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方法文章

新型声带生物反应器的构建与表征

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DOI：

10.3791/51594

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2014年8月1日

 ,  ,  , 
1Biomedical Engineering Program, University of Delaware, 2Department of Materials Science and Engineering, Delaware Biotechnology Institute, University of Delaware

本文内容

摘要

一种新型声带生物反应器被构建并表征，该反应器能够向培养细胞施加生理相关的振动刺激。该动态培养装置与纤维状聚（ε-己内酯）支架构建出一种模拟声带的微环境，可调控间充质干细胞的行为。

摘要

体外 构建力学活性组织需要向培养细胞提供符合生理条件的力学环境。为模拟声带的动态环境，本研究设计并表征了一种新型声带生物反应器，该装置能够产生基频发声频率范围内的振动刺激。该设备由信号发生器、功率放大器、扬声器选择器以及多个并联的振动腔室组成。每个振动腔室通过将定制的硅胶膜夹在一对丙烯酸块之间而构成。该硅胶膜不仅作为腔室的底部，还提供了固定细胞接种支架的机制。安装在底部丙烯酸块下方的扬声器产生的振动信号，通过振荡气流以空气动力学方式传递至膜结构。八个相同的振动模块固定在两根静止的金属杆上，并置于防潮密闭箱内，以确保在细胞培养孵育箱中长期稳定运行。采用激光多普勒测振仪（LDV）对声带生物反应器的振动特性进行无损分析。通过在200 Hz正弦振动、膜中心位移为40 µm的条件下培养细胞构建物，验证了该动态培养装置的功能。间充质干细胞在生物反应器中对振动信号产生响应，改变与声带相关的细胞外基质成分的合成与降解。本文所介绍的新型生物反应器系统提供了一个优异的 体外 用于研究振动诱导的机械转导以及功能性声带组织工程的平台。

引言

人类声带由上皮层、固有层（LP）和声带肌组成，是一种特殊的软组织，可将来自肺部的气流转化为声波以产生声音。1 在正常发声过程中，声带会规律性地振动，其应变可达30%，基频范围为100–300 Hz。2 成人声带固有层为一种梯度结构，由浅层（SLP）、中层（ILP）和深层（DLP）组成。进一步的分类将上皮层和浅层固有层归为黏膜层，而将中层与深层固有层合并为声带韧带。3 浅层固有层主要包含无定形基质及稀疏分布的胶原纤维，而声带韧带则富含成熟的胶原纤维和弹性纤维，以提供足够的强度。4 新生儿声带的结构与力学特性与其成熟状态存在显著差异。尽管调控声带发育与成熟的具体机制尚未完全阐明，但实验证据已表明发声所引起的机械应力在其中起着决定性作用。

多种医学状况，包括发声滥用、感染、化学刺激物以及外科手术，均可能损伤声带。据估计，声带疾病影响了美国3%至9%的人口。目前对声带疾病的治疗方法有限5，而基于干细胞的组织工程技术已成为恢复声带功能的一种有前景的策略。间充质干细胞（MSCs）是声带组织工程中替代原代声带成纤维细胞的合适选择6-9。干细胞命运的决定及其后续的组织发育受到其所处特定微环境的调控，其中力学条件是一个关键因素10。机械力是组织形态发生和稳态的重要调节因子，尤其对于经常承受机械负荷的组织而言更是如此11。从组织工程的角度来看，已有研究表明，暴露于生理相关的机械刺激可促进干细胞分化及组织特异性基质重塑12-15。

组织培养生物反应器旨在模拟细胞或组织体外生长所需的生理环境。in vitro。在声带组织工程中，尤其关键的是重建发声时声带的力学环境。理想的声带生物反应器应能有效向培养细胞传递振动刺激，并便于精确控制振动的频率、振幅和持续时间。Titze 及其同事设计了一种声带生物反应器（T1 生物反应器）16，该装置结合静态拉伸与高频（20–200 Hz）振荡，以促进细胞合成基质蛋白。利用该生物反应器，Webb 及其同事17研究了在透明质酸（HA）水凝胶中培养的真皮成纤维细胞在连续10天、100 Hz振动下的反应。与静态对照组相比，接受振动刺激的构建物表现出更高的透明质酸合成酶-2（HAS2）、decorin、fibromodulin 和基质金属蛋白酶-1（MMP1）的表达水平。这些促进效应具有时间依赖性。最近，我们课题组18构建了一种声带生物反应器（J1 生物反应器），该系统由功率放大器、信号发生器、封闭式扬声器以及一个环向固定的硅胶膜组成，通过振荡气流将机械振动传递至附着其上的细胞。在J1生物反应器中培养的新生儿包皮成纤维细胞分别接受了60 Hz、110 Hz或300 Hz频率、持续1小时的振动刺激，平面应变最高达0.05%。qPCR结果表明，不同振动频率和振幅可适度调节部分细胞外基质（ECM）基因的表达水平。

