方法文章

限制性内切酶克隆方法,以评估在体外 HIV-1 C亚型的Gag-MJ4嵌合病毒的复制能力

DOI:

10.3791/51506

2014年8月31日

* These authors contributed equally

本文内容

摘要

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HIV-1 的发病机制由病毒特征和宿主遗传因素定义。在这里,我们描述了一种稳健的方法,该方法允许进行可重复的测量,以评估 gag 基因序列变异对病毒体外复制能力的影响。

摘要

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许多 HLA I 类等位基因对 HIV-1 发病机制和疾病进展的保护作用部分归因于它们能够靶向 HIV-1 基因组中难以逃逸的保守部分。 感染过程中,归因于细胞免疫压力的序列变化会在整个基因组中出现,如果在基因组的保守区域(如 Gag)内发现,则会影响病毒在体外复制的能力。 Gag 中 HLA 相关多态性传播给 HLA 不匹配的受者与设定点病毒载量降低有关。我们假设这可能是由于病毒的复制能力降低。在这里,我们提出了一种新方法,用于评估 HIV-1 的体外复制受从 C 亚型感染的赞比亚人的急性时间点分离的 gag 基因的影响。 该方法使用基于限制性内切酶的克隆将 gag 基因插入常见的 C 亚型 HIV-1 前病毒骨架 MJ4 中。这使得它比以前基于重组的方法更适合研究亚型 C 序列,这些方法评估了慢性衍生的 gag-pro 序列的体外复制。尽管如此,该方案可以很容易地修改以研究其他亚型的病毒。此外,该方案详细介绍了一种稳健且可重复的方法,用于评估 Gag-MJ4 嵌合病毒在基于 CEM 的 T 细胞系上的复制能力。该方法用于研究源自 149 种急性感染的赞比亚人 C 亚型的 Gag-MJ4 嵌合病毒,并允许鉴定 Gag 中影响复制的残基。 更重要的是,该技术的实施有助于更深入地了解病毒复制如何定义早期 HIV-1 发病机制的参数,例如设定点病毒载量和纵向 CD4+ T 细胞下降。

引言

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确定主机和影响HIV-1发病机理和疾病进展是至关重要的合理的疫苗设计的病毒特征。细胞免疫应答是HIV-1感染人体免疫反应的重要组成部分。细胞毒性T淋巴细胞(CTL)所必需的急性病毒血症的初始控制,并允许主机建立一个稳定的状态(设定点)的病毒载量1,2。这些效应细胞的实验耗尽导致的病毒控制3,4的损失。尽管这样,逃避突变发生在病毒基因组的颠覆CTL识别病毒感染的细胞5-9的范围内。

某些HLA等位基因已低病毒载量和较慢的疾病进展,包括B * 57,B * 27和B * 81 10-15关联。的HLA I类等位基因的保护益处部分可以归因于它们的目标基因组的功能约束区域,例如Gag的事实并选择该减少病毒在体外 16-21复制的能力逃逸突变。虽然从细胞免疫系统逃逸,是在选择中的HLA I类等位基因的上下文中的病毒有益的,这些突变的影响可以具有用于发送时主机差动后果与HLA-错配的个体22,23。因此,了解病毒复制能力传输的HLA相关逃逸突变的影响,以促进我们的早期HIV-1发病机制的理解将是非常重要的。

尽管已经取得了很大的进展,以识别和描述与具体的HLA-I类等位基因24-29相关个人逃逸突变的适应度的缺陷,自然产生的HIV-1毒株的HLA相关基因多态性的独特而复杂的脚印,而产生的人类白细胞抗原可能不同的免疫遗传背景的30介导的免疫压力。在APrevious分析,格普费特 。结果显示,从88急性感染赞比亚得到的传输加格序列的HLA相关的基因突变的积累与设定点病毒载量的31减少有关。这个建议的有害逃逸突变的传输,特别是在加格,对HLA不匹配的收件人提供临床益处,并且可能是由于减毒病毒复制。展望未来,就必须研究如何复杂的自然产生的菌株中的Gag基因多态性的组合协同工作来定义传播病毒的特性,例如复制能力,以及如何早期复制可能反过来影响HIV-1的临床指标和晚期发病。

