采用活体显微技术追踪软脑膜微循环中血流动力学和炎症事件的时间与空间变化。
采用活体显微技术追踪软脑膜微循环中血流动力学和炎症事件的时间与空间变化。
该实验模型旨在利用以下方法评估小鼠软脑膜微循环在急性和慢性、生理及病理生理状态下的血流动力学、炎症和代谢情况, 体内 荧光显微镜。在小鼠左侧顶枕皮层上方植入封闭式颅窗。通过该颅窗,利用落射照明和荧光照明实时记录局部微循环,并对血管直径和红细胞(RBC)流速进行测量。红细胞流速采用实时互相关法和/或荧光标记的红细胞进行测定。借助荧光标记的示踪剂(如Albumin-FITC和抗CD45-TxR抗体),可观察白细胞和血小板在软脑膜血管上的黏附情况,并评估灌注状态和血管渗漏。微循环可在数天内多次进行视频记录。我们首次应用封闭颅窗活体显微技术研究软脑膜微循环,以动态观察疾病进程中发生的各项变化 疟原虫伯氏疟原虫 在小鼠中进行 ANKA 感染,并表明 CM 的表达与微循环功能障碍相关,其特征为血管收缩、血流显著减少,最终导致血管衰竭。
1. 开颅手术
需要提前对8至10周龄的小鼠进行开颅手术,操作步骤如前所述1,但不将钛棒植入动物头部。慢性颅窗是一种稳定的制备方法,可在植入后数月内持续观察软脑膜微循环。通常,我们在颅窗植入术后2至3周进行实验研究。
2. 活体显微成像
3. 代表性结果

图 1.(步骤 2.6) 通过颅窗观察到的小鼠软脑膜血管网络图像。

图 2.(步骤 3.1–3.5) 小鼠软脑膜微循环活体显微观察实验装置示意图。1:活体显微镜;2:20倍水浸物镜;3:光源;4a:数字低照度高速相机;4b:模拟相机;5:固定于立体定位架上的小鼠;6:计算机显示器;7:模拟剪切图像显示器,显示如何通过图像剪切法(箭头)测量血管直径。

图 3.(步骤 3.6–3.8) 通过高速荧光录像中红细胞的追踪测量微血管内红细胞流速。图片 A 至 F 为一条软脑膜血管的连续图像,显示单个红细胞穿过相机限定的显微视野。通过手动确定 15 个或更多红细胞在视野中逐帧移动的位置,并结合预先校准的距离,可借助 Excel 电子表格计算每条血管中的平均红细胞流速。

图4.(步骤3.9) 一项代表性实验数据,显示恶性疟原虫ANKA株(Plasmodium berghei ANKA, PbA)感染小鼠(n = 5)与未感染对照小鼠(n = 5)随时间变化的软脑膜血流情况。对照组小鼠的软脑膜血流随时间相对稳定,而PbA感染小鼠在脑型疟疾发病时(第6天)血流显著下降。数据以均值 ± 标准误(SEM)表示。

图5.(步骤4.3) 通过抗CD45-Texas Red荧光抗体染色显示,感染了Plasmodium berghei ANKA的小鼠软脑膜血管上黏附有大量的白细胞。
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此处描述的活体显微成像方法为详细观察小鼠软脑膜微循环提供了一种独特而强大的工具。该方法可单独识别单个微动脉和微静脉,并测量多种参数的变化,包括血管直径、红细胞流速、血流量、白细胞、血小板及其他血细胞的黏附与滚动、血管渗漏、组织pH值和pO₂值,以及潜在的其他多种应用。 体内 血管反应可在药物干预或病理过程中迅速评估。此外,微循环行为可随时间进行动态追踪。我们已利用该技术研究由脑型疟疾引起的软脑膜微循环变化 P. berghei 在小鼠中研究 ANKA,并已证明该模型中的神经系统综合征与微循环功能障碍相关,其特征为脑血流量减少、血管收缩、灌注受损,最终导致血管衰竭6.
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未声明任何利益冲突。
本研究工作获得了美国国立卫生研究院(National Institutes of Health)授予 LJMC 的资助,项目编号分别为 R01-HL87290、R01-HL87290-S1 和 R01-AI082610。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 异氟烷 | Baxter Internationl Inc. | FDG9623 | |
| 碳菁染料 Dil | Molecular Probes, Life Technologies | D306 | |
| 白蛋白-FITC | Sigma-Aldrich | A9771 | |
| 抗-CD45-TxR 抗体 | Invitrogen | MCD4517 | |
| P. berghei ANKA-GFP | MR4 | MRA-865 |
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