演示了细胞内记录的电生理技术,并用于测定蝴蝶复眼中单个感光细胞的光谱敏感性。
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演示了细胞内记录的电生理技术,并用于测定蝴蝶复眼中单个感光细胞的光谱敏感性。
细胞内记录是一种强大的技术,用于确定单个细胞对特定刺激的反应方式。在视觉研究中,细胞内记录历来是研究单个感光细胞对不同光刺激敏感性的常用技术,至今仍在广泛使用。然而,目前文献中仍缺乏详细的实验方法,使得希望在眼部开展细胞内记录实验的研究人员难以重复相关操作。本文以昆虫作为研究眼生理学的通用模型。昆虫的感光细胞位于眼睛表面附近,易于触及,且参与视觉的许多机制在动物不同门类之间具有保守性。我们描述了在蝴蝶眼睛中进行感光细胞体内细胞内记录的基本操作流程,旨在使电生理经验较少的研究人员也能更便捷地掌握该技术。我们介绍了所需的基本设备、如何准备活体蝴蝶用于记录、如何将玻璃微电极插入单个细胞,以及最终的记录过程。此外,我们还解释了原始反应数据的基本分析方法,以确定不同类型细胞的光谱敏感性。尽管本实验方案主要聚焦于光谱敏感性的测定,但该装置同样适用于其他刺激(例如,偏振光)及方法的多种变体。
通过测量细胞膜上离子流动引起的电压或电流变化,可以观察细胞(如神经元)的电学特性。目前已开发出多种电生理技术用于测量细胞中的生物电事件。动物眼睛中所含的神经元易于接近,且其神经环路通常比大脑中的更为简单,因此这些细胞是进行电生理研究的理想对象。眼内电生理学的常见应用包括视网膜电图(ERG)1,2和微电极细胞内记录。ERG技术涉及将电极置于动物眼球内部或表面,施加光刺激,并测量所有邻近细胞反应总和所导致的电压变化3-6。如果研究目标是特异性地表征单个感光细胞的光谱敏感性,通常多种细胞类型会对同一刺激以不同强度同时响应 ,因此仅从ERG数据中确定特定细胞类型的敏感性可能较为困难,尤其是在眼睛中存在多种光谱特性相似的感光细胞时。一种可能的解决方案是构建转基因Drosophila,使其眼部多数R1-6细胞表达目标感光细胞(视蛋白)基因,然后进行ERG记录7。该方法的潜在缺点包括感光蛋白表达量极低或完全不表达8,以及转基因动物的构建和筛选过程耗时较长。对于光谱上不同类型的感光细胞种类较少的眼睛,可通过使用彩色滤光片对眼睛进行适应性处理,降低某些细胞类型对ERG信号的贡献,从而有助于估算其光谱敏感性的峰值9。
细胞内记录是另一种技术,通过微电极刺入细胞并施加刺激,电极仅记录该单个细胞的反应,因此对多个单个细胞进行记录和分析,可以获得生理学上不同细胞类型的特异性敏感性10-14。尽管本实验方案主要关注光谱敏感性的分析,但使用锐利电极进行细胞内记录的基本原理可针对其他应用进行调整。例如,通过采用不同的样本制备方法,并使用尖端石英电极,可根据研究问题记录视叶更深层或其他脑区的信号。例如,单个感光细胞的反应时间15、视叶(包括外髓状体、内髓状体或叶状体17)16中的细胞活动、脑18或其他神经节19的活动,均可采用类似技术进行记录;此外,颜色刺激也可替换为偏振光刺激20-22或运动刺激23,24。
光转导是指光能被吸收并转化为电化学信号的过程,这一特性古老而普遍,几乎存在于当今所有动物门类中25。位于感光细胞中、负责启动视觉光转导的视觉色素是视紫红质(rhodopsin)。所有动物的视紫红质均由一种视蛋白(opsin)和一个与之结合的发色团组成,其中视蛋白属于七次跨膜G蛋白偶联受体家族,发色团则来源于视黄醛或类似的分子26,27。视蛋白的氨基酸序列和发色团的结构会影响视紫红质对不同波长光的吸收能力。当发色团吸收一个光子后,视紫红质被激活,进而在细胞内启动G蛋白级联反应,最终导致膜结合离子通道的开放28。与大多数神经元不同,感光细胞发生的是分级电位变化,这种变化可通过光刺激强度改变所引起的反应幅度相对变化进行测量。通常情况下,特定类型的感光细胞仅表达一种视蛋白基因(尽管存在例外情况8,10,29-31)。复杂的色觉,如许多脊椎动物和节肢动物所具备的,依赖于包含数百至数千个感光细胞的复杂眼睛,每个细胞表达一种(偶尔为多种)视紫红质类型。视觉信息通过眼睛和大脑中复杂的下游神经信号,对感光细胞马赛克阵列的响应进行比较,从而形成包含颜色和运动信息的完整图像感知。
通过细胞内记录测量光感受器细胞对不同波长光的原始反应后,可以计算其光谱敏感度。该计算基于单变量原理(Principle of Univariance),该原理指出,光感受器细胞的反应仅取决于其吸收的光子数量,而与所吸收光子的具体性质无关32。任何被视紫红质吸收的光子都会引发相同类型的反应。实际上,这意味着细胞的原始反应幅度会因光照强度增加(可吸收的光子更多),或因波长向其敏感度峰值偏移(视紫红质对该波长的吸收概率更高)而增强。我们利用这一原理,将已知强度下同一波长的细胞反应,与相同强度但波长不同且相对敏感度未知条件下的反应进行关联。通常根据细胞敏感度达到峰值的波长来鉴定细胞类型。
