重组纤维素酶Cel5A从表达里氏木霉在烟草

木质纤维素生物质，其转化为液体燃料的退化已经被设想为一个方法，以减少对化石燃料依赖。在建立经济上可行的生物处理系统中的一个显著障碍是在纤维素和半纤维素¹的酶促降解。植物表达系统显示为酶在工业规模上生产的巨大潜力。农业系统收获植物经济和体积都已经建立起来，因为他们已经数千年之久。纤维素酶在植物中的生产是可取的，由于像易于自动水解^2，以及用于最大限度地通过增加植物细胞壁¹消化率使用较低的酶水平的潜在因素。最后，厂房系统允许重组蛋白的靶向植物细胞的特定区域，并能翻译后修饰酶在有需要时^3。

烟草 （烟草）是很常用的植物模式生物的外源蛋白表达的研究，由于其快速增长和生物量的积累功能^4。重组蛋白的瞬时表达是一种技术，它允许在短的时间周期⁵蛋白的生产，同时保持柔韧性，以定位和由此所选择的蛋白， 即纤维素酶的翻译后修饰。这使得生产的纤维素酶（S）的基本分析，同时也奠定了在植物中进一步表达策略。使用这样的瞬时表达的策略，从糖基水解酶家族5，Cel5A，从真菌宿主里氏木霉 （ 红褐肉座菌 ）衍生的⁶内切葡聚糖酶的产生（以下简称为TrCel5A）。 TrCel5A是一个42 kDa蛋白被糖化本身，是路政署高度活跃roylzing纤维素链^7。

这里所描述的瞬时表达技术是基于一个较为常用的系统上，渗入植物叶与土壤杆菌携带目的基因在适当的表达载体中。以允许成功的在植物中表达的快速分析，TrCel5A也可以被表达为融合蛋白的mCherry，最初来源于Discosoma藻单体荧光蛋白。蛋白DsRed的^8，具有一个额外的6组氨酸残基（His-标签）融合到在C-末端（TrCel5A-的mCherry）。异源融合蛋白，TrCel5A-的mCherry，表达因此可以生长的植物中通过使用绿色光检查的mCherry分散监控。如果需要，该植物材料的薄的部分可以根据绿色光被显微镜检查，以确定该蛋白的特异性定位。对于这项工作，信号和转录坐在肽在结构注册成立，本地化的异源蛋白出口到内质网^9。

以分析植物中表达的纤维素酶，包括TrCel5A，一些纤维素酶活性测试可以被执行的活动。总可溶性植物蛋白的提取后，TrCel5A可以部分地用热温育技术纯化。蛋白质大小是使用SDS-PAGE随后通过Western印迹法确定。酶谱法可用于分析活性对底物， 例如纤维素这一直是羧基甲基化（使羧甲基纤维素：CMC）为溶解度^10。纤维素酶和葡糖苷酶的活性可以通过用β-D-纤维二糖苷相关的荧光团4 - 甲基伞形酮（4-MU）（4-MUC组合）进行监测。评估切葡聚糖酶活性的另一种方法涉及到CMC的光谱测定分析已用的偶氮-D相关联的你们（Remazolbrilliant蓝^R）11。此外，这两种内切葡聚糖酶和纤维素酶的范围中的蛋白质的活性可以通过使用糖分析测试，如对羟基苯甲酸酰肼（PAHBAH）测定¹²进行监测。这些技术可用于澄清和量化感兴趣的表达纤维素酶的活性。

1，生长野生型普通烟草植物

1. 成长N.烟草 L。 CV。对土壤佩蒂特哈瓦那SR1植物，放置在合适的花盆装满正常的盆栽土壤发芽烟草种子。 2周之后，苗转移至个别盆。孵育恒22°C（黑暗时期）或25℃（光周期）在温室中的植物和70％的相对空气湿度。在八分之一十六小时的光/暗周期提供照明（ 如飞利浦IP65 400瓦灯泡; 180微摩尔·秒^-1·米^-2，λ= 400〜700 nm）和水，每天。

