需要JoVE订阅才能观看此内容。 请登录或开始免费试用

方法文章

人胰岛分离:第二部分:人胰岛的纯化与培养

15.1K 次观看

⸱

DOI:

10.3791/1343

⸱

2009年5月26日

 ,  ,  ,  ,  , 

本文内容

摘要

获得高质量且数量合适的胰岛是成功进行胰岛移植的重要前提之一。在本视频中,我们将逐步介绍使用改良的自动化方法分离人胰腺胰岛的步骤(第二部分:人胰岛的纯化与培养)。

摘要

1型糖尿病的管理对个人和社会而言都是一项沉重的负担,每年花费超过1000亿美元。尽管血糖监测和新型胰岛素制剂已广泛应用,许多患者仍会出现严重的继发性并发症。胰岛移植能够恢复糖尿病患者的近似正常血糖控制1,且不会出现与强化胰岛素治疗相关的严重低血糖发作风险。提供足够的胰岛组织量对于成功的胰岛移植至关重要。然而,供体特征、器官获取及保存过程均会影响胰岛分离的效果2. 在芝加哥伊利诺伊大学(UIC),我们开发了一种成功的分离方案,并优化了纯化梯度3. 该项目始于2004年1月,截至2008年11月已完成了300多次分离。胰腺组织以低温保存液(UW,威斯康星大学液或HTK,组氨酸-色氨酸-酮戊二酸液)送至实验室4-7送往伊利诺伊大学芝加哥分校(UIC)的细胞分离实验室进行胰岛分离。胰岛采用UIC方法进行分离,该方法是Ricordi最初描述的方法的改良版本。等 8如第一部分“胰腺组织的消化与收集”所述,人胰腺经过修剪、插管、灌注和消化处理。收集组织后,在UW溶液中至少孵育30分钟,随后将组织装入细胞分离机(COBE 2991,Cobe,Lakewood,CO)中进行纯化。3纯化后,根据标准方法测定胰岛产量(以胰岛当量,IEQ 表示)、组织体积和纯度。9分离的胰岛在CMRL-1066培养基(Mediatech,Herndon,VA)中培养,培养基中添加1.5%人血清白蛋白、0.1%胰岛素-转铁蛋白-硒(ITS)、1 ml环丙沙星、5 ml 1M HEPES以及14.5 ml 7.5%碳酸氢钠,置于T175培养瓶中,于37°C过夜培养,之后用于移植或科研实验。

方案

1. 胰岛的纯化

  1. 开始胰岛纯化操作时,将COBE袋连接好,夹紧除绿色管以外的所有管路,并将转速设为1,500,超速排出(super out)设为0。
  2. 在生物安全柜内设置好泵和梯度烧杯,并将收集管路连接至绿色管。
  3. 现在开始加载ficoll 1.100:按下“spin”按钮,然后向前面的烧杯中加入110 ml Ficoll 1.100,并启动泵以将液体加载入COBE袋。当Ficoll开始加载后,按下超速排出按钮,停止泵,松开泵头夹子,并将超速排出速度设为100。
  4. 当Ficoll到达烧杯且管路中的空气完全排出后,重新在泵头处夹紧管路。将旋转速度设为3,000,超速排出速度设为0。
  5. 现在准备加载梯度液:将高密度梯度液倒入前面的烧杯中。略微松开两个烧杯之间的夹子以排除任何气泡,然后将低密度梯度液倒入后面的烧杯中。
  6. 打开磁力搅拌器,按下COBE仪器上的“spin”按钮,松开连接两个烧杯的管夹,并目视确认高密度和低密度梯度液正在混合。
  7. 一旦梯度液开始混合,启动离心机。等待一分钟,然后开启泵以加载混合后的梯度液。
  8. 加载组织时,让前面烧杯中的梯度液面降低,但不能过低以致空气进入加载管路,随后夹紧连接两个烧杯的管路,并加载组织样本。
  9. 继续加入剩余的组织样本。然后用50 ml洗涤液冲洗盛装组织的管子,并用该液体冲洗前面的烧杯。
  10. 当最后的组织进入COBE袋时,同时停止泵,松开泵头处的夹子,并夹紧袋上方的管路。继续离心5分钟。
  11. 在离心过程中,将12个收集管移至生物安全柜内并松开其管盖。将收集管路连接至黄色管,将无菌收集尖端插入锥形管1中。然后松开黄色管的夹子,夹紧绿色管。
  12. 当离心结束后,缓慢将超速排出调至100。在第1管中收集150 ml,然后在第2至第12管中各收集30 ml(总体积从200至230 ml)。
  13. 收集完成后,在COBE仪器上按下“STOP”按钮。至此纯化过程结束,可对胰岛进行评估和培养。

