分析嗅觉感觉神经元的生理特性仍面临技术上的局限。本文通过在基因靶向小鼠的完整嗅觉上皮组织制备中采用穿孔式膜片钳技术记录这些神经元的活动。该技术可用于表征表达特定嗅觉受体的神经元的膜特性及其对特异性配体的反应。
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分析嗅觉感觉神经元的生理特性仍面临技术上的局限。本文通过在基因靶向小鼠的完整嗅觉上皮组织制备中采用穿孔式膜片钳技术记录这些神经元的活动。该技术可用于表征表达特定嗅觉受体的神经元的膜特性及其对特异性配体的反应。
分析嗅觉感觉神经元(OSN)在特定配体刺激下的生理反应,对于理解嗅觉驱动行为及其调控机制的基础至关重要。这些编码特性在很大程度上取决于气味分子与OSN中表达的嗅觉受体(OR)之间的初始相互作用。所表达OR的身份、特异性及其配体谱系至关重要。在嗅觉上皮中随机选取一个OSN,找到其表达OR的配体的概率极低。为应对这一挑战,本方案采用基因标记的小鼠模型,其在特定OR启动子的控制下表达荧光蛋白GFP。OSN位于鼻腔内壁排列紧密且有序的嗅觉上皮中,邻近细胞对其成熟与功能具有影响。本文描述了一种分离完整嗅觉上皮的方法,并通过膜片钳记录技术,研究表达特定气味受体的OSN的电生理特性。该方案可在保留邻近组织影响的前提下,表征OSN的膜特性。对膜片钳记录结果的分析可 精确量化配体/OR相互作用、信号转导通路与药理学特性、OSN的编码属性及其在膜水平上的调控机制。
嗅觉感觉神经元(OSN)是嗅觉感知的第一步。在啮齿类动物中,它们位于鼻腔内衬的嗅觉上皮中,能够将气味分子的化学信息转化为动作电位,并通过轴突传递至大脑。为了更好地理解嗅觉编码机制,有必要对OSN的转导过程及其膜特性进行表征。直到最近,大多数用于研究哺乳动物OSN特性的技术都是在分离的OSN上进行的1-4。分离过程采用多种机械和化学方法(例如,酶解)使OSN从其原有环境中释放出来。这些操作导致可用于记录的细胞数量较少。对于表达GFP标记的细胞而言,这一数量可能更加有限。此外,分离过程还消除了OSN与嗅觉上皮中其他细胞之间的局部细胞间相互作用,而这些相互作用可能有助于OSN的存活及其特性的调节。为避免分离步骤带来的问题,研究人员已开发出一种完整的组织制备方法5。
每个嗅觉感觉神经元(OSN)表达一种从大型多基因家族中选择的嗅觉受体(OR)6。小鼠主嗅上皮中约有 1,000 种 OR 表达。由于野生型动物中 OR 数量众多,记录表达相同 OR 的 OSN 的概率极低。为克服这些限制,目前已开发出基因靶向小鼠 ,其中所有表达特定 OR 的 OSN 均被标记上荧光蛋白7-9。这些标记的 OSN 已被用于离体分离制备的功能分析7,10,11,但存在前述的局限性。因此,利用遗传标记小鼠制备完整的上皮组织5可规避这些问题,能够在尽可能....
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本方案遵循勃艮第大学的动物护理指南,并已获得勃艮第大学伦理委员会的批准。
1. 动物
2. 电极和溶液的制备
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该方案的结果取决于解剖的质量。解剖步骤必须简短(少于10至15分钟)且精确。即, 以避免上皮损伤)。 图1 展示了理想制备样本在不同放大倍数下的形态。在明场低倍镜下,不同类型细胞(如嗅觉神经元的 knob 结构、支持细胞)可被区分(图1A)。在明场下,使用最高放大倍数(通常为80X至160X)时,应能清晰区分嗅觉神经元的树突 knob 与支持细胞图1B)。在荧光灯下,仅可见GFP标记细胞的树突 knobs 和纤毛(图1C)。通过比较这两幅图像,可用记录电极接近被标记的细胞(图1D).
分离溶液的温度以及分离操作的时间至关重要。分离的第一部分,即隔膜的制备(第3.1.1至3.2节),应在冰浴中的冷溶液内5至10分钟内完成。最终的分离步骤(3.3)应在室温下持续少于5分钟。如果分离操作耗时过长,或在过热的分离溶液中进行,则组织制备物 invariably 会迅速出现损伤表现:树突状小结漂浮在上皮表面之.......
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该方案能否准确监测健康嗅觉神经元(OSN)的特性,在很大程度上取决于制备的质量。因此,解剖步骤至关重要。首先,必须注意解剖液的质量(pH值、渗透压)、氧合状态和温度(冰上预冷但未结冰)。其次,使用解剖工具操作上皮组织时应尽可能轻柔,以避免造成损伤。最后,获得尽可能平坦的组织制备物至关重要,以便能够接触到最大数量的OSN群体。
解剖质量是获得健康组织样本的基础。然而,解剖方法可以有多种选择:本文介绍的是从腹侧向背侧进行解剖,但部分操作者可能更倾向于从背侧开始解剖,以快速打开鼻腔并迅速暴露嗅上皮的鼻中隔隐窝区域。因此,每位操作者可根据自身情况调整方案,采用最有效的策略以获得目标区域的健康组织样本。
一旦将样本置于显微镜下,就必须持续永久地监测样本的健康状态。事实上,不健康的样本会导致形成吉欧欧姆密封(gigaseal)的概率降低。若获得吉欧欧姆密封的效率较低,可通过更换样本上的观察区域以寻找更健康的嗅觉神经元(OSNs)来改善情况。更为彻底的解决方案是完全更换为新的样本。一旦形成密封,仍可能出现难以进入“开放”状态的情况。这可能是.......
