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1. 为检测打印抗体微阵列
- 将所有抗体用磷酸盐缓冲液(pH 7.2,PBS)稀释至 0.5 mg/ml。
- 将每种抗体各 40 μl 分装至 384 孔源板中。
- 将 384 孔源板装载到 Scienion sciFLEXARRAYER 微阵列点样仪上。
- 将 20 张 PATH 微阵列玻片作为靶标装载到微阵列点样仪上。
- 设置微阵列点样仪打印 48 个相同的子阵列,每个子阵列中 27 种抗体和对照蛋白以 9×9 排列方式三复孔点样(图 1E、1F)。
- 启动微阵列点样仪开始打印抗体微阵列玻片。
- 收集打印完成的抗体微阵列玻片,放入带有干燥剂的玻片盒中,并使用真空封口机(Foodsaver)将玻片盒在塑料袋内真空密封。
- 将密封的微阵列玻片置于 4 °C 冰箱中保存。
2. 化学封闭抗体微阵列以防止GBP结合捕获抗体
微阵列实验在微阵列芯片经过化学封闭后开始,持续约8小时。一旦开始微阵列实验,必须完成全部步骤(步骤2至步骤8)。
- 从冰箱中取出微阵列芯片,于室温下平衡30分钟。
- 将芯片从储存盒中取出,在玻片洗涤槽中依次用含0.1% Tween 20的磷酸盐缓冲液(pH 7.2)(PBST0.1)短暂漂洗一次,再用含0.1% Tween的15 mM醋酸钠缓冲液(pH 5.0)(CBT0.1)进行漂洗。随后将芯片置于CBT0.1中,在玻片洗涤槽中孵育10分钟。
- 配制新鲜的150 mM NaIO4溶于15 mM醋酸钠缓冲液(pH 5.0)(CB)中,并在使用前将其置于冰箱中避光保存于玻片洗涤槽内。
- 将芯片从CB中取出,放入盛有新鲜NaIO4溶液的洗涤槽中,确保抗体面朝上。用铝箔覆盖洗涤槽以避光,并在4 °C冰箱中轻轻振荡孵育2小时。
- 配制300 mL含10 mM酰肼基谷氨酸(封闭剂)的CB缓冲液。
- 将芯片从洗涤槽中取出,在玻片洗涤槽中用CB缓冲液漂洗3次,每次5分钟。
- 将芯片放入洗涤槽中的封闭剂溶液中,在室温下轻轻振荡孵育2小时。
- 将芯片从洗涤槽中取出,用PBST0.1缓冲液洗涤3分钟。
3. 使用牛血清白蛋白(BSA)封闭微阵列的非特异性结合位点
- 在载玻片洗涤槽中配制 300 ml 含 0.5% Tween 的 1% BSA 磷酸盐缓冲液(pH 7.2,PBST0.5),将微阵列载玻片放入槽中,在室温下轻轻振荡孵育 1 小时。
- 用 PBST0.1 漂洗载玻片,每次 3 分钟,共漂洗 3 次。
- 将载玻片置于载玻片架上,在 1,200 × g 离心机中离心 2 分钟以干燥微阵列载玻片。
4. 将石蜡网格压印到微阵列芯片上以分隔每个子阵列
- 将蜡印仪预热至 70 °C,持续 5 分钟。
- 将已封闭的微阵列芯片装入蜡印仪中,抗体面朝向蜡膜。轻轻拉动把手,使蜡均匀地印在芯片上。
5. 将血清样本施加到微阵列芯片上
- 在步骤 2.4 期间,准备血清样本用于单个样本的糖基谱分析实验(5.1.1),或用于多个样本中的单一糖基表位检测(5.1.2)。
- 在使用多种 GBP 对单个血清样本中的多种血清糖蛋白进行糖链谱型分析的实验中(参见示例实验 1),将同一样本应用于所有子阵列。此时,将 40 μl 血清样本稀释至 360 μl 含有 0.1% Tween-20、0.1% Brij 35、100 μg/mL 小鼠 IgG、100 μg/mL 大鼠 IgG、100 μg/mL 兔 IgG、100 μg/mL 山羊 IgG 和 100 μg/mL 驴 IgG 的 PBS 溶液中。该体积足以在每个子阵列上加样 6 μl 稀释后的血清溶液。
- 在使用单一 GBP 检测多个血清样本中多种血清蛋白的单一糖链结构的实验中(参见示例实验 2),将 1 μl 血清样本稀释至 9 μl 含有 0.1% Tween-20、0.1% Brij 35、100 μg/mL 小鼠 IgG、100 μg/mL 大鼠 IgG、100 μg/mL 兔 IgG、100 μg/mL 山羊 IgG 和 100 μg/mL 驴 IgG 的 PBS 溶液中。该体积足以在每个子阵列上加样 6 μL 稀释后的血清溶液。
- 在步骤 4 完成蜡印后,小心地将 6 μL 稀释样本或对照样本(PBST0.1)加至玻片的每个子阵列上。将玻片置于加湿盒中,盒内放置湿润的纸巾,于室温孵育 1 小时。