2. 取样与培养

  1. 收集纯化的胰岛组分后,从12个收集管中各取出一份样品,用二苯硫腙(Dithizone)染色。染色结果可显示哪些层含有高纯度胰岛,哪些层含有低纯度胰岛。
  2. 分别收集高纯度和低纯度组织,并各自合并。
  3. 离心并洗涤两次。第二次洗涤后,用终末洗涤液将每份体积调至250 ml。
  4. 为评估合并后的组分,首先从高纯度合并组分中取两份1 ml样品,从低纯度合并组分中取一份1 ml样品,分别转移至含有9 ml洗涤液的锥形管中。
  5. 然后将每支15 ml管中的1 ml样品转移至计数皿中,在显微镜下观察并计数细胞。
  6. 细胞计数后,根据以下公式计算培养胰岛所需的培养瓶数量:(总EIN / 胰岛纯度(小数形式))/(每瓶30,000 EIN)。例如,100,000个纯度为90%的胰岛需在4个培养瓶中培养。
  7. 将胰岛转移至T175培养瓶中,在37˚C、5% CO2的培养箱中进行培养。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

讨论

尽管人胰岛分离技术已取得显著进展,胰岛产量仍然存在高度变异性且难以预测。在成功进行酶消化后,为了获得足够的胰岛组织用于移植,消化后胰腺组织的纯化至关重要。推荐采用UIC纯化方法,因为该方法已被证明可实现高纯度人胰岛的更优回收。此外,单次Cobe离心运行可加载多达50 ml的消化组织,从而通过缩短整个分离过程所需时间,减少与缺血相关的人胰岛损伤。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

致谢

由伊利诺伊大学芝加哥分校、胰岛细胞资源中心NIH资助(RFA-RR 05-003)、克里斯托弗基金会、埃夫罗姆森基金会和特拉布斯基金会提供支持。

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
离心机设备Beckman Coulter Inc.424803
Cobe 2991 细胞处理仪设备Gambro. BCT2556胰岛纯化
MZ6 倒置显微镜 TLBD4.1设备Leica Microsystems4103
带2 mm网格的细胞培养皿设备Nalge Nunc international174926胰岛计数
Digital Sight DS L1设备Nikon Instruments217267
COBE袋一次性设备O.R. Solution66707003
T175培养瓶一次性设备Sarstedt Ltd83.1812.500
威斯康星大学(UW)溶液试剂DURAMED1000-46-06
Hank’s缓冲盐溶液(HBSS)试剂Mediatech, Inc.99-597-CM
Ficoll 1.100试剂Bichrom AGL6155
M199培养基(洗涤液)试剂Mediatech, Inc.99-784-CM
终末洗涤/培养培养基试剂Mediatech, Inc.99-785-CV
二苯硫腙试剂Sigma-AldrichD5130

参考文献

  1. Shapiro, A. M. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes mellitus using a glucocorticoid-free immunosuppressive regimen. N Engl J Med. 343, 230-238 (2000).
  2. Nano, R. Islet isolation for allotransplantation: variables associated with successful islet yield and graft function. Diabetologia. 48, 906-912 (2005).
  3. Barbaro, B. Improved human pancreatic islet purification with the refined UIC-UB density gradient. Transplantation. 84, 1200-1203 (2007).
  4. Lakey, J. R., Rajotte, R. V., Warnock, G. L., Kneteman, N. M. Human pancreas preservation prior to islet isolation. Cold ischemic tolerance. Transplantation. 59, 689-694 (1995).
  5. Fridell, J. A. Comparison of histidine-tryptophan-ketoglutarate solution and University of Wisconsin solution for organ preservation in clinical pancreas transplantation. Transplantation. 77, 1304-1306 (2004).
  6. Potdar, S. Initial experience using histidine-tryptophan-ketoglutarate solution in clinical pancreas transplantation. Clin Transplant. 18, 661-665 (2004).
  7. Salehi, P. Human islet isolation outcomes from pancreata preserved with Histidine-Tryptophan Ketoglutarate versus University of Wisconsin solution. Transplantation. 82, 983-985 (2006).
  8. Ricordi, C., Lacy, P. E., Scharp, D. W. Automated islet isolation from human pancreas. Diabetes. 38 Suppl 1, 140-142 (1989).
  9. Ricordi, C. Islet isolation assessment in man and large animals. Acta Diabetol Lat. 27, 185-195 (1990).

访问受限。请登录或开始试用以查看此内容。

重印与许可

探索更多文章

胰岛纯化COBE 2991 分离机梯度纯化胰岛产量评估胰岛培养方案组织消化细胞分离实验室胰岛当量(IEQ)UW 溶液保存