصف الصدر باستخدام ماكينة حلاقة كهربائية. نظف الجلد ثلاث مرات باستخدام فوط تحضير الكحول، ثم ضع محلول بوفيدون-يود بنسبة 5٪. استخدم جل العين المزلق لمنع جفاف القرنية.
    3. ضع الفأر على وسادة تدفئة مع وسادات جراحية مغطاة بمناشف ستائر معقمة، كما يحدث أثناء الجراحة التليمترية.
  2. الشق، والتشريح السطحي، واستئصال الصفيحة
    1. حدد النتوء الشوكي T2 من خلال العمود الفقري الظهري البارز ووضع علاماته. قم بعمل شق في منتصف الظهر من C8 إلى T5 وثبت المنطقة باستخدام منشطات عضلية.
    2. قم بإجراء تشريح حاد باستخدام مقص صغير وناعم وكيريت عبر العضلات السطحية والعميقة في الشوكي. تجنب ظهور الورد الوريدي عند T4/T5 أثناء التشريح، لأن ضرره قد يسبب وفاة فورا.
    3. قم بإجراء استئصال صفيقي T3 لكشف الجزء الشوكي من T3.
  3. كدمة الحبل الشوكي
    1. ثبت عند عمليات العمود الفقري T2 وT4 باستخدام ملقط أليس على مرحلة الاصطدام في IH.
    2. قم بمحاذاة طرف الاصطدام فوق خط المنتصف باستخدام نظام الإحداثيات ثلاثي الأبعاد لضمان إصابة دقيقة في منتصف الخط. اضبط المعلمات حسب الحاجة (القوة = 400 كيلو دين مع 5 ثوان زمن البقاء).
  4. إغلاق الجرح والرعاية بعد الجراحة
    1. خياط عضلات الشوكي بخياطات قابلة للامتصاص وأغلق موقع الشق بدبابيس. قم بإزالة أي بقايا دم بالقرب من منطقة الشق باستخدام بيروكسيد الهيدروجين.
    2. تابع تطبيق محلول بوفيدون-يود، ثم ضع كريم مضاد حيوي ثلاثي يحتوي على بوليميكسين B كبريتات، والزنك الباسيتراسين، وكبريتات النيوميسين لتسهيل الشفاء. أعط إنروفلوكساسين (5 ملغ/كجم) تحت الجلد مباشرة بعد الإصابة. ضع الفأر على وسادات ألفا في أقفاص تعافي مع وسادات تسخين تحتها.
    3. قدم الرعاية بعد العملية، بما في ذلك البوبرينورفين والميلوكسيكام (مرتين يوميا لمدة 3 أيام)، وإنروفلوكساسين (مرة يوميا لمدة 5 أيام). قم بإخراج المثانة يدويا (مناورة كريد). وفر الطعام والماء بإرادته.

3. إعدادات تسجيل وتصدير البيانات

ملاحظة: تم ذكر إعدادات تسجيل وتصدير القلب، ودرجة حرارة الجسم الأساسية، ومعايير نشاط، وقبل وبعد الإصابة بالحبل الشوكي باستخدام برنامج بونيماه (الإصدار 6.51).

  1. تسجيل البيانات
    1. لتسجيل المعلمات المختلفة، انقر على إنشاء تحت تبويب التجربة وحدد علامة التجربة.
    2. اذهب إلى تبويب الأجهزة، وانقر على تعديل إعدادات معدل النقد، واختر معدل الفائدة السنوية، ثم انقر على إضافة لنقله إلى المنطقة المتاحة. ثم انقر على تعديل إعدادات PhysioTel/HD MX2 في تبويب الأجهزة لاختيار MX-2، ثم اضغط على إضافة، وتأكد من ظهوره في اللوحة اليسرى.
      1. أضف زرعات مخصصة لحيوانات مختلفة من مخزون الزرعات على الجانب الأيمن إلى اللوحة الوسطى. عدد الزرعات التي يمكن إضافتها يعتمد على عدد ألواح الاستقبال المتصلة بالنظام. انقر على كل زرعة مضافة (معنونة برقم) في اللوحة اليسرى وقم بتوصيلها بلوحة استقبال مختلفة. احفظ واخرج بمجرد إنشاء جميع التوصيلات.
    3. اذهب إلى تبويب الإعداد ثم اختر إعداد التجربة، ثم انقر على تمكين الصفحة، ثم انقر على الخلفية السوداء. اختر الموضوع، أضف الضغط على الملصق، غير الوحدة إلى mmHg، اضبط القيم المنخفضة والعالية، واختر لونا لعرض آثار ضغط الدم.
    4. اذهب إلى تبويب الإعداد ثم اختر إعداد. انقر على رقم، اختر الجنس والنوع، ثم اضغط على الضغط لتفعيل المعلمات. إذا كان من الضروري عرض معدل ضربات القلب، اضغط على معدل ضربات القلب. قم بتطبيق إعدادات القناة على القنوات المشابهة، ثم اضغط على موافق. هذا يفتح نافذة بها زرعات مختلفة مرتبة بشكل عمودي.
    5. انقر على "كل المستمر" في الأعلى لرؤية آثار تسجيل ضغط الدم على الشاشة.
  2. تصدير البيانات
    1. ابدأ بالانتقال إلى تبويب التجربة ، والنقر على فتح، واختيار البيانات من المجلد المقصود.
    2. اذهب إلى تبويب الإجراءات، وانقر على Start Review، واختر رقم الموضوع، وأنواع الإشارات المطلوبة، والنطاق الزمني من خلال التحقق من النتائج المقصودة. لاحظ أن البرنامج يصدر حتى 3 جيجابايت من البيانات في كل مرة. يمكن اشتقاق البيانات عن طريق ضبط معدل التسجيل في تبويب الإجراءات، الذي يحدد كيفية تقسيم البيانات (بالثواني أو الدقائق أو الساعات).
    3. بعد إجراء الاختيارات، انقر على تبويب الملف ، ثم اختر حفظ الأقسام المحددة متبوعا بحفظ البيانات المشتقة.
    4. أخيرا، اذهب إلى تبويب الإجراءات وانقر على إغلاق جلسة المراجعة لإنهاء تصدير البيانات.

