方法文章

利用静态磁场促进农作物初期生长速率

DOI:

10.3791/53967

2016年7月8日

本文内容

摘要

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本实验方案的目的是通过施加静态磁场(无需外部能量)来展示植物初始生长速率的加快。

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电子设备和高压电线会产生磁场。本实验对含有凤仙花(Impatiens balsamina)、水菜(Brassica rapa var. japonica)、小松菜(Brassica rapa var. perviridis)和混合生菜(Lepidium sativum)种子的培养皿施加了1,300–2,500高斯(0.2特斯拉)的磁场。我们将磁体置于培养皿下方。在持续4天的磁场处理期间,观察到茎和根的长度增加。在总共8天的培养时间内,接受磁场处理的实验组(n = 10)的生长速率比对照组(n = 11)快1.4倍(p <0.0005)。该增长率比以往研究报道的结果高出20%。微管蛋白复合物的线条在正常情况下具有连续的连接点,但在施加磁场后,连接点消失。这与对照组存在明显差异,表明出现了异常排列,但其确切原因尚不明确。本实验中磁场促进植物生长的结果表明,通过施加静态磁场,有可能提高植物的生长速率、增加产量或调控发芽速度。此外,磁场可引起植物细胞的生理变化并促进生长。因此,磁场刺激可能产生类似于化学肥料的作用效果,意味着有望减少对化肥的依赖。

引言

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萌发是植物的生长过程,最终形成幼苗1在特定条件下,种子萌发开始,胚胎组织恢复生长。萌发起始于种子吸水,以激活萌发所需的酶。可通过人工诱导使种子萌发 体外 (在培养皿或试管中)1,2.

静磁场是一种特殊的作用力,可通过洛伦兹力3,4引起带电离子分子的运动。当带电或离子化的物体在磁场中运动时,就会产生洛伦兹力。所有物质均由原子构成,而原子由电子和质子组成。当存在磁场时(无论是静态还是交变磁场),都会影响带电物质的运动。这一现象同样适用于植物和水分子,从而影响细胞内的分子状态。在之前的一项研究中,使用电磁线圈产生脉冲磁场,并以“小松菜”(Komatsuna)植物作为研究对象5。在本研究中,采用磁体产生的静磁场,以期产生类似但不同的效应,作为洛伦兹力扩展研究的一部分。

磁场的频率而非其极性是影响植物萌发的关键因素。先前的研究表明,当磁场频率约为10 Hz时,萌发率比对照组高出20%。若以逆向方式撤除磁场,生长速率会受到抑制5。静态磁场对初期生长具有显著影响6-8,主要体现在萌发过程6和根系生长7上。

在本研究中,我们使用静态磁体来探究利用磁场调控农作物生长的可能性。具体而言,我们旨在确定特定的磁场处理条件是否能够使植物生长速率提高到超过文献中所报道的水平。此外,如果能够成功利用磁场提高植物的初始萌发率,则有望避免使用化学肥料。

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方案

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1. 初始设置

  1. 农业植物物种
    1. 使用凤仙花(Impatiens balsamina)、水菜(Brassica rapa var. japonica)、小松菜(Brassica rapa var. perviridis)和芝麻菜(Lepidium sativum)种子。
      注:凤仙花(Impatiens balsamina,又称洋凤仙或玫瑰凤仙)原产于印度,少数种类也分布于缅甸。小松菜(Brassica rapa var. perviridiskomatsuna)是与普通芜菁同种的一个变种。豆瓣菜(Lepidium sativum)是一种在分类学上与西洋菜和芥菜相关的香草植物,具有相似的风味和气味,因此被广泛用于商业用途5,7
  2. 植物培养
    1. 在直径100 mm(100 pi)的培养皿中培养凤仙花(Impatiens balsamina)、水菜(Brassica rapa var. japonica)、小松菜(Brassica rapa var. perviridis)和芝麻菜(Lepidium sativum)种子。确保每个培养皿仅含一种植物物种。
    2. 培养条件:将种子置于纤维素毛巾上,用三蒸水浸湿毛巾和种子。测量并确认实验室室内常温(RT)为18–25 °C,相对湿度范围为65–75%(请参见第3.1.2节)。
    3. 种子数量:凤仙花培养10 ± 1粒种子,水菜培养50 ± 10粒种子,小松菜培养330 ± 20粒种子,芝麻菜培养380 ± 20粒种子。培养条件保持一致,即18–25 °C,相对湿度65–75%(请参见第2.1.1节)。
      注:所有实验均在实验室室内条件下进行,湿度和温度范围受控。湿度和温度并非恒定不变,但磁处理组与对照组所处条件完全相同。