布罗克曼等人首次证实GAG-Pro序列的过程中慢性期感染和病毒载量在这两个亚型C和B感染隔离复制能力之间的联系32-35。实验方法在这些研究中提出,虽然适当的审查由慢性感染个体的序列的体外复制能力,有几个技术上的警告和限制,使学习在C亚型HIV-1的复制能力急性感染的个体困难。此方法依赖于种群基于PCR扩增的序列引入B亚型NL4-3原病毒,这是来自部分来自LAV的重组,实验室适于病毒原液36。病毒的产生是完成通过共转染在CEM基于T细胞系37与PCR产物的消化Δ-GAG-亲 NL4-3的DNA。这种方法需要病毒在一段周的向外生长到几个月,这可能歪斜回收的病毒原液的性质有关的病毒准种的体内 ,并因此改变的体外复制能力的测定。这种方法Iš更适合于研究慢性感染的个体,它有效地用于病毒选择具有最高的复制能力,并在那里从大量的慢性感染个体的克隆许多不同的病毒变异体是相当劳力密集的,因此是不可行的。然而,急性感染个体中,有一般一到两个变体存在,并且因此,可以消除通过在体外选择压力偏斜所回收的病毒原液的性质的风险,使得在体外复制能力的更精确的评估。其次,这个方法需要重组C亚型的gag-Pro序列成B亚型来自骨干,并且可以引入骨干不相容偏压入分析。由于这些限制,大量的序列必须以克服引入的任何可能存在的偏差进行分析。

在这里,我们描述了一个另类的实验Appro公司ACH适合学习从C亚型急性感染个体的序列。我们用限制性内切酶克隆策略,引进源自HIV-1 C亚型感染者急性感染时间点进入C亚型前病毒的骨干,MJ4 gag基因。使用MJ4的为其中克隆的gag基因的共同骨架为C亚型的序列的分析至关重要。 MJ4从初级分离38演变而来,因此也不太可能引入偏倚由于骨干网和gag基因的亚型不兼容。另外,使用酶和限制性克隆的方法允许在原病毒构建体直接转染到293T细胞中,并在一个克隆的病毒原液的恢复相同的克隆的gag序列。

下面介绍的方法是一种高通量的方法来评估C亚型的复制能力得出的Gag-MJ4嵌合病毒。转染到293T细胞中是直接的和病毒的回收率只需要三天。 体外复制能力的测定在由布罗克曼等人创建的相同的CEM-CCR5的基于T细胞系37 ,除了使用所必需的成功复制重要协议的修改的C亚型MJ4嵌合病毒。使用合适的T细胞系,而不是外周血单个核细胞的允许大量的C亚型MJ4-嵌合病毒对以高测定再现性测试。最后,使用放射性标记的逆转录酶测定法对病毒的上清液中定量更具成本比使用市售的p24 ELISA试剂盒有效。这也给了一个更高的动态范围,这是用于检测相同的检测中均不佳,高病毒复制和用于检测菌株之间的细微差别复制很重要。

总之,这里提出的方法允许对从HIV-1 C亚型来源的插科打诨序列的复制能力的深入研究急性赞比亚感染者,并作为书面,也可以扩展到其他学习C亚型病毒感染的人群。观察高度变异在不同的Gag菌株之间的复制能力。此外,我们能够显示发送加格的复制能力和设定点的病毒载量的CD4 +下降之间以及与统计协会在3年的时间39。这样的结果凸显学习如何传播的病毒特征,比如复制能力的重要性,与宿主免疫系统在感染早期,影响发病机制相互作用,将整体开发有效的疫苗干预以及治疗。