النتائج

يسمح وضع زرعة تليمترية في الشريان الأبهر النازل بقياس خلل الانعكاسية العصبي الذاتي ومعايير القلب والأوعية الدموية المختلفة، بما في ذلك ضغط الدم الانقباضي (SBP)، ضغط الدم الانبساطي (DBP)، متوسط ضغط الشريان (MAP)، ومعدل ضربات القلب (HR)، قبل وبعد الشوط الشوكي. كما يقيس الزرع درجة حرارة الجسم الأساسية ونشاطها. مقارنة بيانات ما قبل الإصابة وبعدها تكشف كيف تتأثر نتائج القلب والأوعية الدموية، ودرجة الحرارة، والنشاط بعد الشوك الشوكي. يعرض الشكل 1 تصميم التجربة (الشكل 1A-C) والنتائج الممثلة، بما في ذلك خلل الانعكاسات العصبية العصبية (الشكل 1D)، ومعايير القلب والأوعية الدموية، بما في ذلك ضغط الدم الانقباضي (SBP؛ الشكل 1E (i))، ضغط الدم الانبساطي (DBP؛ الشكل 1E (ii))، متوسط ضغط الشريان (MAP؛ الشكل 1E (الثالث))، ومعدل ضربات القلب (معدل ضربات قلب؛ الشكل 1E (iv))، درجة حرارة الجسم الأساسية (الشكل 1E (v))، والنشاط الحيواني (الشكل 1E (vi))، قبل وبعد إصابة الحبل الشوكي (الشكل 1E). لتقليل استخدام، تم أخذ البيانات في الشكل 1 من دراسة جارية شملت إناث الفئران؛ ومع ذلك، يمكن تطبيق نفس الإجراء على ذكور الفئران.

يظهر الرسم البياني التمثيلي في الشكل 1D ضغط الدم الانقباضي قبل دقيقة واحدة من التحفيز، أثناء المحفز، ودقيقة واحدة بعد تطبيق المنبه في الفئران المصابة بكدمة T3 بعد 8 أسابيع من إصابة الحبل الشوكي باستخدام انتفاخ القولون والمستقيم (CRD). يستخدم CRD إدخال قسطرة بالون في فتحة شرج الفأر لتحفيزالمستقيم. يتم نفخ البالون بمجرد استقرار خط الأساس، ويطبق المنبه لمدة دقيقة واحدة. زيادة لا تقل عن 20 مم زئبق SBP أثناء التحفيز مقارنة ب SBP الأساسي (قبل التحفيز) تظهر تطور الزئمر في المرحلة المزمنة من الإصابة (8 أسابيع).

