高质量完整RNA的分离是许多实验室实验方案中的关键步骤。在此,我们展示了从完整的斑马鱼胚胎中提取RNA并合成cDNA,以用于后续多种实验操作,包括基因表达微阵列分析。
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高质量完整RNA的分离是许多实验室实验方案中的关键步骤。在此,我们展示了从完整的斑马鱼胚胎中提取RNA并合成cDNA,以用于后续多种实验操作,包括基因表达微阵列分析。
第1部分:使用TRIzol试剂提取总RNA
处理RNA时,必须在无RNase的环境中操作。采取一些简单的预防措施非常有帮助,例如专用于RNA实验的移液器,以及在开始实验前用去污染试剂(如RNAse Away)喷洒工作区域。
第2部分:使用Qiagen RNEasy Mini试剂盒进行RNA纯化
Qiagen RNEasy Mini Kit2 可有效去除通过其他方法分离得到的 RNA 样品中的污染物和杂质。本实验步骤除试剂盒所含组分外,还需使用 β-巯基乙醇、乙醇和无核酸酶水。建议在本实验过程中进行可选的 DNase 处理。
第3部分:使用Invitrogen SuperScript第一链合成系统进行cDNA合成
RNA 容易被 RNase 切割而发生降解。因此,许多基因表达实验方案都采用由 RNA 直接合成的更稳定的 cDNA 产物。本文详细介绍了使用 Invitrogen SuperScript First-Strand Synthesis System3 合成第一链 cDNA 的方法。每个 cDNA 合成反应最多可容纳 5 μg 的 RNA。
第4部分:cDNA的分离与沉淀
代表性结果
RNA纯化后,从50个斑马鱼胚胎中通常可获得约15 μg高质量的总RNA。为评估总RNA质量,可使用分光光度计、凝胶电泳以及Agilent 2100生物分析仪。可使用NanoDrop ND-1000分光光度计测定260 nm处的吸光度与280 nm处吸光度的比值(图1)。A260/A280比值可反映是否存在污染物,并提示可能发生的降解。A260/A280比值在1.9–2.0之间视为可接受。此外,强烈建议通过RNA变性凝胶电泳来评估RNA完整性。RNA链将根据其大小分离,较小的RNA链在凝胶中迁移得更远。未降解的样品在凝胶上呈现为弥散条带,并伴有两条明显的条带。弥散条带由不同长度的mRNA群体形成,而两条明显条带分别对应28S和18S rRNA。28S条带的强度应约为18S条带的两倍(图2)。或者,也可使用Agilent 2100生物分析仪评估总RNA完整性。预期可见两个代表28S和18S rRNA的明显峰形。28S峰应大于18S峰,且两峰下的面积之比约为2:1。在已降解的样品中将无法观察到两个明显的峰。出现降解迹象的RNA样品不应继续用于后续实验操作。
分光光度法分析可用于评估cDNA产物的质量(图4)。A260/A280比值应约为1.8。在本实验室,以5 μg总RNA为起始量进行cDNA反应,通常可获得1–2 μg的cDNA产物。

图1. RNA样品的NanoDrop光谱图。 RNA纯化后,可使用NanoDrop ND-1000分光光度计测定RNA的浓度和质量。通常从50个斑马鱼胚胎中可获得约15 μg高质量的总RNA,其A260/A280比值约为1.9–2.0。

图2. RNA变性凝胶电泳图。 为评估总RNA提取的完整性,可进行RNA变性凝胶电泳。预期结果为一条带有两条明亮条带的弥散信号,分别对应于28S和18S rRNA。其中28S条带的强度应约为18S条带的两倍。

图3. 生物分析仪检测的RNA样品图谱。 为评估总RNA提取的完整性,可使用Agilent 2100生物分析仪对样品进行分析。应可见两个清晰的峰,分别对应28S和18S rRNA。28S峰应大于18S峰,其峰下面积之比约为2:1。

图4. cDNA样品的NanoDrop光谱。 使用NanoDrop ND-1000进行分光光度分析,可用于评估cDNA产物的浓度和质量。A260/A280比值应约为1.8。在本实验室,以5 µg总RNA为起始量的cDNA反应通常可获得1–2 µg的cDNA。
表1. cDNA合成步骤2中需加入的RNA/引物混合物组分。
| 组分 | 体积 |
| 总RNA(最多5 μg) | 10 μl |
| 10 mM dNTP混合物 | 1 μl |
| Oligo(dT)12-18(0.5 μg/μl) | 1 μl |
| DEPC处理水 | n μl |
| 总体积 | 10 μl |
表2. cDNA合成第5步的反应体系。所列体积为单次反应所需量。根据反应总数按比例增加各组分的体积。
| 组分 | 体积 |
| 10X RT Buffer | 2 μl |
| 25 mM MgCl2 | 4 μl |
| 0.1 mM DTT | 2 μl |
| RNAseOUT | 1 μl |
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在整个实验方案中,最需要牢记的是RNA分子的不稳定性。应始终在无RNA酶的实验室区域使用无菌且无RNA酶的实验器材。建议将实验室的某一区域专门用于RNA相关操作,并定期使用去除RNA酶的产品(如RNAse Away)进行喷洒处理。操作RNA样品时必须佩戴手套,并将其置于冰上保存,以防止降解。
本实验方案采用了市售的试剂和试剂盒。此外,市场上还有多种其他试剂和用于总RNA提取的RNA提取试剂盒可供选择。本方案中包含的试剂和试剂盒在本实验室中表现良好, routinely 获得高质量的RNA。
作为替代方案,可进行双链 cDNA 的合成,而非本方案中演示的单链 cDNA 合成。有时需要双链 cDNA,因其具有更高的稳定性。此外,某些实验方案要求以双链 cDNA 产物作为起始材料。然而,如果样品将在本实验室用于后续实验,则单链 cDNA 合成已足够,且成本更低。
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作者无任何利益冲突需要披露。
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 糖原(5 mg/ml) | Ambion | 9510 | |
| NanoDrop ND-100 | Thermo Fisher Scientific, Inc. | ND-1000 | |
| 微型离心管用研磨杵 | VWR international | KT749520-0090 | |
| 相锁凝胶轻型,1.5 ml | Eppendorf | 2302800 | |
| Tris饱和酚 | Roche Group | 3117944001 | |
| RNAse Away | VWR international | 17810-491 | |
| 无RNA酶DNase试剂盒 | Qiagen | 79254 | |
| RNEasy Mini试剂盒 | Qiagen | 74104 | |
| SuperScript® RT-PCR用第一链cDNA合成系统 | Invitrogen | 11904-018 | |
| TRIzol | Invitrogen | 15596-026 |
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