$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
- يستهدف العلاج الكيميائي للأورام عموما الخلايا عالية التكاثر ، تاركا وراءه مجموعة فرعية صغيرة من مجموعات الخلايا الجذعية ، مما يؤدي إلى تلخيص الورم. تسمى هذه الخلايا الجذعية بالسكان الجانبيين. نظرا لأن السكان الجانبيين يفتقرون إلى علامات خلوية محددة ، فإننا نستخدم مقايسة تدفق الصبغة لعزلها عن الخلايا السرطانية الأخرى.
للبدء ، أضف صبغة Hoechst إلى الخلايا السرطانية المعزولة لسمك الزرد. يدخل Hoechst إلى النواة ويرتبط بالمنطقة الغنية ب A-T في الأخدود الصغير للحمض النووي. تحتوي المجموعة الجانبية للخلايا على تركيز أعلى من ناقلات ABC على السطح ، مما يؤدي إلى تدفق سريع للصبغة خارج الخلية ، مما يؤدي إلى تألق منخفض.
خذ قارورة أخرى من الخلايا السرطانية المعالجة بالخيوط وأضف إليها فيراباميل. تعمل هذه القارورة كعنصر تحكم ، لأن الفيراباميل يمنع ناقلات ABC مما يتسبب في تقليل تدفق التدفق ، وبالتالي زيادة التألق في السكان الجانبيين.
احتضان كل من خلايا التحكم والعينة في الظلام. بعد ذلك ، قم بمواجهة الخلايا الملطخة باستخدام يوديد البروبيديوم الذي يدخل نواة الخلايا الميتة حصريا ويقمع بين قواعد الحمض النووي ، مما يؤدي إلى تلطيخ الخلايا الميتة باللون الأحمر. أخيرا ، قم بفرز الخلايا باستخدام فارز الخلايا المنشط بالفلورة. في البروتوكول التالي ، سنقوم بعزل السكان الجانبيين للخلايا السرطانية من سمك الزرد.
- قبل تلطيخ الخلايا ، قم بتخفيف صبغة Hoechst في ماء خال من النوكلياز للحصول على مليغرام واحد لكل مليلتر محلول عمل. قم بتخزين المحلول المحضر المغطى بورق الألمنيوم عند 4 درجات مئوية ، ثم قم بإذابة 49.1 ملليغرام من الفيراباميل في مليلتر واحد من DMSO للحصول على محلول مثبط 100 ميكرومولار.
بعد ذلك ، قم بإعداد العينة عن طريق إضافة FBS / PBS 2.5 ميكرولتر من DMSO ، و 15 ميكرولترا من ملليغرام واحد لكل مليلتر صبغة Hoechst ، و 10 إلى الخلايا السرطانية الست إلى أنبوب FACS بحجم نهائي يبلغ مليلتر واحد.
لتحضير عنصر التحكم ، أضف FBS / PBS ، 2.5 ميكرولتر من 100 مللي مولار فيراباميل ، 15 ميكرولتر من مليغرام واحد لكل مليلتر صبغة Hoechst. أضف 10 إلى 6 خلايا سرطانية ، بحجم نهائي يبلغ مليلتر واحد.
احتضان العينة والتحكم في حمام مائي 28 درجة مئوية في الظلام لمدة 120 دقيقة. بعد الحضانة ، ضع الخلايا على الفور على الجليد واحتفظ بها في الظلام.
الطرد المركزي للخلايا عند 300 مرة جم ، 4 درجات مئوية لمدة ست دقائق. ثم قم بإزالة المادة الطافية واغسل الخلايا بملليلتر واحد من FBS / PBS. قم بتدوير الخلايا عند 300 مرة جم ، 4 درجات مئوية لمدة ست دقائق مرة أخرى.
بمجرد تكوير الخلايا ، قم بإزالة المادة الطافية وإعادة تعليق الخلايا في مليلتر واحد من FBS / PBS. احتفظ بالعينات عند 4 درجات مئوية حتى فرز الخلايا. قبل 15 دقيقة من فرز الخلايا ، أضف ميكرولترين من مليغرام واحد لكل مليلتر من محلول مخزون يوديد البروبيديوم لكل مليلتر واحد من تعليق الخلية. ثم قم بتدوير العينات جيدا.
قم بتحليل معلقات خلايا T-ALL لسمك الزرد الملون باستخدام فارز الخلايا المنشط بالفلورة. قم بإثارة العينات باستخدام ليزر الأشعة فوق البنفسجية لتحليل صبغة Hoechst وليزر 488 نانومتر للكشف عن خلايا يوديد البروبيديوم أو خلايا T-ALL الإيجابية GFP.
- قد يحتاج عدد الخلايا وتركيز الصبغة ودرجة حرارة الحضانة وطول الحضانة إلى التحسين لكل نوع خلية مختلف مستخدم ، ويمكن أن تؤدي التغييرات التي تطرأ على كل حالة من هذه الحالات إلى تغيير نتائج الفحص بشكل جذري.