- 用 PBST0.1 漂洗玻片三次,每次 3 分钟。
- 以 1200 × g 离心 2 分钟干燥玻片。
6. 将生物素标记的GBP(凝集素或抗聚糖抗体)加到载玻片上
- 在步骤 2.4 中,用 PBST0.1 配制浓度为 10 μg/mL 的生物素化凝集素/GBPs 溶液。
- 在使用多种凝集素探针检测一个样本的糖链谱分析实验中(示例实验 1),配制 350 μL 生物素化凝集素溶液,足以用于所有子阵列。
- 在使用多种凝集素对多个样本进行单个糖表位/生物标志物筛选时,每种生物素化凝集素配制 10 μL,足以用于一个子阵列。
- 将 6 μL 稀释后的生物素化凝集素溶液分别加至芯片的每个子阵列上,置于加湿的载片盒中(内含湿润的纸巾),室温孵育 1 小时。
- 用 PBST0.1 漂洗芯片,每次 3 分钟,共漂洗 3 次。
- 将芯片在离心机中以 1200 × g 转速离心 2 分钟,使其干燥。
7. 应用染料标记的NeutrAvidin进行荧光检测
- 准备 350 μL Dylight 549 标记的 NeutrAvidin,足以用于所有亚阵列。
- 向每个亚阵列上加 6 μL Dylight 549 标记的 NeutrAvidin,并将玻片置于湿盒中,室温孵育 1 小时。
- 用 PBST0.1 漂洗玻片三次,每次 3 分钟。
- 将玻片放入离心机中,以 1200 × g 转速离心 2 分钟,使其干燥。
8. 通过扫描芯片获取微阵列芯片图像
- 使用荧光微阵列扫描仪以 10 μm 分辨率扫描玻片。激光和 PMT 设置应尽可能强,但不得出现饱和信号点。
9. 数据提取与分析
- 在 ArrayPro 3.2 中打开图像。
- 根据显示抗体点位置的阵列图设置阵列模板。仔细将每个模板圆圈对准图像中相应的点。
- 将每个点的强度提取到 Excel 文件中以进行进一步分析。
10. 代表性结果
示例实验 1
利用化学封闭的抗体微阵列联合多种凝集素检测,对中国肝细胞癌患者血清样本中多种血清糖蛋白进行糖基化谱分析。
本实验旨在利用化学封闭的抗体微阵列结合凝集素检测技术,分析肝细胞癌(HCC)患者血清样本中20种糖蛋白的个体糖基化谱。如步骤1所述,设计并制备了一种包含48个相同子阵列的抗体微阵列,每个子阵列包括26种抗体和生物素标记的BSA。这26种抗体靶向20种血清糖蛋白,这些糖蛋白此前通过基于凝集素的免疫沉淀联合质谱蛋白质鉴定方法被确认为HCC患者早期诊断的潜在标志物12, 32,如表1所示。一个代表性子阵列中抗体点样重复打印的排列模式分别如图1E和1F所示。使用两张相同的微阵列玻片进行相同的糖基化谱分析实验,其中一张未进行化学封闭(图1A),另一张则进行了化学封闭(图1B),以展示化学封闭步骤对分析的重要性。对于化学封闭的玻片(图1B),实验从步骤2开始;而对于未化学封闭的玻片(图1A),实验则从步骤3开始。实验按照方案中描述的所有步骤进行,但不包括步骤5.1.2和6.1.2。在步骤5.2中,将PBST0.1对照样本分别加至第1列和第3列的子阵列,将混合HCC血清样本分别加至第2列和第4列的子阵列(如图1G所示)。该对照用于评估化学封闭后实验流程的有效性、效率以及抗体对抗原的结合亲和力。将22种生物素标记的凝集素(如表1所示)特异性识别不同糖链结构18, 20,按图1G所示加至每个子阵列,用于糖基化谱分析。图示为按照实验方案完成糖基化谱检测后,经化学封闭(图1B)与未化学封闭(图1A)的微阵列图像。如未化学封闭微阵列的第1列和第3列子阵列(图1A和图1C)所示,仅加入PBST0.1的区域,大多数凝集素与捕获抗体发生结合,背景信号非常高,与加入血清样本的第2列和第4列子阵列信号相当。因此,无法从此类微阵列玻片获得有效的糖链谱信息。相反,在化学封闭的抗体微阵列玻片上进行相同实验时,仅加入PBST0.1的第1列和第3列子阵列中,大多数凝集素几乎不结合或仅有极低水平结合捕获抗体;而在加入血清样本的第2列和第4列子阵列中,仍可观察到强烈的抗原结合信号(图1B和1D)。这些结果表明,化学封闭步骤是准确检测抗体捕获糖蛋白上糖链的关键环节。按照本实验方案,可获得HCC血清中22种糖蛋白的糖基化谱。
实验 2
筛选特定血清糖蛋白上岩藻糖基化的改变,作为区分肝硬化与肝细胞癌患者的生物标志物。