这些生物反应器设计虽然引人关注，但仍存在若干局限性。例如，T1 系统需要大量连接件和机械耦合杆，限制了可达到的最高频率。此外，细胞可能受到不必要的机械搅动和流体扰动，从而增加数据解读的复杂性。而 J1 生物反应器的能量转换效率相对较低，且操作不够便捷。另外，振动常常会导致负载细胞的构建物从底层硅胶膜上脱落。本文报道的 J2 声带生物反应器基于与 J1 相同的设计原理，但在一致性和可重复性方面进行了优化。模拟发声的振动通过空气动力学方式在独立适配的振动腔室内产生，其中负载间充质干细胞（MSC）的纤维状聚（ε-己内酯）（PCL）支架被有效固定。激光多普勒测振仪（LDV）可让用户验证膜/支架组件的振动特性。在本研究的示例中，MSCs 每日接受 200 Hz 正弦振动，采用 1 小时开启、1 小时关闭（OF）的模式，累计振动 12 小时，持续 7 天。对细胞响应所施加振动信号的情况进行了系统性研究。总体而言，J2 声带生物反应器具备最优良的用户友好特性，可实现高通量、可重复的动态细胞培养研究。

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方案

1. 生物反应器组装（视频 1）

  1. 使用预先确定内径和外径的铝制模具（圆形冲模 + 间隔销）（图 1）。
  2. 利用步骤1.1中的模具，使用市售硅胶弹性体试剂盒制备一片硅胶膜（直径：42 mm，厚度：1.5 mm，图 1），膜中央带有一个嵌入式套管（直径：12 mm，厚度约0.25 mm，由图1中的间隔销成型）。
  3. 制作一对丙烯酸块（图 2（4, 5）），中间设有圆形开口（直径：24 mm），并在顶部块体（厚1.8 cm）和底部块体（厚0.9 cm）上雕刻相互匹配的凸脊与凹槽。10
  4. 将硅胶膜夹在成对的丙烯酸块之间，使用设定为恒定扭矩（35 cN·m）的微型扭矩螺丝刀通过四个角上的螺丝固定组件。由此形成一个密封的振动腔，宽度为24 mm，深度为18 mm（图 2C）。
  5. 通过底部丙烯酸块上的另一组角螺丝，将一个3” 扩展范围迷你低音扬声器（图 2D，8 Ω/20 W）安装在振动腔下方。至此，单个振动模块组装完成。
  6. 再复制七个相同的振动模块。将其中四个模块固定在两条固定的铝条（40 cm × 10 cm × 2.5 cm）之一上，方法是将扬声器底座插入铝条上等距分布的圆形孔（直径：7 cm，厚度：2 cm）中。通过从铝条侧面插入螺丝进入每个圆形孔，以固定每个扬声器。
  7. 通过扬声器选择器独立控制各个扬声器。将各扬声器的正负输入端通过导线连接至选择器对应的输出端。扬声器选择器可将信号发生器输出的信号经功率放大器放大后，同时传输至全部八个扬声器（图 2E）。
  8. 将两个腔体阵列、扬声器选择器及相关电子元件置于防潮外壳中，并将整个装置放置于商用细胞培养孵育箱内。
  9. 将连接功率放大器与扬声器选择器的主电缆通过医用级PVC管，穿过孵育箱后部的过滤组件引入箱内。

2. 支架的制备与表征

  1. 将PCL颗粒溶解于氯仿中，配制成15 wt%的溶液。将该溶液装入一个带有21 G钝头针头的10 ml注射器中。
  2. 将注射器固定在可编程的注射泵上，并将流速设定为1 ml/hr。
  3. 将覆盖有铝箔的收集器水平放置于针头正对面，针尖与收集器之间的距离约为18 cm。
  4. 将正极鳄鱼夹夹在针头中部，接地鳄鱼夹夹在铝制收集器上，然后将高压电源的电压设定为15 kV。注意：高压危险，请勿靠近针头。
  5. 依次开启注射泵和电源；在稳定纤维射流和泰勒锥19形成之前，迅速用干燥的纸巾清洁或去除针尖周围的残留聚合物溶液。
  6. 使纤维在铝制收集器上积累至厚度约为250–300 µm（在当前纺丝条件下约需7小时）。将所得支架置于真空干燥器中保存1–2天，以去除任何残留溶剂。
  7. 对经溅射镀金处理的支架进行扫描电子显微镜成像，以显示一致的纤维形貌。10

