Name: إيماس التصوير في خلايا الشبكية مع القطبين الميكروسكوب TIRF (فيديو) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-06-09T00:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 54 s
Description: تعلم تصوير إفراز الحويصلات التشابكية في خلايا الشبكية ثنائية القطبية لسمك الذهب باستخدام مجهر TIRF. تُظهر هذه الطريقة آليات إطلاق الناقل العصبي بدقة عالية.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

وأيد هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة منح EY 14990.

<ol><li>Axelrod, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Total+internal+reflection+fluorescence+microscopy+in+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Traffic%22%5BJournal%5D)">Total internal reflection fluorescence microscopy in cell biology.</a> Traffic. 2, 764-774 (2001).</li>
<li>Zenisek, D., Steyer, J. A., Almers, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transport%2C+capture+and+exocytosis+of+single+synaptic+vesicles+at+active+zones%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Transport, capture and exocytosis of single synaptic vesicles at active zones.</a> Nature. 406, 849-854 (2000).</li>
<li>Zenisek, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vesicle+association+and+exocytosis+at+ribbon+and+extraribbon+sites+in+retinal+bipolar+cell+presynaptic+terminals%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Vesicle association and exocytosis at ribbon and extraribbon sites in retinal bipolar cell presynaptic terminals.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 105, 4922-4927 (2008).</li>
<li>Zenisek, D., Horst, N. K., Merrifield, C., Sterling, P., Matthews, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+synaptic+ribbons+in+the+living+cell%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Visualizing synaptic ribbons in the living cell.</a> J. Neurosci. 24, 9752-9759 (2004).</li>
<li>Axelrod, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+imaging+of+surface+fluorescence+with+very+high+aperture+microscope+objectives%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Opt%22%5BJournal%5D)">Selective imaging of surface fluorescence with very high aperture microscope objectives.</a> J. Biomed. Opt. 6, 6-13 (2001).</li>
<li>Rouze, N. C., Schwartz, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continous+and+transient+vesicle+cycling+at+a+ribbon+synapse%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Continous and transient vesicle cycling at a ribbon synapse.</a> J. Neurosci. 18, 8614-8624 (1998).</li>
</ol>

مزايا المجهري TIRF الهدف من النوع هي أن 1) أنه يوفر sectioning البصرية ممتازة من خلال تقييد ضوء الإثارة إلى منطقة ضيقة داخل الطائرة البؤرية لهذا الهدف ، وبالتالي تقليل الخروج من تركيز الضوء ؛ 2) منذ قطرات الضوء بشكل كبير ، مع المسافة يمكن رصد حركة في اتجاه عمودي على أنه تغيير في كثافة مضان ، 3) جمع ضوء كفاءة من خلال الفتحة العددية الهدف 1،5 عالية. العيب الرئيسي من هذه التقنية هو أن تقتصر على الأحداث التصوير يحدث داخل نانومتر و 100 من سطح الخلي...

إيماس التصوير في خلايا الشبكية مع القطبين الميكروسكوب tirf

Imaging Exocytosis in Retinal Bipolar Cells with TIRF Microscopy

مجموع الانعكاس الداخلي مضان (TIRF) المجهري هو الاسلوب الذي يسمح للدراسة الأحداث يحدث في غشاء الخلية ، من خلال التصوير الانتقائي للجزيئات الفلورسنت التي هي أقرب إلى مادة الانكسار ارتفاع الرقم القياسي مثل الزجاج<sup&gt; 1</sup&gt;. في هذه المقالة ، ونحن نطبق هذه التقنية لإيماس صورة حويصلات متشابك في خلايا الشبكية القطبين معزولة من الشبكية ذهبية. هذه الخلايا العصبية هي مناسبة جدا لهذا النوع من الدراسة بسبب هذه المحطات محور عصبي كبير. قبل التصحيح في وقت واحد لقط الخلايا القطبين ، فمن الممكن للتحقيق في العلاقة بين مرحلة ما قبل متشابك الجهد والإفراج متشابك<sup&gt; 2،3</sup&gt;. يتم تحميل حويصلات متشابك داخل الخلية محطات القطبين مع صبغة الفلورسنت (FM 1-43 ®) التي شاركت في النفخ الصبغة وإيجاد حل الجرس K يحتوي على ارتفاع<sup&gt; +</sup&gt; التركيز على المحطات متشابك. هذا depolarizes الخلايا ويحفز امتصاص الصبغة الإلتقام وما يترتب على ذلك إلى الحويصلات glutamatergic. بعد غسل الصبغة بعيدا عن نحو 30 دقيقة ، والخلايا التي تكون جاهزة للتصوير والتصحيح فرضت في وقت واحد مع ليزر 488 نانومتر. الحل ماصة التصحيح يحتوي على الببتيد المستندة رودامين التي تربط بشكل انتقائي للRIBEYE الشريط بروتين متشابك<sup&gt; 4</sup&gt; ، مما وسم الشرائط المصورة على وجه التحديد عند محطات مع ليزر 561 نانومتر. هذا يسمح للتوطين الدقيق للمناطق نشطة وفصل متشابك من خارج متشابك الأحداث.