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方案

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1,扩增HIV-1的gag基因从受感染,冰冻血浆

  1. 提取病毒RNA从140微升使用提取试剂盒解冻的HIV-1感染的血浆。
    1. 如果可行后提取RNA作为解冻病毒RNA产生最佳的放大效果,立即进行cDNA合成。如果可能的话,建立的PCR master mix首轮DNA扩增和储存在4℃之前,病毒RNA提取。
  2. 从RNA反转录的cDNA,并使用逆转录酶,并在单步RT-PCR的热稳定DNA聚合酶扩增的第一轮的DNA产物。
    1. 取的RNA进行的-80℃下冷冻(如果冷冻是必要的),并简单地在室温下解冻,然后放置在冷块。转移5μl的RNA的含有45μl反应混合液每个PCR管中,得到的50微升的最终体积。立即将剩余的RNA样品到-80℃的冰箱中。
    2. 酶是经过dded到第一轮PCR主混合物( 表1A),等份加入45μl到每个薄壁PCR扩增管用于所需反应的数量。请务必使用PCR管与个别上限,而不是剥夺上限,以确保样本之间的最小交叉污染。将PCR管在寒冷的块,以保护对温度敏感的逆转录酶和RNA模板。注:样品应一式三份,以充分品尝病毒准种运行。同样重要的是,利用具有高保真DNA聚合酶酶的产物,以减少PCR引入的错误掺入。请参考试剂列表中推荐的产品。
    3. 后的RNA模板被添加到所有的反应管,转移PCR管,以热循环器使用表1B中描述的循环仪程序扩增。注:本扩增的产品将在第二轮巢式PCR使用。
  3. 执行嵌套SECOND轮PCR扩增后,使用1μl的第一轮PCR扩增(1.2)作为DNA模板。
    1. 等分试样49微升二轮PCR主混合物( 表2A)到每个薄壁PCR管中进行期望的反应的数量。传递来自第一轮PCR扩增到每个反应管加入1μl得到的50微升的最终体积。注意:这将作为模板DNA用于第二轮扩增。同样重要的是,利用DNA聚合酶具有很高的保真度和校对能力,以便最小化的PCR引入的错误掺入。请参考试剂列表中推荐的产品。
    2. 转让第二轮PCR反应混合物,以热循环和表2B描述运行程序。注意:该程序结束后,本反应的产物将在琼脂糖凝胶上运行,以确认生产产物。
  4. 添加3微升的5X样染料5µ微升50微升第二轮反应体积中,并在120伏上含有UV-DNA荧光染色在1%琼脂糖TAE凝胶上运行,直到带被解决。可视化在蓝色光照明1.6 kb的条带( 见图1A)。
  5. 运行包含的DNA染色1%琼脂糖凝胶TAE,其余45μl反应,并切除适当的波段用干净的刀片。
    1. 从用凝胶纯化试剂盒凝胶切片中提取DNA,洗脱在无核酸酶的水,结合每个个体三个正反应,并且在-20℃下以供后续使用冷冻产品。

2,准备堵嘴扩增子的克隆通过必要的限购站点简介

  1. 扩增的长末端重复序列(LTR)的MJ4质粒/ 5'非编码区部分( 见表3)。
  2. 可视化1.3 kb的PCR产物在照明,消费积极扩增,凝胶净化,冷冻如前上述(1.4,1.5, 见图1B)。
  3. 创建通过"剪接重叠延伸"稠MJ4 LTR- 的gag扩增PCR( 见表4)。
  4. 可视化,消费税,净化,并冻结了3.2 kb的扩增子在1.4,1.5(参见图1C)。

3,克隆扩增GAG基因导入MJ4,C ​​亚型,感染性分子克隆

  1. 消化1.5微克MJ4质粒和1.5μg的纯化LTR- 的gag PCR产物与在50℃下( 参见表5A)的BclI位(甲基化敏感)限制性内切酶进行1.5小时的。
  2. 加入1μlNgoMIV到消化反应并在37℃下反应1小时。
  3. 用于克隆添加5×上样染料,以限制酶消化反应而慢慢electrophorese上含有100伏形象化,附加的DNA凝胶染料1-2 hr的1%琼脂糖TAE凝胶的总体积,并纯化表示频带如先前降序进项税(参见图2)。
  4. 1插入到载体比例:用纯化LTR- 插科打诨插入和MJ4载体DNA在3准备连接反应。过夜孵育连接反应在4℃下( 见表5B)。
  5. 转化JM109化学感受态细菌用连接产物并涂布在LB琼脂平板上以100微克/毫升氨苄青霉素和生长在30℃下为22 +小时。
    1. 解冻JM109在冰上感受态细胞15分钟。标注的1.5 ml离心管和冰浴。
    2. 等分50-100微升JM109细胞的预冷的1.5 ml离心管中。添加2.5-5微升连接反应到JM109细胞,轻弹管轻轻混合,并立即返回到冰。孵育感受态细胞用连接产物在冰上30分钟。
    3. 热休克含有JM109感受态细胞,并在45秒的42℃的热块的连接反应,并返回到冰上至少3分钟的1.5 ml离心管中。
    4. 加入50微升SOC培养基中,以每个微量离心管和板的整个转化反应到补充有氨苄青霉素的100微克/毫升室温的LB-琼脂平板上。
    5. 转板至30℃培养箱中培养,并留下了20小时,或直至菌落明显形成。
  6. 挑分离的菌落并生长在4毫升的LB与100微克/毫升氨苄青霉素,于30℃为22 +小时。
  7. 降速的文化,在3200×g离心15分钟,倒出汤汁,并提取质粒DNA。
  8. 为了证实克隆保真度,切带NgoMIV高致病性禽流感限制性内切酶小量DNA的双消化在37℃2小时。在1%琼脂糖TAE凝胶分析( 见表5C)。
  9. 序列使用下面的引物每种质粒的LTR-GAG插入区域:GagInnerF1,GagF2,修订版1,Rev3型,和GagR6( 表6),以确认序列同一性。
  10. 比较与人口序列DER获得克隆序列从最初的纯化的扩增子ived从1.5.1。注:以最终评估两个独立的克隆的复制能力,以确保任何体外复制的表型不是由于在克隆过程中引入主链的错误是很重要的。

