本方案中描述的小鼠自体血注射脑出血模型采用双次注射技术,以最大限度降低血液沿针道反流的风险,泵系统中不使用抗凝剂,并且消除了系统中的所有死腔和可扩张的管路。
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本方案中描述的小鼠自体血注射脑出血模型采用双次注射技术,以最大限度降低血液沿针道反流的风险,泵系统中不使用抗凝剂,并且消除了系统中的所有死腔和可扩张的管路。
研究脑出血(ICH)后损伤的病理生理学机制需要一种可重复的动物模型。尽管脑出血占所有中风病例的10-15%,但目前仍缺乏特异有效的治疗方法。小鼠自体血注射模型通过立体定位将动脉血注入基底节区,模拟人类自发性高血压性脑出血。随后可在活体中研究出血后的反应,并对神经行为学缺陷进行量化,从而描述继发性病理变化并评估潜在治疗药物。本方案所述操作采用双次注射技术,以最大限度降低血液沿针道反流的风险,泵送系统中不使用抗凝剂,并消除系统中所有死腔和可扩张的管路。
1. 仪器设备的准备
2. 注射前小鼠的准备
注意:请在手术前至少 7 天将小鼠运送至动物设施,以便它们适应新环境并减少应激。
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本研究采用自体尾动脉血在小鼠中建立脑内出血的手术模型,可重复地模拟自发性基底节区出血。小鼠脑出血模型的优势在于可利用转基因动物研究发病机制;然而,由于小鼠体型较小,神经外科手术操作较大型动物更具技术难度。
胶原酶模型和自体血注射模型是两种已建立的实验性脑出血(ICH)模型。尽管胶原酶模型操作简便且出血高度可重复2,但其所用的细菌蛋白会降解基底膜,可能影响对固有炎症反应的研究。此外,在药理学(例如神经保护)实验中,胶原酶破坏的血脑屏障(BBB)可能非生理性地促进药物进入脑组织。近年来还开发出一种华法林相关性ICH模型3,可用于研究该类患者的出血扩展情况。自体血注射模型的优点包括:存在与占位效应相关的机械性损伤、体系无菌且不含外源性蛋白、可消除抗凝状态以研究自发性出血后自然的凝血与炎症通路,以及对出血量大小实现精确控制。由于所有小鼠的出血量相同,因此可在相对较小的样本量下,精确研究治疗干预对组织和功能结局的影响。
本文所述手术方法与其他已发表的自体血注射模型类似(4-7),本方案中的多个.......
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未声明任何利益冲突。
本研究由宾夕法尼亚大学转化医学与治疗研究所的博士后奖学金、宾夕法尼亚大学医学与工程研究所的培训项目资助(T32HL007954),以及康涅狄格大学健康中心 Marlene L. Cohen 和 Jerome H. Fleisch 学者奖(LHS)和美国国立卫生研究院 NS-029331 项目(FAW)资助。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 用于小鼠神经外科手术的立体定位仪(St–lting,51925) | |||
| 微量输注泵及控制器(UMP-3 和 Micro4,World Precision Instruments,佛罗里达州萨拉索塔) | |||
| 小鼠保温垫(St–lting,50300) | |||
| 吸入式小鼠麻醉系统(Braintree Scientific,EZ-AF9000) | |||
| 25 μL 气密型硼硅酸盐玻璃哈密尔顿注射器,带涂层推杆,无针头 | |||
| (Hamilton 公司,内华达州里诺,1702RN 注射器:765401,卡套:30949,垫片:30946) | |||
| 熔融石英针头,截断至 2 cm 长度(Hamilton,17739) | 注:若每次手术前均进行灭菌处理,哈密尔顿注射器和熔融石英针头可多次重复使用。这些材料对防止血液凝固至关重要。 | ||
| 无菌外科手套 | |||
| 外科手术服、头帽和口罩 | |||
| 聚维酮碘(Betadine) | |||
| 75% 乙醇 | |||
| 无菌 27 号针头(一次性使用) | |||
| 无菌 1 cc 注射器(一次性使用) | |||
| 无菌手术刀片 | |||
| Cidex(戊二醛消毒液) | |||
| 无菌水 | |||
| 丁丙诺啡和异氟烷 | |||
| 无菌纱布 | |||
| 石蜡蜡纸方块 | |||
| 兽用外科胶(Vetbond,3M,明尼苏达州圣保罗) |
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