في هذا الفيديو ، ونحن لشرح كيفية تسمية واحدة تصور إيماس حويصلة متشابك والاتجار في خلايا شبكية العين باستخدام القطبين ذهبية مجموع مضان الانعكاس الداخلي (TIRF) المجهري.

إيماس التصوير في خلايا الشبكية مع القطبين الميكروسكوب TIRF

تعد مجهرية الفلورة ذات الانعكاس الداخلي الكلي (TIRF) تقنية تسمح بدراسة الأحداث التي تقع عند غشاء الخلية، من خلال الانتقاء...

تبدأ هذه العملية بتشريح الشبكية العصبية لأسماك goldfish البالغة، وهي النسيج العصبي الموجود في الجزء الخلفي من العين. تُوضع الشبكات في محلول إنزيمي لمدة 35 دقيقة، ثم تُشطف وتُعالج باستخدام ماصة زجاجية مصقولة بالنار لفصل الخلايا. بعد ذلك، تُنشر الخلايا على شرائح غطاء زجاجية ذات معامل انكسار عالٍ وتُثبت في أطباق بلاستيكية لزراعة الأنسجة.يتم تحديد الخلايا ثنائية القطب المعزولة من خلال مورفولوجيتها المميزة في النهايات التشابكية. نقوم بنفخ محلول يحتوي على FM 1 43 عليها لمدة 10 ثوانٍ، ثم ننتظر لمدة 30 ثانية قبل غسل الصبغة. وبعد عملية غسل تستمر لمدة 30 دقيقة، يتم تثبيت الخلايا باستخدام تقنية Patch-clamp وتصويرها بواسطة مجهر TIRF.مرحباً، اسمي كريستينا جوفي من مختبر ZEC بقسم الفسيولوجيا الخلوية والجزيئية في كلية الطب بجامعة ييل. سنعرض لكم اليوم إجراءً لدراسة عملية الإخراج الخلوي في الخلايا ثنائية القطب الشبكية الحية باستخدام مجهر TIRF. نستخدم هذا الإجراء في المختبر لدراسة آليات التحرر التشابكي.لنبدأ الآن. في البداية، قم بتكييف السمكة الذهبية مع الظلام لمدة 30 دقيقة على الأقل قبل عملية التشريح. بعد فصل الرأس وإزالة العين، ضع مقلة عين واحدة على قطعة من ورق الترشيح، واستخدم طرف شفرة مشرط رقم 11 لثقب الليمب الصلبي. داخل الثقب الناتج.استخدم مقص بونا (bonna scissors) لقص القطعة الأمامية بالكامل وإزالتها. بعد ذلك، ضع قطعة صغيرة من ورق الترشيح فوق الكأس البصري المتبقي واضغط عليها قليلاً. لامتصاص الخلط الزجاجي، ارفع ورق الترشيح مع الشبكية الملتصقة به، وباستخدام مقص VNA، قم بقص العصب البصري.ضع ورقة الترشيح التي تحتوي على الشبكية في طبق زراعة بلاستيكي بقطر 35 مليمتر يحتوي على محلول hyaluronidase عالي التركيز، واستخدم ملقط dumont رقم 7 لفصل الشبكية عن ورقة الترشيح. بعد ذلك، وباستخدام نصف شفرة فولاذية كربونية صناعية أحادية الحافة، قم بتقطيع الشبكية إلى أربع إلى ست قطع واتركها في محلول hyaluronidase لمدة 20 دقيقة. وأثناء انتظار مفعول hyaluronidase، أضف 5 مل من محلول L cysteine إلى papain واتركه لمدة تتراوح من 5 إلى 10 دقائق تقريباً حتى يصبح السائل شفافاً. اغسل قطع الشبكية ثلاث مرات في محلول ringer منخفض الكالسيوم، ثم اتركها في محلول papain لمدة تتراوح من 30 إلى 35 دقيقة.بعد التحضين لمدة 35 دقيقة في محلول الباباين، اغسل قطع الشبكية ثلاث مرات. انقل القطع إلى طبق زراعة بلاستيكي مقاس 35 مليمتر يحتوي على محلول رينجر منخفض الكالسيوم، واحفظ الطبق في درجة حرارة تتراوح من 12 إلى 14 درجة Celsius حتى تصبح مستعداً لبدء عملية تفكيك الخلايا.