-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

AR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ar

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
نموذج خلية ثقافة مقاومة الشرايين
نموذج خلية ثقافة مقاومة الشرايين
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
A Cell Culture Model of Resistance Arteries

نموذج خلية ثقافة مقاومة الشرايين

Full Text
8,090 Views
10:54 min
September 8, 2017

DOI: 10.3791/55992-v

Lauren A. Biwer1,2, Christophe Lechauve3, Sheri Vanhoose4, Mitchell J. Weiss3, Brant E. Isakson1,2

1Department of Molecular Physiology and Biophysics,University of Virginia School of Medicine, 2Robert M. Berne Cardiovascular Research Center,University of Virginia School of Medicine, 3Department of Hematology,St. Jude Children's Research Hospital, 4Research Histology Core,University of Virginia School of Medicine

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

ويرد نموذج ثقافة خلية مقاومة الشرايين، السماح بالتشريح لإشارات المسارات في البطانة، العضلات الملساء، أو بين البطانة والعضلات الملساء (ملتقى ميوندوثيليال). التطبيق الانتقائي ليضع أو عزل البروتين أو المجهر الإلكتروني الفلورة يمكن الاستفادة من استخدام هذا النموذج ثقافة الخلية.

الهدف العام من هذه التقنية هو زراعة خلايا البطانية والعضلات الملساء معا في المختبر لإنشاء تقاطعات عضلية ظهارية تحدث في الشرايين المقاومة ذات القطر الصغير. يمكن أن تساعد هذه الطريقة في الإجابة على الأسئلة الرئيسية في مجال القلب والأوعية الدموية مثل توطين البروتين وتنشيط شلالات الإشارات في جدار الشرايين. الميزة الرئيسية لهذه التقنية هي أنه يمكنك على وجه التحديد عزل كسور التوصيل العضلي البطاني والعضلات الملساء ، وهو أمر مستحيل القيام به باستخدام شريان فعلي.

يعد

العرض المرئي لتضمين البارافين أمرا بالغ الأهمية بشكل خاص ، حيث قد يكون من الصعب تعلم خطوات التضمين دون رؤية العملية. ابدأ في بناء الزراعة المشتركة لخلايا الأوعية الدموية أو VCCC ، عن طريق رش أطباق وأغطية بتري 150 ملم بمطهر ثم مسحها بمنشفة ورقية أو مناديل خالية من النسالة. ثم رش أطباق بتري بنسبة 70٪ من الإيثانول وضعها في الغطاء حتى تجف في الهواء.

افتح لوحة إدراج المرشح في ظل ظروف معقمة. قم بتغطية الجانب السفلي من المرشحات بمحلول الألياف الأليفة عن طريق سحب ما يصل إلى مليلتر واحد من محلول الألياف من خلال الشقوق الجانبية في قاع اللوحة. تأكد من تغطية النصف السفلي من الفلتر واترك الإدخالات في غطاء المحرك ، مع الحفاظ على غطاء اللوحة.

بعد 30 دقيقة من العلاج بمحلول الألياف ، قم بتفريغ أي محلول زائد دون إزعاج إدخالات المرشح. ثم اقلب اللوحة ، ضع المرشحات في النصف السفلي من طبق بتري النظيف. قم بتربسين قارورة مساحتها 225 سنتيمترا مربعا من خلايا العضلات الملساء بثلاثة ملليلتر من محلول التربسين EDTA الدافئ مسبقا.

بمجرد أن ترفع الخلايا ، أضف تسعة ملليلتر من وسط SMC لتحييد التربسين. انقله إلى أنبوب مخروطي الشكل واخلطه جيدا. بعد ذلك ، قم بوضع ماصة 10 ميكرولتر على مقياس كثافة الدم لتحديد رقم الخلية.

بعد إجراء عد الخلايا ، ضع بعناية 750 ميكرولتر من معلق الخلية الذي يحتوي على ما يقرب من 75،000 خلية عضلية ملساء على الجانب السفلي من كل مرشح. احتضن اللوحة عند 37 درجة مئوية طوال الليل. في اليوم الثاني ، املأ كل بئر من ستة ألواح نظيفة بملليلترين من وسط SMC الطازج الدافئ مسبقا.

قم بإزالة الوسيط من الملحق عن طريق الشفط وانقله إلى لوحة الآبار الستة مع وسيط SMC. أضف ملليلترا واحدا من محلول الجيلاتين البقري 0.5٪ إلى الجانب العلوي من الإدخالات وضعه على حرارة 37 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة على الأقل. قم بتربسين قارورة مساحتها 225 سنتيمترا مربعا من الخلايا البطانية بثلاثة ملليلتر من محلول التربسين EDTA الدافئ مسبقا.