本文介绍了一种用于记录和分析蝴蝶复眼中感光细胞光谱敏感性的细胞内记录方法,并着重于使该方法更易于被更广泛的研究群体所采用。尽管细胞内记录在文献中仍较为常见,尤其是在昆虫色觉研究领域,但我们发现,关于材料与方法的描述通常过于简略,难以据此重现该技术。我们以视频形式呈现本方法,旨在促进其更便捷地被复制和应用。同时,我们所描述的技术采用易于获取且价格合理的设备。我们还指出了在优化这一新颖且复杂的技术过程中常遇到但通常未被报道的注意事项,以避免研究进程因此类问题而延缓。
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所有动物均尽可能以人道方式对待。昆虫以蛹的形式从哥斯达黎加昆虫供应公司(Costa Rica Entomological Supply,哥斯达黎加)运送。
1. Heliconius 蛹的饲养
2. 实验光照条件的光学轨迹、校准与测量
3. 录音设备设置
4. 记录当天的准备
5. 标本制备与记录流程
6. 光谱敏感性分析
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对于记录装置的许多组成部分,仅靠文字描述无法提供足够的细节. 图1 是完整记录装置中所涉及组件的示意图。在 图2, 为白光及每种干涉滤光片绘制光谱,以说明为何需要校正因子以及计算该校正因子所需的信息。 图3 展示了用于这些实验的卡丹臂的照片和示意图。 图4 是一张显示记录阶段和显微操作仪的复合图像。 图5 展示了实验前准备蝴蝶的多个步骤。
一旦开始记录,光刺激引起的电压负向变化表明电极位于细胞外,如图6a所示。反应强度取决于电极尖端与感光细胞的接近程度以及光刺激的入射角度。在电极尖端接近到足以刺入细胞之前,反应应足够大(>30 mV)。图6b显示了对光刺激明显的去极化反应,表明电极已进入感光细胞。静息电位应保持稳定,反应幅度应较大(至少40 mV),尽管绝对幅度可能存在较大差异。我们测量的是相对反应,因此更重要的是信噪比要高。如...
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细胞内记录是一种较难掌握的技术,因其涉及诸多技术步骤。要获得成功的实验结果,必须考虑几个关键因素。首先,实验所用的平台必须具备良好的防振性能。许多研究人员使用气浮台,其台面与底座完全分离,可提供优异的振动隔离效果。我们的实验装置采用一块厚重的大理石台面,上方放置一个沙箱,将显微操作器、电极夹持器和样品台装置置于其中。这是一种有效且成本较低的替代方案,尤其适用于无法方便获取室内气体或压缩空气的实验室。此外,还可采取其他减振措施,例如使用被动式空气悬浮系统,或在桌腿上加装缓冲元件例如,打开的网球、自行车内胎、厚凝胶垫)。此外,实验装置必须置于法拉第笼内,且所有设备需妥善接地。法拉第笼前方应设有可拆卸的金属网屏蔽层,以便在笼内操作时取下,记录时重新装回。即使少量的环境电噪声(尤其是来自交流电源的50 Hz噪声)也可能导致原本良好的记录无法使用。
在制备样本时,包绕小眼的血淋巴和色素层可能会阻碍成功记录。如果角膜上的切口过大,体内血淋巴的正常泵动会导致切口处液面上下移动,从而引起记录不稳定。一旦切开,即使使用凡士林密封,血淋巴和表面色素层也会迅速凝结成无法穿透的痂状物,因...
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作者声明不存在任何竞争性经济利益。
我们感谢已故的 Rudy Limburg 制作了万向节臂视野计,感谢 Kimberly Jamison、Matthew McHenry 和 Raju Metherate 借给我们设备,感谢 Almut Kelber 和 Kentaro Arikawa 的鼓励。本研究得到了美国国家科学基金会(NSF)研究生研究奖学金(授予 KJM)以及 NSF 资助项目 IOS-1257627(授予 A.D.B.)的支持。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
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| 体视显微镜,6倍、12倍、25倍、50倍放大倍数 | Wild Heerbrugg | 野生型 M5 | 任何体视显微镜均可使用 |
| 带摆动臂和重型底座的显微镜支架 | McBain Instruments | 任何带有支架的重型底座均可 | |
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| 大理石台面 | |||
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| 操作器 | 卡尔·蔡司 - 耶拿 | ||
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| 样品台 | |||
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| BNC T型接头 | |||
| Powerlab 硬件 2/20 | ADI 仪器 | ML820 | |
| Labchart 软件 | ADI 仪器 | 图表 5 | |
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