四代复制能力的Gag-MJ4嵌合病毒和滴定

  1. 所描述的王子等人 39比1 FUGENE高清:通过转1.5微克的嵌合MJ4小量提取质粒DNA导入使用4 293T细胞产生复制能力的病毒。
  2. 下面记载在王子等人 39滴度收获病毒储存于TZM-BL细胞。
    1. 板TZM-BL细胞感染病毒前24小时,以便有翌日30-40%汇合单层细胞。这通常可以通过在24孔板中加入5×10 4个细胞,每孔800微升的总体积来实现。
    2. 加入细胞的井后,轻轻移动24孔板前进和后退,然后一边以有效地分配单元到另一边。从未漩涡 - 这将导致细胞积聚在板的中心。
    3. 翌日,在DMEM中制备1%FBS;这将用于稀释的DEAE-葡聚糖和稀释的病毒种群。股票DEAE葡聚糖是10毫克/毫升或125X,和80微克/毫升或1个是期望的终浓度。
    4. 取出病毒原液可以从-80℃冷冻并置于测试在摇床上以在室温下解冻。
    5. 使用多道移液器,连续稀释病毒储存在一个圆底组织培养处理96孔板盖。这是一个3倍的稀释方案。 见表7的稀释方案。
    6. 使用真空吸引器,确保不打扰单层细胞接种TZM-BL 24孔板取出介质。一次只能从一个24孔板中取出介质,使细胞做不能干。
    7. 在DMEM混合物中添加150μl的1倍的DEAE-葡聚糖+ 1%FBS的用1000微升吸管每孔中。不要重复使用吸管,因为这破坏了单层。
    8. 加入150μl每种病毒稀释至适当的井。添加病毒到孔的中心和漩涡轻轻跨细胞单层均匀分布的病毒。培养感染的细胞2小时在组织培养培养箱中于37℃和5%CO 2。
    9. 2小时温育后,在DMEM中加入0.5毫升10%FBS至每孔,并返回板到培养箱另外48小时。
    10. 48小时后,细胞应该是100%汇合。因为MJ4是具有复制能力的病毒,会有一些细胞死亡,但是这是可以预料的。
    11. 从各取出介质好,加入400微升/孔固定溶液( 见表8A配方)。在固定的时间只有一个板块。添加使用1000微升吸管固定的解决方案,并让坐5分钟室温。
    12. 除去固定液,用PBS冲洗3次与 /镁离子 。使用喷瓶轻轻的PBS添加到井的一侧,以避免破坏单层。在第三次洗涤后,吸干板干上吸收纸。
    13. 加入400微升/孔的染色溶液( 见表8B为配方)到24孔板的每个孔中,并在37℃下进行至少2小时。较长的孵育时间是可以接受的,但温育时间应保持滴定实验之间保持一致。
    14. 2个洗净,用PBS与 /镁离子和得分感染,或加PBS中,并储存在4℃下得分后。板可保持在4℃下进行长达四天,只要该单层保持水合。
    15. 得分感染,使用永久性标记来划分的24孔板的孔中插入象限。算上所有的蓝色细胞的视场范围内,使用200X的总放大倍率,曾经在每四个象限的阱。
    16. 计算每微升感染单位如下:[(#蓝色细胞/ 4)×67] /(微升加病毒)=国际单位/微升。参考表8C为在微升病毒加入到各孔的体积。平均多口井在一起;这些数字应该是准确滴定比较相似。

