本视频演示了一种从E13大鼠背侧脊髓分离并培养联合神经元的方法。离体培养的联合神经元可用于研究轴突生长与导向的细胞和分子机制。
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本视频演示了一种从E13大鼠背侧脊髓分离并培养联合神经元的方法。离体培养的联合神经元可用于研究轴突生长与导向的细胞和分子机制。
1. 胚胎大鼠背侧脊髓的解剖
一般建议
将L-15培养基置于冰上,并频繁更换解剖皿中的培养基以保持胚胎低温,这有助于维持组织完整性。除非另有说明,所有操作均使用两把Dumont #5镊子进行。为避免污染,需用70%乙醇喷洒所有工具和工作表面,并保持解剖用培养基瓶盖紧闭。在不同培养皿之间转移胚胎时,可使用剪去尖端的塑料移液管或带孔勺子。解剖过程中至关重要的是避免损伤脊髓(如划伤或拉伸),以确保解剖成功。
准备
脊髓解剖
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我们描述了一种从胚胎大鼠脊髓中分离和培养联合神经元的方法。该方法已在本实验室常规使用,可稳定地制备神经元,用于研究轴突导向的细胞与分子机制。对于细胞生物学和免疫化学实验,一窝胚胎所提供的神经元数量已足够。当需要更多细胞时(例如在许多生物化学实验中),则可能需要分离两窝胚胎。对于经过训练的操作人员,可在4小时以内完成约20个胚胎的解剖与离解。若操作时间延长,由于组织完整性的改变,脊髓的解剖将变得更加困难,并可能影响活神经元的有效回收。
首次进行该操作时,可将细胞接种在多种聚赖氨酸(PLL)包被的表面(如酸洗玻璃盖玻片、组织培养皿)上进行比较。通常情况下,细胞应能牢固地贴附于PLL包被的塑料组织培养皿或多孔板上。若细胞在玻璃盖玻片上的贴附和生长出现问题,可利用此方法作为细胞活力和培养状态的一般性检查。导致细胞在玻璃表面贴附不良的主要因素是玻璃材质及盖玻片的清洁质量(酸洗和灭菌处理),这会通过降低PLL包被效率在一定程度上影响细胞贴附。其他常见因素包括PLL包被效果不佳(包被时间过短或PLL溶液过期)、细菌或真菌污染,以及使用了过期或变质的培养基或添加剂。
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本研究得到了加拿大卫生研究院(CIHR)、彼得·劳吉德医学研究基金会、麦吉尔大学神经工程计划、魁北克健康研究基金会(FRSQ)以及加拿大创新基金会(CFI)的资助。Sébastien D. Langlois 获得了魁北克健康研究基金会(FRSQ)的硕士培训奖以及加拿大卫生研究院(CIHR)的弗雷德里克·班廷和查尔斯·贝斯特加拿大研究生奖学金(硕士级别)的支持。我们感谢 Jessica M.T. Pham 在图表制作方面提供的帮助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| Neurobasal 培养基,液体 | Invitrogen | 21103-049 | 参见配方与注意事项 |
| B27添加剂 50X | Invitrogen | 17504 | 参见配方与注意事项 |
| 0.01% 聚-L-赖氨酸溶液 | Sigma-Aldrich | P4707 | |
| L-15 培养基,粉末 | Invitrogen | 41300-070 | |
| 胰蛋白酶 2.5%(10倍浓缩) | Invitrogen | 15090-046 | |
| DNAse I,25000 U/mL | 沃辛顿生物化学 | ||
| MgSO₄4 | Sigma-Aldrich | M2643 | |
| HBSS,Ca2+/毫克2+无- | Invitrogen | 14170-112 | |
| L-谷氨酰胺 200 mM,液体 | Invitrogen | 25030-081 | 参见配方与注意事项 |
胚胎大鼠背侧脊髓的解剖(另见表 I)
联合神经元培养(另见表 I)
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