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方法文章

利用核糖探针进行蝴蝶蛹翅原位杂交的实验方案

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DOI:

10.3791/208

2007年5月28日

本文内容

摘要

为了研究眼蝶属(Bicyclus anynana)蛹期翅组织中的基因表达,我们提供了一种使用核糖探针进行原位杂交的优化实验方案。同时,我们还提供了该方案的进一步优化指南,以便将其应用于其他鳞翅目物种的蛹期翅组织。

摘要

本文以视频形式展示了利用核糖探针在蝴蝶Bicyclus anynana蛹翅中进行原位杂交的实验方案。原位杂交是发育生物学中的常用技术,可用于在转录水平研究发育组织中基因表达的空间和时间模式。当尚未开发出针对基因转录产物蛋白的特异性抗体,或基因组中存在多个高度同源的基因拷贝而现有抗体无法区分时,原位杂交可作为替代方法。尽管针对幼虫翅盘的原位杂交技术已在蝴蝶研究领域应用多年,但本方案已针对更大且更脆弱的蛹翅组织进行了优化。

方案

第1天

  1. 配制以下溶液:
    • 10× PBS
    • 1× PBS
    • 1× PBT
    • ddH2O
      • 加入 DEPC 至终浓度为 0.1%,并剧烈振荡溶液。 
      • 高压灭菌。
    • 4% 多聚甲醛固定液 — 使用 PBS-DEPC 配制
    • 蛋白酶 K 溶液 — 若出现沉淀,取样前需剧烈涡旋混匀
    • 消化终止缓冲液
    • 预杂交缓冲液
    • 50:50 PBT:预杂交缓冲液
    • 杂交缓冲液
      • 所有溶液应保持无 RNase 状态。使用经烘烤处理(250°C 烘烤 4 小时)的玻璃器皿或一次性塑料器皿。血清移液管在配制溶液时非常有用
  2. 在 PBS 中解剖特定发育时间点的蛹翅
  3. 将翅组织直接转移至 24 孔培养板的孔中,加入固定缓冲液,于室温下进行固定
  4. 固定组织 2 小时
  5. 用 PBT 洗涤 5 次,每次 5 分钟
  6. 将翅组织在蛋白酶 K 溶液中孵育 3 分钟
  7. 用消化终止缓冲液冲洗 2 次
  8. 用 PBT 洗涤 5 次,每次 5 分钟
  9. 用 50:50 PBT : PHB 洗涤 2 次,每次 5 分钟
  10. 用 PHB 洗涤 1 次,持续 10 分钟
  11. 在 55°C 下于 PHB 中孵育至少 1 小时
  12. 热变性 RNA 探针(每孔需 20–50 ng,80°C 处理 5 分钟),然后加入杂交缓冲液(每孔需 100 μl)
  13. 将探针加入各孔中,在 55°C 下孵育 48 小时 

第3天

  1. 用 PHB 在 55°C 下洗涤 4 次,每次 5 分钟
  2. 在 55°C 的 PHB 中孵育过夜

第4天

  1. 配制以下溶液:
    • 抗体封闭缓冲液
  2. 在 50:50 PBT : PHB 中洗涤 1 次,每次 5 分钟
  3. 在 PBT 中洗涤 4 次,每次 5 分钟
  4. 将翅在封闭缓冲液中 4°C 孵育 1 小时
  5. 将翅在 1:2000 稀释的抗-Dig 抗体溶液中 4°C 过夜孵育

第5天

  1. 准备以下溶液:
    • 检测缓冲液
    • 显色液——避光(用铝箔包裹)
  2. 在室温下用 PBT 洗涤 3 次,每次 5 分钟
  3. 用 PBT 洗涤 7 次,每次 5 分钟
  4. 用检测缓冲液冲洗翅片 2 次
  5. 在 1 ml 显色液中显色——每次显色时间必须密切监测,即使使用相同的探针和显色液,显色时间也可能发生变化——通常在 5–10 分钟后开始检查,随后延长间隔,最长可过夜。未观察样品时,应将培养板用铝箔包裹以避免光照。
  6. 用终止显色缓冲液冲洗 5 次
  7. 封片保存翅片。