TrCel5A和TrCel5A-mCherry的蛋白质2。瞬时表达

1. 在无菌条件下，挑Agarobacterium癌农杆菌含有两种pTRAkc-ER-TrCel5A或pTRAkc-ER-TrCel5A-的mCherry并转移到含有10ml酵母提取物锥形瓶中单菌落（GV3101 :: pMP90RK GMR，KMR，RIFR）肉汤（YEB，制备成每制造商的规格）介质和卡那霉素（50毫克/毫升），利福平（50毫克/毫升），和羧苄青霉素（100毫克/毫升）以供选择。孵育36-40小时，在26℃和180转。注意：适当的结构来表达设计是本文的范围，但作为指导，可遵循的结构设计麦克莱恩等^[13]和芒罗和Pellham ¹⁴的方法。
2. 取200μl的各培养物接种到20毫升YEB与上面提到的抗生素浓度和以前一样在相同条件下孵育。
3. 经过36-40小时后，通过加入2微升acetosyringon（200μM的最终浓度），加入100μl的40％（重量/体积）的葡萄糖溶液和200微升的1M MES缓冲液pH 5.6。preinduce培养孵育过夜。
4. 制备100毫升2×缓冲液浸润（100克/升蔗糖，3.6克/升葡萄糖，8.6 g / L的Murashige和Skoog基础盐的用氢氧化钾调节pH值至5.6）。
5. 测量1:5稀释的培养物的OD _600，直到它达到的OD ₆₀₀为5-6。计算出外径₆₀₀需要30毫升渗透培养基培养体积。加入15毫升2X渗透缓冲，再加入去离子H _{2 O}至使缓冲高达〜30毫升。
6. 就拿植物温室和使用枪头缺口至5 ^日叶^第三的远轴侧从上缓解渗透。
7. 用枪头缺口叶子的背面侧，以缓解渗透。
8. 填充注射器渗透介质，并把它（不带针）对先前作出的刻痕之一。支持注射器用手指在近轴叶边。仔细按介质进入脉间叶区的组织。注：浸润后，培养在温室中的植物如上文所述的相同的条件下进行。此外，保持untr同等比例eated，非瞬时表达植株（NTEPs）作为对照，在相同的条件下渗入植物下。

在植物叶片TrCel5A-mCherry的表达3。评估

1. 经过4-6天，采取植物渗透与甲农杆菌含有pTRAkc-ER-TrCel5A-的mCherry从温室，并将其放置在一个黑暗的房间荧光分析。
2. 可视化的荧光表达TrCel5A-的mCherry，光电厂使用的是便携式光源发射绿光在515 nm处有一个红色滤光片（620-750 nm）的叶节。注：在深度在植物叶片蛋白表达的鉴定可以通过薄切片用的叶子在光镜和荧光显微镜一vibratome和考试来实现。对于这种按照以下步骤操作：
   1. 切约5×5毫米大小的小部分从叶渗透并嵌入在4％琼脂糖溶于50 mM磷酸盐缓冲液（pH 5.7）。
   2. 切80-90微米大小使用一个vibratome嵌入式叶节。将它们放置在载玻片上，盖上缓冲或盖玻片，用显微镜在10倍放大倍率荧光检测器，使用相同的波长和过滤上述检查它们。

4。TrCel5A提取烟叶

1. 从感染A.植物从切烟叶片到1克的重量大约农杆菌含有pTRAkc-ER-TrCel5A并置于预冷用液氮在研钵。加液氮适量的样品。用预冷杵研磨叶粉。
2. 加入2毫升含有1mM苯甲磺酰氟的地面叶物质的磷酸盐缓冲盐水（PBS）中并混合，直到大部分的叶物质是在悬浮液中。离心提取液以15,000×g离心20分钟，在4℃，将含有蛋白的上清液。
3. 离心夫格提取物以15,000×g离心20分钟，在4℃，将含有蛋白的上清液，注意不要扰乱颗粒。弃沉淀。
4. 部分纯化TrCel5A孵育含蛋白质的上清液在55℃下10分钟。允许休息在室温下再保持10分钟，然后离心，15,000 xg下在RT下10分钟。重复部分纯化过程非渗透的植物来获得对照样品。使用这些样本为所有下面的实验。注：蛋白质溶液可以贮存于4℃下长达1周或在-20℃下长达3个月。
5. 重复该部分纯化过程非渗透的植物来获得对照样品。使用这些样本为所有下面的实验。注：蛋白质溶液可以贮存于4℃下长达1周或在-20℃下长达3个月。

