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病毒编码双特异性T细胞衔接分子免疫调节活性的评估

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2026年9月30日

本文内容

摘要

来源:Heidbuechel, J. P., 等. 用于肿瘤靶向免疫调节的副粘病毒:体外设计与评估。J. Vis. Exp. (2019)。

本视频展示了一种基于细胞的检测方法,用于评估病毒编码的双特异性T细胞衔接蛋白(BTE)针对特定靶标的免疫调节活性。该BTE可将表达特定靶标受体的肿瘤细胞与T细胞连接,从而触发肿瘤细胞裂解和酶的释放。通过底物转化产生的比色读数来指示T细胞的活化情况。检测样本中颜色越深,表明BTE介导的、受体特异性的免疫激活作用越强。

方案

  1. 评估分离的免疫调节剂的免疫学功能。
    1. 以下详细描述如何通过乳酸脱氢酶(LDH)释放实验评估双特异性T细胞衔接分子(BTE)诱导的细胞介导的细胞毒性。
      1. 确定实验中需测试的条件(参见图1作为示例)。可变动的因素包括时间点(数小时至数天)、免疫调节剂的浓度(pg/mL至µg/mL)以及效应细胞与靶细胞(E:T)的比例(例如,1:50至50:1之间)。所有样本均应设置三个重复。
      2. 设置不含BTE蛋白和不含效应细胞的样本,包括单种细胞类型的自发LDH释放对照(Tsp和Esp)、在检测前加入去垢剂的靶细胞最大裂解对照(Tmax)、仅含培养基的对照,以及Tmax的体积对照。
        注意:所需靶细胞数量和孵育时间可能有所不同。在不含效应细胞和免疫调节剂的条件下进行初步测试,以确定最佳参数。包含Tsp和Tmax样本及其相应对照,用于评估不同细胞数量和时间点。
      3. 分离免疫效应细胞(例如,通过密度梯度离心法从人血中获取外周血单个核细胞(PBMCs),或从鼠脾细胞中通过阴性筛选法分离小鼠T细胞)。
      4. 将靶细胞接种至U型底96孔板中(例如,每孔5 × 10³个细胞)。
      5. 向各相应样本中加入所需浓度的分离蛋白。按所需比例加入免疫效应细胞。加入培养基,使每孔总体积达到100 µL。
      6. 在37 °C、5% CO2条件下孵育预定时间,通常为4至48小时(未刺激的PBMCs为24小时,新分离的小鼠T细胞为48小时;预刺激的免疫细胞可采用较短的孵育时间)。
      7. 在收集样本前45分钟,向含有Tmax样本及相应培养基对照的孔中加入10 µL 10倍浓缩的裂解液。继续孵育。
      8. 以250 × g离心4分钟,沉淀细胞。将每孔上清液50 µL转移至平底96孔板中。避免转移细胞,以防细胞结合的LDH被带入。
      9. 根据试剂盒说明书配制底物溶液。每孔加入50 µL,室温[RT]避光孵育30分钟,或直至Tmax样本变为深红色。
      10. 每孔加入50 µL终止液。以4,000 × g离心1分钟去除气泡,并用空心针手动去除残留气泡。在490 nm波长下测定光吸收值。
      11. 计算每个样本的特异性裂解百分比(% specific lysis)值。
        1. 计算含与不含裂解液的培养基对照重复孔的平均值。将所得数值分别从实验样本、Tmax及自发释放对照中减去。使用这些经背景校正后的数值进行后续计算。
        2. 计算经背景校正后的Tmax、Tsp和Esp对照的平均值。利用这些平均值,以下公式可得出每个样本的特异性裂解百分比:
          figure-protocol-1
        3. 绘制特异性裂解百分比值与蛋白浓度或E:T比例的关系图,并与非靶向对照样本进行比较。

结果

figure-results-1

图1:麻疹病毒编码的双特异性T细胞衔接蛋白(BTE)的细胞毒活性。 将靶向肿瘤细胞(每孔5 × 10³个B16-CD20-CD46细胞)与小鼠T细胞以1:50的比例共孵育。将先前从感染MV(麻疹病毒)-H-mCD3xhCD20细胞的上清液中纯化的BTE(双特异性T细胞衔接蛋白)以指定浓度加入。孵育48小时后,通过乳酸脱氢酶(LDH)释放实验评估靶细胞的相对裂解程度。不表达BTE靶抗原的细胞(B16-CD46)作为参照,用于评估抗原特异性的细胞毒性。数据展示每样本三个技术重复的均值加标准差。表达靶抗原的细胞以BTE浓度依赖的方式被特异性裂解。BTE产物的纯度和靶抗原的表达水平会影响细胞杀伤效果。在本示例中,在相对较高的BTE浓度(1 µg/mL)下实现了15%的特异性细胞杀伤。这在具有较长共孵育时间及次优T细胞培养条件的实验设置中属于典型值。在其他实验条件下,使用从MV感染上清液中纯化的BTE可实现高达60%的特异性杀伤,在BTE浓度达到100 ng/mL及以上时达到平台期。这表明,与直觉相反,该实验的检测上限通常低于100%的特异性杀伤,其原因可归结为Tmax对照组与共培养样本之间存在不同的生长动力学差异。

材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
DMEM 培养基(Dulbecco 改良 Eagle 培养基)Invitrogen, Darmstadt, Germany31966-021 
胎牛血清(FBS)Biosera, Boussens, FranceFB-1280/500 
卡那霉素Sigma-Aldrich, Taufkirchen, GermanyK0129 
B16-CD46 / B16-CD20-CD46J. Heidbuechel, DKFZ Heidelberg 可根据要求提供
比色法细胞活力检测试剂盒 III(XTT)PromoKine, Heidelberg, GermanyPK-CA20-300-1000包含 XTT 试剂
磷酸盐缓冲液(Dulbecco's PBS)Gibco Life Technologies, Darmstadt, Germany14190-094 
QIAquick Ni-NTA 离心柱QIAGEN, Hilden, Germany31014 
96 孔圆底板TPP, Trasadingen, Switzerland92097 
96 孔平底板Neolab, Heidelberg, Germany353072 

标签

肿瘤细胞裂解T细胞活化乳酸脱氢酶释放实验细胞介导的细胞毒性比色法检测免疫效应细胞靶抗原表达光吸收度