5,准备文化传媒和GXR25细胞繁殖的体外复制检测

  1. 准备完全RPMI(cRPMI)为GXR25细胞的繁殖。注:这是文化GXR25细胞的复制计划实验至少4个月前极为重要的( 见表9)。
  2. 分裂细胞1时10每周两次,并维持细胞密度细胞/ ml之间的1×10 5〜2×10 6。

6, 加格-MJ4嵌合体的GXR25(CEM-CCR5-GFP)的体外复制细胞

  1. 在我以前的日子nfection,分裂细胞的浓度之间的2-3×10 5个细胞/ ml,使它们在对感染的天数增殖。
  2. 在感染当天,从-80删除病毒的股票℃的冰柜和解冻。计算从每个股票需要病毒的基础上从TZM-BL细胞测定中的国际单位/微升滴度的体积,以便感染5×10 5个GXR25细胞以0.05的感染复数,使用下式:
    病毒量感染(微升)= 1μL/ X IU×0.05点¯x500000
    注:我们选择0.05的教学语言,因为这会导致对数生长期为所有我们所测试的病毒。它,以便确定最佳的MOI捕获数增殖的病毒进行试验进行初步的实验是非常重要的。
  3. 稀释病毒cRPMI到100微升的体积(为了达到0.05 MOI),并添加到一个V形底组织培养的良好待遇96孔板。注:同时包括positi已经(MJ4 WT感染)和一负(模拟感染的细胞)控制每一组的复制实验。设置板,使得每隔一列是空白的,以限制孔之间的交叉污染。阳性对照是必要的,因为这将在后面为标准用于标准化复制的斜坡,这是实验重复的复制率的措施。
  4. 算使用自动细胞计数器GXR25细胞。计算需要的总的所有感染(5×10 5×#感染)的细胞数。分装至所需体积到50ml锥形管中并离心以沉淀细胞。 25%以上的感染性总是需要计算。
  5. 小心吸媒体和重悬在cRPMI在5×10 5细胞/ 100微升的浓度。
  6. 吸取细胞进入无菌槽调匀。使用多道移液器,添加100μl的细胞进入96孔板包含经稀释的病毒的各孔中。弥点¯x彻底。
  7. 加入2微升的聚凝胺的5毫克/毫升(100倍)的溶液,以每孔中并彻底混合细胞。
  8. 孵育于37℃在组织培养箱中,用5%CO 2下3小时。
  9. 为了洗感染的细胞,离心分离96孔V型底板,以沉淀细胞。然后小心地取出150μl的培养基,并用新鲜的150微升cRPMI的更换而不干扰细胞沉淀。重复2次以上(包括离心分离),以充分地洗涤细胞。
  10. 最后的离心和加入150微升cRPMI后,重悬细胞沉淀用多道移液器,并从各孔中分别以800微升cRPMI在24孔组织的阱加上整个细胞/病毒混合物(约200微升)培养板。
  11. 地方板在5%CO 2的组织培养箱中于37℃。
  12. 每两天,从文化的表面除去100微升上清良好,转移到96孔U汉字板和存储冷冻在-80°C,直到运行病毒定量检测。注:在96孔板中的上清液仔细安排将允许培养物上清液中的病毒粒子的定量通过放射标记的逆转录酶(RT)下测定多通道移液器转移。每块板应包含以标准化的实时检测读数板间的变化,从感染的标准样品。
  13. 后取出,每100微升的样品,拆分单元​​格1:通过充分重悬细胞2和去除一半的剩余量(450微升)的。通过加入550微升新鲜cRPMI到每个孔中恢复原始体积(1ml)中。