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讨论

现有方案的优化

已成功利用来自Precis coenia蝴蝶的幼虫翅盘进行原位杂交实验(Carroll等,1994;Keys等,1999;Weatherbee等,1999)。本实验方案改编自Carroll实验室提供的详细书面方案,该方案可应要求获取,用于幼虫翅染色。我们所做的修改旨在适应幼虫与蛹期翅组织之间的差异。在进行蛹后翅解剖时,应去除围膜,不得将其保留在反应孔中。与原方案相比,本方案中的初始固定时间更长,但省略了后续固定步骤。我们发现,蛋白酶K溶液需稀释10倍,以适应脆弱的蛹期翅组织,同时仍能保证探针有效渗透。此外,我们还发现,在抗体染色前对翅组织进行封闭可显著降低背景信号,而将抗体孵育时间延长至4°C下过夜则可增强信号强度。

应用

该实验方案具有多种应用。能够在发育中的蛹翅上定位候选基因的表达,是推断该基因在翅或翅型发育过程中发挥某种功能作用的第一步(Marcus 等,2004;Ramos 等,2006)。如果在其他系统中已知相互作用的多个基...

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致谢

感谢 Jayne Selegue、Margaret Hollingsworth、Jin Berry、Ryo Futahashi、Najmus Sahar Mahfooz、Aleksandar Popadic、Bob Reed 以及 Roche 技术支持团队在本实验方案问题排查过程中提供的帮助。同时感谢 William Piel 对视频编辑提供的建议。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
固定缓冲液4% 多聚甲醛溶于 PBS
PBT0.1% Tween 20 溶于 PBS
蛋白酶K溶液2.5mg/ml 蛋白酶K溶于PBT
消化终止缓冲液2 mg/ml 甘氨酸溶于 PBT
预杂交缓冲液配制50 ml PHB:12 ml DEPC处理水 + 25 ml 甲酰胺 + 12.5 ml 20 x SSC + 50 µl Tween 20 + 500 µl 10 mg/ml 鲑鱼精DNA(无RNase,使用前经热变性处理)。
杂交缓冲液在预杂交缓冲液中加入1 mg/ml糖原
封闭缓冲液50 mM Tris(pH 6.8),150 mM NaCl,0.5% IGEPAL(NP40),5 mg/ml BSA
抗DIG抗体AbRoche Group11 093 274 910碱性磷酸酶偶联
DIG洗涤与封闭缓冲液试剂盒Roche Group11 585 762 001
Crystal Mount水性封片介质Sigma-AldrichC0612封片介质

参考文献

  1. Carroll, S. B., Gates, J., Keys, D. N., Paddock, S. W., Panganiban, G. E. F., Selegue, J. E., Williams, J. A. Pattern formation and eyespot determination in butterfly wings. Science. 265, 109-114 (1994).
  2. Chomczynski, P. Solubilization in formamide protects RNA from degradation. Nucleic Acids Research. 20, 3791-3792 (1992).
  3. Keys, D. N., Lewis, D. L., Selegue, J. E., Pearson, B. J., Goodrich, L. V., Johnson, R. J., Gates, J., Scott, M. P., Carroll, S. B. Recruitment of a hedgehog regulatory circuit in butterfly eyespot evolution. Science. 283, 532-534 (1999).
  4. Marcus, J. M., Ramos, D. M., Monteiro, A. Germ line transformation of the butterfly Bicyclus anynana. Proc R Soc Lond B (Suppl). 271, S263-S265 (2004).
  5. Monteiro, A., Glaser, G., Stockslagger, S., Glansdorp, N., Ramos, D. M. Comparative insights into questions of lepidopteran wing pattern homology. BMC Developmental Biology. 6, 52(2006).
  6. Ramos, D. M., Kamal, F., Wimmer, E. A., Cartwright, A. N., Monteiro, A. Temporal and spatial control of transgene expresson using laser induction of the hsp70 promoter. BMC Developmental Biology. 6, 55(2006).
  7. Weatherbee, S. D., Nijhout, H. F., Grunert, L. W., Halder, G., Galant, R., Selegue, J., Carroll, S. Ultrabithorax function in butterfly wings and the evolution of insect wing patterns. 9, 109-115 (1999).

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