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作者声明不存在相互竞争的经济利益。
作者感谢Peter Mombaerts慷慨提供OR-GFP小鼠;感谢Anne Lefranc及CSGA动物设施在动物饲养方面提供的出色支持。本研究经费由法国国家科学研究中心(CNRS)通过ATIP和ATIP Plus项目资助,勃艮第大区议会(FABER和PARI项目资助)以及勃艮第大学(BQR项目)提供。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
|---|---|---|---|
| 带法拉第笼的振动台 | TMC | 63-500 系列 | 要求:将记录系统与环境中产生的振动隔离开(如实验人员移动、计算机散热风扇等设备的振动);可选购带法拉第笼的型号,或自行配备定制的法拉第笼;建议使用该笼以避免环境中电噪声的干扰 |
| 光学 | |||
| 显微镜 | Olympus | BX51WI | 配备落射荧光装置的直立显微镜;固定或移动载物台,可根据用户偏好选择 |
| 目标 | 奥林巴斯 | LUMPLFL40XW | 至少需要两个物镜:一个 4X 或 10X 物镜,用于细胞的粗调定位;另一个为 40X 浸液长工作距离物镜,例如 Olympus LUMPLFL40XW / IR /0.8 / WD:3.3 MM |
| 放大镜 | Olympus | U-TVCAC | 绝对必要:置于物镜与相机之间的光路中;可放大屏幕上的图像,以便精确对准记录电极的旋钮 |
| 相机 | Olympus | DP72 | 需要一台性能良好的相机,以便在荧光和明场下观察神经元;控制软件操作简单,可拍摄图像并进行实时摄像监控,以观察电极接近细胞的过程。无需使用超灵敏相机。 |
| 过滤器 | Olympus/Chroma | 根据小鼠所用的荧光蛋白而定;以GFP为例:激发:BP460-490;发射:HQ530/50m | |
| 放大器 | HEKA | EPC10 USB | 监测记录电极中的电流流动,并通过向喷液装置发送TTL信号来控制给药;EPC10系统由计算机控制 |
| 软件 | HEKA | Patchmaster | 在实验过程中控制放大器 |
| 显微操作仪 | Sutter | MP225 | 精密显微操作器,可实现低至十分之一微米的精确移动;该型号非常稳定;避免使用可能产生漂移的液压操作器 |
| 电极拉制仪 | Sutter | P97 | 采用 FT345-B 宽槽灯丝; 准备约2的记录电极µ微米直径,带有长尖端以接触细胞;使用穿孔膜片钳溶液时,电阻应为15至20 MΩ |
| 玻璃 | Sutter | BF120-69-10 | 在我们的记录条件下,这种玻璃是制作记录电极的理想材料 |
| 记录室 | Warner Instruments | RC-26G | 需要一个腔室,以便将样本置于显微镜下。为使样本保持在腔室中央,应使用网状固定器/锚定装置。 |
| 刺激 | |||
| 玻璃 | WPI | TW100F-4 | 以每组7支成捆附着,这些移液管用于制备预拉制的刺激移液管 |
| 多通道拉制仪 | MDI | PMP-107-Z | 通过拉伸与扭转的联合作用,该拉制仪使我们能够制备具有7个管腔的灌注电极 |
| 精密压力注射器 | 图伊公司 | P/N T25-1-900 单通道 | 该精密压力注射器 控制多管拉制仪中施加的压力;可通过手动或由放大器通过5V电压进行控制 TTLs |
| 显微操作仪 | Narishige | YOU-1 | 粗调操纵器足以将喷射电极移近记录位点 |
| 管路 | N/A | 使用Tygon管将压力从加压装置传导至微注射移液管 | |
| 解决方案/灌流/化学品 | |||
| 真空泵 | gardner denver | 300 系列 | 振动膜片泵比其他类型的泵更安静且效率更高 |
| 灌注系统 | N/A | N/A | 使用聚乙烯管路的重力灌流系统,用于向记录室输入和输出外部溶液 |
| 制霉菌素 | Sigma-Aldrich | N3503 | 制备穿孔膜片钳实验所需的内液是必需的 |
| 二甲基亚砜 | Sigma-Aldrich | D5879 | 用于溶解制霉菌素以配制穿孔膜片记录的胞内溶液 |
| 氯化钠 | Sigma-Aldrich | S9625 | 细胞外溶液 |
| 氯化钾 | Sigma-Aldrich | P4504 | 细胞内/细胞外溶液 |
| 二水合氯化钙 | Sigma-Aldrich | C7902 | 细胞外液 |
| 磷酸二氢钠一水合物(NaH2PO4) | Sigma-Aldrich | S9638 | 细胞外液 |
| 七水合硫酸镁(MgSO₄·7H₂O)4 7H2O | Sigma-Aldrich | 63140 | 细胞外液 |
| 葡萄糖 | Sigma-Aldrich | G8270 | 细胞外液 |
| 碳酸氢钠 | Sigma-Aldrich | S6297 | 细胞外液 |
| EGTA(乙二醇双(2-氨基乙基醚)四乙酸)′,N′四乙酸 | Sigma-Aldrich | E3889 | 内液 |
| 氢氧化钾 | Sigma-Aldrich | P1767 | 内液 |
| 二甲基亚砜 | Sigma-Aldrich | W387509 | 细胞内液 |
| Hepes-Na | Sigma-Aldrich | H7006 | 细胞内液 |
| 蔗糖 | Sigma-Aldrich | S0389 | 细胞内溶液 |
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