许多植物组织,包括来自湿地松(Pinus taeda L.)的韧皮部和木质部,含有高水平的酚类物质和多糖,这些成分会干扰RNA的纯化。本介绍讨论了从田间采集植物组织并分离出适用于微阵列及其他基因组分析的高质量RNA的技术。
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许多植物组织,包括来自湿地松(Pinus taeda L.)的韧皮部和木质部,含有高水平的酚类物质和多糖,这些成分会干扰RNA的纯化。本介绍讨论了从田间采集植物组织并分离出适用于微阵列及其他基因组分析的高质量RNA的技术。
第1部分:树木采收
选定树木并将其砍伐后,应尽快仔细操作。每种不同类型的组织在采集后,应立即分别放入液氮容器中,以避免样品材料之间的交叉污染。该RNA提取方案具有可扩展性。
第2部....
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从针叶树物种中获取高质量RNA可能是一项困难的任务,因为其木质组织中含有较高水平的酚类和多糖化合物。在Chang等人(1)所建立的实验方案基础上,我们发现,采用更为严格的提取和纯化步骤,能够从多种针叶树物种的不同木质和非木质组织样本中稳定地分离出极高纯度的总RNA。本视频不仅展示了我们改进后的RNA分离方案,还介绍了在进行RNA提取之前,用于长叶松的野外采样及样品处理技术的具体步骤。这些采样和制备步骤对于最大限度减少野外采集样本中RNA的降解,以及提高RNA的质量和总得率,具有同等重要的意义。尤为重要的是,我们发现,采用该方法制备的RNA在用于与PtGen2长叶松微阵列(2)杂交的微阵列探针制备时,相较于其他方法,能够显著提高cDNA的合成得率。
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我们谨向以下各位致以诚挚感谢,若无他们的帮助,松树组织的采集工作将无法完成:Dr. Joe Nairn、Matt Bryman、Michael Bordeaux、Ujwal Bagal、Huizhe Jin 和 Amanda Bouffier。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| RNA提取缓冲液 | 2% CTAB(十六烷基三甲基溴化铵),2% PVP(聚乙烯吡咯烷酮;分子量30-40,000),100 mM Tris-HCl(pH 8.0),25 mM EDTA,2.0 M NaCl,0.5 g/L 亚精胺 | ||
| 氯仿 | 菲舍尔科技公司 | C298-4 | |
| 超纯苯酚 | 英韦特罗根公司 | 15509-037 | |
| 10 M LiCl | 用DEPC处理水配制 | ||
| SSTE缓冲液 | 1 M NaCl,0.5% SDS,10 mM Tris-HCl(pH 8.0),1 mM EDTA(pH 8.0) | ||
| 3 M 醋酸钠(NaOAc),pH 4.8 | 用DEPC处理水配制 | ||
| 苯酚-氯仿(pH 8.0) | 120 mL 苯酚,160 mL 氯仿,用0.5 M Tris-Cl(pH 8.0)多次平衡 | ||
| 橡树岭高速特氟龙管 | 赛默飞世尔科技公司 | #05-562-16B | |
| 聚丙烯50 mL高速离心管 | 赛默飞世尔科技公司 | #05-562-10K | |
| BD Falcon,无菌带盖50 mL锥形一次性离心管 | VWR国际公司 | #21008-939 | |
| 相锁凝胶重型,2 mL | 赛默飞世尔科技公司 | #2302830 | |
| Ambion RNase-free微量离心管,2 mL | Ambion | #AM12425 |
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