我们介绍了如何在人Ramos B细胞系中进行含有过表达或shRNA构建体的逆转录病毒或慢病毒感染,以及如何检测这些细胞中的体细胞高频突变。
我们介绍了如何在人Ramos B细胞系中进行含有过表达或shRNA构建体的逆转录病毒或慢病毒感染,以及如何检测这些细胞中的体细胞高频突变。
B细胞通过V(D)J重排产生低亲和力抗体而开始其生命周期。然而,当检测到病原体时,免疫球蛋白(Ig)基因的可变区(V区)发生体细胞高频突变(SHM),其突变率比基因组其他区域高出约100,000倍,从而产生高亲和力抗体1,2。此外,类别转换重组(CSR)可根据针对特定病原体所需的免疫反应类型,产生具有不同效应功能的抗体。CSR和SHM均由活化诱导的胞苷脱氨酶(AID)启动,AID将DNA中的胞嘧啶残基脱氨生成尿嘧啶。这些尿嘧啶通过易错的DNA修复通路进行加工,最终导致突变和重组事件的发生1-3。
目前,关于体细胞超突变(SHM)和类别转换重组(CSR)分子机制的研究成果主要来源于小鼠、原代细胞、细胞系以及无细胞实验的综合研究。小鼠模型仍然是金标准,基因敲除实验已证明多种修复因子在其中发挥关键作用(例如 Ung、Msh2、Msh6、Exo1 和 DNA 聚合酶 η)4-10。然而,并非所有基因都适用于敲除研究。例如,若干双链断裂修复蛋白的敲除会导致胚胎致死或损害B细胞的发育11-14。此外,有时目标蛋白在SHM或CSR中的特定功能可能被基因敲除引起的更广泛的缺陷所掩盖。同时,由于小鼠实验周期较长,通过细胞系调控单个基因的表达已成为识别和表征候选基因日益常用的初步手段15-18。
Ramos——一种持续发生体细胞超突变(SHM)的伯基特淋巴瘤细胞系——是研究SHM的常用细胞模型18-24。Ramos细胞的一个优势在于其自身具备一种方便的半定量检测SHM的方法。野生型细胞表达IgM,随着突变的积累,部分突变会导致IgM表达丧失。因此,通过荧光激活细胞分选(FACS)检测IgM的丢失情况,可快速反映SHM水平。通过直接测序抗体基因,可以获得更为定量的SHM测量结果。
由于Ramos细胞难以转染,我们通过使用含有过表达元件或短发夹RNA(shRNA)的逆转录病毒或慢病毒载体感染细胞,从而构建出特定基因表达升高或降低的稳定细胞系。本文中,我们描述了如何感染Ramos细胞,并利用这些细胞研究特定基因在体细胞高频突变(SHM)中的作用(图1)。
1. 样品和细胞的准备
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如前所述,用于抗体多样性的细胞系模型已成为识别影响抗体多样化各个步骤的新蛋白的常用起点。本文介绍了一种方法,即通过病毒感染在 Ramos B 细胞系中敲低或过表达特定蛋白,进而检测其对体细胞高频突变(SHM)的影响。
在这些研究中,我们同时使用野生型Ramos细胞和AIDhi Ramos细胞。野生型细胞可用于研究参与AID靶向或表达的因子以及修复AID诱导的DNA损伤的相关机制,而AIDhi细胞则排除了影响AID表达的因素。
还应注意,此处通过检测初始为IgM+的细胞群体中IgM的丢失来测量SHM。或者,也可以从IgM-细胞开始,在回复突变检测中寻找获得IgM+的细胞23。
通过使用不同的筛选标记(例如嘌呤霉素、潮霉素、GFP或Thy1.1),我们还可以采用相同的实验方案同时进行多重感染。然而,我们发现当使用两种不同的抗生素筛选标记时,细胞的.......
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pMSCV-AID-I-Thy1.1 和 pKat2 载体由 D. G. Schatz 惠赠,pVSV-G、pRSV-Rev 和 pMDLg/pRRE 载体由 B. R. Cullen 惠赠。
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