我们介绍一种制备云母支撑脂双层用于高分辨率显微镜观察的方法。云母在原子尺度上透明且平整,但由于操作困难而很少用于成像;我们的制备方法实现了云母片的均匀沉积,并减少了脂双层制备所需的材料用量。
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我们介绍一种制备云母支撑脂双层用于高分辨率显微镜观察的方法。云母在原子尺度上透明且平整,但由于操作困难而很少用于成像;我们的制备方法实现了云母片的均匀沉积,并减少了脂双层制备所需的材料用量。
支撑脂双层(SLB)被广泛用作研究膜特性(如相分离、聚集、动力学)及其与其他化合物(如药物或肽)相互作用的模型。然而,SLB的特性会因所使用的支撑材料不同而有所差异。
用于SLB成像和测量的常用技术包括单分子荧光显微镜、FCS以及原子力显微镜(AFM)。由于大多数光学成像研究是在玻璃基底上进行的,而AFM则需要极为平整的表面(通常为云母),因此这些技术所得结果无法直接比较,因为基底材料的电荷和表面平整度会显著影响扩散行为。遗憾的是,将云母薄片切割并粘接到玻璃载玻片上所需的高度手动操作技巧,成为在SLB制备中常规使用云母的一大障碍。尽管这种方法是理想选择,但如此制备的云母表面往往不平整(呈波浪状),难以成像,尤其是使用工作距离短、高数值孔径物镜时更为困难。本文介绍一种简单且可重复的方法,用于制备适用于脂质囊泡沉积和SLB制备的薄而平整的云母表面。此外,我们自制的样品腔仅需极少量的囊泡即可实现SLB形成。该整体方案能够高效、简便且低成本地制备高质量的脂双层表面,其质量可与AFM研究中所使用的表面直接相比。
本实验方案的总体目标是展示一种制备云母表面的方法,用于通过光学全内反射荧光显微镜(TIRFM)或共聚焦显微镜对云母支撑的脂双层(SLBs)进行高分辨率成像,该方法也可与原子力显微镜(AFM)联用。
支撑脂双层(SLBs)被广泛用作研究脂质聚集、相分离、双层组分动力学或其与肽、蛋白质及其他化合物相互作用的模型系统1-5。根据研究性质的不同,可用于形成SLB的基底材料也有所不同(例如玻璃、云母、二氧化硅、聚合物)4,6-8。典型的膜研究依赖于基于显微镜的成像技术,如全内反射荧光显微镜(TIRFM)和原子力显微镜(AFM)。因此,对于TIRFM成像而言,通常选择玻璃表面,因为玻璃具有良好的透光性。玻璃的制备相对简便,实验结果的质量主要取决于脂质囊泡沉积前对表面的彻底清洁。由于AFM具有较高的轴向分辨率,通常需要使用云母表面。云母是一种硅酸盐矿物,具有近乎完美的基底解理特性,因此新鲜解理的云母表面在原子级别上是平坦的,能够实现对膜高度差异的观测,甚至达到亚纳米尺度9。
然而,使用荧光相关光谱(FCS)、单分子示踪(SMT)和光漂白后荧光恢复(FRAP)等方法进行的扩散研究表明,脂质膜的动力学行为在很大程度上取决于其沉积的表面类型,例如玻璃和云母可能导致显著不同的结果10,11。这些差异不仅体现在膜探针的扩散系数上,还包括检测....
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1. 云母和 载玻片 准备
2. 云母片组装与腔室安装
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荧光脂质探针在支撑脂双层(SLB)中的扩散行为因基底材料的不同而有所差异。全内反射荧光显微镜(TIRFM)结合单分子示踪(SMT)技术是一种用于可视化颗粒运动并提取其扩散系数的有效方法。附带动画图展示了鞘磷脂-ATTO647N探针在玻璃和云母表面支撑的DOPC(1,2-二油酰基-sn-甘油-3-磷酰胆碱)双层膜中扩散的单分子信号。云母表面按照本文所述方案进行制备。为评估光学像差,使用Mosaic 2D PSF Size ImageJ插件16,17测量并计算了20个点扩散函数(PSF)的半高全宽(FWHM)平均值。测得玻璃和云母的FWHM分别为441 nm和464 nm(图1)。在玻璃和云母上成像时,分辨率之间22 nm的差异并不显著。在这两种情况下,均可在连续帧中定位每个单荧光分子的PSF质心,并利用Mosaic Particle Tracker ImageJ插件16,17将其连接成随时间变化的颗粒轨迹。图2展示了颗粒在两种基底支撑的双层膜中扩散的代表性轨迹。在玻璃和云母支撑的DOPC膜中扩散的荧光探针的均方.......
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本方案描述了一种制备光滑且薄云母表面的方法,用于脂双层沉积和高分辨率成像。该技术所需的手动操作技能较少,主要涉及玻璃-云母-玻璃三明治结构的小心拆解(步骤2.8),这是获得高质量云母表面的关键步骤。在此阶段必须始终检查新解理的云母表面,因为云母有可能未发生解理而直接从光学胶上脱落,暴露出部分光学胶区域。这可能导致脂双层意外沉积在胶体上而非云母表面。根据我们获得的均匀高光学成像质量判断,采用本方法制备的云母表面在绝大多数情况下与盖玻片表面平行;因此我们认为无需额外验证。
安装腔室的最后一步可根据需要进行定制。视频教程中展示使用一个1.5 ml玻璃小瓶的塑料盖作为腔室,但也可替换为任何形状相似且尺寸合适的物体,例如在同时进行原子力显微镜-全内反射荧光显微镜/共聚焦显微镜(AFM-TIRFM/共聚焦)成像时,需确保样品及其支架能够放入AFM探头中。如果使用标准的35 mm金属细胞腔室进行成像,则可跳过定制腔室的安装步骤。但在此情况下,必须使用直径为25 mm的圆形盖玻片,并且需要更大体积的脂质体溶液以形成支持性脂双层(SLB)。
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作者无任何利益冲突需要披露。
| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 浴式超声仪 | Fisher Scientific | FB15051 | |
| 盖玻片 24 × 50 mm - 无 H1.5 | Marienfeld | 102222 | |
| DOPC | Avanti Polar Lipids | 850357 | |
| Hellmanex III(洗涤剂) | Hellma Analytics | 320.003 | |
| 云母 V-1 级 | SPI Suppliers | 1872-CA | |
| 光学胶粘剂(高黏度) | Norland Products | NOA63 | |
| 光学胶粘剂(低黏度) | Norland Products | NOA60 | |
| 鞘磷脂-ATTO647N | AttoTec | AD 647N-171 | |
| 紫外灯 | Synoptics Ltd. | GelVue GVM20 | 将灯设置为100%功率 |
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