3. 生物反应器组装与表征

  1. 从制备好的PCL膜上冲压出一个带四个臂的圆柱形圆盘（直径：8 mm，臂长：2 mm）图 2A) 首先使用直径为12 mm的活检打孔器切割圆盘的外缘。然后使用第二个8 mm的活检打孔器，在圆形刀片周围均匀制作四个长度为2 mm的切口，以标记出臂部将要切割的位置。用8 mm打孔器刻痕后，使用手术刀片将臂部边缘向外切割。将支架插入硅胶膜的凹槽中 通过 伸展手臂（视频1）。使用平头镊子轻轻按压表面，将植入的支架压平。
  2. 将一小片薄铝箔（8 mm × 2 mm，正交形状） 图 2B) 涂覆于PCL支架上以辅助激光反射。
  3. 将组装好的硅胶膜/PCL支架（详见步骤1.4）固定在振动室中。向振动室内加入1.5 ml水，以在振动前充分润湿PCL支架。
  4. 使用函数发生器引入振动信号（例如， 将峰峰值电压（Vpp）为 0.1 V 的 200 Hz 正弦波施加到夹层丙烯酸腔室。使用电压表精确测量每个扬声器输入端的电压。注意：函数发生器显示的 Vpp 读数将不同于实际输送至扬声器的电压。
  5. 组装单点激光多普勒测振仪，并将光纤激光传感器探头固定在云台三脚架上。调整传感器探头角度，使其垂直指向桌面。通过同轴电缆将激光多普勒测振仪传感器探头连接至数据采集模块，再通过USB线将模块连接至笔记本电脑。
  6. 将激光束垂直聚焦于硅胶膜上各个预设的位置图 2B 和 图 3).
  7. 使用数据采集软件记录膜中心位移。从“选项”菜单中点击“采集设置”，然后将测量模式更改为“FFT”。接着，点击主工具栏中的“连续测量”，然后点击在选定频率处形成的峰值图 6D以记录位移。
  8. 绘制正常中膜位移（w0) 作为基底上相对位置的函数。使用 Origin 8.5 数据分析软件构建表面振动特性的三维色谱图。

4. 振动式细胞培养

  1. 在T150组织培养瓶中传代培养人骨髓来源的MSCs，初始接种密度为4,000–5,000个细胞/cm²2 在MSC维持培养基中。
  2. 细胞培养 7-8 天后（至约 85% 汇合度），使用细胞解离试剂（如 accutase）对细胞进行消化，用血细胞计数板计数，离心（440 × g，5 分钟），并将细胞沉淀重悬于新鲜的 MSC 维持培养基中，细胞浓度为 4.5 × 10⁴6 cells/ml
  3. 将PCL支架浸入70%乙醇中过夜。待溶剂挥发后，将支架两侧暴露于杀菌紫外光（254 nm）下照射5–8分钟。
  4. 将PCL支架浸泡于20 µg/ml的纤连蛋白溶液中，37 °C孵育1小时。将涂覆纤连蛋白的支架插入硅胶膜中。按照步骤1所述组装生物反应器。
  5. 将40 µl细胞悬液均匀分布在固定的PCL支架上。在振动室中加入额外的1.5 ml新鲜培养基之前，让细胞贴壁1-1.5小时。
  6. 将负载MSC的PCL支架进行静态培养3天，静态培养结束后更换培养基。
  7. 对细胞构建物施加选定的振动模式。注意：例如，细胞在200 Hz频率下接受1小时开启、1小时关闭（OF）的振动，振幅为w0 每天振动刺激约40 μm，持续12小时，最多7天。接受振动刺激的样品标记为Vib组，而在相同振动室中静态培养的样品作为静态对照组（Stat）。