تقارن الرسوم البيانية في الشكل 1E التسجيلات التي تم التقاطها قبل 48 ساعة من إصابة الكدمة T3 وخلال أول يومين بعد الإصابة (48 ساعة بعد الإصابة). بعد الشوكي، تظهر الرسوم البيانية ارتفاع ضغط الدم الملحوظ بزيادة SBP وDBP وMAP (الشكل 1E (i)، (ii)، (iii)). أظهرت نتائج ما بعد الشوكي زيادة في تقلبات معدل ضربات القلب (الشكل 1E (iv))، وعدم انتظام في درجة حرارة الجسم الأساسية (الشكل 1E (v))، وانخفاض النشاط (الشكل 1E (vi)). بالإضافة إلى ذلك، تسبب اضطراب الحبل الشوكي في اضطراب إيقاعات النهار والليل في SBP، DBP، MAP، معدل ضربات قلب، درجة حرارة الجسم الأساسية، والنشاط.

figure-results-1
الشكل 1: مخطط لوضع زرعات القياس عن بعد وتطبيقاتها بعد إصابة كدمة صدرية شديدة (T3). إدخال زرع تليمتري داخل الجسم في الشريان الأورطي النازل للجرذ (A)، تليه إصابة شديدة بكدمة صدرية عالية (T3) باستخدام مصاص IH (القوة = 400 كيلو دين مع 5 ثوان زمن بقاء في الجسم) بعد أسبوعين (B). إعداد تمثيلي للتسجيل التليمتري باستخدام نظام مراقبة محوسب باستخدام برنامج بونماه (C). أثر تمثيلي (بيانات تم جمعها بمعدل تسجيل 2 ثانية) لإناث الفئران التي تظهر خلل الانعكاسية التلقائية (AD) بعد 8 أسابيع من إصابة الحبل الشوكي (SCI). يشير الخط الأخضر المنقط إلى منبه انتفاخ القولون والمستقيم (CRD) لمدة دقيقة واحدة (D)، ومتوسط ممثل في الساعة ل 48 h. i. ضغط الدم الانقباضي (SBP)، ii. ضغط الدم الانبساطي (DBP)، الجزء الثالث. الضغط الشرياني المتوسط (MAP)، iv. معدل ضربات القلب (معدل ضربات قلب)، V. درجة حرارة الجسم الأساسية (درجة حرارة الجسم الأساسية)، و6. النشاط قبل وبعد الإصابة بالحبل الشوكي (E). تمثل المناطق غير المظللة والمظللة دورات ضوء 12 ساعة و12 ساعة مظلمة على التوالي. "0" تشير إلى تشغيل الأضواء، و"12" تشير إلى إطفاء الأضواء. تمثل أشرطة الخطأ متوسط ± SEM (n = 3). يرجى الضغط هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

المناقشة

وضع زرعة تليمترية في الشريان الأبهر النازل يوفر طريقة موثوقة لقياس معايير القلب والأوعية الدموية، ودرجة حرارة الجسم الأساسية، ونشاط. يقدم القياس عن بعد مزايا واضحة مقارنة بالتقنيات غير التليمترية. يسمح بجمع البيانات من المستيقظة التي تتحرك بحرية، مما يلغي التأثيرات المربكة للتخدير الذي يمكن أن يغير ضغط الدم ومعدل ضربات القلب21,27. على عكس الطرق غير المترية، يمنع القياس عن بعد الضغط الحراري وضغط، مما يضمن قياسات قلبية وعائية دقيقة23,28. يتيح المراقبة المستمرة لضغط الدم، معدل ضربات القلب، درجة حرارة الجسم الأساسية، والنشاط لأسابيع أو حتى شهور، بينما تسجل الإجراءات غير المترية بشكل متقطعفقط 21، 28، 29. بشكل عام، توفر المراقبة التليمترية دقة ودقة أعلىمن النهج غير التليمتري.

تقلل الطرق الذهنية من الإجهاد الجسدي والفسيولوجي، وتحافظ على السلوك الطبيعي وتضمن الامتثال لإرشادات رفاهية27. دقتها العالية وتباينها الأقل مقارنة بالتقنيات غير المترية تقلل عدد المطلوبة وتزيد القوة الإحصائية21,23. كما يقدم التليمترية قيمة ترجمية قوية في اكتشاف الأدوية وأبحاث القلب والأوعية الدموية، حيث تشبه البيانات إلى حد كبير الاستجابات الفسيولوجية البشرية28. بشكل جماعي، النهج التليمتري أفضل وأخلاقيا مفضل على الطرق غير التليمترية.

