فحص البلعمة الحية للخلايا الدبقية الصغيرة باستخدام المشابك العصبية البشرية

خذ صفيحة متعددة الآبار تحتوي على خلايا شبيهة بالخلايا الدبقية الصغيرة تظهر نشاطا بلعمة.

احتضن مع وصمة عار نووية لتسمية النوى.

add a hibil polymerization actin to the negative control well.

<p style='لون الخلفية:#ffffff;ارتفاع الخط:1.799999999999999999;margin-bottom:0pt;margin-top:0pt;'padding:0pt 0pt 12pt;' dir='ltr'>أثناء الحضانة، يرتبط المثبط بخيوط الأكتين، مما يثبط بلمرة الأكتين والبلعمة.

حافظ على اللوحة في درجات حرارة منخفضة وأضف المشابك العصبية المسماة بالصبغة الحساسة للأس الهيدروجيني - شظايا معزولة من المحطات المشبكية العصبية.

طرد مركزي اللوحة في درجات حرارة منخفضة لتعزيز تفاعلات الخلايا المشابك مع منع الامتصاص المبكر.

نمط

نقل اللوحة إلى نظام تصوير الخلية الحية.

في بئر الاختبار، تكون الجسيمات المشابكة البلعمية وتندمج مع الجسيمات الحالة التي تشكل الجسيمات البلعمة. تعمل البيئة الحمضية الليزوزومية على تنشيط الصبغة ، مما يؤدي إلى تألقها.

بمرور الوقت، في بئر الاختبار، يتم ابتلاع المزيد من الجسيمات المشابكة مما يؤدي إلى زيادة أخرى في التألق.

ومع ذلك، في بئر التحكم السلبي، يتم تثبيط بلمرة الأكتين، مما يمنع امتصاص الجسيم المشبكي. يؤكد الحد الأدنى من التألق الناتج اعتماد التألق على البلعمة بوساطة الأكتين.

في يوم الفحص ، قم بإزالة 40 ميكرولترا من الوسط لكل بئر ، وأضف 10 ميكرولترات من محلول ا