5，SDS-PAGE电泳，免疫印迹和TrCel5A-mCherry的<中偶氮CMC酶谱/ P>

1. 购买或准备12％（W / V）SDS-PAGE凝胶按照确定的方法^15。
2. CMC溶解在水中，得到1.5％（重量/体积）溶液。使CMC-SDS-PAGE凝胶，替换1毫升1.5％CMC的在10ml的SDS-PAGE凝胶的混合溶液中加入1ml水，造成了0.1％（重量/体积）CMC + 12％（w / v的）SDS-PAGE凝胶组合。通常倒入凝胶。注意：请确保管委会在原有的解决方案是完全由搅拌和加热的组合，以40℃溶解（重复制备凝胶溶液直接前）。
3. 通过在SDS存在下煮沸，按照已建立的方法¹²变性的样品。作为阳性对照，用1:500稀释从T.市售的纤维素酶混合物的里氏木霉 ，如T.里氏木霉 ATCC 26921。作为阴性对照，使用来自非渗透的叶（NTEPs）一个类似的方法制备的蛋白质溶液。
4. 进行电泳按正常协议^15，例如：用200 V为〜50分钟，停止电泳一旦染料前沿到达凝胶的底部。
5. 用0.1％染色1的SDS-PAGE凝胶（重量/体积）考马斯亮蓝和脱色用甲醇/冰醋酸混合物。注意：快速染色和脱色可以通过轻轻加热染色和脱色的解决方案， 即通过使用微波对〜15秒预热（但不沸腾）第一染色，然后脱色溶液，改变在10分钟后的脱色液进行时，或者当冷却，并重复与新的脱色液。
6. 执行使用既定协议^16,17 1 SDS-PAGE凝胶的印迹。使用下面的抗体：抗His-标签（主）和一个多克隆山羊抗兔抗体Fc区已被缀合至碱性磷酸酶（次要）的多克隆兔抗体。注：二级抗体，应选择使用硝基四唑来启用可视化鎓chloride/5-bromo-4-chloro-3' - indolyphosphate对甲苯胺盐（NBT / BCIP），如所述^18。
7. 进行凝胶内蛋白复性的0.15％（重量/体积），通过培养该凝胶在1.5％（重量/体积）的β-环糊精，20mM磷酸盐 - 柠檬酸盐缓冲液，pH 6.5，在室温下用CMC的SDS-PAGE凝胶轻轻摇动15分钟^19。
8. 丢弃该β-环糊精溶液中，并简要用H ₂ O洗涤该凝胶在50mM醋酸钠缓冲液（pH 4.8）进行15分钟在室温下孵育。使用复性0.15％CMC的SDS-PAGE凝胶在50℃下温育该凝胶在30mM乙酸钠缓冲液pH 4.8 20分钟进行CMC酶谱
9. 使用复性为0.15％（重量/体积），通过20分钟在50℃下温育该凝胶在30mM的醋酸钠缓冲液（pH 4.8）的CMC的SDS-PAGE凝胶上进行的CMC酶谱
10. 用0.1％的染色凝胶10分钟w / v的刚果红溶液和脱色30分钟或直到清晰的条带是使用1个月观察娜CL。用0.3％（V / V）乙酸为更清晰的成像洗凝胶。

TrCel5A 6 4-MUC活性测定

1. 制备10mM的4-MUC在50％（V / V）甲醇中的储备溶液，并且在黑暗中储存于RT
2. 在测定之前立即，制备4-MUC 2个工作溶液，1mM的4-MUC组成和60mM的醋酸钠，pH值4.8。
3. 含100微升叶蛋白（带或不带TrCel5A可诱导表达），由T. 100微升市售的纤维素酶混合物样品进行这个测试里氏木霉 1:1,000，纯H _{2 O}的分别。一式三份地运行每个样品。
4. 移液管加入100μl的4-MUC工作液加入到96孔板的单独的孔中，再加入100微升各样品。
5. 确定0分钟时间点的4-MU荧光通过荧光光谱法，使用360nm的激发波长和465nm的发射波长。
6. 孵育板20分钟，在50℃下，覆盖有粘合剂的盖，以防止蒸发。使反应停止冻结（或通过组合加入100μl0.15M的甘氨酸，pH值为10.0，并加入100μl的样品在一个单独的板）。
7. 确定的4-MU荧光通过荧光光谱端点，采用360nm的激发波长和465nm的发射波长。减去从端点（20分钟）的时间点0分，获得荧光值的变化。