مع النقر اللطيف على القارورة لرفع الخلايا عن اللوحة. بعد إعادة تعليق الخلايا في وسط EC وإجراء تعداد الخلايا ، قم بإزالة الجيلاتين من الفلتر. ثم ، قم بوضع 360 ، 000 ECs بحجم مليلتر واحد على الجانب العلوي من كل إدراج مرشح.

دع الخلايا تحتضن دون إزعاج عند 37 درجة مئوية لمدة 24 ساعة. ابدأ التجزئة ، عن طريق شفط الوسط من ستة ألواح من الإدخالات في غطاء مزرعة الخلية ثم نقلها إلى غرفة باردة على الجليد. في الغرفة الباردة، قم بوضع 10 ميكرولترات من PBS على جانب SMC من الإدخالات.

استخدم رافع الخلايا لكشط SMCs. بعد ذلك ، انقل الخلايا من المكشطة إلى طبق بتري مسمى يحتوي على عازلة للتحلل. بمجرد أن تلمس مكشطة الخلية المخزن المؤقت للتحلل ، لا تسمح لها بلمس مرشح الإدخال حتى يتم مسحها تماما وتجفيفها على مناشف ورقية.

كرر تخريد مرشح SMC مرة أو مرتين أخريين ، لإزالة حطام خلية SMC المتبقي بالكامل. بعد ذلك ، قم بوضع ماصة 10 ميكرولترات من PBS على جانب الخلية البطانية لمرشح الإدخال. اكشط الخلايا في طبق بتري مصنف بشكل مناسب من عازلة التحلل ، كما هو موضح للتو.

اجمع ملاط الخلية من جانب EC من المرشح باستخدام الماصة وانقله إلى طبق بتري مكتوب عليه بشكل مناسب. كن دقيقا جدا في التخلص من الخلايا من جانبي المرشحات لضمان الحد الأدنى من تلوث الخلايا في جزء الوصلة العضلية البطانية. بعد ذلك ، استخدم المشرط بعناية لقطع المرشحات من الملحق البلاستيكي.

افعل ذلك عن طريق قطع 70 إلى 80٪ منه بعيدا عن البلاستيك واستخدام ملقط لسحب الفلتر تماما من هيكل الإدخال البلاستيكي. وجه كل مرشح إلى أنبوب مخروطي الشكل سعة 50 مليلتر يحتوي على عازلة التحلل. تأكد من أن المرشحات مغمورة في المخزن المؤقت وتظل رطبة.

بعد حصاد جميع الخلايا من المرشحات ، قم بتدوير أنبوب MEJ سعة 50 مليلتر بكامل قوته لمدة 15 ثانية أو حتى يمتزج جيدا. قم بإزالة المرشحات من MEJ المخروطي باستخدام ملقط ، واسحبها على طول الجدران الجانبية للأنبوب لترك أكبر قدر ممكن من البروتينات والسوائل في الأنبوب. بمجرد إزالة جميع المرشحات من الأنبوب المخروطي MEJ ، قم بتدوير سريع في جهاز طرد مركزي لسحب كل السائل والبروتينات إلى قاع الأنبوب.

بعد الدوران ، انقل محتويات أنبوب MEJ وأطباق بتري SMC و EC إلى أنابيب طرد مركزي أصغر منفصلة. بعد ذلك ، قم بالطرد المركزي للأنابيب عند ما يقرب من 16،000 × جم لمدة 15 دقيقة عند أربع درجات مئوية. قم بإزالة المواد الطافية.

بعد ذلك ، تحلل خلية الفحص لمحتوى البروتين باستخدام مقايسة بيزنكونية. في اليوم الخامس من حضانة VCCC ، أضف 4٪ PFA إلى كل بئر يحتوي على ملحق مرشح مغسول واحتضانه طوال الليل مع الاهتزاز عند أربع درجات مئوية. بعد حوالي 24 ساعة ، انقل الإدخالات إلى 70٪ من الإيثانول لمدة 24 ساعة على الأقل.

قم بمعالجة المرشحات على المدى الطويل على معالج الأنسجة الآلي. بعد التشغيل ، قم بإزالة المرشح من الكاسيت الخاص به باستخدام ملقط لتثبيت الفلتر عند الحافة ثم قم بقص الفلتر إلى نصفين بالمقص. ضع كل من النصفين على طبق بارد واملأ قالب التضمين بالبارافين السائل.

المس

قالب التضمين المملوء لفترة وجيزة جدا في اللوحة الباردة ، ثم قم بتضمين كل نصف من المرشح في قالب التضمين مع الجانب المقطوع لأسفل للتأكد من أن المرشح مقسم من المركز. استخدم الملقط لتثبيت الفلتر في مكانه لمنع النصفين من السقوط في بعضهما البعض حتى يبرد البارافين بدرجة كافية ليقف بمفرده. ثم انقل قالب التضمين إلى طبق بارد حتى يتماسك تماما.