5. 生物学评价

  1. 每隔一天（第1、3、5和7天）从每个培养室收集200 µl细胞培养基，并将同一样本的各次收集液合并（每份共800 µl）。
  2. 分别使用MMP1 ELISA开发试剂盒和透明质酸竞争性ELISA试剂盒，按照制造商提供的操作步骤定量检测基质金属蛋白酶-1（MMP1）和透明质酸（HA）的细胞生成量。同时，根据先前报道的ELISA方法检测可溶性弹性蛋白前体的生成量。8
  3. 在第7天完成最后一次振动循环后，立即使用尖头镊子将细胞构建物从振动室中取出，并用预冷的磷酸盐缓冲液（PBS，4 °C）短暂冲洗。
  4. 进行活/死细胞染色时，将构建物在室温下同时与碘化丙啶（1:2,000 PBS稀释）和Syto-13（1:1,000 PBS稀释）孵育5分钟。使用多光子共聚焦显微镜对染色后的构建物进行成像。
  5. 另取经PBS冲洗的细胞构建物，迅速在干冰上冷冻，随后按照先前报道的方法提取总细胞RNA用于基因分析。9
  6. 使用紫外-可见分光光度计检测所提取RNA的浓度和纯度。选择A260/A280和A260/A230比值在1.8–2.2之间的RNA样本用于后续qPCR分析。
  7. 使用市售的逆转录试剂盒将RNA（500 ng/样本）逆转录为cDNA。
  8. 采用市售的PCR预混液，在实时荧光定量检测系统上进行PCR反应，操作步骤依据先前详细描述的方法进行。8
  9. 使用商业化的qPCR数据分析软件分析结果。为确保数据分析的可靠性，选用多个参考基因（YWHAZ、TBP、PPIA）作为内参对照，并考虑特异性引物扩增效率的差异。8

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结果

通过静电纺丝制备的PCL支架含有微米级的间隙孔，纤维随机缠结，平均直径为4.7 µm（图4A）。在更高放大倍数下，可在单根纤维上观察到纳米级的沟槽和孔隙（图4B）。用纤连蛋白包被支架可提高其亲水性，并促进细胞在PCL支架上的初始黏附与铺展（未发表观察结果）。

具有所需频率的正弦波形（f, 100-300 Hz）和电压（Vpp：0-0.125 V）施加到每个振动腔下方的扬声器，驱动硅胶膜底部与微型低音扬声器纸盆之间的封闭空气产生振荡。该空气振荡传递至含或不含细胞的PCL支架。采用LDV分析支架在特定条件下的振动特性 f 并考虑水的折射率（1.33）对Vpp的影响。20 图 5 显示法向位移（w0) 作为 Vpp 的函数，在 PCL 支架中心处 和 f振动频率的选择旨在反映人类语音的基本频率。21 w 之间存在线性关系0 且...

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讨论

成功构建功能性声带组织 体外 需要重建类似声带的微环境，以调控多能细胞的行为。通常认为，组织或器官的结构反映了其所需执行的功能。22 对于声带组织，发声过程中产生的高频振动被认为对组织成熟具有重要作用。在本研究中，采用聚己内酯（PCL）支架以提供类似韧带的结构支撑，同时设计声带生物反应器，用于向培养的间充质干细胞（MSCs）施加生理相关的机械信号。本文所述的生物反应器（J2）通过独立的扬声器以电磁方式产生振动，并通过空气动力学方式将能量传递至培养的细胞。与我们之前的设计相比，18 当前系统将振动刺激源直接移至每个样品孔下方，从而实现了更高效的能量转换。因此，使用当前系统可获得显著更大的法向位移和更高的加速度。模块化设计还最大限度地减少了不同振动腔室之间的系统差异和机械干扰。

我们的设计依赖于硅胶膜来传递振动信号，因此保持膜的完整性和均匀性至关重要。将前驱体溶液倒入铝制模具后，可通过移动玻璃片刮过模具表面，以去除多余的液体。通过降低固化温度并延长固化时间，可制备出无夹杂气泡的一致性膜。此外，可使用70%乙...

