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方法文章

利用携带GFP的逆转录病毒载体将人类体细胞重编程为诱导性多能干细胞(iPSCs)

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DOI:

10.3791/3804

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2012年4月3日

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本文内容

摘要

本文描述了一种通过逆转录病毒介导的OCT4、SOX2、KLF4和MYC异位表达来生成人诱导性多能干细胞(iPSCs)的方法。同时还讨论了一种基于GFP表达识别人iPSC克隆的实用方法。

摘要

人类胚胎干细胞(hESCs)具有多能性,是细胞治疗和再生医学中极为宝贵的细胞来源 体外 疾病建模与再生医学1. 既往研究已表明,通过异位表达四种转录因子,可将人类体细胞重编程为多能性状态(Oct4、Sox2、Klf4 和 Myc)并重编程为诱导性多能干细胞(iPSCs)2-4 与人类胚胎干细胞(hESCs)类似,人类诱导多能干细胞(iPSCs)具有多能性,是自体细胞移植的潜在来源。本文描述了利用包含绿色荧光蛋白(GFP)的逆转录病毒载体,将四种重编程因子导入人类成纤维细胞以实现重编程的实验方案。4采用以下方案,在人胚胎干细胞培养条件下,可在3-4周内生成人诱导性多能干细胞(iPSCs)。人iPSC克隆在形态上与人胚胎干细胞(hESCs)极为相似,并因逆转录病毒转基因沉默而表现出绿色荧光蛋白(GFP)荧光信号的消失。在荧光显微镜下通过机械法分离的iPSC克隆,其生长特性与hESCs相似。在这些细胞中,我们检测到多种多能性基因及表面标志物的表达。

方案

1. 通过表达重编程因子的逆转录病毒进行重编程

  1. 在成纤维细胞培养基(含10%胎牛血清及青霉素/链霉素的DMEM)中培养人成纤维细胞。
  2. 感染前一天,将1×105个人成纤维细胞接种至6孔板的一个孔中。
  3. 吸除培养基以去除死细胞,加入2 ml新鲜成纤维细胞培养基,并加入硫酸鱼精蛋白至终浓度为5 μg/ml。
  4. 小心加入适量的表达GFP的病毒,使感染复数(MOI)为55。
  5. 感染后一天,移除病毒上清液,用2 ml PBS洗涤三次,然后加入2 ml成纤维细胞培养基。
  6. 感染后三天,观察GFP荧光,并补充2 ml成纤维细胞培养基。
  7. 感染后四天,将经辐照的小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs)饲养层细胞以1×104 /cm2的密度接种于已涂有0.1%明胶的10 cm培养皿中,使用成纤维细胞培养基,37 °C过夜培养。
  8. 感染后五天,用1 ml 0.05%胰蛋白酶/EDTA在37 °C消化5分钟,使感染的人成纤维细胞脱落,200 g离心5分钟。吸除上清液,用10 ml成纤维细胞培养基重悬细胞,转移至预先包被的10 cm培养皿中。
  9. 24小时后,更换为hESC培养基(含20% Knock-Out血清替代物、DMEM/F12、0.1 ml非必需氨基酸、4 ng/ml bFGF、青霉素/链霉素/谷氨酰胺、....

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讨论

表达四种转录因子可将人类成纤维细胞重编程为诱导多能干细胞(iPSCs)。为获得临床应用安全的iPSCs,研究人员已多次尝试采用非整合性或非遗传学方法来生成人类iPSCs。然而迄今为止,这些方法的效率极低,仍需进一步优化以提高可重复性11-14逆转录病毒或慢病毒方法常用于人iPSC的衍生与应用 体外 疾病模型,这类模型对病毒整合所引起的安全问题依赖性较低。本文所述的重编程方法可用于高效获得人诱导多能干细胞(iPSCs)。人iPSCs的筛选主要依据其克隆形态,该形态类似于人胚胎干细胞(ESCs)。更重要的是,本方法利用了逆转录病毒长末端重复序列(LTR)在多能干细胞中发生沉默的特性7,15本方案中使用的逆转录病毒载体包含通过内部核糖体进入位点(IRES)与重编程因子相连的GFP基因,以及5GFP 表达由前病毒 LTR 驱动。被这些病毒转导的成纤维细胞最初会表现出强烈的 GFP 表达。一旦重编程完成,诱导性多能干细胞(iPSCs)将失去 GFP 表达,这一变化可在荧光显微镜下清晰观察到。在本方案中,我们描述了从胎儿和新生儿成纤维细胞(Detroit 551 和.......

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披露

我们无任何利益冲突需要披露。

致谢

本工作由耶鲁医学院和查尔斯·胡德基金会的儿童健康研究奖资助。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
DMEM/F12Invitrogen1133005780%
无血清替代物Invitrogen10828-02820%
L-谷氨酰胺(200 mM)Invitrogen250300812 mM
非必需氨基酸(10 mM)Invitrogen111400500.1 mM
β巯基–乙醇(14.3 M)或 MTGInvitrogenM-62500.1 mM
bFGF-2 10 μg/mlGIBCO,隶属于 Life TechnologiesGF003AF4 ng/ml
青霉素/链霉素EMD Millipore15140-1221%
DMEMInvitrogen1196511890%
FBSInvitrogen1040702810%
青霉素/链霉素EMD Millipore15140-1221%
<强>表1. 培养基
OCT4AbcamAb198571:500
SSEA3EMD MilliporeMAB43031:100
SSEA4BD 生物科学BD5602181:100
Tra-1-81BD 生物科学BD5601731:100
Tra-1-60BD 生物科学BD5601741:100
NANOGAbcamAb216241:500
Alexa Fluor 488InvitrogenA110081:1000
Alexa Fluor 555InvitrogenA214221:1000
DAPIInvitrogenD13061:5000
pMIG-OCT4Addgene17225
pMIG-SOX2Addgene17226
pMIG-KLF4Addgene17227
pMIG-MYCAddgene18119
IV型胶原酶Invitrogen171040191 mg/ml
明胶,猪源Sigma-AldrichG 18900.1%
TritonSigma-AldrichX100-500ML0.2%
多聚甲醛Sigma-Aldrich476084%
BSAAmerican BioanalyticalAB018003%
MEF 饲养层细胞EMD MilliporePMEF-N
细胞刮刀康宁3008
荧光显微镜:配备GFP滤光片的倒置显微镜
<强>表2. 试剂与仪器

参考文献

  1. Murry, C. E., Keller, G. Differentiation of embryonic stem cells to clinically relevant populations: lessons from embryonic development. Cell. 132, 661-680 (2008).
  2. Takahashi, K., Tanabe, K., Ohnuki, M., Narita, M., Ichisaka, T., Tomoda, K., Yamanaka, S.

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