يوفر وضع الزرع عن بعد في الشريان الأبهر النازل للفئران عدة مزايا لأبحاث الإصابة الشوكي مقارنة بوضعه في الشريان السباتي أو الفخذ، التي تعمل كمواقع زرع بديلة في نماذج. كونها وعاء مركزي كبير، توفر الشريان الأبهر الهابط قياسات مستقرة وممثلة لضغط الدم ومعدل ضربات القلب، وهي مؤشرات حاسمة لتقييم خلل القلب والأوعية الدموية بعد الإصابة الشوكي30,31. الزرع في هذا الموقع يقلل من التداخل مع تدفق دم الطرف ويقلل من خطر نقص التروية والمضاعفات الأخرى المرتبطة غالبا بوضع الشريان الطرفي30،31. كما يسمح بمراقبة مستمرة لمعايير القلب والأوعية الدموية الأساسية وخلل الانعكاسات الذاتية، وكلاهما أساسي في أبحاث الحبل الشوكي24. قد يؤدي الزرع في الشريان الفخذي إلى إهمال الدم إلى الطرف الخلفي من نفس الجانب، مما قد يؤثر على نتائج التجارب ورفاهية32,33. على الرغم من أن زرع الشريان السباتي أبسط تقنيا، إلا أنه يحمل مخاطر مثل السكتة الدماغية أو المضاعفات العصبية بسبب قربه من الدورة الدموية الدماغية، وهو أمر غير مرغوب فيه في الدراسات التي تركز على التأثيرات القلبية القلبية المحيطية33. لذلك، يوفر الزرع في الشريان الأورطي النازل موقعا موثوقا، ويقلل من التعقيدات المحلية، ويعزز كل من الصرامة التجريبية والقيمة الانتقالية للبيانات التي تجمع من الواعية والحرة. تواجه عدة تحديات شائعة عند وضع زرعات تليمترية في الشريان الأبهر النازل.

من خلال التجربة والخطأ، تم تحسين الإجراء لتجاوز العقبات التالية: (1) التهاب البطن: لوحظ التهاب البطن في الفئران في المراحل الحادة والمزمنة بعد جراحة الزرع التليمتري. لتخفيف ذلك، تم تطبيق نظام ما بعد العملية يتكون من مسكن البوبرينورفين ومضاد للالتهابات ميلوكسيكام، مما أدى إلى تقليل معدل الالتهاب البطني. سابقا، في كل دفعة، كانت بعض تطور بطون منتفخة ومشدودة وفي النهاية ماتت. أثناء سحب الزرع، غالبا ما كان تجويف البطن يحتوي على سائل شفاف أو، في بعض الحالات، سائل بني اللون ذو رائحة نفاذة. هذا النظام قلل من معدل الالتهاب بنسبة تقارب 70٪-80٪ مقارنة بالحيوانات التي خضعت للجراحة بدونه؛ (2) نزيف واسع أثناء تشريح الشريان الأورطي النازل من الوريد الأجوف: استخدم ملقطا دقيقا (ملقط دقيق وملقط مرآة) لفصل الشريان الأبهر النازل عن الوريد الأجوف بلطف باستخدام تشريح حاد (تمسك وتمزيق). تجنب القطع بين الاثنين باستخدام المقص أو النصل، لأنه قد يسبب نزيفا شديدا بسبب تمزق الأوعية الدموية الأساسية؛ (3) إدخال الزرعة التليمترية في الطبقة السطحية: أثناء ثقب الأبهر النزولي، تأكد من مرور الإبرة عبر جميع الطبقات الثلاث للجدار العلوي وليس فقط الطبقة السطحية. تسرب الدم بعد الثقب يشير إلى أن جميع طبقات الجدار العلوي مثقوبة. لن تسجل الزرعة التليمترية بشكل صحيح إذا تم إدخال قسطرة الضغط فقط في الطبقة السطحية؛ (4) إدخال القسطرة بطول غير صحيح: استخدم المجهر أثناء و/أو بعد إدخال الزرعة لضمان عبور القسطرة الضغطية لخيط الإغلاق. لن تعمل الزرعة بشكل صحيح إذا كان طول القسطرة المدخلة غير صحيح؛ (5) تسرب الدم من الشريان الأورطي النزولي: اترك اللاصق يجف بعد 30-45 ثانية من إدخال الزرعة. هذا يضمن أن الثقب في الشريان الأبهر النازل مغلق بالكامل وعدم نزيفه. أعد الإغلاق إذا حدث نزيف خفيف بسبب ارتداد الدم. تجنب سحب طرف قسطرة الضغط في الزرعة أثناء خياطة جسم الزرعة إلى جانب جدار البطن، لأن ذلك قد يسبب نزيفا؛ (6) الفئران التي تزيل غرز البطن: قد تعض الفئران وتخلع الغرز، مما يؤدي إلى تلف الجلد والأعضاء الداخلية. لتقليل ذلك، استخدم غرز غير منقطعة مع عقدة مربعة لإغلاق جدار البطن. لإغلاق الجلد، ضع غرزا مستمرة داخل الجلد لتقليل وصول إلى الغرز والعقد. ضع طوقا إلكترونيا لمدة 3 أيام بعد العملية لتقييد الوصول أكثر. تأكد من أن المقاس محكم لكنه غير مقيد بوضع إصبع السبابة بين الطوق وعنق الجرذ؛ (7) نقص التروية في الطرف الخلفي: سابقا، كان الشريان الأبهر مسدودا في موقعين: أحدهما عند الشريان الأبهر النازل على بعد 0.5 سم أسفل الشريان الكلوي، والآخر فوق انقسام الحرقفة. ساعدت تقنية الانسداد الثنائي في الحفاظ على شد الشريان، مما سهل وضع الزرعات بسلاسة أكبر والحد من تدفق الدم المرتد. ومع ذلك، أدى ذلك إلى نقص التروية في الأطراف الخلفية في بعض إذا لم يتم إدخال القسطرة بسرعة. حاليا، يتم إجراء انسداد أحادي على بعد 0.5 سم أسفل الشريان الكلوي، مما يقضي فعليا على نقص تروي الأطراف الخلفية لدى الفئران. مع الانسداد الثنائي، لوحظ حوالي 20٪-30٪ نقص ترويا، بينما الانسداد الأحادي قضى تماما على نقص التروية في الطرف الخلفي.