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披露

不存在竞争性财务利益。

致谢

我们感谢 Jeffrey Caplan 博士在共聚焦成像方面的培训与指导。同时感谢 Keck 电子显微镜实验室及 Chaoying Ni 博士在扫描电镜方面的协助。本研究由美国国立卫生研究院（NIDCD，R01DC008965 和 R01DC011377）资助。ABZ 感谢美国国家科学基金会整合型研究生教育 & 研究培训计划（IGERT）项目提供的资助。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
硅胶弹性体试剂盒Dow CorningSylgard 184在 100 °C 下固化膜 2 小时
PCLSigma Aldrich440744-500GMn ~80 kDa，过夜溶解
氯仿Sigma AldrichC7559-5VL
人骨髓来源间充质干细胞（MSCs）LonzaPT-2501第 2 代传代后接收
MSC 维持培养基LonzaPT-3001基础培养基中含 10% FBS，并补充
L-谷氨酰胺、庆大霉素和两性霉素
细胞解离试剂 AccutaseLife TechnologiesA11105-01
乙醇Sigma AldrichE7023-500ML
纤维连接蛋白Sigma AldrichF2006-1MG
MMP1 DuoSet ELISA 试剂盒R&D systemsDY901
透明质酸（HA）ELISA 试剂盒Echelon Biosciences K-1200  
PBSLife Technologies14190-136
碘化丙啶 Life TechnologiesP1304MP
Syto-13 Life TechnologiesS7575
QuantiTect 反转录试剂盒 Qiagen205311
SYBR Green PCR 主混合液Life Technologies4309155
替换扬声器DAYTON audio
（通过 Parts Express）		DS90-8纸锥，全频段（80–13,000 Hz），85 dB
Ergo 微扭矩螺丝刀Mountz# 020377扭矩范围：20–120 cN·m
立体声扬声器选择器RadioShack40-244最大功率承载 50 W
函数发生器 Agilent 33220A频率范围：1 µHz–20 MHz
功率放大器 PYLE audioPylePro PT2400频率响应：10 Hz–50 kHz，双扬声器
通道
细胞培养箱 Thermo Fisher Steri-Cult 3307
注射泵 New Era Pump SystemsNE-300
高压电源SpellmanCZE 1000R输出电压：0–30 kV
扫描电子显微镜 JEOL-USAJSM-7400F
台式金溅射镀膜仪Denton VacuumDSK00V-0013
多普勒激光测振仪 PolytecPDV-100非接触式速度测量（0–22 kHz）
PCR 序列检测系统 Applied BiosystemsABI7300
多光子共聚焦显微镜ZeissZeiss 510Meta NLO
紫外-可见分光光度计 NanoDrop Products
通过 Thermo Scientific		ND-2000
VibSoft 数据采集软件Polytec采集带宽最高达 40 MHz
Origin 8.5 数据分析软件 OriginLab
qbasePlus qPCR 数据分析软件 BiogazelleV2.3
铝合金 McMaster-CarrAlloy 6061
丙烯酸块McMaster-Carr
聚碳酸酯防潮培养室McMaster-Carr抗冲击 聚碳酸酯
螺丝 McMaster-Carr
电子电缆/导线
医用级 PVC 管US Plastic Corp.Tygon S-50-HL透明，生物相容性
10 ml 注射器 Becton Dickinson309604
21 G 钝头针Small PartsNE-213PL-251-1/2" 长度
鳄鱼夹适配器 RadioShack270-354完全绝缘
8 mm 活检打孔器Sklar 外科器械96-1152无菌，一次性使用
12 mm 活检打孔器Acuderm（通过 Fisher Scientific）NC9998681
组织培养瓶Corning细胞培养处理