TrCel5A 7。偶氮羧甲基纤维素酶活性分析

1. 制备1.5％的股票（重量/体积）偶氮-CMC被存储在室温下，并含有18 mM的醋酸锌，0.5M醋酸钠，pH值为5和80％乙醇（V / V），在室温储存沉淀溶液温度。
2. 测定前夕，准备偶氮CMC 2X工作液，1％组成（重量/体积）偶氮-CMC（以H ₂ O）和60 mM醋酸钠，pH值4.8。
3. 结合50μl的样品和50μl的工作ING液1.5 ml离心管。
4. 含50微升叶蛋白（带或不带TrCel5A瞬时表达）测试样品;将100μl来自T.市售的纤维素酶混合物的里氏木霉稀释1:1,000;纯H ₂ O运行样品和标准，一式三份。
5. 孵育样品20分钟，在50℃下停止反应，加入250微升的沉淀溶液。涡大力为10秒每个样品，以确保溶液完全混合。
6. 再次孵育的样品在室温下10分钟，然后涡旋。离心样品以1,000×g离心10分钟。除去200μl的各样品上清液至96孔板中，注意不要扰乱颗粒。
7. 测定用吸收光谱在590nm的波长的光。

8。PAHBAH TrCel5A的测定

1. 使用打孔切割的滤纸圆（〜5.5毫米直径）。加入100μl60 mM的醋酸钠，pH值4.8，和100微升的样品，无论是含叶蛋白（带或不带TrCel5A可诱导表达）或商业T的里氏木霉纤维素酶的混合物，稀释1:1,000，并孵育用滤纸圈20小时，在50℃与300 rpm振摇。对于培养用滤纸每个样品，也没有培养滤纸作为单独的采样控制重复的解决方案。
2. 通过在H ₂ O的加入5毫升浓盐酸，总共为100毫升的溶液，并储存在室温下溶解PAHBAH制备330 mM的对羟基苯甲酸酰肼（PAHBAH）溶液A。注意：最好的结果，通过加入盐酸，以PAHBAH浆料， 即 30毫升，该温度下搅拌来帮助溶解使体积为100毫升H ₂ O之前的一个较小的体积实现
3. 制备PAHBAH溶液B，含有柠檬酸50mM的钠，10mM的氯化钙和500mM NaOH和存储在RT。
4. IMMED测定iately之前，请准备1毫升PAHBAH试剂1.5倍的工作解决9毫升缓冲溶液，储存于冰上直至使用（须4小时内使用）。
5. 准备样品中耐热0.2或0.5 ml离心管。结合5μl的每种溶液的温育，用滤纸（步骤8.1）45微升H ₂ O和100μl的PAHBAH工作溶液。样品对照（不育滤纸样品）应在相同浓度（5微升的样品，45微升H ₂ O，加入100μlPAHBAH工作液）下运行。也考验5标准（5微升）介于0和葡萄糖0.2g / L的含，纯H ₂ O运行样品和标准，一式三份。
6. 在100℃下保温样品进行准确的10分钟，然后冷至室温恰好10分钟。移液管溶液加入到96孔板中，并测定光谱在410纳米的波长。从样品中减去个别样品对照组（不带保温过滤纸），以获得最终值。

TrCel5A和TrCel5A-的mCherry采用的瞬时表达系统（ 图1A和1B）中成功表达在烟草植物中。检查TrCel5A-的mCherry融合蛋白的表达模式的揭示健康的叶子（ 图1C），这下绿光（ 图1D）显示广泛的蛋白表达。

对烟草植物的叶子有包含被执行的总可溶性蛋白质的提取的瞬时表达TrCel5A蛋白和SDS-PAGE显示了大量的各种蛋白质的人出席（ 图2A，泳道1）。从TrCel5A表达的植物和从NTEPs衍生的总可溶性蛋白样品的总可溶蛋白样品，在55℃下孵育10分钟TrCel5A保持稳定和活性在55℃，而许多其他（天然烟草）的蛋白质是不稳定在此温度下。因此，许多非essenti人蛋白通过该处理沉淀，留下TrCel5A的部分纯化的样品。在这之后的热沉淀步骤，一个强大的蛋白条带，观察到〜40kDa的（ 图2A，泳道1）。这很可能是催化结构域的TrCel5A的（CD），其中，当在植物中4表示先前已经显示出在这个尺寸上运行。阴性和阳性对照样品（ 图2A，泳道3和4，分别）表明低浓度的残留热耐受烟草蛋白质从NTEPs（阴性对照， 图2A，泳道3）和多频带表示T的混合物里氏木霉蛋白（阳性对照， 图2A，泳道4）。