逆转录酶的7分析(RT)在细胞培养上清液中

改编自奥斯特洛夫斯基 40协议。

  1. 建立生物安全罩在BSL-3设施与放射性材料的使用。
    1. 发生在胡胡吸水纸为吸引研发和取代吸气指定的放射性使用。注:所有放射性废物必须按照安全规定妥善处置。
  2. 加1-2微升[α-33 P] dTTP的10毫居里/毫升和4微升的1M二硫苏糖醇(DTT)以每次1毫升一份RT主混合物( 参见表10和的Ostrowski 等人 40)。
  3. 精心搭配RT预混液,DTT和[α-33 P] dTTP与每次1.5 ml离心管1000微升吸并转移到一个无菌的低谷。
  4. 分配25μl的标记RT的混合进96孔的薄壁PCR板各孔中。注:包括阳性对照(MJ4 WT感染)和阴性对照(模拟感染)的空间。
  5. 加入5μl的每种上清液含有该RT主混合物的PCR板。
  6. 密封PCR板用胶粘剂电化铝盖,并在热循环孵育2小时,在37℃。为安全起见,RINSE枪头与Amphyl与处置在小容器中含有的提示Amphyl浪费,这将在后面的放射性废物进行处置。
  7. 温育后,用200μl的多通道移液器使在箔覆盖的小孔。注意:如果枪头触及液体好,移动到下一列或行前更换提示。
  8. 混合样品的5倍,并转移5μl的各样品的DE-81上的纸张。空气干燥10分钟。
  9. 洗涤印迹5倍用1×SSC(氯化钠,柠檬酸钠),然后2倍与90%乙醇中,在每次洗涤5分钟。风干。
    1. 放置在一个单独的洗涤容器,每一个印迹,如夹层储物盒,补充足够的洗涤缓冲液(1×SSC或90%乙醇),以支付印迹,振摇5分钟。
    2. 倒掉洗涤缓冲液成单独的容器中,然后重复。注意:第3次洗涤被认为是放射性的,应妥善处理。最后2清洗液会定期处理。
  10. 一旦干燥,车efully包装印迹的保鲜膜,并暴露在phosphoscreen在一个密封的纸盒在室温下过夜。
  11. 分析phosphoscreens与phosphorimager和量化放射性成绩单。
  12. 周围绘制使用OptiQuant软件的每个放射性信号的圆。图中的数字光单元(DLU)值来生成复制曲线。
  13. 为了生成复制能力分数,DLU值分别记录10 -转化和使用第2天,第4和6的时间点,计算斜率。复制斜坡,然后由WT MJ4的斜率,以产生复制能力的分数分频。重要的是根据从同一RT板得到降低批内变异性的MJ4 WT值正常化。

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结果

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为了正确地执行该协议,该协议创建能够组装功能齐全的,传染性的Gag-MJ4嵌合体的前病毒质粒,伟大必须小心,以生成适当的PCR扩增子。确定PCR是否已经生成的适当大小的gag扩增子是关键的。产品应在图1A中所示的大约1700碱基对的扩增子的100个碱基对(bp)。这个片段的确切长度将取决于所研究的gag基因的不同而不同。接着,MJ4分子克隆的5'长末端重复序列(LTR)部分必须被放大,并接合到在gag的扩增子,以使其适合于随后的克隆。该MJ4 LTR扩增应该是1,474 bp的长度。 图1B显示了其正确的波段大小表示代表凝胶图像。后剪接重叠延伸PCR 41,结合LTR- 的gag产品应大约3200 bp的长度,如在图1C中示出。

一旦gag基因已适于克隆融合到5'端LTR从MJ4,其中包含必要的NgoMIV限制性位点,这两个矢量和gag刀片必须被消化的N...

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讨论

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由于长度和这个协议的技术性质,有几个步骤,这对嵌合的Gag-MJ4质粒均构建成功以及对病毒复制的能力的定量的关键。虽然限制性内切酶克隆的策略引进国外GAG基因导入MJ4本协议所列拥有超过以前使用重组为基础的方法具有许多优点,该协议可以是技术上的挑战,如果不采取关键步骤精确。

首先,这是绝对必要的使用已在主管菌株缺乏DCM和大坝的DNA甲基化酶生成MJ4质粒DNA。这是必要的,因为BclⅠ限制核酸内切酶,它是用于克隆的gag基因导入MJ4骨干的酶活性,是水坝/ DCM甲基化敏感性。该JM110和SCS110(一恩达负JM110衍生物) 大肠杆菌大肠杆菌菌株重新适于产生非甲基化MJ4质粒DNA。此外,对于载体和插入带的切除,强烈建议在蓝光照射可用于可视化。这将减少紫外线波长依赖性的DNA损伤,并大幅度提高克隆效率。如果蓝光照明不可用,克隆效率可以通过可视化的DNA以SYBR Safe DNA琼脂糖凝胶染色代替溴化乙锭,并尽量减少紫外线照射的时间最大化。

最后,分子克隆与大(&g...