التطبيقات

الزرعات التليمترية (HD-S10) هي أجهزة مفعلة مغناطيسيا مصممة لتسجيل معلمات فسيولوجية مختلفة في نماذج الصغيرة. وضع هذه الزرعات في الشريان الأبهر النازل هو طريقة دقيقة وموثوقة للمراقبة المستمرة للديناميكا الدموية في غير المقيدة، غير المخدرة، والحركة بحرية. تسمح هذه المنهجية للباحثين ما قبل السريري بإجراء تقييمات فورية لمختلف معايير القلب والأوعية الدموية، ودرجة الحرارة، ونشاط في سياق نمذجة المرض، مثل مؤشر الحبل الشوكي، وتقييم فعالية الأدوية، والتغيرات اليومية في معلمات الوظائف الذاتية. يمكن للباحثين الحصول على بيانات فسيولوجية شاملة من زرع تليمتري واحد في، تغطي الفترات الزمنية الحادة والمزمنة، مما يجعلها تقنية فعالة. يبرز الشكل 1 تطبيق القياس عن بعد وغيره من التطبيقات المستخدمة حاليا في المختبر.

يمكن تسجيل معلمات الديناميكا الدموية، بما في ذلك SBP وDBP وMAP، خلال فترات حادة ومزمنة. يمكن أن يكون مراقبة إيقاع الراحة والنشاط على مدار الساعة مؤشرا موثوقا على التأثيرات الحادة لاضطراب الحبلالشوكي 34. يمكن المراقبة المتزامنة لمعدل ضربات القلب من اكتشاف تباين معدل ضربات القلب، بما في ذلك تسرع القلب وبطء القلب. مقارنة تقلبات ضغط الدم ومعدل ضربات القلب قبل وبعد الإصابة تسمح للباحثين بفهم كيفية تغير فسيولوجيا القلب بعد الإصابة. الإيقاع اليومي القوي في معايير القلب والأوعية الدموية، ودرجة حرارة الجسم الأساسية، والنشاط مهم للحفاظ على التوازن الفسيولوجي والصحة العامة. التغيرات في درجة حرارة الجسم النهارية تشير أيضا إلى ضعف في تنظيم الحرارة بعد الإصابة الشوكي34. من المعروف جيدا أن التهاب الحبل الشوكي هو متلازمة تتكون من الجسم الكامل. لذلك، يسمح دمج النتائج القائمة على التليمترية للباحثين بجمع بيانات شاملة للنشاط بعد الإصابة بالحبل الشوكي إلى جانب التعافي الحركي، والذي يتم تقييمه عادة بشكل منفصل.

ومع ذلك، هناك بعض القيود في هذه التقنية التي يجب أخذها في الاعتبار. وضع المجس التليمتري في الشريان الأورطي النازل هو إجراء معقد ولذلك يتطلب خبرة جراحية دقيقة. يمكن أن تتحرك الزرعة لاحقا لأسباب متعددة، منها سوء التعامل أثناء تعبير المثانة لدى فئران الإصابة بالحبل الشوكي، أو العدوى، أو تهيج الأنسجة، أو تكوين جلطات داخلية. سيتأثر تسجيل القلب والأوعية الدموية إذا حدث أي من هذه الحالات؛ يجب استبعاد البيانات. بالإضافة إلى ذلك، إذا لم يتعاف الفأر بشكل صحيح، فقد تتعرض بيانات القلب والأوعية الدموية الأساسية للخطر. إعداد القياس عن بعد والزرعات مكلفة وتتطلب برامج ومعدات متخصصة لجمع البيانات. قد يؤدي مرض الحبل الشوكي الشديد إلى زيادة الوفيات؛ لذلك، من الضروري التخطيط الدقيق لأعداد للحفاظ على القوة الإحصائية العامة للدراسة.

بشكل عام، يعد تقييم اضطرابات القلب والأوعية الدموية، ودرجة حرارة الجسم الأساسية، والنشاط باستخدام القياس عن بعد الإصابة في الحقن الشوكي عبر الفترات الحادة والمزمنة، أمرا بالغ الأهمية لفهم تأثير الإصابة على صحة القلب والأوعية الدموية، والرفاهية العامة، ولتصميم التدخلات المحتملة.