本实验旨在筛选肝硬化和肝细胞癌(HCC)患者血清中特定糖蛋白岩藻糖基化的改变,以寻找可用于区分两者的生物标志物。与实验1不同,本实验并非在每个子阵列上仅应用一份血清样本并用多种凝集素进行探查,而是将来自HCC和肝硬化患者共40份不同的血清样本分别点样到每个子阵列上,并使用一种凝集素(AAL)进行探查。通过t检验、受试者工作特征(ROC)曲线等统计分析方法,评估每份血清样本中各单个蛋白上的糖链表位/生物标志物的分布情况或诊断性能。本研究中使用的抗体微阵列与实验1相同,但未包含抗CA19-9和抗Lewis X抗体。实验步骤从第2步至第9步,但不包括第5.1.1和6.1.1步。总共40份血清样本(其中20份来自肝硬化患者,20份来自HCC患者)被随机点样至48个子阵列中的不同位置,同时加入PBS对照样本作为阴性对照。随后,利用生物素标记的特异性识别岩藻糖的凝集素检测各被捕获蛋白的岩藻糖基化水平。如图1所示,凝集素AAL仅结合微阵列上被捕获的血清蛋白(图2D),而不结合被捕获的抗体(图2E)。提取所有点的AAL结合信号强度,并通过t检验和ROC曲线分析,评估每种血清蛋白的岩藻糖基化(即AAL结合强度)在区分HCC组与肝硬化组中的表现。结果显示,GP73蛋白的岩藻糖基化在两组间的区分能力最佳,其p = 0.03,ROC曲线下面积为0.72。本实验表明,该方法是一种快速、高效的多蛋白、多样本糖链表位/生物标志物筛选策略。
| 编号 | 试剂名称 | 缩写 | 公司 | 目录号 |
| L1 | 生物素化刀豆蛋白A | ConA | Vector Laboratories | BK-1000 |
| L2 | 生物素化黑接骨木凝集素 | SNA | Vector Laboratories | B-1305 |
| L3 | 生物素化扁豆凝集素 | LCA | Vector Laboratories | BK-2000 |
| L4 | 生物素化蓖麻凝集素I | RCA | Vector Laboratories | BK-1000 |
| L5 | 生物素化橙黄阿耶洛霉凝集素 | AAL | Vector Laboratories | B-1395 |
| L6 | 生物素化鸡冠花凝集素 | ECL | Vector Laboratories | BK-3000 |
| L7 | 生物素化长蒴黄耆凝集素II | GSL II | Vector Laboratories | BK-3000 |
| L8 | 生物素化麦胚凝集素 | WGA | Vector Laboratories | BK-1000 |
| L9 | 生物素化菜豆红细胞凝集素 | PHA-E | Vector Laboratories | BK-2000 |
| L10 | 生物素化菜豆白细胞凝集素 | PHA-L | Vector Laboratories | BK-2000 |
| L11 | 生物素化花生凝集素 | PNA | Vector Laboratories | BK-1000 |
| L12 | 生物素化豌豆凝集素 | PSA | Vector Laboratories | BK-2000 |
| L13 | 生物素化双花扁豆凝集素 | DBA | Vector Laboratories | BK-1000 |
| L14 | 生物素化曼陀罗凝集素 | DSL | Vector Laboratories | BK-3000 |
| L15 | 生物素化槐凝集素 | SJA | Vector Laboratories | BK-2000 |
| L16 | 生物素化大豆凝集素 | SBA | Vector Laboratories | BK-1000 |
| L17 | 生物素化马铃薯凝集素 | STL | Vector Laboratories | BK-3000 |
| L18 | 生物素化长蒴黄耆凝集素I | GSL I | Vector Laboratories | BK-2000 |
| L19 | 生物素化毛苕子凝集素 | VVL | Vector Laboratories | BK-2000 |
| L20 | 生物素化番茄凝集素 | LEL | Vector Laboratories | BK-3000 |
| L21 | 生物素化荆豆凝集素I | UEA I | Vector Laboratories | BK-1000 |