2. 四种农作物的培养

  1. 实验步骤
    1. 对照组和施加磁场组的植物种类及培养条件,请参照第1.2.3节。
    2. 在凤仙花的100 mm培养皿底部施加三个磁场强度为1,750 ± 350 高斯(10,000 高斯 = 1 特斯拉)的磁铁。施加过程中,确保三个磁铁不与种子直接接触,磁铁与种子之间由培养皿的塑料底部隔开。种子与磁铁之间的直接距离应为2–4 mm。对四种农作物连续施加磁场168小时(7天)。
    3. 按照2.1.2)中的所有步骤完全相同的操作,在凤仙花培养皿的顶部放置一个磁铁(N极朝上),底部放置另一个磁铁(S极朝上)。
      注:凤仙花实验中磁极的放置方式不同。然而,在本研究中,磁极方向并不被视为影响生长变化的关键因素,因为除磁通方向外,所有环境条件均相同。对凤仙花采用N极和S极的施加方式,旨在考察其在田间应用时的实际可行性,因为在实际田间环境中磁极方向可能难以控制。

3. 凤仙花微管蛋白染色  

  1. 在受控光照条件下的磁处理应用
    1.  将两块磁铁(N极朝上)放置于100 mm培养皿底部,按照步骤1.2.2的条件处理48小时。
      注意:若需调整光照条件,可将培养皿置于培养箱内的塑料架上。培养箱用于遮挡光线,并在黑暗环境中维持25 °C温度,持续48小时。然而,由于植株生长长度变异较大,本实验最终未采用此条件。
  2. 植物染色
    1. 将与步骤3.1.2相同条件下培养的整株凤仙花属(SPP)重瓣植株(包括茎和根)用4%多聚甲醛和0.1 M磷酸盐缓冲液(pH 7.4)固定15分钟。
    2. 取出凤仙花样品,浸入封闭缓冲液(2%马血清/1%牛血清白蛋白/0.1% Triton X-100溶于PBS,pH 7.5)中孵育2小时。随后将样品浸入PBS中清洗15分钟。
    3. 进行双重免疫荧光染色时,将样品与一抗anti-alpha tubulin(1:1,000)在4 °C下孵育过夜(O/N)。
    4. 取出样品,用PBS浸洗一次,每次10分钟。以FITC标记的羊抗小鼠IgG(1:400)作为二抗,在25 °C下孵育2小时。
    5. 将样品浸入PBS中,然后将其整体封片于24孔板底部。使用常规荧光显微镜观察微管蛋白取向(λ = 550 nm,放大倍数为100X、200X和400X)。
      注意:本实验中仅对非黑暗条件下培养的磁处理组(n = 10)和对照组(n = 11)的凤仙(Impatiens balsamina)进行了验证。

4. 数据收集方法

  1. 四种农作物生长过程的延时摄影制作
    1. 将相机快门设置为自动模式(任何数码相机均可实现),以每10分钟一次的频率对植物进行拍摄。光圈设置为F 3.2,ISO值设置为400。
    2. 连续7至10天采集700至900张图片。由于电池可能耗尽,需将相机连接电源线供电。
    3. 使用视频制作软件(参见材料与设备表),通过点击并拖拽的方式,按时间顺序将每张图片依次排列在时间轴上。每张图片持续时间为0.045至0.05秒,最终合成一段总时长为30至40秒的视频。检查时应按时间顺序逐一选中图片,确保画面之间无黑暗间隙。
    4. 完成步骤4.1.3后,点击软件中的播放按钮,确认合成的影片为一段30至40秒的延时视频,然后点击渲染并保存为.mpeg或.avi格式。作为尺寸参照标记,可在照片侧面放置加拿大25分硬币、美国1分硬币以及厘米刻度尺。
    5. 进行t检验和箱线图统计分析11,12
      注:采用五数概括法计算下限值(L)为Q1 - [1.5 × (Q3 - Q1)],上限值(H)为Q3 + [1.5 × (Q3 - Q1)]。该方法已应用于步骤1.2.2中的长度数据采集11。L和H值表示T分布图中99%的数据区域,因此落在该范围之外的数据点可视为异常值。采用箱线图和学生氏t检验分析幼苗高度差异12

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结果

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与对照组相比,在磁体存在条件下生长的植物中,微管蛋白染色显示出分散或变薄的结构(图2)。此外,对包括小松菜(Brassica rapa var. perviridis)和芝麻菜(Lepidium sativum)在内的农作物进行的为期7天的延时研究结果表明,由磁体产生的静态磁场可促进这些植物的初期生长(图3)。