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披露

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作者没有什么可透露的。

致谢

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研究人员感谢赞比亚所有参与这项研究的志愿者,以及卢萨卡赞比亚埃默里艾滋病毒研究项目的所有工作人员,他们使这项研究成为可能。研究人员要感谢 Jon Allen、Smita Chavan 和 Mackenzie Hurlston 提供的技术援助和样本管理。我们还要感谢 Mark Brockman 博士的讨论和对 GXR25 细胞的慷慨捐赠。

这项研究由 R01 AI64060 和 R37 AI51231 (EH) 以及国际艾滋病疫苗倡议资助。这项工作在一定程度上要归功于美国人民通过美国国际开发署 (USAID) 的慷慨支持。内容由研究作者负责,不一定反映美国国际开发署或美国政府的观点。这项工作还部分得到了埃默里艾滋病研究中心病毒学核心 (Grant P30 AI050409) 的支持。DC 和 JP 部分得到了 Action Cycling Fellowships 的支持。 这项工作部分得到了 Yerkes 国家灵长类动物研究中心基础赠款 (2P51RR000165-51) 的支持。该项目也部分由国家研究资源中心 P51RR165 资助,目前由研究基础设施计划办公室/OD P51OD11132 提供支持。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
PCR 试剂
GOF: 5' ATTTGACTAGCGGAGGCTAGAA 3'IDTDNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
VifOR:5' TTCTACGGAGACTCCATGACCC 3'IDTDNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
GagInnerF1:5' AGGCTAGAAGGAGAGAGATG 3'IDTDNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
BclIDegRev2:5' AGTATTTGATCATAYTGYYTYACTTTR 3'IDTDNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
MJ4For1b:5' CGAAATCGGCAAAATCCC 3'IDTDNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
MJ4Rev:5' CCCATCTCTCTCCTTCTAGC 3'IDTDNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
BclIRev:5' TCTATAAGTATTTGATCATACTGTCTT 3'IDT DNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
GagF2:5' GGGACATCAAGCAGCCAT 3'IDTDNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
For3:5' CTAGGAAAAAGGGCTGTTGGAAATG 3'IDTDNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
GagR6:5' CTGTATCATCTGCTCCTG 3'IDTDNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
Rev3: 5' GACAGGGCTATACATTCTTACTAT3'IDT DNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
Rev1: 5' AATTTTTCCAGCTCCCTGCTTGCCCA 3'IDTDNA定制寡核苷酸25 nmol,标准脱盐
CoolRack PCR 96 XTBiocisionBCS-529
CoolRack M15BiocisionBCS-125
无核酸酶水FisherSH30538FS由 Hyclone 生产
QIAamp 病毒 RNA 小量试剂盒Qiagen52906
Simport PCR 8 联排管,蓝色(平盖)DaiggerEF3647BX
SuperScript III 一步法 RT-PCR 系统Life Technologies/Invitrogen12574035
Phusion 热启动 II DNA 聚合酶FisherF-549L
PCR 核苷酸混合Roche4638956001
琼脂糖、高凝胶强度Fisher50-213-128
TAE 10XLife Technologies/InvitrogenAM9869
Promega 1 kb DNA 分子量标准FisherPRG5711由 Promega
Sybr 安全 DNA 凝胶染料、10,000xLife Technologies/InvitrogenS33102
Wizard SV 凝胶和PCR 纯化系统PromegaA9282
剃须刀片,单刃Fisher12-640由 Surgical Design
Thermocycler 制造,PTC-200MJ Research
