يوليو 21, 2015
Microdialysis هو أسلوب يستخدم عادة في البحوث الأعصاب. لذا تحقيقات تجارية هي في demand.In عظيم هذا العمل أوضح التجمع التحقيق في التفاصيل لبناء موثوق بها، متحدة المركز، حسب الطلب microdialysis التحقيق لأقل من 10 دولارا.
الهدف العام من هذا الإجراء هو وصف الشركة المصنعة لمسبار غسيل الكلى المجهري المصنوع خصيصا. يتم تحقيق ذلك عن طريق قطع أنابيب البولي تترافلورو إيثيلين أولا والسيليكا المنصهرة في الأبعاد الصحيحة. الخطوة الثانية هي إدخال السيليكا المنصهرة في الأنبوب باستخدام قنية كإرشاد.
بعد ذلك ، يتم وضع غشاء غسيل الكلى فوق السيليكا المنصهرة. الخطوة الأخيرة هي سحب الغلاف المعدني على الجزء المتبقي من السيليكا المنصهرة واستخدام الإيبوكسي لإغلاق المفاصل وضمان طول تبادل يبلغ ملليمترين. في النهاية ، ستوضح التعليمات الواردة في هذا الفيديو كيفية بناء مسبار غسيل الكلى الدقيق القوي والموثوق به حسب الطلب كبديل لمسبار تجاري ، والذي يمكنه قياس التعافي في المختبر بدقة للببتيدات العصبية والجزيئات الصغيرة.
الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أن مجموعة مسبار غسيل الكلى المجهري هذه المقدمة بالتفصيل يمكن تكييفها مع أي تطبيق ويمكن تصنيعها بأقل من 10. للبدء ، قم بقص قطعة من أنابيب البولي تترافلورو إيثيلين بسمك 1.6 ملم بقطر داخلي 350 ميكرون إلى أقسام بطول 2.5 سم. قم بقص أحد طرفي القسم بزاوية 45 درجة لتسهيل توصيل أنبوب المخرج.
بعد ذلك ، استخدم ورق الصنفرة لتخشين السطح الخارجي لأنبوب PTFE لتعزيز التصاق غراء الإيبوكسي. قطع جزء من السيليكا المنصهرة إلى قطعة بطول 2.25 سم. أدخل إبرة قياس 30 في ألياف PTFE المجوفة على بعد سنتيمتر واحد من الطرف المسطح.
ثني PTFE وثقب الغمد عند الانحناء. أدخل السيليكا المنصهرة في أنبوب PTFE باستخدام قنية الإبرة كإرشاد. ثم قم بإزالة قنية الإبرة برفق ووضع السيليكا المنصهرة بحيث تعرض خمسة ملليمترات الطرف المسطح لأنبوب PTFE.
استخدم قطرة من غراء سيانواكريليت لتثبيت السيليكا المنصهرة في مكانها في موقع البزل والسماح لها بالتصلب طوال الليل. تحضير غراء الايبوكسي عن طريق إضافة 30 جزءا من المقسى الأصفر إلى 70 جزءا من غراء الايبوكسي الأسود وخلطه برفق. ثم اسحب غشاء غسيل الكلى من البولي سلفون المقطوع بقطر داخلي يبلغ 210 ميكرون وقطر خارجي يبلغ 245 ميكرون.
بعناية فوق السيليكا المنصهرة. اسحب الغشاء إلى أنبوب PTFE واضبط الغشاء على 5.5 ملم باستخدام مشرط حاد. ضع علامة على نقطة على الغشاء بقلم ناعم لتحديد طول التبادل البالغ ملليمترين من نهاية الغشاء.
ثم استخدم إبرة دقيقة لتطبيق كمية صغيرة من غراء الايبوكسي لتغطية طرف الغشاء. بعد ذلك ، استخدم غراء الايبوكسي لإغلاق المفصل بين غشاء غسيل الكلى وألياف PTFE. عد الآن وأضف ما يكفي من غراء الايبوكسي على الغشاء حتى نقطة الوسم.
لضمان طول تبادل الانتشار يبلغ ملليمترين فقط ، اترك غراء الإيبوكسي يتماسك طوال الليل. استخدم زوجا من الكماشة لقطع قطع سنتيمتر واحد من إبرة قياس 25 بعناية من أجل إنشاء أكمام معدنية. ثم اسحب الغلاف المعدني إلى الجزء المتبقي من السيليكا المنصهرة واستخدم غراء الإيبوكسي المتبقي لإغلاق المفصل بين الغلاف المعدني وأنبوب PTFE.
يتيحالغلاف المعدني لاحقا توصيل أنبوب المدخل بمسبار غسيل الكلى المجهري. أخيرا ، ضع الغراء الساخن حول تشعب المسبار لمزيد من التثبيت والتثبيت للجهاز. يظهر هذا التخطيطي لقطة مقربة للأعمال الداخلية لمسبار غسيل الكلى المجهري.
يتعرض ملليمتران من غشاء غسيل الكلى متعدد السلفون في نهاية المسبار ، مما يسمح باستعادة مستقلبات الوزن الجزيئي الصغيرة مثل الجلوكوز و TP والأستيل كولين. تظهر هنا قدرة المسبار على استعادة جزيئات صغيرة منخفضة الوزن الجزيئي مثل الجلوكوز واللاكتات والأستيل كولين و TP في المختبر. نسبة الاسترداد أعلى بكثير مع هذه الجزيئات ، والتي تبلغ حوالي 500 دالتون من الجزيئات الأكبر مثل الأنجيوتنسين الثاني ، والمادة p ، والسوماتوستاتين ، والتي تزيد عن 1000 دالتون.
بعد مشاهدة هذا الفيديو ، يجب أن يكون لديك فهم جيد لكيفية بناء مجسات غسيل الكلى المجهري المتينة والموثوقة كبديل للمجسات التجارية.
اعرض النص الكامل واحصل على الوصول إلى آلاف الفيديوهات العلمية
تصف هذه المقالة عملية تصنيع مسبار الانتشار المصغر المصمم خصيصًا، وهو بديل فعال من حيث التكلفة للمسابير التجارية. تحدد الإجراء الخطوات الضرورية لإنشاء مسبار موثوق به قادر على قياس الببتيدات العصبية والجزيئات الصغيرة في المختبر.
Custom microdialysis probe fabrication offers a cost-effective solution for neuroscience research, enabling precise monitoring of neurochemical dynamics in cerebrospinal fluid. By reducing probe expenses below $10, this method enhances accessibility for public institutions and supports scalable deployment across preclinical studies. The approach facilitates target validation and mechanistic de-risking by providing reliable recovery data for small molecules and neuropeptides, informing go/no-go decisions in early discovery pipelines.
The method integrates into the discovery continuum from hypothesis testing through lead identification, providing quantitative neurochemical readouts that support mechanistic understanding and compound prioritization.