该TrCel5A的大小是由抗体染色冲着并入TrCel5A C-末端，将其看作是不存在两个对照组（ 图2B）中的His-6tag证实。该TrCel5A被证明保留内切葡聚糖酶活由CMC酶谱（ 图2C中 ，泳道1和2），其中重折叠蛋白产生强烈的清除区域，表明CMC退化，在相同的高度，在考马斯亮蓝染色的SDS-PAGE凝胶和蛋白质印迹。没有观察到活性为从NTEPs（ 图2C，泳道3）的非纤维素酶蛋白的混合物，和T的混合物运行作为阳性对照的里氏木霉的蛋白质显示从多个部件（ 图2C，泳道4），内切葡聚糖酶的活性。

量化TrCel5A三种测定法中使用的纤维素分解活性。首先，将4 - MUC的降解通过观察在被释放的4-MU的465纳米（激发波长360nm）增加的荧光发射进行了分析。 TrCel5A被证明是降低4MUC，因为做了1:1000的稀释市售T的混合物里氏木霉纤维素酶（ 图3A）。

可量化分析针对CMC TrCel5A的活性是通过测定一个偶氮染料在从偶氮CMC 590nm处的释放完成。在这些条件下TrCel5A活动，在活动相当于一个1:1,000稀释上述（ 图3B）中提到的纤维素酶的混合物。

TrCel5A的降解滤纸的能力进行了分析。对于该测定，初始糖化试验中进行（ 即与TrCel5A溶液降解滤纸），然后将上清液通过PAHBAH测定法进行分析，以确定减少释放（ 图3B）的糖的量。

图1植物表达盒TrCel5A结构和TrCel5A-mCherry的异源表达中烟草叶片荧光下发出绿色光观察。用于TrCel5A（A）和TrCel5A-的mCherry（二）植物表达盒的示意图显示的是。瞬态TrCel5A-MC表达后，烟叶是按一般正常（C）或绿光（四）检查。对于面板（A）和（B）的CaMV启动子（P35SS）和终止信号（pA35S）标明在淡蓝色。查耳酮合酶（CHS）和的His6的编码序列（的His6）的5'-端非编码区被显示为蓝色。来自鼠mAb24的重链衍生的植​​物密码子优化的前导肽（LPH）被描绘为绿色。 LPH实现重组蛋白的分泌到质外体，在这之后的C-末端KDEL信号，以红色表示，则减缓蛋白质的ER。箭头标记的结合位点的引物来扩增CaMV启动35SS表达盒。对于面板（C）和（D）绿灯亮了激发515 nm处。拍摄图像无放大倍率。

图2尺寸并通过SDS-PAGE，Western印迹和CMC酶谱分析显示TrCel5A的活性的分离的总可溶性蛋白：来自烟草植物，其中TrCel5A之前瞬时表达（1）和（2）之后的热沉淀纯化;从烟草植物，其中TrCel5A不存在，也热沉淀后（3）;或市售的T的混合物的里氏木霉纤维素酶（4）。 SDS-PAGE分离蛋白质可视化与考马斯亮蓝染色（一），对TrCel5A（B）的His标签区域Western印迹法，和使用CMC酶谱所示的纤维素酶活性可视化利用刚果红（C）。 PageRuler加（Fermentas公司）作为分子量标记（M）。

图3。TrCel5A。TrCel5A的酶活性定量培养与4-MUC（A），偶氮CMC（B）和滤纸（C）和由荧光4-MU（A）释放的测定底物降解，偶氮染料（B），或由一个量化通过监测PAHBAH（C）的颜色变化还原糖。每个检测显示结果为三次重复。误差棒表示标准偏差。在所有三个测定分析了样品缓冲液单独使用，TrCel5A热沉淀纯化后，NTEP（WT Nt个）热沉淀纯化，并使用市售T的混合物后里氏木霉纤维素酶。

作者什么都没有透露。