参考文献

  1. Titze, I. R. Mechanical-Stress in Phonation. J. Voice. 8, 99-105 (1994).
  2. Titze, I. R. On the Relation Between Subglottal Pressure and Fundamental-Frequency in Phonation. J. Acoust. Soc. Am. 85, 901-906 (1989).
  3. Gray, S. D. Cellular physiology of the vocal folds. Otolaryngol. Clin. N. Am. 33, 679-698 (2000).
  4. Thibeault, S. L., Gray, S. D., Bless, D. M., Chan, R. W., Ford, C. N. Histologic and rheologic characterization of vocal fold scarring. J. Voice. 16, 96-104 (2002).
  5. Hansen, J. K., Thibeault, S. L. Current understanding and review of the literature: Vocal fold scarring. J. Voice. 20, 110-120 (2006).
  6. Pittenger, M. F., et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. 284, 143-147 (1999).
  7. Hanson, S. E., et al. Characterization of Mesenchymal Stem Cells From Human Vocal Fold Fibroblasts. Laryngoscope. 120, 546-551 (2010).
  8. Tong, Z., Duncan, R. L., Jia, X. Modulating the behaviors of mesenchymal stem cells via the combination of high-frequency vibratory stimulations and fibrous scaffolds. Tissue Eng. Part A. 19, 1862-1878 (2013).
  9. Tong, Z., Sant, S., Khademhosseini, A., Jia, X. Controlling the Fibroblastic Differentiation of Mesenchymal Stem Cells Via the Combination of Fibrous Scaffolds and Connective Tissue Growth Factor. Tissue Eng. Part A. 17, 2773-2785 (2011).
  10. Jones, D. L., Wagers, A. J. No place like home: anatomy and function of the stem cell niche. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 9, DOI. 11-21 (1038).
  11. Wang, J. H., Thampatty, B. P. Mechanobiology of Adult and Stem Cells. Int. Rev. of Cell Mol. Biol. 271, 301-346 (2008).
  12. Doroski, D. M., Levenston, M. E., Temenoff, J. S. Cyclic tensile culture promotes fibroblastic differentiation of marrow stromal cells encapsulated in poly (ethylene glycol)-based hydrogels. Tissue Eng. Part A. 16, 3457-3466 (2010).
  13. Kim, B. S., Nikolovski, J., Bonadio, J., Mooney, D. J. Cyclic mechanical strain regulates the development of engineered smooth muscle tissue. Nat. Biotechnol. 17, 979-983 (1999).
  14. Webb, K., et al. Cyclic strain increases fibroblast proliferation, matrix accumulation, and elastic modulus of fibroblast-seeded polyurethane constructs. J. Biomech. 39, 1136-1144 (2006).
  15. Kim, Y. J., Sah, R. L. Y., Grodzinsky, A. J., Plaas, A. H. K., Sandy, J. D. Mechanical Regulation of Cartilage Biosynthetic Behavior - Physical Stimuli. Arch. Biochem. Biophys. 311, 1-12 (1994).
  16. Titze, I. R., et al. Design and validation of a bioreactor for engineering vocal fold tissues under combined tensile and vibrational stresses. J. Biomech. 37, 1521-1529 (2004).
  17. Kutty, J. K., Webb, K. Vibration stimulates vocal mucosa-like matrix expression by hydrogel-encapsulated fibroblasts. J. Tissue Eng. Regen. Med. 4, 62-72 (2010).
  18. Farran, A. J. E., et al. Design and Characterization of a Dynamic Vibrational Culture System. J. Tissue Eng. Regen. Med. , (2011).
  19. Reneker, D. H., Yarin, A. L. Electrospinning jets and polymer nanofibers. Polymer. 49, 2387-2425 (2008).
  20. Wang, Y., Theobald, P., Tyrer, J., Lepper, P. The application of scanning vibrometer in mapping ultrasound fields. J. Phys.: Conf. Ser. 1, 167-173 (2004).
  21. Brown, W. S., Morris, R. J., Hollien, H., Howell, E. Speaking Fundamental-Frequency Characteristics as a Function of Age and Professional. J. Voice. 5, 310-315 (1991).
  22. Ingber, D. E. Cellular mechanotransduction: putting all the pieces together again. Faseb J. 20, 811-827 (2006).
  23. Titze, I. R., et al. Design and validation of a bioreactor for engineering vocal fold tissues under combined tensile and vibrational stresses. J. Biomech. 37, 1521-1529 (2004).
  24. Moore, J., Thibeault, S. Insights Into the Role of Elastin in Vocal Fold Health and Disease. J. Voice. 26, 269-275 (2012).
  25. Thibeault, S. L., Bless, D. M., Gray, S. D. Interstitial protein alterations in rabbit vocal fold with scar. J. Voice. 17, 377-383 (2003).
  26. Branski, R. C., Verdolini, K., Sandulache, V., Rosen, C. A., Hebda, P. A. Vocal fold wound healing: A review for clinicians. J. Voice. 20, 432-442 (2006).
  27. Clark, I. A., Swingler, T. E., Sampieri, C. L., Edwards, D. R. The regulation of matrix metalloproteinases and their inhibitors. Int. J. Biochem. Cell B. 40, 1362-1378 (2008).
  28. Silver, F. H., Horvath, I., Foran, D. J. Viscoelasticity of the vessel wall: The role of collagen and elastic fibers. Crit. Rev. Biomed. Eng. 29, 279-301 (2001).
  29. Kutty, J. K., Webb, K. Tissue Engineering Therapies for the Vocal Fold Lamina Propria. Tissue Eng. Part B: Rev. 15, 249-262 (2009).

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