أولاً، يتم تصنيع ماصة تفكيك باستخدام موقد بنزن لتسخين طرف أنبوب زجاجي أو ماصة، ثم تُستخدم ملاقط تشريحية لثنيه قليلاً. توضع قطعة من الشبكية في أنبوب طرد مركزي دقيق يحتوي على محلول رينجر منخفض الكالسيوم، ويتم تفكيك الشبكية ببطء عن طريق سحبها ودفعها بعناية باستخدام ماصة التفكيك المُصنعة. مع الحرص على عدم تكوين أي فقاعات هوائية، يتم توزيع الخلايا المعزولة عن طريق إضافة قطرة من معلق الشبكية إلى غرفة تسجيل مُعدة منزلياً ومملوءة بمحلول رينجر منخفض الكالسيوم.تتكون الحجرة من النصف السفلي لطبق زراعة بلاستيكي بقطر 35 مليمتر يحتوي على ثقب دائري في المنتصف، وغطاء شرائحي دائري مصنوع من زجاج بمعامل انكسار 1.78 مثبت بالغراء في الأسفل. وبعد إتمام عملية التشريح وعزل الخلايا ثنائية القطب، نصبح جاهزين لبدء تحميل الخلايا ثنائية القطب وعملية الغسيل. وفي هذه التجربة، يفضل استخدام مجهر فلوري يعمل بتقنية الانعكاس الداخلي الكلي من نوع الهدف (objective type) مزود بعدسة ذات فتحة عددية عالية جداً وكاميرا حساسة.في هذا الفيديو، سنستخدم عدسة شيئية بفتحة عددية 1.65 وجهاز كاشف شحنة مقترن مضخم إلكترونياً. للبدء، أضف قطرة من سائل ذو معامل انكسار عالٍ إلى العدسة الشيئية للمجهر. ضع غرفة التسجيل فوق العدسة الشيئية للمجهر.قم بتثبيت القطب الأرضي وأنبوب خروج الإرواء السطحي بعناية في الغرفة. اترك الغرفة فوق المجهر لمدة تتراوح من 10 إلى 20 دقيقة، للسماح للخلايا بالترسب والالتصاق بالقاع. بعد ذلك، قم بتطهير خطوط الإرواء السطحي وأضف محلول الغسيل.أضف محلول رينجر منخفض الكالسيوم ومحلول رينجر الضابط إلى نظام الإرواء الفائق. قم بتشغيل ضوء المجال الساطع للمجهر وابحث عن الخلايا ثنائية القطب السليمة. انقر بخفة على المجهر للتأكد من أن العصبونات ملتصقة بإحكام بقاع الحجرة.ضع قلم الإرواء الفائق (superfusion pen) بالقرب من خلية سليمة، وقم بإرواء التحضير باستمرار بمحلول رينجر منخفض الكالسيوم. الآن، أطفئ الأنوار في الغرفة وأضف مرشح تمرير طويل أحمر (red long pass Filter) إلى المسار البصري لتقليل استثارة الصبغة الفلورية. املأ ماصة تحميل بـ 10 µL من محلول الصبغة الفلورية.قم بتثبيت الماصة في الميكرو-مانيبوليتور (micro manipulator)، ثم اخفضها فوق العينة دون استخدام خيار الضغط الزائد حتى تصبح في نفس المستوى البؤري لخلية bilar المختارة. ضع فتحة النفخ على مسافة تبلغ حوالي 10 micrometers من النهاية المحورية. أوقف تشغيل نظام الإرواء السطحي (superfusion system) وقم بنفخ محلول الصبغة لمدة 10 ثوانٍ عن طريق تشغيل الضغط الزائد للماصة.الآن، قم بإيقاف تشغيل الضغط الزائد، ودون تحريك الماصة، انتظر لمدة 30 ثانية، ثم قم بتشغيل نظام التروية الفائقة (superfusion system) وغمر الحجرة في محلول الغسيل لمدة خمس دقائق. وفي هذه الأثناء، قم بإزالة ماصة التثبيت (puffer pipette) من الحمام.