这些结果表明,暴露于磁场的组别表现出显著的生长变化(图1)。在黑暗环境中生长的植物未显示出任何差异,说明在为期7天的延时实验中,仅光照条件具有适用性。本研究使用了三种具有代表性的农作物,但可纳入更多植物种类。其他作物或植物也可采用相同方案进行研究。既往研究表明,生长速率提高了20%,而本实验结果显示出1.4倍的增长,即40%。因此,施加静态磁场的磁体比施加交变磁脉冲更为有效。

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讨论

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在所有条件下,磁铁应放置在培养皿下方。本研究探讨了磁场对多种农作物种子生长速率的影响,重点以凤仙花作为农业植物的代表。例如,对凤仙花进行了微管蛋白染色,以评估其根和茎骨架微结构在分子水平上的变化,从而提示磁场对其长度增殖的影响。在凤仙花的长期(7–10 天)随访研究中,分别应用了磁铁的N极和S极。另外三种植物——水菜(Brassica rapa var. japonica)、小松菜(Brassica rapa var. perviridis)和芝麻菜(Lepidium sativum)——则仅使用N极朝向的磁铁进行处理。此举旨在进一步验证静态磁场本身(而非磁极方向)是促进初期生长的主要因素。此外,增加物种数量有助于支持磁处理促进初期生长效应在农业植物中具有更广泛的适用性。

许多因素,例如营养、湿度、温度和光照,可能影响植物的生长速率3。这些因素在各处理组中均保持恒定。通过仅使用三蒸水进行培养,排除了营养补充的影响。我们首先控制光照条件——最初在黑暗条件下于培养箱中对凤仙花进行实验。在黑暗环境中的生长模式与光...

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披露

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作者无任何利益冲突需要披露。

致谢

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本研究得到了韩国国家研究基金会(NRF)(2011-0012728)的支持。展示本研究的海报荣获韩国应用生物科学学会(KSABC)颁发的最佳海报奖。

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材料

本文使用的材料清单
姓名公司目录编号评论
静态磁铁JIM2000高斯
2% 马血清/1% 牛血清白蛋白/0.1% Triton X-100Sigma-Aldrich与55514合并封闭缓冲液
一抗Santa Cruz Biotechnologysc-8035a-Tubulin
二抗Santa Cruz Biotechnologysc-2010FITC标记的抗小鼠IgG
延时摄影技术手动控制ISO值400 & 光圈F 3.2
Sony Vegas Pro 13.0Sony

参考文献

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  1. Martin, F. W. In vitro measurement of pollen tube growth inhibition. Plant Physiol. 49, 924-925 (1972).
  2. Pfahler, P. L. In vitro germination characteristics of maize pollen to detect biological activity of environmental pollutants. Environ Health Perspect. 37, 125-132 (1981).
  3. Yao, Z., Tan, X., Du, H., Luo, B., Liu, Z. A high-current microwave ion source with permanent magnet and its beam emittance measurement. Rev Sci Instrum. 79, 073304(2008).
  4. Hendrickson, C. L., Drader, J. J., Laude, D. A., Guan, S., Marshall, A. G. Fourier transform ion cyclotron resonance mass spectrometry in a 20 T resistive magnet. Rapid Commun Mass Spectrom. 10, 1829-1832 (1996).
  5. Namba, K., Sasao, A., Shibusawa, S. EFFECT OF MAGNETIC FIELD ON GERMINATION AND PLANT GROWTH. Acta Hort. 399, 143-148 (1995).
  6. Hirota, N., Nakagawa, J., Kitazawa, K. Effects of a magnetic field on the germination of plants. Journals of Applied Physics. 85, 5717-5719 (1999).
  7. Penuelas, J., Llusia, J., Martinez, B., Fontcuberta, J. Diamagnetic Susceptibility and Root Growth Responses to Magnetic Fields in Lens culinaris, Glycine soja, and Triticum aestivum. Electromagnetic Biology and Medicine. 23, 97-112 (2004).
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  10. Hoson, T., Matsumoto, S., Soga, K., Wakabayashi, K. Cortical microtubules are responsible for gravity resistance in plants. Plant Signal Behav. 5, 752-754 (2010).
  11. Kim, S., Im, W. Static magnetic fields inhibit proliferation and disperse subcellular localization of gamma complex protein3 in cultured C2C12 myoblast cells. Cell Biochem Biophys. 57, 1-8 (2010).
  12. Benjamini, Y. Opening the Box of a Boxplot. The American Statistician. 42, 257-262 (1988).

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FITC

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