| L22 | 生物素化刺毛黧豆凝集素 | JACALIN | Vector Laboratories | BK-3000 |
| A1 | 山羊F(ab')2片段抗人IgM、Fc5μ抗体 | IgM | Jackson Immuno Research | 109-006-129 |
| A2 | 驴F(ab')2片段抗人IgG(H+L)抗体 | AB1 | Jackson Immuno Research | 709-006-149 |
| A3 | 小鼠抗人IgG F(ab')2单克隆抗体 | AB3 | Jackson Immuno Research | 209-005-097 |
| A4 | 山羊抗人α2巨球蛋白多克隆抗体 | A2M | GeneTex | GTX62924 |
| A5 | 兔抗人α-1-抗胰蛋白酶多克隆抗体 | A1AT | Lee Biosiences | CA1T-80A |
| A6 | 小鼠抗人α-1-抗胰蛋白酶单克隆抗体 | A1AT | Sigma Aldrich | SAB4200198 |
| A7 | 兔抗人α-1-抗胰蛋白酶多克隆抗体 | ACT | NeoMarkers | RB-367-A1 |
| A8 | 兔抗人α-1-抗糜蛋白酶多克隆抗体 | ACT | Fisher Scientific | RB9213R7 |
| A9 | 小鼠抗人转铁蛋白单克隆抗体 | 转铁蛋白 | GeneTex | GTX101035 |
| A10 | 兔抗人转铁蛋白多克隆抗体 | 转铁蛋白 | GeneTex | GTX77130 |
| A11 | 山羊抗人载脂蛋白J多克隆抗体 | ApoJ | Abcam | ab7610 |
| A12 | 小鼠抗人GP73单克隆抗体 | GP73 | Abbott | 14H4-23 |
| A13 | 小鼠抗人GP73单克隆抗体 | GP73 | SANTA CRUZ BIOTECHNOLOGY INC | sc-101275 |
| A14 | 兔抗人甲胎蛋白多克隆抗体 | AFP | GenWay | GWB-41C966 |
| A15 | 小鼠抗人甲胎蛋白单克隆抗体 | AFP | Fitzgerald | 10-A05A |
| A16 | 小鼠抗人血红素结合蛋白单克隆抗体 | 血红素结合蛋白 | Assaypro | 60190-05011 |
| A17 | 小鼠抗人磷脂酰肌醇蛋白聚糖-3(1G12)单克隆抗体 | GPL3 | Santa Cruz Bio | sc-65443 |
| A18 | 小鼠抗人激肽原(低分子量)单克隆抗体 | 激肽原 | Assaypro | 20333-05011 |
| A19 | 兔抗人MMP-21单克隆抗体 | MMP21 | Epitomic | 1955-1 |
| A20 | 小鼠抗人CEACAM-1单克隆抗体 | CEACAM | R&D Systems | MAB1180 |
| A21 | 大鼠抗人DPPIV/CD26单克隆抗体 | DPPIV | R&D Systems | MAB22441 |
| A22 | 小鼠抗人PIVKA II单克隆抗体 | PIVICA | Crystal chem | 8040 |
| A23 | 小鼠抗癌胚抗原 | CEA | US biological | C1300 |
| A24 | 小鼠抗CA125肿瘤抗原 | CA125 | US biological | C0050-01D |
| A25 | 小鼠抗CA19-9肿瘤抗原 | CA19-9 | US biological | C0075-18 |
| A26 | 小鼠抗Lewis x单克隆抗体 | Lewis X | Calbiochem | 434631 |
| bio | 生物素化牛血清白蛋白(阳性对照) | Bio | 自制 | N/A |
表1. 本方案中使用的凝集素和抗体列表。
| 试剂/设备名称 | 公司 | 目录编号 |
| 非接触式微阵列点样仪 | BioDot Inc | sciFLEXARRAYER |
| 384 孔微孔板 | Fisher | 14-230-243 |
| FoodSaver | FoodSaver | V3835 |
