活细胞成像在研究细胞器运输动态时具有特别重要的应用价值。本文描述了一种利用宽场荧光显微镜对培养神经元中致密核心囊泡进行活体成像的实验方案。该方案具有良好的灵活性,可经适当调整用于成像其他细胞器,如线粒体、内体和过氧化物酶体。
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活细胞成像在研究细胞器运输动态时具有特别重要的应用价值。本文描述了一种利用宽场荧光显微镜对培养神经元中致密核心囊泡进行活体成像的实验方案。该方案具有良好的灵活性,可经适当调整用于成像其他细胞器,如线粒体、内体和过氧化物酶体。
第1部分:使用Lipofectamine 2000(Invitrogen)转染神经元
仪器设置:
大鼠或小鼠海马神经元的培养参照 Kaech 和 Banker(2006)[4] 的方法进行。转染实验常用的细胞密度为 250,000 个细胞/6 cm 培养皿。所需试剂与设备包括 50 mM 犬尿烯酸、常规台式试管架、台式冷却器(建议保持 Lipofectamine 试剂低温)、
Lipofectamine 试剂、MEM 培养基、微量离心管、移液器以及无菌镊子。
实验步骤:
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活细胞成像是直接观察培养神经元中细胞器运输的一种具有挑战性但功能强大的技术。在实验操作之前,由于培养过程中可能出现问题,导致神经元状态不佳,从而引发困难。因此,应在转染前后通过倒置显微镜在生长培养基中观察盖玻片,评估细胞状态(示例参见参考文献4)。将含有神经元的盖玻片转移至成像腔的过程可能对细胞造成应激,因此在操作盖玻片时必须格外小心。即使细胞外观健康,也可能因操作过程延迟、设备预热不充分或成像培养基未充分平衡而出现无运输现象。进行运输分析时,必须明确轴突和树突的方向,即区分顺向运输与逆向运输。因此,必须准确确定细胞体的位置,并能观察到从感兴趣区域连续延伸至细胞体的神经元区段。通常,保存可溶性GFP的重叠图像,或对保存的视频文件进行信息性命名,即可确定用于分析的细胞过程方向,例如“Cell1CellBodyUpperLeft”。
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感谢Harald Hutter和Helena Decker对本文稿的仔细审阅。同时感谢Leica Microsystems的Reg Sidhu提供的专业技术支持。本研究得到了加拿大自然科学与工程研究委员会(资助号:#327100-06)以及西蒙菲莎大学理学院的资助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 | |
|---|---|---|---|---|
| 含Earle盐和L-谷氨酰胺的MEM-Eagle培养基 | 试剂 | Mediatech, Inc. | 10-010-CV | |
| Lipofectamine 2000 | 试剂 | Invitrogen | 11668-027 | 转染试剂 |
| 含Ca²⁺和Mg²⁺的10X Hanks溶液 | 试剂 | GIBCO, by Life Technologies | 14185-052 | 活细胞成像培养基 |
| 1M HEPES | 试剂 | GIBCO, by Life Technologies | 15630-130 | 活细胞成像培养基 |
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A correction was made to Live Imaging of Dense-core Vesicles in Primary Cultured Hippocampal Neurons. There was an error in the author's name. The author name was corrected to include a middle initial as follows:
David M. Kwinter, Michael A. Silverman
instead of:
David Kwinter, Michael Silverman.