微生物学 &克隆试剂
LB琼脂、MillerFisherBP1425-2
LB肉汤、LennoxFisherBP1427-2
100 x 15 mm聚苯乙烯培养皿Fisher08-757-12
苄青霉素钠盐Sigma-AldrichA9518-5G
Falcon,14 ml聚丙烯圆底管BD Biosciences
NgoMIV 限制性核酸内切酶New England BioLabsR0564L
BclI 限制性核酸内切酶New England BioLabsR0160L
HpaI 限制性核酸内切酶New England BioLabsR0105L
T4 DNA 连接酶,5 U/μlRoche10799009001
JM109 感受态细胞,>108 cfu/μgPromegaL2001
PureYield 质粒小量制备系统PromegaA1222
安全成像仪 2.0 蓝光透射仪InvitrogenG6600
微量离心机 18 离心机贝克曼库尔特367160
细胞培养试剂
Amphyl 清洁剂/消毒剂Fisher22-030-394
Fugene HD,1 mlVWRPAE2311Promega 生产
溴化己二甲铵(聚凝胺)Sigma-AldrichH9268-5G
Costar 板,6 孔,扁平Fisher07-200-83康宁生命制造
Costar 板,24 孔,扁平Fisher07-200-84宁生命制造
Costar 板,96 孔,圆形Fisher07-200-95由 Corning Life
培养瓶制造,康宁过滤器顶部/斜颈,75 cm2Fisher10-126-37
培养瓶,康宁过滤器顶部/斜颈,150 cm2Fisher10-126-34由 Corning Life
锥形管制造,50 ml,蓝色瓶盖Fisher14-432-22由 BD Biosciences 锥形
管制造,15 ml,蓝色瓶盖Fisher14-959-70C由 BD Biosciences 制造
胰蛋白酶-EDTAFisherMT25052CI由 Mediatech
RPMI 制造,500 mlLife Technologies/Invitrogen11875-119
DMEM,500 mlLife Technologies/Invitrogen11965-118
青霉素/链霉素/谷氨酰胺,100xLife Technologies/Invitrogen10378-016
PBS,含镁和钙,500 mlLife Technologies/Invitrogen14040-133
PBS,不含镁和钙Life Technologies/Invitrogen20012-050
Sarstedt 管,各种颜色Sarstedt72.694.996
储液槽托盘多通道,55 mlFisher13-681-501
DEAE-葡聚糖FisherNC9691007
康宁 96 孔透明 V 型底组织培养处理微孔板Fisher07-200-96康宁 Life HEPES
制造,1 M 缓冲溶液Life Technologies/Invitrogen15630-080
FBS,成分型,500 mlFisherSH30070 03
X-galVWRPAV3941由 Promega
Glutaraldehyde 制造,II 级,25% 的 H2OSigma-AldrichG6257-100ML
1 M 氯化镁溶液Sigma-AldrichM1028-100ML
甲醛溶液,用于分子生物学,36.5%Sigma-AldrichF8775-500ML
钾六氰基铁酸盐 (II) 三水合Sigma-AldrichP9387-100G
六氰基铁酸钾(III)Sigma-AldrichP8131-100G
Allegra X15-R 离心机贝克曼库尔特392932
TC10 自动细胞计数仪Bio-Rad1450001
VistaVision 倒置显微镜VWR
逆转录酶定量检测试剂
dTTP,[α-33P]- 3000 Ci/mmol,10 mCi/ml,1 mCiPerkin-ElmerNEG605H001MC
1 M Tris-Cl,pH 值 8.0Life Technologies/Invitrogen15568025必须用 KOH 将 pH 值调节至 7.8
2 M 氯化钾 (KCl)Life Technologies/InvitrogenAM9640GAdjust至 1 M 溶液
0.5 M EDTALife Technologies/Invitrogen15575-020
Nonidet P40Roche11333941103
聚腺苷酸 (Poly rA) 钾盐 Midland Reagent Co. 米德兰试剂公司P-3001
寡核苷酸 d(T) 引物Life Technologies/Invitrogen18418-012
二硫苏糖醇 (DTT)Sigma-Aldrich43815-1G
SR,超分辨率荧光屏,小Perkin-Elmer7001485
康宁 Costar 热电偶套管 96 孔板模型 (M) 聚碳酸酯Fisher07-200-245康宁人寿制造
康宁 96 孔微孔板铝密封胶带,非无菌Fisher07-200-684由 Corning Life 制造
DE-81 阴离子交换纸Whatman3658-915
柠檬酸三钠二水合物Sigma-AldrichS1804-1KG
氯化钠FisherS671-3
放射自显影盒FisherFB-CA-810
旋风储存磷光屏Packard
无菌氨,352059 康物

参考文献

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