| 超薄硝酸纤维素包被微阵列载玻片 | Gentel | PATH |
| 载玻片印片仪(可选) | The Gel Company | WSP60-1 |
| 摇床 | Fisher | 15-453-211 |
| 离心机 | Eppendorf | 5804 000.013 |
| 载玻片清洗槽/带可拆卸架的载玻片染色皿 | Fisher | 08-812 |
| 载玻片孵育盒/显微镜载玻片盒 | Fisher | 03-448-5 |
| Brij 35,水中 30 w/v% 溶液 | Acros Organics | AC32958-0025 |
| Tween-20 | Fisher | P337-100 |
| 高碘酸钠 (NaIO4) | Sigma | 311448 |
| L-谷氨酸 γ-酰肼 | Sigma | G-7257 |
| 无水乙酸钠 (CH3COONa) | Sigma | S2889 |
| 牛血清白蛋白 (BSA) | Lampire Biological Labs | 7500804 |
| 磷酸盐缓冲液 (PBS) (10X) | Denville Scientific | CP4390-48 |
| Dylight 549 标记的 NeutrAvidin | Thermo | 22837 |
| 蛋白酶抑制剂混合片剂 | Roche | 4693159001 |
| ChromPure 人 IgG,Fc 片段 | Jackson Immunoresearch | 009-000-008 |
| ChromPure 人 IgG,完整分子 | Jackson Immunoresearch | 009-000-003 |
| ChromPure 小鼠 IgG,完整分子 | Jackson Immunoresearch | 015-000-003 |
| ChromPure 小鼠 IgG,Fc 片段 | Jackson Immunoresearch | 015-000-008 |
| ChromPure 兔 IgG,完整分子 | Jackson Immunoresearch | 011-000-003 |
| ChromPure 驴 IgG,完整分子 | Jackson Immunoresearch | 017-000-003 |
| 微阵列扫描仪 | Tecan | LS Reloaded |
表2. 本实验方案中使用的仪器和试剂列表。

示意图 1. 基于凝集素抗体微阵列的糖链生物标志物发现流程示意图。1(步骤 2 至 4):使用阻断剂(Glu-肼)和 BSA 封闭抗体微阵列;2(步骤 5):加入血清样本,利用特异性抗体捕获特定糖蛋白;3(步骤 6):加入生物素标记的凝集素;4(步骤 7):使用 Dylight 549 标记的 NeutrAvidin 探测生物素化的 AAL,进行微阵列成像。

图1. 利用化学封闭抗体微阵列结合多种凝集素检测,对肝细胞癌(HCC)患者血清样本中多种血清糖蛋白进行糖基化谱分析的样本实验1微阵列图像。两张相同的微阵列玻片,(A) 未经化学封闭,或 (B) 按步骤2所述进行化学封闭,均经历了从步骤2到步骤9的全部糖基化谱分析流程,并用于比较目的。(A) 和 (B) 为在步骤8中以10微米分辨率扫描得到的微阵列图像;(C) 为未经化学封闭的微阵列玻片 (A) 前两行的放大图像;(D) 为化学封闭的微阵列玻片 (B) 前两行的放大图像;(E) 每个亚阵列内抗体排列示意图;(F) 阵列图谱:各抗体在亚阵列中的位置,每个抗体名称代表3个点;(G) 血清样本与凝集素位置示意图:显示各血清样本和凝集素所施加的亚阵列位置。

图2. 样本实验2的微阵列图像,用于筛选血清中特定糖蛋白岩藻糖基化的改变,作为区分肝硬化与肝细胞癌(HCC)患者的生物标志物。微阵列实验按照样本实验2部分所述方法进行。(A)第8步所得微阵列玻片的整张玻片图像;(B)每个子阵列内抗体排列示意图;(C)阵列图谱:各抗体在子阵列中的位置,每个抗体名称代表3个点;(D)与血清样本孵育的子阵列局部放大图像;(E)与PBS对照孵育的子阵列局部放大图像。

图3. 样品实验1的聚糖分析结果。每个条形图代表20种被测蛋白质中某一种的凝集素结合谱(或聚糖谱)。共使用22种不同的凝集素来分析每种蛋白质的聚糖谱。请点击此处查看此图的放大版本。