الإفصاحات

المؤلفون ليس لديهم ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

تم توفير النشر بفضل R01 NS116068، وزمالة مؤسسة كريغ إتش نيلسن لجمعية SK (CHNF 1341200)، وجامعة كنتاكي لنظام الاستقلاب المركزي (CNS-Met) COBRE (P20 GM148326). نود أن نشكر قسم موارد المختبرية (DLAR) على دعمه وتعاونه.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
الملقط المائلجراحات دومون، سويسراS& T 00571الجراحة التليمترية
غرز قابلة للامتصاص (5-0)، خيط أحاديشركة كوفيديين ذ.م.م، الولايات المتحدة الأمريكيةUM-213جراحة التليمترية وT3
معقم بارد أكتريلأنظمة الكلى مينتيك، الولايات المتحدة الأمريكيةرقم التعريف 78270-000الجراحة التليمترية
الدموع الصناعيةهنري شاين، الولايات المتحدة الأمريكيةNDC 11695-6832-1جراحة التليمترية وT3
بوبرينورفينهوسبيرا، إنك.، الولايات المتحدة الأمريكية 0409-2012-32جراحة التليمترية وT3
أدوات تطبيق القطنVWR أمريكا الشمالية، الولايات المتحدة الأمريكية89031-272جراحة التليمترية وT3
كوريتوورلد بريسيجن إنسترومنتس، الولايات المتحدة الأمريكية503753جراحة النوع الثالث
الطوق الإلكترونيهنري طعام الحيوانات الأليفة الطازج والصحي، الولايات المتحدة الأمريكيةRC404 مقابل متوسط-الجراحة التليمترية
ماكينة الحلاقة الكهربائيةريمينغتون، الولايات المتحدة الأمريكية HC-5855جراحة التليمترية وT3
إنروفلوكساسينمختبرات نوربروك المحدودة، المملكة المتحدة555529-154-01جراحة التليمترية وT3
ملقط الأسماك (ميكرو- أدسون)F.S.T، ألمانيا11006-12جراحة التليمترية وT3
إسفنجيات القياسشركة دوكال، الولايات المتحدة الأمريكيةDUK4162جراحة التليمترية وT3
منظف هيمو-سولهيمو-سول الدولية، الولايات المتحدة الأمريكية026-050الجراحة التليمترية
حامل إبرة هالسيF.S.T، ألمانيا12500-12جراحة التليمترية وT3
وسادة التدفئةصن بيم، الولايات المتحدة الأمريكيةPN126985-لجراحة التليمترية وT3
بيروكسيد الهيدروجين (3٪)شركة ميدلاين للصناعات، الولايات المتحدة الأمريكيةMDS098001ZCTجراحة التليمترية وT3
أفق إنفينت، IHأنظمة وأجهزة بريسيجن آند ستروماتشن، الولايات المتحدة الأمريكيةIH-0400جراحة النوع الثالث
إيزوفلورانمنظمة الصحة الحيوانية الدولية، الولايات المتحدة الأمريكية78949580الجراحة التليمترية
الكيتامينكوفيتروس، الولايات المتحدة الأمريكية80524جراحة النوع الثالث
مغناطيسشركة علم البيانات الدولية، الولايات المتحدة الأمريكيةلا يوجدالجراحة التليمترية
ميلوكسيكاممنتجات ديكرا البيطرية، الولايات المتحدة الأمريكية 17033-051-20جراحة التليمترية وT3
ملقط التشريح الدقيق  وورلد بريسيجن إنسترومنتس، سويسرا504515الجراحة التليمترية
ملقط التشطيب المرآتيجراحات دومون، سويسرا11251-23الجراحة التليمترية