بعد مرور خمس دقائق، قم بتحويل نظام SUPERFUSION إلى محلول رينجر منخفض الكالسيوم وقم بالتروية لمدة تتراوح من 25 إلى 30 دقيقة، وذلك للسماح بإزالة الصبغة الزائدة. بعد اكتمال تحميل الخلايا ثنائية القطب وعملية الغسل، نصبح مستعدين لبدء تثبيت الرقعة (patch clamping) والتصوير بتقنية T-I-R-F-M. بعد اكتمال الغسل، قم بتغيير حوامل الأقطاب الكهربائية لتجنب تلوث ماصة الرقعة بالصبغة.ضع النهاية المحورية في مركز مجال الرؤية. املأ ماصة الرقعة (patch pipette) بـ 7 µL من المحلول الداخلي. انقر عليها للتخلص من الفقاعات الهوائية.قم بتغليفها بشمع الأسنان المصهور ثم ثبتها في المجهر المجهري (micro manipulator). قم بتشغيل ضغط الماصة وأنزل الماصة ببطء فوق التحضير. تحقق من مقاومة الماصة وأجرِ أي تصحيحات ضرورية.بعد ذلك، مع ضبط نظام الإرواء الفائق (superfusion system) على محلول رينجر الضابط، قم بإنشاء ختم غيغا (giga seal) بين الماصة والخلية عن طريق ملامسة طرف القطب الكهربائي بلطف بجسم الخلية. ومع إيقاف الضغط الزائد للماصة، قم بتطبيق ضغط سلبي برفق على القطب أثناء عملية الختم. اختر وضع الخلية الكاملة (whole cell mode) في المضخم واضبط جهد تثبيت الخلية على -60 millivolts.استخدم الآن برنامج التصوير لتحديد منطقة الاهتمام التي تشمل الطرف المحوري بأكمله. أطفئ ضوء المجال الساطع، وقم بتعريض الطرف المحوري لفترة وجيزة لليزر بطول موجي 488 nanometer. حدد المستوى البؤري المناسب للتصوير بتقنية TIRF.بعد ذلك، قم بعمل ثقب في الخلية باستخدام أمر zap الخاص بالمضخم مع تطبيق ضغط سلبي طفيف على الماصة، ثم قم بتصحيح سعة الخلية ومقاومة التوالي. وبعد ذلك، طبق بروتوكول الجهد الكهربائي أثناء تصوير حركة الحويصلات التشابكية. انتظر لمدة 40 ثانية على الأقل بين التجارب للسماح بالاسترداد.أولاً، نختار خلية ثنائية القطب باستخدام المجهر الضوئي (brightfield microscopy). ثم نقوم بالتكبير وشحن النهاية المحورية للخلية بالصبغة الفلورية. وبعد عملية غسيل تستمر لمدة 30 minute، يمكن تصوير النهاية المشحونة مجهرياً مع تتبع حركة الحويصلات الغلوتاماتية الفلورية.نقوم هنا بإدخال ببتيد رابط للشرائط (rib eye binding peptide) عبر الماصة الرقعية (patch pipette)، مما يتيح لنا رؤية موقع الشرائط التشابكية عند التصوير باستخدام ليزر بطول موجي 561 nanometer. بعد ذلك، نقوم بإزالة استقطاب الخلايا وتصوير حركة الحويصلات باستخدام ليزر بطول موجي 488 nanometer. لقد عرضنا لكم للتو كيفية فصل وتوزيع وتحميل الخلايا ثنائية القطب في الشبكية بصبغة فلورية، بالإضافة إلى كيفية استخدام تقنية تثبيت الرقعة (patch clamp) لهذه العصبونات وتصويرها في آن واحد باستخدام مجهر turf.عند القيام بهذا الإجراء، من المهم عدم تعريض الخلايا لليزر بشكل مفرط. هذا كل شيء. شكراً للمشاهدة وبالتوفيق في تجاربكم.

imaging-exocytosis-in-retinal-bipolar-cells-with-tirf-microscopy

Research

JoVE Journal

Biology

علم الأحياء

نحن هنا وصف بروتوكول لإعداد آغار جزءا لا يتجزأ من شرائح الشبكية التي هي مناسبة للالكهربية وCA2 التصوير +. هذا الأسلوب يسمح احد لدراسة الشريط من نوع المشابك في شبكية العين باستخدام رقائق مباشرة التصحيح ، المشبك تسجيلات احد المحطات العصبية قبل المشبكي.

التصحيح ، المشبك قياسات السعة والكالسيوم 2 + التصوير في محطات عصب واحد في شرائح الشبكية

والتقسيم من البروتينات، سواء داخل غشاء البلازما أو في مواقع داخل الخلايا هي واحدة الآلية التنظيمية التي يمكن أن تؤثر بشكل كبير نتائج إشارة، وبالتالي فهم إشارات من المهم دراسة السلوك المكاني والزماني للبروتينات المعنية. نحن هنا وصف نظام الفحص المجهري TIRF يستند إلى دراسة نقل الإشارات في الخلايا التائية، ولكن قابلة للتطبيق على نطاق واسع.

تقنية الفحص المجهري للTIRF التصوير، في الوقت الحقيقي في وقت واحد من TCR وما يرتبط بها من البروتينات اشارة

المصدر: Daniele, F., et. al مجسات GFP الحساسة للأس الهيدروجيني والأس الهيدروجيني لتقييم ديناميكيات حويصلة الناقل العصبي في خلايا الورم الأرومي العصبي SH-SY5Y: تصوير الخلايا وتحليل البيانات. J. Vis. Exp. (2015). يوضح هذا الفيديو تصوير خلايا الورم الأرومي العصبي البشري باستخدام مجهر مضان الانعكاس الداخلي الكلي (TIRF) لتصور الحويصلات المشبكية الموسومة بالفلوروفور. يتم تركيز الخلايا أولا في وضع التألق. ثم يتم إجراء التعديلات لتحقيق الانعكاس الداخلي الكلي ، مما يؤدي إلى توليد موجات زائلة تثير...

تصوير الخلايا باستخدام الفحص المجهري الفلوري للانعكاس الداخلي الكلي

المصدر: Winkle, C. C., et al. استخدام المنهجيات المجمعة لتحديد دور توصيل غشاء البلازما أثناء تفرع المحور العصبي وتكوين الخلايا العصبية. J. Vis. Exp. (2016)يوضح هذا الفيديو الفحص المجهري الكلي لمضان الانعكاس الداخلي (TIRF) لتصور الأحداث الخارجية في الخلايا العصبية القشرية. تتألق علامة البروتين الفلوري الأخضر الحساس للأس الهيدروجيني (GFP) عند اندماج الحويصلة ، مع إثارة TIRF الانتقائية التي تلتقط إفراز الخلايا الغشائية القريبة في التصوير بفاصل زمني.

الفحص المجهري الفلوري للانعكاس الداخلي الكلي لتصور الأحداث الغريبة 

القائم على الاستقطاب الانعكاس الداخلي الكامل الإسفار الميكروسكوب (pTIRFM) يتيح الكشف في الوقت الحقيقي من ديناميات غشاء الخلية. توضح هذه المقالة تنفيذ pTIRFM لدراسة إعادة غشاء إيماس خلال التنظيم. والتقنية هي تعميم لعمليات أخرى في بيولوجيا الخلية التي تنطوي بصورة مباشرة أو غير مباشرة التغيرات في شكل الغشاء.

التصوير البلازما غشاء التشويهات مع pTIRFM

الالتقام الخلوي بوساطة كلاثرين ، وهي عملية سريعة وديناميكية للغاية تستوعب العديد من البروتينات ، بما في ذلك مستقبلات الإشارات. يصور البروتوكول الموصوف هنا بشكل مباشر حركية الأحداث الداخلية الفردية. هذا ضروري لفهم كيفية تنسيق الأعضاء الأساسيين في آلية الخلية مع بعضهم البعض ، وكيف تؤثر شحنة البروتين على هذه العملية.

تصور الإلتقام بالكلاذرين بوساطة من G مستقبلات البروتين يقترن قرار واحد في الحدث عبر الميكروسكوب TIRF

توفر هذه الورقة طريقة للتحقيق في ديناميكيات حويصلات الناقل العصبي في خلايا الورم الأرومي العصبي ، باستخدام بناء synaptobrevin2-pHluorin والفحص المجهري الفلوري للانعكاس الداخلي الكلي. كما يتم الإبلاغ عن الاستراتيجية التي تم تطويرها لمعالجة الصور وتحليل البيانات.

TIRFM والحساسة للدرجة الحموضة GFP-تحقيقات في تقييم ناقل عصبي الحويصلة حيوية في خلايا SH-SY5Y العصبية: التصوير خلية وتحليل البيانات

هنا نحن بالتفصيل طريقة لتصوير الخلايا الحية للرقابة الخاضعة للتنظيم. ويستخدم هذا الأسلوب فيتك-ديكستران، التي تتراكم في العضيات يحلول المتصلة، كمراسل. كما يسمح هذا الأسلوب البسيط التمييز بين أنماط مختلفة من الرقابة الخاضعة للتنظيم في الخلايا التي يصعب التلاعب وراثيا.

تصوير فيتك-ديكستران كمراسل للرقابة الخاضعة للتنظيم

التصوير في الجسم الحي هو أداة قوية لدراسة علم الأحياء في الصحة والمرض. يصف هذا البروتوكول التصوير عبر الحدقتين لشبكية الفأر باستخدام مجهر قياسي ثنائي الفوتون. كما أنه يوضح اختلافا في طرق التصوير الحي لتسمية مجموعات خلوية متعددة من شبكية العين.

تصوير الفوتون عبر الحدقة في الجسم الحي لشبكية العين الفأرية

يقدم هذا العمل إعدادا بديلا لشبكية العين المسطحة حيث تتيح إزالة أجسام الخلايا المستقبلة للضوء انتشارا أسرع للأجسام المضادة وتحسين وصول ماصة التصحيح إلى الخلايا العصبية الداخلية للشبكية للكيمياء المناعية والتهجين في الموقع وتجارب الفيزيولوجيا الكهربية.

انقسام الشبكية كتحضير مسطح محسن لدراسة الخلايا العصبية للطبقة النووية الداخلية في شبكية الفقاريات

توضح هذه الورقة طريقة لتصوير وقياس حركة الخلايا الدبقية الصغيرة وتلامسها مع النقاط بعد المشبكية في الشبكية باستخدام المجهر الكونفوكالي الدوار للقرص الدواري.

التصوير الحي وتوصيف ديناميكيات الخلايا الدبقية الصغيرة والتفاعلات مع المشابك في شبكية الفأر المريضة

تعلم تصوير إفراز الحويصلات التشابكية في خلايا الشبكية ثنائية القطبية لسمك الذهب باستخدام مجهر TIRF. تُظهر هذه الطريقة آليات إطلاق الناقل العصبي بدقة عالية.

إيماس التصوير في خلايا الشبكية مع القطبين الميكروسكوب TIRF

استكشف المزيد من الفيديوهات