قم بتضمين الملحق الذي تمت تصفيته وتقسيمه في اتجاه رأسي. بعد التقسيم ، يمكن تلطيخ VCCC مناعي للتألق المناعي المستعرض. تظهر صورة المجهر الإلكتروني للنقل المناعي هذه شريانا فأريا مع تعبير عن ألفا غلوبين في MEJ المسمى بخرز ذهبي ، والذي يظهر على شكل نقاط سوداء.

توضح هذه اللطخة الغربية أن مثبط منشط البلازمينوجين يتم إثراؤه في جزء MEJ مقابل كسور EC أو SMC. يشير EC البلاستيكي إلى ECs المزروعة على طبق بلاستيكي لا يشكل MEJ. يكشف التلوين المناعي عن التقسيم الضيق لنموذج VCCC.

يظهر

المستقبل الأدرينالي ألفا -1 فقط في طبقة خلية العضلات الملساء ، ولا يرى مستقبل براديكينين إلا في طبقة الخلية البطانية. يوجد تلطيخ الأكتين F في جميع أنحاء كلا النوعين من الخلايا في MEJ في المختبر كما هو موضح في السهم الأبيض. أثناء محاولة هذا الإجراء ، من المهم أن تتذكر إبقاء كل شيء معقما حتى وقت الحصاد ، وقم بطلاء الخلايا بعناية وكشط المرشحات تماما.

باتباع هذا الإجراء ، يمكن إجراء طرق أخرى مثل النشاف الغربي أو التألق المناعي من أجل الإجابة على أسئلة إضافية مثل توطين البروتين أو مستويات التعبير أو التنشيط.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

الطب 127 قضية غشائي خلية والخلية العضلات الملساء الاتصالات هيتيروسيلولار قطبية الخلية تقاطعات الفجوة إسقاطات الخلوية المصفوفة خارج الخلية ثقافة المشارك

Related Videos

عزل الاوعية الدموية الدقيقة البطانية أنابيب الشرايين ماوس المقاومة

09:23

عزل الاوعية الدموية الدقيقة البطانية أنابيب الشرايين ماوس المقاومة

Related Videos

16K Views

العزلة والثقافة الابتدائية من خلايا الفأر الأورطي غشائي

08:20

العزلة والثقافة الابتدائية من خلايا الفأر الأورطي غشائي

Related Videos

32.1K Views

في المختبر نموذج الفسيولوجية والمرضية تدفق الدم مع التطبيق على التحقيقات الأوعية الدموية إعادة عرض خلية

07:30

في المختبر نموذج الفسيولوجية والمرضية تدفق الدم مع التطبيق على التحقيقات الأوعية الدموية إعادة عرض خلية

Related Videos

10K Views

تكلس الأوعية الدموية خلايا العضلات الملساء والتصوير من الأورطي تكلس والتهاب

08:43

تكلس الأوعية الدموية خلايا العضلات الملساء والتصوير من الأورطي تكلس والتهاب

Related Videos

20K Views

الفئران الأرواح سحق إصابة: كفاءة في فيفو نموذج من انتشار الخلايا العضلية السلس والوظيفة البطانية

06:14

الفئران الأرواح سحق إصابة: كفاءة في فيفو نموذج من انتشار الخلايا العضلية السلس والوظيفة البطانية

Related Videos

8.6K Views

تقييم آليات مراقبة الأوعية الدموية استخدام الفحص المجهري الفيديو الشرايين المقاومة المعزولة من الفئران

10:28

تقييم آليات مراقبة الأوعية الدموية استخدام الفحص المجهري الفيديو الشرايين المقاومة المعزولة من الفئران

Related Videos

9.6K Views

تقييم الكولاجين والايلاستين ميكروارتشيتيكتوريس تعتمد على الضغط في الشرايين المقاومة البشرية، والعيش بالفحص المجهري Fluorescence تسمية خالية

09:58

تقييم الكولاجين والايلاستين ميكروارتشيتيكتوريس تعتمد على الضغط في الشرايين المقاومة البشرية، والعيش بالفحص المجهري Fluorescence تسمية خالية

Related Videos

10.8K Views

في المختبر نموذج الأوعية التاجية

08:03

في المختبر نموذج الأوعية التاجية

Related Videos

8.3K Views

في المختبر 3D نماذج الشرايين الخلية المستزرعة لدراسة استهداف المخدرات الأوعية الدموية تحت التدفق

07:00

في المختبر 3D نماذج الشرايين الخلية المستزرعة لدراسة استهداف المخدرات الأوعية الدموية تحت التدفق

Related Videos

3.5K Views

بناء نموذج لخلية عضلية ملساء للشريان الأورطي البشري على رقاقة لتلخيص الإجهاد الميكانيكي الحيوي في جدار الأبهر

11:47

بناء نموذج لخلية عضلية ملساء للشريان الأورطي البشري على رقاقة لتلخيص الإجهاد الميكانيكي الحيوي في جدار الأبهر

Related Videos

3.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code