مسحب عضلات (كبير؛ 1)F.S.T، ألمانيا17007-08الجراحة التليمترية
منعدات العضلات (صغيرة، 2)عيادة ويكسلر للجراحة، الولايات المتحدة الأمريكيةTL0086.1جراحة النوع الثالث
إبرة، 21G (مثنية للوخز)إبرة الانزلاق الدقيقة BD، بيكتون، ديكنسون وشركاه، الولايات المتحدة الأمريكية5296673الجراحة التليمترية
غرز غير قابلة للامتصاص (4-0) غرز البولي بروبيلينشركة ديميتيك، الولايات المتحدة الأمريكيةPM194013F13Mالجراحة التليمترية
خيط الإغلاق (الحرير)شركة كلوفر نيدل كرافت، اليابان96الجراحة التليمترية
شركة بونماه للبرمجياتشركة علم البيانات الدولية، الولايات المتحدة الأمريكيةلا يوجدالجراحة التليمترية
بوفيدون - اليود (بيتادين) (5٪)أفريو هيلث، الولايات المتحدة الأمريكية304968-08جراحة التليمترية وT3
بريس آند سدغلاد، الولايات المتحدة الأمريكيةCLO70441جراحة التليمترية وT3
ريجيل-كيتشركة علم البيانات الدولية، الولايات المتحدة الأمريكية276-0038-001الجراحة التليمترية
مقبض المشرطF.S.T، ألمانيا91003-12جراحة التليمترية وT3
المقص (صغير، ناعم)F.S.T، ألمانيا14959-11جراحة التليمترية وT3
كلوريد الصوديوم (0.9٪)فيتيفكس، الولايات المتحدة الأمريكية17033-492-50الجراحة التليمترية
سومنوفلوشركة كنت العلمية، الولايات المتحدة الأمريكيةSF-01الجراحة التليمترية
الأساسيات  أدوات العلوم الدقيقة، الولايات المتحدة الأمريكية12022-09جراحة النوع الثالث
فوط تحضير الكحول المعقمةشركة دوكال، الولايات المتحدة الأمريكية  65517-0002-1جراحة التليمترية وT3
قفازات معقمةماكيسون، الولايات المتحدة الأمريكية20-1065Nجراحة التليمترية وT3
ستائر منشفة معقمة (18" X26")شركة دايناركس، الولايات المتحدة الأمريكيةDYA4410جراحة التليمترية وT3
الجراحة تحت الوسادات (17" X24")شركة دوكال، الولايات المتحدة الأمريكية22-415-758جراحة التليمترية وT3
شفرة جراحية (رقم 11)شركة إنتيغرا لايف ساينسز برودكشن كوربوريشن، اليابان2029-03--01جراحة التليمترية وT3
زرع HD-S10 التليمتريشركة Data Sciences International, Inc., الولايات المتحدة الأمريكية270-0180-001Xالجراحة التليمترية
ترانزستورشركة علم البيانات الدولية، الولايات المتحدة الأمريكيةلا يوجدالجراحة التليمترية
كريم المضاد الحيوي الثلاثيشركة كوزيت للأدوية، الولايات المتحدة الأمريكية29-62231CPLNC1الجراحة التليمترية
اختيار العرقتقنيات تسريب ساي، الهندVP-10الجراحة التليمترية
سند الطبيب البيطريمنتجات 3M للعناية بالحيوانات، الولايات المتحدة الأمريكية34-8720-6521-3الجراحة التليمترية
مضخات تسخين المياهC2Dx TP700 TCESS-95009-00جراحة التليمترية وT3
زيلازينكوفيتروس، الولايات المتحدة الأمريكية 61035جراحة النوع الثالث

