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果蝇幼虫神经肌肉接头解剖

DOI:

10.3791/1107

2009年2月4日

本文内容

摘要

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本实验方案演示了如何解剖黑腹果蝇(Drosophila)幼虫,以制备用于神经肌肉接头的免疫组织化学和/或成像分析样本。

摘要

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TheDrosophila神经肌肉接头(NMJ)是研究突触发育和可塑性的经典模型系统。该模型被广泛用于Drosophila运动系统因其高度可及性而备受关注。它可以在单细胞水平上进行分析。每个半体节有30块肌肉,其在外周体壁内的排列方式已知。共有35个运动神经元以高度保守的模式连接到这些肌肉上。利用分子生物学和遗传学方法,可以构建转基因动物或突变体,进而研究其对神经肌肉接头(NMJ)形态和功能发育的影响。为了研究NMJ,必须仔细解剖每条幼虫。本文将演示如何正确解剖Drosophila通过移除所有内部器官而保留体壁完整,以获取用于神经肌肉接头(NMJ)研究的幼虫。该技术适用于为成像、免疫组织化学或电生理学实验准备幼虫。

方案

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开始之前

  1. 所有培养物均应在 25° C 下培养。
  2. HL3.1 解剖缓冲液可预先配制。取 50 ml HL3.1 并置于冰上保存。
  3. 配制 15 ml 新鲜的含 3.5% 甲醛的 HL3.1 溶液,置于冰上保存。

幼虫解剖

  1. 在解剖板上滴一滴冷的 HL3.1 溶液。这可以防止动物样本干燥,并使其暂时麻痹,便于操作。
  2. 使用长镊子,选取一只处于三龄游走期的幼虫,并将其放入 HL3.1 液滴中。
  3. 首先,用短镊子夹住一枚 minutien 针 ,将针置于后端气门之间。动物通常会试图远离针刺位置,从而伸展身体,这有助于你将另一枚针准确地插入幼虫头部靠近口钩的位置。沿纵向拉伸动物身体,这将有助于你在切割时最大限度地暴露体壁。注意:如果你选择先固定头部,动物可能会将身体缠绕在针上,或来回甩动身体,造成固定困难。此时通常可通过移除原有的 HL3.1 并更换一滴新的冷溶液来重新麻痹动物。双手灵活的研究人员也可直接用手抓握并固定动物。
  4. 使用弹簧剪刀,在幼虫背部靠近后端固定针处稍前方做一横向切口。将剪刀的一侧刀片插入切口,沿背侧中线向头部方向进行纵向剪切。到达头端后,在固定针的左右两侧分别做横向切口。注意:最终的切割结果应在幼虫背侧沿头尾轴呈现出一个“I”字形。
  5. 移除内部器官。首先在幼虫上再添加数滴 HL3.1 溶液,使器官浮起,便于取出。先移除气管系统,然后用镊子夹住其余组织并将其整体取出。
  6. 在第 3 步中,你已在体壁上形成左右两个瓣状组织。按顺时针顺序将这两个瓣固定在板上,注意同时在水平和垂直方向上充分拉伸体壁。

固定

将每只动物在 HL3.1 溶液中用 3.5% 甲醛固定 25 分钟。用 HL3.1 溶液洗涤动物两次,每次 5 分钟。

储存

移除针具,并将幼虫转移至含有1× PBS的1.5 ml离心管中。若计划使用融合荧光标签对神经肌肉接头(NMJ)进行成像,应在两天内完成动物样本的成像。解剖后的幼虫可在4°C下保存最多一周。

代表性结果

正确解剖的黑腹果蝇(Drosophila)幼虫包含几个关键要素。首先,操作时必须格外小心,避免损伤肌肉,尤其是第4、6和7号肌肉。这些肌肉是最常用于研究的,若受损,则应弃去该肌肉片标本,重新解剖另一只幼虫。其次,必须确保幼虫被充分拉伸,以便能够清晰区分每一块肌肉及神经肌肉接头(NMJ)。

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讨论

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本视频中演示的解剖技术可用于为多种实验方法制备黑腹果蝇(Drosophila)幼虫。如果存在荧光蛋白标签,可直接将幼虫装片并立即进行成像。否则,可通过免疫染色标记特定的突触区域。此外,还可对解剖后的幼虫进行电生理记录,以评估神经递质传递功能。

果蝇的神经肌肉接头(NMJ)自早期揭示其基本结构与功能的研究以来,已获得广泛关注1-4。在果蝇 NMJ 发育研究中发现的许多分子在脊椎动物中具有保守性4。因此,通过研究果蝇 NMJ 所获得的诸多认识适用于所有生物的突触生物学。一些潜在的应用包括轴突导向相关分子、运动神经元疾病、学习与记忆等方面的研究。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
体视显微镜 “体视显微镜” 2000Carl Zeiss, Inc.495101-9804-000
光源 KL 1500 LCDCarl Zeiss, Inc.000000-1063-181
3mm Vannas 弹簧剪精细科学工具15000-0
Dumont SS 镊子精细科学工具11200-33长镊子
Dumont #5 镊子Fine Science Tools11252-20短镊子
SylGard 182 硅酮弹性体试剂盒道康宁3097358-1004用于制作解剖板
甲醛 Sigma-Aldrich252549-25ML
不锈钢微型图钉 - 直径0.1 mmFine Science Tools26002-10
HL3解剖缓冲液:(单位:mM)70 NaCl,5 KCl,0.2 CaCl2,20 MgCl2,10 NaHCO3,5海藻糖,115蔗糖和5 HEPES,pH 7.3。

Sylgard 解剖板:在烧杯中按10:1的比例轻轻混合(避免产生气泡)。将混合物倒入培养皿中(任意尺寸)。置于37°C培养箱中过夜,使Sylgard完全固化。


Sylgard 解剖板:在烧杯中按10:1的比例轻轻混合(避免产生气泡)。将混合物倒入培养皿中(任意尺寸)。置于37°C培养箱中过夜,使Sylgard完全固化。

Sylgard 解剖板:在烧杯中按10:1的比例轻轻混合(避免产生气泡)。将混合物倒入培养皿中(任意大小)。置于37°C培养箱中静置过夜,使Sylgard完全固化。
Sylgard 解剖板:在烧杯中按10:1的比例轻轻混合(避免产生气泡)。将混合物倒入培养皿中(任意尺寸)。置于37°C培养箱中过夜,使Sylgard完全固化。

参考文献

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Jan, L. Y., Jan, Y. N. Properties of the larval neuromuscular junction in Drosophila Melanogaster. J. Physiol. 262, 189-214 (1976).
  2. Johansen, J., Halpern, M. E., Johansen, K. M., Keshishian, H. Stereotypic morphology of glutamatergic synapses on identified muscle cells of Drosophila larvae. J Neurosci. 9, 710-725 (1989).
  3. Kesheshian, H., Broadie, K., Chiba, A., Bate, M. The Drosophila neuromuscular junction: a model system for studying synaptic development and function. Annu Rev Neurosci. 19, 545-575 (1996).
  4. Vactor, D. V., Sink, H., Fambrough, D., Tsoo, R., Goodman, C. S. Genes that control neuromuscular specificity in Drosophila. Cell. , 73-1137 (1993).
  5. Feng, A modified minimal hemolymph-like solution, HL3.1, for physiological recordings at the neuromuscular junctions of normal and mutant Drosophila larvae. J Neurogenet. 18 (2), 377-402 (2004).

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标签

NMJ HL 3 1

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