开发了一种自动化的微流控装置,通过红细胞裂解法从外周血中富集循环有核细胞,确保在无细胞损失的情况下分离出高质量的样本。
开发了一种自动化的微流控装置,通过红细胞裂解法从外周血中富集循环有核细胞,确保在无细胞损失的情况下分离出高质量的样本。
第1部分:微流控装置的制备
采用标准的光刻技术,利用路易斯维尔大学洁净室中的设备制备了微流控裂解装置的硅质母模 [1]。使用 AutoCAD(Autodesk, Inc., San Rafael, CA)设计透明掩膜(Fineline Imaging, Colorado Springs, CO),用于生成通道的负向复制品。通过软光刻技术,利用弹性体聚二甲基硅氧烷(PDMS;Dow Corning, Midland, MI)从硅质母模上复制出微流控裂解装置。将带有复制通道的弹性体剥离后,使用20号针头(Small Parts, Miramar, FL.)打孔以形成通道进样口。随后,将PDMS芯片通过氧等离子体处理不可逆地键合至载玻片上,并用于实验测试。
第2部分. 裂解装置操作方案
微流控装置制备并测试完成后,即可开始进行红细胞裂解实验。以下部分详细说明了该微流控装置的操作流程。
2.1 样品采集
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已有文献报道了一种自动化的微流控血液裂解方案。该方案中包含若干关键步骤需特别注意。在第 P.2.1 节中,重要的是应弃去采集到的第一管血液,因为该样本中含有脱落的成熟内皮细胞,可能产生假阳性结果。同时务必在血液采集后一小时内完成样本检测。在第 P.2.2 节中对微流控装置进行预润洗时,必须首先彻底排除气泡。此外,在整个实验过程中更换注射器与针头连接时,应避免引入气泡。在第 P.2.4 节中用血液填充 1 ml 注射器时,必须先加入 1X PBS 缓冲液再加入血液,并始终保持注射器处于垂直状态,以防止两种溶液混合。在启动推动血液样本的注射泵之前,需确保大体积注射泵已开始运行,使系统达到全速状态。当样本完成在装置中的运行并经过离心后,应小心尽可能多地移除上清液(包括红细胞碎片),同时不扰动底部的白色沉淀物。最后,在第 P.2.5 节中,应遵循试剂生产商提供的操作说明,以确保向 100 μL 样本中加入正确浓度的抗体。
微流控方案在临床研究中具有广泛的应用前景。通过检测个体循环无核细胞(CNCs)的免疫状态,可获得有关健康状况的重要信息,并有助于疾病的诊断及对发病机制的理解。相较于涉及.......
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本研究得到了华莱士·H·科尔特基金会转化研究早期职业奖的支持。感谢儿科血液学/肿瘤学的Tim Andrews在血液样本采集方面的帮助。同时感谢詹姆斯·格雷厄姆·布朗癌症中心流式细胞术核心实验室的Sam Wellhausen博士在流式细胞术样本检测方面的协助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| Sylgard 184 硅胶弹性体基础剂 | Dow Corning | ||
| Sylgard 184 硅胶弹性体固化剂 | Dow Corning | ||
| 30 号针头注射器 | Small Parts, Inc. | NE-301PL-25 | |
| Tygon 管道(内径 .010") | Small Parts, Inc. | TGY-010 | |
| 20 号针头注射器 | Small Parts, Inc. | NE-201PL-25 | |
| 注射泵(Harvard PHD 22/2000) | Harvard Apparatus | 702000 | |
| 注射泵(Harvard Pico Plus) | Harvard Apparatus | 702213 | |
| 流式细胞术管 | DB Biosciences | 352052 | |
| 抗体染色剂 | DB Biosciences | ||
| 1.5 ml Eppendorf 管 | Fisher Scientific | 05-402-25 | |
| 50 ml 管 | Fisher Scientific | ||
| 1 ml 注射器 | Fisher Scientific | ||
| 30 ml 管 | Fisher Scientific | ||
| 多聚甲醛(PFA) | Fisher Scientific | ||
| 牛血清白蛋白(BSA) | Fisher Scientific | ||
| 10X PBS | Fisher Scientific |
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