المراجع

  1. Bhattacharyya, S., Sahu, S., Kaur, S., Jain, S. Effect of low intensity magnetic field stimulation on calcium-mediated cytotoxicity after mild spinal cord contusion injury in rats. Ann Neurosci. 27 (2), 49-56 (2020).
  2. Hagen, E. M. Acute complications of spinal cord injuries. World J Orthop. 6 (1), 17-23 (2015).
  3. Hagen, E. M., Rekand, T., Gronning, M., Faerestrand, S. Cardiovascular complications of spinal cord injury. Tidsskr Nor Laegeforen. 132 (9), 1115-1120 (2012).
  4. Kaur, S., Jain, S., Bhardwaj, R., Kumaran, S. S., Kochhar, K. P. Modulation of the biphasic pattern of cortical reorganization in spinal cord-transected rats by external magnetic fields. J Biosci. 50, 71(2025).
  5. Furlan, J. C., Fehlings, M. G. Cardiovascular complications after acute spinal cord injury: pathophysiology, diagnosis, and management. Neurosurg Focus. 25 (5), E13(2008).
  6. Cragg, J. J., Noonan, V. K., Krassioukov, A., Borisoff, J. Cardiovascular disease and spinal cord injury: results from a national population health survey. Neurology. 81 (8), 723-728 (2013).
  7. Grossmann, F., Flueck, J. L., Perret, C., Meeusen, R., Roelands, B. The thermoregulatory and thermal responses of individuals with a spinal cord injury during exercise, acclimation and by using cooling strategies-A systematic review. Front Physiol. 12, 636997(2021).
  8. Grigorean, V. T., et al. Cardiac dysfunctions following spinal cord injury. J Med Life. 2 (2), 133-145 (2009).
  9. Weaver, L. C., Flemfing, J. C., Mathias, C. J., Krassioukov, A. V. Disordered cardiovascular control after spinal cord injury. Handb Clin Neurol. 109, 213-233 (2012).
  10. Partida, E., Mironets, E., Hou, S., Tom, V. J. Cardiovascular dysfunction following spinal cord injury. Neural Regen Res. 11 (2), 189-194 (2016).
  11. Garshick, E., et al. A prospective assessment of mortality in chronic spinal cord injury. Spinal Cord. 43 (7), 408-416 (2005).
  12. Krassioukov, A. V., Furlan, J. C., Fehlings, M. G. Autonomic dysreflexia in acute spinal cord injury: an under-recognized clinical entity. J Neurotrauma. 20 (8), 707-716 (2003).
  13. Eldahan, K. C., Rabchevsky, A. G. Autonomic dysreflexia after spinal cord injury: systemic pathophysiology and methods of management. Auton Neurosci. 209, 59-70 (2018).
  14. Karlsson, A. K. Autonomic dysreflexia. Spinal Cord. 37, 383-391 (1999).
  15. Canon, S., et al. Autonomic dysreflexia during urodynamics in children and adolescents with spinal cord injury or severe neurologic disease. J Pediatr Urol. 11 (1), 32.e1-32.e4 (2015).
  16. Lindan, R., Joiner, E., Freehafer, A. A., Hazel, C. Incidence and clinical features of autonomic dysreflexia in patients with spinal cord injury. Paraplegia. 18 (5), 285-292 (1980).
  17. Ho, C. P., Krassioukov, A. V. Autonomic dysreflexia and myocardial ischemia. Spinal Cord. 48 (9), 714-715 (2010).
  18. Wan, D., Krassioukov, A. V. Life-threatening outcomes associated with autonomic dysreflexia: A clinical review. J Spinal Cord Med. 37 (1), 2-10 (2014).
  19. Kalra, D. K., Raina, A., Sohal, S. Neurogenic orthostatic hypotension: State of the art and therapeutic strategies. Clin Med Insights Cardiol. 14, 1179546820953415(2020).
  20. Kim, M. J., Farrell, J. Orthostatic hypotension: A practical approach. Am Fam Physician. 105 (1), 39-49 (2022).
  21. Braga, V. A., Prabhakar, N. R. Refinement of telemetry for measuring blood pressure in conscious rats. J Am Assoc Lab Anim Sci. 48 (3), 268-271 (2009).
  22. Chinnadurai, S. K., et al. Comparison of an implantable telemetry device and an oscillometric monitor for measurement of blood pressure in anaesthetized and unrestrained green iguanas (Iguana iguana). Vet Anaesth Analg. 37 (5), 434-439 (2010).
  23. Harrison, D. G., et al. Tail-cuff versus radiotelemetry to measure blood pressure in mice and rats. Hypertension. 81 (1), 3-5 (2024).
  24. Rabchevsky, A. G., et al. Effects of gabapentin on muscle spasticity and both induced as well as spontaneous autonomic dysreflexia after complete spinal cord injury. Front Physiol. 3, 329(2012).
  25. Squair, J. W., White, B. A., Bravo, G. I., Martin Ginis, K. A., Krassioukov, A. V. The economic burden of autonomic dysreflexia during hospitalization for individuals with spinal cord injury. J Neurotrauma. 33 (15), 1422-1427 (2016).
  26. Squair, J. W., et al. Minocycline reduces the severity of autonomic dysreflexia after experimental spinal cord injury. J Neurotrauma. 35 (24), 2861-2871 (2018).
  27. Niemeyer, J. E. Telemetry for small animal physiology. Lab Anim (NY). 45 (7), 255-257 (2016).
  28. Cruz-López, E. O., Merkus, D., Danser, A. H. J. Blood pressure monitoring through radiotelemetry: exploring the viability of its application in multihoused small laboratory animals. Hypertension. 81 (5), 947-950 (2024).
  29. Molcan, L. Telemetric data collection should be standard in modern experimental cardiovascular research. Physiol Behav. 242, 113620(2021).
  30. Wang, Y., et al. Artificial intelligence measuring the aortic diameter assist in identifying adverse blood pressure status including masked hypertension. Postgrad Med. 134 (1), 111-121 (2022).
  31. DePaolo, J., et al. Relationship between ascending thoracic aortic diameter and blood pressure: a Mendelian randomization study. Arterioscl Throm Vas. 43 (2), 359-366 (2023).
  32. Hou, S., Blesch, A., Lu, P. A radio-telemetric system to monitor cardiovascular function in rats with spinal cord transection and embryonic neural stem cell grafts. J Vis Exp. (92), e51914(2014).
  33. Marie, B., et al. Carotid versus femoral access for transcatheter aortic valve replacement: comparable results in the current era. Eur J Cardiothorac Surg. 60 (4), 874-879 (2021).
  34. Gaudet, A. D., et al. Spinal cord injury in rats disrupts the circadian system. eNeuro. 5 (6), (2018).

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم